Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Florojenik RNA Aptamers için In Vitro ve Hücresel Turn-on Kinetiğinin Belirlenmesi

2K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/64367

⸱

9 Ağustos 2022

 ,  , 
1Department of Chemistry and Henry Eyring Center for Cell & Genome Science, University of Utah

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Protokol, florojenik RNA aptamers Ispanak2 ve Brokolinin kinetiğini belirlemek için iki yöntem sunar. İlk yöntem, florojenik aptamer kinetiğinin in vitro olarak bir plaka okuyucu ile nasıl ölçüleceğini açıklarken, ikinci yöntem hücrelerdeki florojenik aptamer kinetiğinin akış sitometrisi ile ölçülmesini detaylandırır.

Özet

Florojenik RNA aptamerleri, RNA'ları etiketlemek ve görselleştirmek, gen ekspresyonu hakkında rapor vermek ve metabolitlerin ve sinyal moleