Yöntem makalesi

Yüksek Çözünürlüklü Kardiyak Pozitron Emisyon Tomografisi/Küçük Hayvanlar için Bilgisayarlı Tomografi

DOI:

10.3791/64066

⸱

16 Aralık 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1CNR Institute of Clinical Physiology, 2Sant’Anna School of Advanced Studies, 3Fondazione Regione Toscana/CNR “G. Monasterio”

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada, küçük hayvanlar için yüksek çözünürlüklü pozitron emisyon tomografisi/bilgisayarlı tomografi kullanılarak kardiyak fonksiyon ve morfolojinin nicelleştirilmesi için deneysel bir görüntüleme protokolü sunulmaktadır. Hem fareler hem de sıçanlar, iki tür için bilgisayarlı tomografi kontrast maddelerinin farklı gereksinimlerini tartışarak göz önünde bulundurulur.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pozitron emisyon tomografisi (PET) ve bilgisayarlı tomografi (BT) en çok kullanılan tanısal görüntüleme teknikleri arasındadır ve her ikisi de kardiyak fonksiyon ve metabolizmayı anlamada hizmet eder. Klinik öncesi araştırmalarda, farelerin ve sıçanların küçük kalp boyutu ve çok yüksek kalp atış hızlarının yarattığı zorlu teknolojik gereksinimlerle başa çıkmak için tasarlanmış, yüksek hassasiyete ve yüksek mekansal-zamansal çözünürlüğe sahip özel tarayıcılar kullanılmaktadır. Bu yazıda, hayvan hazırlığı ve görüntü edinimi ve rekonstrüksiyonundan görüntü işleme ve görselleştirmeye kadar kardiyak hastalıkların deneysel fare ve/veya sıçan modelleri için bimodal kardiyak PET/BT görüntüleme protokolü tanımlanmıştır.

Özellikle, 18 F etiketli florodeoksiglukoz ([18F] FDG)-PET taraması, sol ventrikülün (LV) farklı segmentlerinde glikoz metabolizmasının ölçülmesine ve görselleştirilmesine izin verir. Kutup haritaları bu bilgileri görüntülemek için kullanışlı araçlardır. BT kısmı, elektrokardiyografi (EKG) uçları olmadan retrospektif geçit kullanılarak tüm kalbin (4D-BT) zamana bağlı 3D rekonstrüksiyonundan oluşur, bu da LV'nin morfofonksiyonel değerlendirmesine ve ardından ejeksiyon fraksiyonu (EF) ve inme hacmi (SV) gibi en önemli kardiyak fonksiyon parametrelerinin nicelleştirilmesine izin verir. Entegre bir PET/BT tarayıcısı kullanılarak bu protokol, hayvanı farklı tarayıcılar arasında yeniden konumlandırmaya gerek kalmadan aynı anestezi indüksiyonu içinde yürütülebilir. Bu nedenle, PET/BT, kalp hastalıklarının birkaç küçük hayvan modelinde kalbin morfofonksiyonel ve metabolik değerlendirmesi için kapsamlı bir araç olarak görülebilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Küçük hayvan modelleri, kardiyovasküler hastalıkların anlaşılmasının ilerlemesi için son derece önemlidir 1,2. İnvaziv olmayan, tanısal görüntüleme araçları, son yıllarda hem klinik hem de klinik öncesi ortamlarda kardiyak fonksiyona bakış açımızda devrim yarattı. Kalp hastalıklarının küçük hayvan modelleri söz konusu olduğunda, çok yüksek mekansal zamansal çözünürlükte spesifik görüntüleme araçları geliştirilmiştir. Bu nedenle, bu tür aletler, kalp yetmezliği (HF)3 veya miyokard enfarktüsü (MI)4 gibi spesifik hastalık modellerinde farelerin ve sıçanların çok küçük ve çok hızlı hareket eden kalpleri üzerindeki ilgili metabolik ve kinetik miyokard parametrelerinin doğru bir şekilde ölçülmesi ihtiyacını karşılayabilir. Bu amaçla, her biri kendi güçlü ve zayıf yönlerine sahip çeşitli yöntemler mevcuttur. Ultrason (US) görüntüleme, büyük esnekliği, çok yüksek zamansal çözünürlüğü ve nispeten düşük maliyeti nedeniyle en yaygın kullanılan yöntemdir. Küçük hayvanlarda ABD kardiyak görüntülemenin benimsenmesi,50 μm'nin altında uzamsal çözünürlüklere sahip ultra yüksek frekanslı 5,6 probları kullanan sistemlerin ortaya çıkmasından bu yana önemli ölçüde artmıştır.

Tam 3D kardiyak görüntüleme için ABD'nin ana dezavantajları arasında, tüm kalbin dinamik B modu görüntülerinin tam bir yığınını oluşturmak için probu motorlu bir çeviri aşamasına monte ederek kalp ekseni boyunca doğrusal taramalara ihtiyaç duyulması7. Sonunda, bu prosedür (her bir prob konumunda elde edilen görüntülerin doğru uzamsal ve zamansal kaydından sonra), düzlem içi ve düzlem dışı yönler arasında farklı uzamsal çözünürlüklere sahip bir 4B görüntüye yol açar. Aynı homojen olmayan uzamsal çözünürlük problemi, kalbin fonksiyonel görüntülemesinde hala altın standardı temsil eden kardiyak MR'da (CMR)8 ortaya çıkar. Bunun yerine hem bilgisayarlı tomografi (BT) hem de pozitron emisyon tomografisi (PET)9 kullanılarak gerçek izotropik 3D görüntüleme elde edilebilir. PET, BT, MR veya ABD'ye kıyasla daha düşük bir uzamsal çözünürlükten muzdarip olmasına rağmen, enjekte edilen prob miktarı başına (nanomolar aralıkta) görüntü sinyali açısından çok hassas bir araç sağlar. PET'in temel avantajı, organın patofizyolojisinin altında yatan hücresel ve moleküler mekanizmaları gösterebilmesidir. Örneğin, [18F] FDG enjeksiyonunu takiben bir PET taraması, vücuttaki glikoz metabolizmasının 3D haritasının yeniden yapılandırılmasına izin verir. Bunu dinamik (yani, zaman çözümlü) veri toplama ile birleştirerek, izleyici kinetik modelleme, glikoz alımının metabolik hızlarının (MRGlu) parametrik haritalarını hesaplamak için kullanılabilir ve bu da miyokard canlılığı hakkında önemli bilgiler sağlayacaktır10.

BT, ilgili doku bileşenlerinin (örneğin, kana karşı kas) ölçülebilir bir şekilde geliştirilmesini sağlamak için yüksek konsantrasyonlarda (mL başına 400 mg'a kadar iyot) önemli miktarda harici kontrast madde (CA) gerektirir, ancak özellikle küçük hayvan görüntüleme için tasarlanmış son teknoloji ürünü mikro-BT tarayıcıları kullanıldığında, mekansal ve zamansal çözünürlükte üstündür. 11 Kardiyak PET/BT'nin uygulanabileceği tipik bir hastalık modeli, miyokard enfarktüsü ve kalp yetmezliğinin deneysel olarak değerlendirilmesi ve tedaviye yanıttır. Küçük hayvanlarda MI'yi indüklemenin yaygın bir yolu, sol ön inen (LAD) koroner arter 12,13'ün cerrahi olarak bağlanması ve daha sonraki günlerde hastalığın ilerlemesini ve kardiyak yeniden şekillenmenin uzunlamasına değerlendirilmesidir 4. Bununla birlikte, küçük hayvanlarda kalbin kantitatif morfofonksiyonel değerlendirmesi, yaşlanmanın kalp fonksiyonu üzerindeki etkisinin değerlendirilmesi14 veya obezite modellerinde değiştirilmiş reseptör ekspresyonu15 gibi diğer hastalık modelleri için de büyük ölçüde uygulanabilir. Sunulan görüntüleme protokolü herhangi bir hastalık modeliyle sınırlı değildir ve bu nedenle, küçük kemirgenlerle yapılan klinik öncesi araştırmaların çeşitli bağlamlarında en geniş ilgi çekici olabilir.

Bu yazıda, küçük hayvan integrali PET/BT kullanılarak kardiyak görüntüleme için baştan sona deneysel bir protokol sunulmaktadır. Sunulan protokol belirli bir bimodal entegre tarayıcı için tasarlanmış olsa da, açıklanan prosedürün PET ve BT kısımları farklı üreticilerin ayrı tarayıcılarında bağımsız olarak gerçekleştirilebilir. Kullanılan PET/CT tarayıcıda, işlem sırası önceden programlanmış bir iş akışında düzenlenir. Her iş akışının ana dalları bir veya daha fazla edinme protokolüdür; Her bir satın alma protokolünün belirli ön işleme protokolleri için bir veya daha fazla dalı olabilir ve sırayla, her ön işleme protokolünün belirli yeniden yapılandırma protokolleri için bir veya daha fazla dalı olabilir. Hem hayvanın görüntüleme yatağında hazırlanması hem de görüntüleme işlemleri sırasında enjekte edilecek dış etkenlerin hazırlanması anlatılmaktadır. Görüntü yakalama prosedürünün tamamlanmasından sonra, yaygın olarak bulunan yazılım araçlarına dayanan nicel görüntü analizi için örnek prosedürler sağlanmıştır. Ana protokol fare modelleri için özel olarak tasarlanmıştır; fare bu alanda en çok kullanılan tür olmaya devam etse de, ana protokolün sonunda sıçan görüntüleme protokolünün bir uyarlamasını da gösteriyoruz. Hem fareler hem de sıçanlar için temsili sonuçlar gösterilir ve açıklanan prosedürlerle beklenebilecek çıktı türünü gösterir. Bu makalenin sonunda, tekniğin artılarını ve eksilerini, kritik noktaları ve farklı PET radyotracerlerinin hazırlık ve edinim / yeniden yapılanma adımlarında neredeyse hiçbir değişiklik yapmadan nasıl kullanılabileceğini vurgulamak için kapsamlı bir tartışma yapılmıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan deneyleri, Avrupa Direktifi (1986 tarihli 86/609/EEC sayılı Direktif ve 2010/63/UE sayılı Direktif) ve İtalyan yasaları (D.Lgs. 26/2014) tarafından talep edilen Uluslararası Laboratuvar Hayvanlarının Kullanımı Hakkında Kılavuz'un Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzu'ndaki tavsiyelere uygun olarak gerçekleştirilmiştir.

1. PET/BT görüntüleme protokollerinin ve iş akışının kurulumu

NOT: Burada sunulan protokol, fare modellerinin kardiyak görüntülemesi için özel olarak tasarlanmıştır. Sıçanlarla çalışmak, esas olarak hayvanın daha büyük boyutu (kabaca 10 kat daha ağır) nedeniyle gerçek protokolde bazı değişiklikler anlamına gelebilir. Sıçan görüntüleme için modifikasyonlar adımlarda özellikle belirtilmiştir; Herhangi bir değişiklikten bahsedilmezse, fare görüntüleme için aynı adımlar sıçanlar için kullanılabilir.

  1. PET/CT tarayıcının grafik kullanıcı arabirimini (GUI) açın (bkz. Malzeme Tablosu) ve bir dizi yeni protokol oluşturun (veri toplama, ön işleme ve görüntü yeniden yapılandırma parametreleri dahil): (i) a dinamik PET taraması, (ii) a düşük doz BT taraması zayıflama düzeltmesi için (cesaret) kontrast madde olmadan ve (iii) a kontrastlı Cine-CT taraması.
    NOT: Edinim, ön işleme ve yeniden yapılandırma aşamaları için yeni protokollerin (yani, tomografi için özel yazılım talimatları) oluşturulması basit bir süreçtir; Sorun olması durumunda, kullanıcı GUI kullanım kılavuzunda daha ayrıntılı bilgi bulabilir.
    1. PET taraması için, tarayıcının Protokol sekmesini (GUI) açın ve aşağıdaki parametrelerle üç yeni protokol ( edinme, ön işleme ve yeniden yapılandırma için) oluşturun:
      1. Satın alma protokolü için: 3.600 s toplam tarama süresini ve tek yatak pozisyonunu ayarlayın. Bu protokolü, iş akışına daha sonra içe aktarmak için uygun bir adla kaydedin. Aynısını, aşağıdaki noktalardaki sonraki tüm protokoller için de yapın.
      2. Fare için ön işleme protokolü için: 250-750 keV enerji penceresi (EW) seçin ve aşağıdaki düzeltmeleri etkinleştirin: radyoaktif bozunma, rastgele tesadüfler ve ölü zaman. Çerçeveleme protokolünü (yani, ham verilerin dinamik olarak bölünmesi) aşağıdaki gibi ayarlayın: 8 x 5 s, 8 x 10 s, 3 x 40 s, 2 x 60 s, 2 x 120 s, 10 x 300 s (= 3.600 s). Sıçan için, fare protokolüyle aynı çerçeveyi kullanarak bir 350-750 keV enerji penceresi (EW) seçin.
      3. Yeniden yapılandırma protokolü için: normalleştirme, nicel düzeltme ve BT zayıflama düzeltmesi etkin, 8 alt küme ve 8 yineleme içeren yüksek kaliteli, Monte Carlos tabanlı 3B Sıralı Alt Küme Beklenti Maksimizasyonu (3D-OSEM-MC) algoritmasını seçin.
    2. Zayıflama düzeltmesi (CTAC) için düşük doz BT taraması için aşağıdaki parametreleri kullanın:
      1. Edinme protokolü için: tek çerçeve, tek yatak konumu, tam tarama; tüp ayarları: 80 kV, düşük akım (düşük doz); 360° üzerinde 576 görüntüleme, görüntüleme başına 34 ms pozlama süresi (20 s tarama süresi); dönme tipi: sürekli, hassasiyet modu: yüksek hassasiyet.
      2. Ön işleme protokolü için: 240 μm voksel boyutu, enine FOV: Sıçan, eksenel FOV:% 100.
      3. Yeniden yapılandırma protokolü için: filtre penceresi: pürüzsüz, voksel boyutu: standart, ışın sertleştirmeyi ve halka ön düzeltmesini etkinleştirin, halka artefaktı sonrası düzeltmeyi devre dışı bırakın.
    3. Kontrastlı kapılı BT taraması için, aşağıdaki ayarlarla üç yeni protokol ( edinme, ön işleme ve yeniden yapılandırma için) oluşturun:
      1. Fare için alım protokolü için: tek çerçeveyi, tek yatak konumunu, tam taramayı ayarlayın; tüp ayarları: 65 kV, tam akım (düşük gürültü); 360° üzerinde 8.000 görüntüleme, görüntüleme başına 15 ms pozlama süresi (120 s tarama süresi); döndürme türü: sürekli, hassasiyet modu: yüksek hassasiyet. Sıçan için, alım protokolü parametrelerini aşağıdaki gibi ayarlayın: 80 kV tüp voltajı, 360 ° üzerinde 16.000 görüntüleme, görüntüleme başına 12 ms pozlama süresi (192 s tarama süresi).
      2. Fare için ön işleme protokolü için: 120 μm voksel boyutu; enine Görüş Alanı (FOV): Fare; eksenel FOV: P'yi seçin. Sıçan için 240 μm voksel boyutu seçin; enine Görüş Alanı (FOV): Sıçan; eksenel FOV:% 50.
      3. Yeniden yapılandırma protokolü için: filtre pencereleri: pürüzsüz, voksel boyutu: standart; ışın sertleştirme ve halka ön düzeltmesini etkinleştirin, halka artefaktı sonrası düzeltmeyi devre dışı bırakın.
    4. GUI'de İş Akışı sekmesini açın ve yeni oluşturulan protokolleri ekleyerek yeni bir iş akışı oluşturun: PET için adım 1.1.1.1-1.1.1.3, adım 1.1.2.1. -1.1.2.3. CTAC ve 1.1.3.1 adımları için. -1.1.3.3. kapılı BT için, verilen sırayla. Her iki durumda da, protokollerin aşağıdaki sırayla iç içe geçtiğinden emin olun: Edinme | Ön işleme | Yeniden yapılanma.
      NOT: PET taramasının başlangıcındaki arteriyel giriş fonksiyonunun zirvesini daha iyi yakalamak için <5 s süreli dinamik PET çerçeveleri mümkündür, ancak bu, nicel doğruluğu azaltılmış gürültülü görüntülere yol açabileceğinden önerilmez. Adım 1.1.2.2'de, enine FOV için "Sıçan" boyutunu kullandık. Bu, CTAC'de hem sıçanlar hem de fareler için yaygın olarak kullanılır.

2. PET/BT görüntüleme için hayvan hazırlığı

NOT: Mevcut protokol için, tüm hayvanlar bir gecede oruç tutuldu.

  1. Fareyi başlangıçta bir indüksiyon odasında %3-4 (v/v) izofluran ile uyuşturun ve daha sonra %1-2 (v/v) izofluran ile koruyun.
  2. Fareyi tartın ve hayvanın durumunu izlemek için bazal glisemiyi ölçün. Gerekli kan örneğini almak için keskin makas kullanın ve kuyruk ucunda küçük bir kesim yapın, ardından doğrudan test şeridinde bir damla kan (~ 1 μL) toplamak için kuyruğa hafifçe masaj yapın.
  3. Fare için 29 G kelebek ve sıçan için 24 G kullanarak kaudal ven seviyesinde bir venöz erişimin yerleştirilmesine devam edin.
    1. Kanülasyon tekniğini gerçekleştirmek için, eşzamanlı ısıtma (tipik olarak, bir ısıtma lambası altında) ve damarın vazodilatasyonu için iğnenin yerleştirildiği noktanın dezenfeksiyonunu kullanın. Kanülasyondan sonra, işlem sırasında yerinde tutmak için kelebeği ipek bir kurdele ile kuyruğa sabitleyin.
      NOT: [18F]FDG çalışmaları için oruç tutmak gereklidir. Farklı izleyiciler farklı hayvan preparatlarını içerebilir, ancak bu konuda kapsamlı bir tartışma mevcut protokolün kapsamı dışındadır. [18F]FDG söz konusu olduğunda, oruç tutmaktan kaçınmak çok farklı izleyici biyodağılımına yol açar16.
  4. PET-CT tarayıcıya bağlı anestezi sistemini (izofluran% 1-2, fare için 0.8 L / dakO2 ve sıçan için 1-1.2 L / dak) açın ve fareyi yatağa aktarın.
  5. Fareyi sırtüstü pozisyonda, önce kafayı, PET-CT tomografisinin tarayıcı yatağına yerleştirin, burnunu anestezi için burun maskesine koyun ve farenin başını yapışkan bantla maskeye hafifçe bloke edin.
  6. Görüntüleme prosedürleri sırasında hareket artefaktlarına yol açabilecek istemsiz hareketleri önlemek için farenin üst ve alt uzuvlarını tarayıcı yatağına sabitleyin.
  7. Sırasıyla bir rektal prob ve bir solunum yastığı kullanarak vücut ısısını ve solunum hızını izleyin.

3. PET izleyici doz hazırlığı

  1. Fareler için, bir insülin şırıngası (1 mL) ile 100-150 μL'lik bir hacimde 10 MBq [18F] FDG çekin. Sıçanlar için, 0.20-0.25 mL'de 15 MBq'luk daha yüksek bir doz çizin.
    NOT: Bu protokolde ele alınan PET tarayıcısı çok yüksek hassasiyete sahip olduğundan ve yüksek kaliteli görüntüler elde etmek için mütevazı miktarda etkinlik gerektirdiğinden daha yüksek etkinlikten kaçının.
  2. Şişedeki izleyicinin orijinal konsantrasyonu çok yüksekse, izleyici dozunu 50-100 MBq / mL'lik bir konsantrasyona seyreltmek için fizyolojik çözelti (% 0.9 w / v NaCl) kullanın.
  3. Şırıngadaki gerçek aktiviteyi ölçmek için PET doz kalibratörünü kullanın. Ön enjeksiyon aktivitesine ve ölçüm süresine açıklama ekleyin, çünkü bu değerler daha sonra PET tarayıcı GUI'sinin belirli giriş modülleri kullanılarak kullanılacaktır.

4. BT kontrast madde hazırlığı

  1. İyotlu lipit emülsiyon kontrast maddesinin 20 g fare ağırlığı başına 0,2 mL'yi 1 mL'lik bir şırıngaya çekin. Daha ağır fareler için enjeksiyon hacmini 0,5 mL CA ile sınırlayın. İomeprol kullanıyorsanız, fareler için enjeksiyon hızını 10 mL / s (~ 0.17 mL / dak) olarak ayarlayın ve enjeksiyon hacmini 0.5 mL ile sınırlayın.
    1. Sıçanlar için, 200 mg / mL'lik bir konsantrasyona seyreltilmiş 2.3-3 mL iyomeprol'u 5 mL'lik bir şırıngaya çekin.
      NOT: Küçük hayvan lipit emülsiyonu CA mevcut değilse, aşağıda tartışıldığı gibi, bir şırınga pompası vasıtasıyla sürekli enjeksiyonlu iyomeprol kullanılabilir.
    2. Şırıngayı şırınga pompasına bağlayın ve pompayı gerçek şırınga boyutu ve çapı için ayarlayın.
    3. Şırıngayı CA tüpüne ve iğnesine bağlayın ve boruyu CA ile önceden doldurun.
    4. Enjeksiyon hızını 24 mL / s (= 0,4 mL / dak) olarak ayarlayın ve enjeksiyonu maksimum 2 mL hacimle sınırlayın.
      NOT: İyotlu lipid emülsiyonuna dayalı kan havuzu CA'sının kullanılması, tek bir enjeksiyonun daha büyük hacmi nedeniyle bu prosedürün nispeten yüksek maliyetine rağmen, sıçanlarda da mümkündür. Bu seçenek tercih edilirse (örneğin, şırınga pompasından kaçınarak protokolü basitleştirmek için), aşağıdaki prosedür kullanılabilir:
  2. İyotlu lipit emülsiyon kontrast maddesinin vücut ağırlığının kg'ı başına 7,5 mL'yi 5 mL'lik bir şırıngaya çekin. Enjeksiyon hacmini daha ağır sıçanlar için de 2 mL CA ile sınırlandırın.

5. Görüntüleme öncesi hayvan hizalama ve ön operasyonlar

  1. Hayvanın görüntüleme yatağında hareketsiz hale getirilmesi üzerine, tomografi GUI'si üzerinde yeni bir çalışma oluşturun. Etüt adı modülüne bir etüt adı tanımlayıcısı ekleyin ve açılır menüden daha önce kaydedilmiş görüntüleme iş akışını seçin.
  2. Hayvan/Numune bilgileriyle uygun anatomik parçayı seçin | Anatomik kısım | Hayvan /Örnek bilgilerine göre kardiyak ve hayvan konumlandırma | Konumlandırma | Önce sırtüstü/Baş. İlgili modül için hayvan ağırlığına gram cinsinden açıklama ekleyin: Hayvan/Örnek bilgileri | Hayvan ağırlığı.
    NOT: Bu bölümdeki diğer tüm bilgiler isteğe bağlıdır, ancak yeniden yapılandırma görüntülerinin DICOM başlığında bulmak için istenen bilgilerin mümkün olduğunca çoğunu sağlamak yararlıdır, böylece sonraki veri sorgulaması kolaylaşır.
  3. PET Scan bilgilerinde radyonüklidi seçin | [18 F]FDG çalışmaları ve diğer 18 F etiketli bileşikler için F18; Diğer izleyicilerin (örneğin, [13N]NH3) kullanılıp kullanılmadığını değiştirin. İzleyicinin adını PET Scan bilgilerine de yazın | Bu ad olarak İzleyici adı modülü, görüntü yeniden yapılandırmasının tamamlanmasının ardından DICOM başlığında bildirilecektir.
    NOT: İzleyici enjeksiyon süresi, aktivitesi ve hacmi hakkında bilgi zorunludur, ancak daha sonra PET alımı sırasında sağlanabilir.
  4. BT tarama bilgilerine, kontrast madde ile ilgili mevcut tüm bilgileri yazın.
    NOT: Tüm bu bilgiler isteğe bağlıdır, ancak sağlanırsa sonraki veri sorgulamasını kolaylaştırabilir.
  5. Taramayı gerçekleştir'e basın ve GUI'nin başka bir sekmesinin açılmasını bekleyin, böylece hayvan konumlandırma ve diğer tarama seçeneklerinin belirlenmesi sağlanır.
  6. CT kalibrasyonunda CT kalibrasyon tipini seçin | Varsayılan BT kalibrasyonunu kullanın.
  7. Etüde hazırlık bölümünde, açılır menüden her bir tarama protokolünü seçin ve Bu taramadan önce kullanıcı onayını bekle onay kutusunu işaretleyin.
    NOT: Bu adım çok önemlidir, çünkü ilgili edinme aşamasına başlamadan önce tarayıcıyı bekleme moduna geçirecektir. PET taraması için bu, izleyici enjeksiyonunun senkronizasyonuna ve gerçek PET taramasının başlamasına izin verecektir; CTAC taraması için, kullanıcının BT taraması sırasında X-ışınlarının emisyonundan önce kapağı kapatmasına (ekranlama) izin verecektir (BT taraması başlamadan önce kapak açıksa çalışma otomatik olarak iptal edilecektir); Cine-CT taraması için bu duraklama, kullanıcının CA infüzyon protokolünü ve BT veri taramasını gerekli gecikmeyle başlatmasına olanak tanır.
  8. Hayvan konumlandırma için, GUI'nin sol bölmesindeki anahtarı kullanarak Motor kontrol modülünü açın.
    NOT: Bu, hayvan yatağındaki merkezleme lazerlerini açar ve tarayıcının yan tarafına yerleştirilen manuel yatak hizalama düğmelerini etkinleştirir.
  9. Hayvanın göğsünü lazer izlerine taşımak için manuel yatak hizalama düğmelerini kullanın. Hayvanın hem uzunlamasına hem de dikey hizalamasını dikkatlice kontrol edin.
  10. Hayvan merkezleme lazerine göre doğru konuma yerleştirildikten sonra, ilgili edinme aşamaları sırasında PET ve BT tarayıcılarının merkezine taşınacak olan mevcut lazer işaretli konumu kaydetmek için lazeri kapatın düğmesine basın. Daha sonra, motor kontrol modülünü kapatın.

6. PET taraması

  1. Hayvanı PET tarayıcı FOV'una taşımak için Satın almaya başla'ya basın. Kuyruk ve kanül, izleyici enjeksiyonuna izin vermek için FOV'un dışında kalacaktır. Kullanıcı Devam düğmesine basana kadar tarayıcı boşta kalır.
  2. Şırıngayı kalibre edilmiş PET izleyici dozu ile hazırlayın.
  3. Devam düğmesine basarak edinimi başlatın ve izleyiciyi tarama başlangıcından itibaren 5 s içinde kanüle enjekte etmeye başlayın (Şekil 1).
    NOT: Enjeksiyon süresi ~ 20-25 s olacaktır.
  4. Şırıngadaki artık aktiviteyi ölçmek için şırıngayı PET doz kalibratörü içine koyun. Gerçek etkinliğe ve ölçüm zamanına açıklama ekleyin.
  5. Tarayıcı GUI'sinin Donanım monitörü sekmesinde, eklenen gerçek zamanı, etkinliği ve hacmi eklemek için PET izleyici bilgilerini güncelleştir düğmesini kullanın.
  6. Tarama sırasında, hayvanın fizyolojik parametrelerini periyodik olarak kontrol edin.
  7. Tarama sırasında, glisemiyi adım 2.2'de açıklandığı gibi aşağıdaki zaman noktalarında ölçün: PET taramasının başlamasından 5 dakika, 20 dakika, 40 dakika ve 60 dakika sonra.
  8. Glisemi ölçümünden sonra, test şeridini gama sayacına koyun ve 60 s boyunca aktivite ölçümünü gerçekleştirin. Aktivite ölçümünün gerçekleştirildiği gerçek zamanı kaydedin ve izleyici enjeksiyon süresini referans zaman olarak alarak radyoaktif bozunma için düzeltin. Glikoz test şeridinde ortalama 1 μL'lik bir kan hacmini dikkate alarak kaydedilen aktivite değerlerini aktivite konsantrasyonuna (Bq / mL) dönüştürün (yani, denklem [1] kullanarak):
    C kan(t) = Akan(t)/0.001 mL [Bq/mL] (1)
    burada A kan (t), Bq cinsinden ifade edilen test şeridindekikan örneğinin çürüme düzeltilmiş ölçülen aktivitesidir.
    NOT: PET tarama başlatma ve izleyici enjeksiyonu, enjeksiyon sırasında operatörün bulunduğu yere yakın tarayıcının yanal tablasına yerleştirilen tomografinin mobil kontrol cihazı kullanılarak aynı operatör tarafından gerçekleştirilebilir. Tarama başlangıcı ile enjeksiyonun başlangıcı arasında daha uzun gecikmelere izin verilir, ancak dinamik dizinin başlangıcındaki bazı yeniden yapılandırılmış çerçeveler boş kalır. 10 sn'den büyük gecikmelerden kaçınılması önerilir (yani, geçerli protokolle iki boş çerçeveye yol açar).

figure-protocol-1
Resim 1: PET izleyicinin enjeksiyonu. Bu işlem, PET taraması başladıktan hemen sonra gerçekleştirilir. Hayvan, PET görüş alanının içindedir (kuyruğu operatörün tarafında görülebilecek şekilde önce kafa). Kısaltma: PET = pozitron emisyon tomografisi. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

7. BT taramaları

  1. BT kontrast maddesini enjekte etmeden önce, tarayıcının kapağını kapattıktan ve GUI üzerindeki Devam düğmesine bastıktan hemen sonra CTAC taramasını başlatın. Bu çok kısa kazanımın sonunda, PET izleyicisinin enjeksiyonu için kullanılan aynı vasküler erişimi kullanarak edinimden önce CA'yı enjekte ederek kan havuzunun uygun şekilde iyileştirilmesini sağlamak için aşağıdaki prosedürleri uygulayın.
    1. İyotlu lipid emülsiyonu CA:
      1. CTAC taramasının tamamlanmasından sonra, fare kuyruğu damarına zaten bağlı olan kanülü kullanarak iyotlu lipid emülsiyon CA'sını enjekte edin. Tipik enjeksiyon süresi 30-60 s arasındadır.
      2. Enjeksiyonun tamamlanmasından hemen sonra görüntülemeye başlayın. Cine-CT alımını başlatmak için tarayıcı GUI'sinde Devam'a basın.
    2. Iomeprol/şırınga pompası:
      1. İyomeprol gibi normal bir X-ışını CA'sı kullanılıyorsa, sabit bir hızda yavaş enjeksiyona izin veren bir şırınga pompası kullanın.
      2. Fareler için, enjeksiyon hacmini 0,5 mL ile sınırlayarak CA'nın enjeksiyon hızını 10 mL/s (~0,17 mL/dak) olarak ayarlayın. Bu ayarla, enjeksiyonu ~ 3 dakika sonra durdurun. Sıçanlar için, pompayı 24 mL / s (= 0,4 mL / dak) hızına ayarlayın ve enjeksiyon hacmini 2 mL ile sınırlandırın. Bu ayarla, enjeksiyonu 5 dakika sonra durdurun.
      3. CA borusuna bağlı iğneyi kuyruk damarının kanülüne bağlayarak hem borunun hem de iğnenin CA ile önceden doldurulmasını sağlayın.
      4. Enjeksiyonu başlatın. Tarayıcının kapağını kapatın ve Cine-CT taramasına hazırlanın.
      5. Tomografın GUI'sindeki Devam düğmesine fareler için enjeksiyonun başlangıcından 60 sn sonra ve sıçanlar için enjeksiyonun başlangıcından itibaren 90 sn sonra basın, böylece Cine-CT alımı başlatılır. CA enjeksiyonu, fareler için Cine-CT taramasının tamamlanmasıyla kabaca aynı anda ve sıçanlar için tamamlandıktan sonra duracaktır.
  2. Cine-CT taramasının tamamlanmasının ardından, hayvanı fizyolojik izleme sisteminden ayırın ve kuyruk damarı kanülünü çıkarın. Gerçek protokole bağlı olarak, hayvanlar tarif edilen görüntüleme prosedüründen sonra ya kurtarılır ya da ötenazi yapılır. İlk durumda, hayvanlar kafeslerinde kızılötesi bir lamba altında sıcak bir ortamda uyandırılır. Tamamen uyanana kadar izlenirler, gaz halindeki anesteziden sonra 15/30 dakika sürer. Örneğin, görüntüleme prosedürünün sonunda doku hasadı gerektiren protokoller durumunda, 26/2014 D.Lgs. Ek VI'ya göre, hayvanlar bir indüksiyon odasında (% 5 izofluran) anestezik doz aşımı kullanılarak ötenazi yapılır.
    NOT: Bu protokolde tartışıldığı gibi 18F bazlı radyonüklid durumunda, izleyici enjeksiyonundan 24 saat sonra, hayvanın vücudunda tüm pratik amaçlar için güvenli olan bir artık radyoaktivite seviyesine ulaşmak için yeterlidir.

8. İntrinsik kardiyorespiratuar geçit kullanılarak kardiyak 4DCT görüntülerinin rekonstrüksiyonu

NOT: Görüntüleme çalışmasının tamamlanmasının ardından, standart PET ve BT rekonstrüksiyonu otomatik olarak gerçekleştirilir. Bununla birlikte, 4D (Cine) kardiyo BT dizisinin rekonstrüksiyonu manuel olarak yapılmalıdır ve bazı kullanıcı etkileşimi gerektirir. Daha sonraki morfo-fonksiyonel kardiyak BT analizi için zorunlu olan bu özel rekonstrüksiyon tipi bu bölümde tartışılmıştır.

  1. Tomogragh GUI'sinin kardiyak geçit modülünü açın ve analiz edilecek görüntüleme çalışmasını seçin.
  2. Görüntülenen hayvanın radyografilerinde bir ilgi alanı (ROI) seçin (Şekil 2), kapı sinyalini temsil eden zamana bağlı bir kardiyak hareket eğrisi oluşturmak için - kymogram. Önceden çizilmiş dikdörtgen yatırım getirisini hem kalp tepesi hem de diyafram seçilecek şekilde dikey olarak hareket ettirin. Ardından, Geçit sinyali analizi'ni seçin. Kullanıcı arayüzü artık geçit sinyalini hem zaman alanında hem de frekans alanında gösterecektir.
  3. İlk frekans alanı grafiğinde, frekans spektrumunun ilk tepe grubunu vurgulayarak solunum frekansı bandını seçin (örnek spektrum için Şekil 3'e bakın).
  4. İkinci frekans alanı grafiğinde, ikinci en keskin zirveyi vurgulayarak kardiyak hareket frekans bandını seçin.
  5. Bir sonraki aşamada, zaman alanı geçit sinyalini, tanımlanan solunum zirvelerini ve kardiyak kasılma zirvelerini gösteren, üst üste binmiş renk belirteçleri (noktalar) ile gözlemleyin. İşaretçi pozisyonları orijinal geçit sinyalinin solunum ve kalp zirvelerine iyi uyuyorsa, bir sonraki aşamaya geçin. Yoksa:
    1. Geçit sinyalinin şekli Şekil 3'te görüntülenenden çok farklıysa, adım 8.2'ye geri dönün ve başka bir YG seçin.
    2. Geçit sinyalinin şekli Şekil 3'te gösterilene oldukça benzerse, adım 8.3 ve adım 8.4'e geri dönün ve geçit sinyali spektrumunda farklı frekans bantları seçin.
  6. Bir sonraki aşamada, en az dört kalp kapısı seçin.
    NOT: Tipik Sine-BT rekonstrüksiyonu 8-12 kardiyak kapıdan oluşur.
  7. Açılır menüyü kullanarak uygun solunum penceresini seçin:

figure-protocol-2

figure-protocol-3





figure-protocol-4




figure-protocol-5

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu bölümde, şimdiye kadar açıklanan prosedürleri takiben hem PET hem de BT analizi için tipik sonuçlar gösterilmiştir. Şekil 6 , bir kontrol (sağlıklı) CD-1 faresinin [18F] FDG PET TARAMASININ OTOMATIK MIYOKARD VE AG BOŞLUĞU SEGMENTASYONUNUN SONUÇLARıNı GÖSTERMEKTEDIR. Yeniden yapılandırılmış görüntülerde sağ ventrikül her zaman görünmese de, DICOM başlığına dayanan oryantasyon eksenleri, Amerikan Kalp Derneği (AHA) tavsiyelerini izleyerek standart sektörlerin güvenilir bir şekild...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu yazıda sunulan protokol, yüksek çözünürlüklü PET/BT görüntüleme kullanılarak kardiyak hasarın küçük hayvan modelleri üzerinde translasyonel kardiyovasküler araştırmalar için tipik bir deneysel prosedüre odaklanmaktadır. Sunulan sonuçlar, PET ve Cine-CT görüntülerinin yüksek kantitatif ve kalitatif değerinin göstergesidir ve tüm kalbin glikoz metabolizması, şekli ve kasılma dinamikleri hakkında hem fonksiyonel hem de yapısal bilgi sağlar. Ayrıca, elde edilen tüm görüntüler 3D, zaman çözümlü ve mevcut izotropik piksel a...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Daniele Panetta, Inviscan Sas'tan mikro-BT enstrümantasyonunun Ar-Ge'si için hibe aldı.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu araştırma kısmen JPI-HDHL-INTIMIC "GUTMOM" Projesi tarafından desteklenmiştir: Çocuklarda maternal obezite ve bilişsel işlev bozukluğu: GUT MicrobiOMe'nin neden-sonuç rolü ve erken diyet önleme (proje no. INTIMIC-085, İtalyan Eğitim, Üniversite ve Araştırma Bakanlığı Kararnamesi no. 946/2019).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 0.9 steril salinFresenius Kabienjeksiyon için% 0.9 sodyum klorür
1025L Fizyolojik İzlemeKüçük Hayvan AletleriKüçük hayvan görüntüleme için fizyolojik izleme sistemi
5 mL şırıngaArtsanaPET izleyici enjeksiyonu için iğneli şırıngalar
Atomlab 500Else NükleerPET Doz kalibratörü
Atrium yazılımıInviscanSürüm 1.5.5PET/CT işletim yazılımı
Kelebek kateterlerDelta Med27.5 G iğne
Carimas yazılımıTurku PET CenterSürüm 2.10Görüntü analiz yazılımı
Fenestra VCMedilumineLipid emülsiyonu küçük hayvanlar için iyotlu kontrast madde
Isı lambasıKelepçeli ve anahtarlı ısı lambası
İnsülin şırıngalarıArtsana
, vasküler kontrast madde
IRIS PET/CTInviscanPET/CT tarayıcı küçük hayvanlar için
İzofluranZoetisİnhalasyon anestezik, 250 mL
OneTouch GlükometreJohnson& Johnson MedicalGlukoz ölçüm cihazı kiti
Osirix MD yazılımıPixmeoSürüm 11Görüntü analiz yazılımı
OksijenHava sıvısıSıkıştırılmış gaz
1025LKüçük Hayvan AletleriSAII 1025L sistemleri için kablolu rektal prob
1025LKüçük Hayvan Aletleriiçin solunum sensörüSAII 1025L sistemleri için borulu solunum yastığı
TJ-3A şırınga pompasıCTCA enjeksiyonu için
CT CA Iomeron 400 mgI/mL Bracco Iomeprol enjeksiyonu için iğneli şırıngalar için rektal prob daha uzun motorlu şırınga pompası

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Zaragoza, C. Animal models of cardiovascular diseases. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 497841(2011).
  2. Russell, J. C., Proctor, S. D. Small animal models of cardiovascular disease: Tools for the study of the roles of metabolic syndrome, dyslipidemia, and atherosclerosis. Cardiovascular Pathology. 15 (6), 318-330 (2006).
  3. Riehle, C., Bauersachs, J. Small animal models of heart failure. Cardiovascular Research. 115 (13), 1838-1849 (2019).
  4. Menichetti, L., et al. MicroPET/CT imaging of αvß3 integrin via a novel 68Ga-NOTA-RGD peptidomimetic conjugate in rat myocardial infarction. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 40 (8), 1265-1274 (2013).
  5. Zhou, H., et al. Development of a micro-computed tomography-based image-guided conformal radiotherapy system for small animals. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 78 (1), 297-305 (2010).
  6. Di Lascio, N., Kusmic, C., Stea, F., Faita, F. Ultrasound-based pulse wave velocity evaluation in mice. Journal of Visualized Experiments. (120), e54362(2017).
  7. Dann, M. M., et al. Quantification of murine myocardial infarct size using 2-D and 4-D high-frequency ultrasound. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 322 (3), 359-372 (2022).
  8. Espe, E. K. Novel insight into the detailed myocardial motion and deformation of the rodent heart using high-resolution phase contrast cardiovascular magnetic resonance. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 15 (1), 82(2013).
  9. Vanhove, C., et al. Accurate molecular imaging of small animals taking into account animal models, handling, anaesthesia, quality control and imaging system performance. EJNMMI Physics. 2 (1), 31(2015).
  10. Garcia, M. J., et al. State of the art: Imaging for myocardial viability: A scientific statement from the American Heart Association. Circulation: Cardiovascular Imaging. 13 (7), 000053(2020).
  11. Panetta, D., et al. Cardiac computed tomography perfusion: Contrast agents, challenges and emerging methodologies from preclinical research to the clinics. Academic Radiology. 28 (1), 1-18 (2020).
  12. Kusmic, C. Up-regulation of heme oxygenase-1 after infarct initiation reduces mortality, infarct size and left ventricular remodeling: experimental evidence and proof of concept. Journal of Translational Medicine. 12 (1), 89(2014).
  13. Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F., De Geest, B. Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: A model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure. Journal of Visualized Experiments. (94), e52206(2014).
  14. Fischer, M., et al. Comparison of metabolic and functional parameters using cardiac 18F-FDG-PET in early to mid-adulthood male and female mice. EJNMMI Research. 11 (1), 7(2021).
  15. Valenta, I., et al. Feasibility evaluation of myocardial cannabinoid type 1 receptor imaging in obesity: A translational approach. JACC: Cardiovascular Imaging. 11 (2), 320-332 (2018).
  16. Fueger, B. J., et al. Impact of animal handling on the results of 18F-FDG PET studies in mice. Journal of Nuclear Medicine. 47 (6), 999-1006 (2006).
  17. Carimas User Manual. , Available from: https://turkupetcentre.fl/carimas/files/archive/Html/a1.html (2022).
  18. Peters, A. M. Graphical analysis of dynamic data: The Patlak-Rutland plot. Nuclear Medicine Communications. 15 (9), 669-672 (1994).
  19. Choi, Y., et al. Parametric images of myocardial metabolic rate of glucose generated from dynamic cardiac PET and 2-[18F]fluoro-2-deoxy-d-glucose studies. Journal of Nuclear Medicine. 32 (4), 733-738 (1991).
  20. Laffon, E., Marthan, R. Is Patlak y-intercept a relevant metrics. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 48 (5), 1287-1290 (2021).
  21. Flores, J. E., McFarland, L. M., Vanderbilt, A., Ogasawara, A. K., Williams, S. -P. The effects of anesthetic agent and carrier gas on blood glucose and tissue uptake in mice undergoing dynamic FDG-PET imaging: Sevoflurane and isoflurane compared in air and in oxygen. Molecular Imaging and Biology. 10 (4), 192-200 (2008).
  22. Ng, C. K. Sensitivity of myocardial fluorodeoxyglucose lumped constant to glucose and insulin. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 260 (2), 593-603 (1991).
  23. Shoghi, K. I., Welch, M. J. Hybrid image and blood sampling input function for quantification of small animal dynamic PET data. Nuclear Medicine and Biology. 34 (8), 989-994 (2007).
  24. Heuberger, J., Pixmeo, S., Rosset, A. OsiriX User Manual. Blurb. , San Francisco, CA. (2017).
  25. Cerqueira, M. D., et al. Standardized myocardial segmentation and nomenclature for tomographic imaging of the heart. A statement for healthcare professionals from the Cardiac Imaging Committee of the Council on Clinical Cardiology of the American Heart Association. Circulation. 105 (4), 539-542 (2002).
  26. Kolanowski, T. J., et al. Multiparametric evaluation of post-MI small animal models using metabolic ([18F]FDG) and perfusion-based (SYN1) heart viability tracers. International Journal of Molecular Sciences. 22 (22), 12591(2021).
  27. Guiducci, L., et al. Contribution of organ blood flow, intrinsic tissue clearance and glycaemia to the regulation of glucose use in obese and type 2 diabetic rats: A PET study. Nutrition Metabolism and Cardiovascular Diseases. 21 (9), 726-732 (2011).
  28. Tadinada, S. M., et al. Functional resilience of C57BL/6J mouse heart to dietary fat overload. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 321 (5), 850-864 (2021).
  29. Dreyfuss, A. D., et al. A novel mouse model of radiation-induced cardiac injury reveals biological and radiological biomarkers of cardiac dysfunction with potential clinical relevance. Clinical Cancer Research. 27 (8), 2266-2276 (2021).
  30. Hsu, B. PET tracers and techniques for measuring myocardial blood flow in patients with coronary artery disease. Journal of Biomedical Research. 27 (6), 452-459 (2013).
  31. Dinkel, J., et al. Intrinsic gating for small-animal computed tomography. Circulation: Cardiovascular Imaging. 1 (3), 235-243 (2008).
  32. Kuntz, J., et al. Fully automated intrinsic respiratory and cardiac gating for small animal CT. Physics in Medicine and Biology. 55 (7), 2069-2085 (2010).
  33. Li, Y., Zhang, W., Wu, H., Liu, G. Advanced tracers in PET imaging of cardiovascular disease. BioMed Research International. 2014, 504532(2014).
  34. Kim, D. -Y., Cho, S. -G., Bom, H. -S. Emerging tracers for nuclear cardiac PET imaging. Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 52 (4), 266-278 (2018).
  35. Maddahi, J., Packard, R. R. S. Cardiac PET perfusion tracers: Current status and future directions. Seminars in Nuclear Medicine. 44 (5), 333-343 (2014).
  36. Bentourkia, M. Kinetic modeling of PET data without blood sampling. IEEE Transactions on Nuclear Science. 52 (3), 697-702 (2005).
  37. Lammertsma, A. A. Forward to the past: The case for quantitative PET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 58 (7), 1019-1024 (2017).
  38. Nahrendorf, M., et al. High-resolution imaging of murine myocardial infarction with delayed-enhancement cine micro-CT. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 292 (6), 3172-3178 (2007).
  39. Badea, C. T., Fubara, B., Hedlund, L. W., Johnson, G. A. 4-D micro-CT of the mouse heart. Molecular Imaging. 4 (2), 110-116 (2005).
  40. Technical Resources. MediLumine. , Available from: https://www.medilumine.com/technical-resources (2019).
  41. Nebuloni, L., Kuhn, G. A., Müller, R. A Comparative analysis of water-soluble and blood-pool contrast agents for in vivo vascular imaging with micro-CT. Academic Radiology. 20 (10), 1247-1255 (2013).
  42. Panetta, D., et al. Performance evaluation of the CT component of the IRIS PET/CT preclinical tomograph. Nuclear Instruments & Methods in Physics Research Section A: Accelerators Spectrometers Detectors and Associated Equipment. 805, 135-144 (2016).
  43. Gu, J., et al. At what dose can total body and whole abdominal irradiation cause lethal intestinal injury among C57BL/6J mice. Dose-Response. 18 (3), 1559325820956783(2020).
  44. Amirrashedi, M., Zaidi, H., Ay, M. R. Advances in preclinical PET instrumentation. PET Clinics. 15 (4), 403-426 (2020).
  45. Clark, D. P., Badea, C. T. Advances in micro-CT imaging of small animals. Physica Medica. 88, 175-192 (2021).
  46. Belcari, N., Del Guerra, A., Panetta, D. High-Resolution and Animal Imaging Instrumentation and Techniques. Handbook of Particle Detection and Imaging. Grupen, C., Buvat, I. , Springer. Berlin, Heidelberg. 1497-1535 (2021).
  47. Wang, G., Rahmim, A., Gunn, R. N. PET Parametric imaging: Past, present, and future. IEEE Transactions on Radiation and Plasma Medical Sciences. 4 (6), 663-675 (2020).
  48. Befera, N. T., Badea, C. T., Johnson, G. A. Comparison of 4D-microSPECT and microCT for murine cardiac function. Molecular Imaging and Biology. 16 (2), 235-245 (2014).
  49. van Deel, E., Ridwan, Y., van Vliet, J. N., Belenkov, S., Essers, J. In vivo quantitative assessment of myocardial structure, function, perfusion and viability using cardiac micro-computed tomography. Journal of Visualized Experiments. (108), e53603(2016).
  50. Lee, C. -L., et al. Assessing cardiac injury in mice with dual energy-microCT, 4D-microCT and microSPECT imaging following partial-heart irradiation. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 88 (3), 686-693 (2014).
  51. Harms, H., et al. Comparison of clinical non-commercial tools for automated quantification of myocardial blood flow using oxygen-15-labelled water PET/CT. European Heart Journal - Cardiovascular Imaging. 15 (4), 431-441 (2013).
  52. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantitation with 15O-labelled water PET: High reproducibility of the new cardiac analysis software (CarimasTM). European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 36 (10), 1594-1602 (2009).
  53. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantification with Rb-82 PET: Good interobserver agreement of Carimas software on global, regional, and segmental levels. Annals of Nuclear Medicine. 36, 507-514 (2022).
  54. Nesterov, S. V., et al. One-tissue compartment model for myocardial perfusion quantification with N-13 ammonia PET provides matching results: A cross-comparison between Carimas, FlowQuant, and PMOD. Journal of Nuclear Cardiology. , (2021).
  55. Thackeray, J. T. Preclinical Multimodality Imaging and Image Fusion in Cardiovascular Disease. Image Fusion in Preclinical Applications. Kuntner-Hannes, C., Haemisch, Y. , Springer. Cham, Switzerland. 161-181 (2019).
  56. Vohra, R., Batra, A., Forbes, S. C., Vandenborne, K., Walter, G. A. Magnetic resonance monitoring of disease progression in mdx mice on different genetic backgrounds. The American Journal of Pathology. 187 (9), 2060-2070 (2017).
  57. Baehr, A., et al. Agrin promotes coordinated therapeutic processes leading to improved cardiac repair in pigs. Circulation. 142 (9), 868-881 (2020).
  58. Lalwani, K., et al. Contrast agents for quantitative microCT of lung tumors in mice. Comparative Medicine. 63 (6), 482-490 (2013).
  59. Bertoldo, A., et al. Evaluation of compartmental and spectral analysis models of [18F]FDG kinetics for heart and brain studies with PET. IEEE Transactions on Bio-medical Engineering. 45 (12), 1429-1448 (1998).
  60. Li, Y., Kundu, B. K. An improved optimization algorithm of the three-compartment model with spillover and partial volume corrections for dynamic FDG PET images of small animal hearts in vivo. Physics in Medicine and Biology. 63 (5), 055003(2018).
  61. Mabrouk, R., Dubeau, F., Bentourkia, M., Bentabet, L. Extraction of time activity curves from gated FDG-PET images for small animals' heart studies. Computerized Medical Imaging and Graphics. 36 (6), 484-491 (2012).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Kardiyak PET CTK k Hayvan G r nt lemeGlukoz Metabolizmas G r nt lemeMiyokard Enfarkt s ModeliSol Ventrik l SegmentasyonuSine CT TaramasPatlak Grafi i AnaliziEjeksiyon Fraksiyonu HesaplamasAt m Hacmi l mPreklinik Kardiyak G r nt leme

İlgili makaleler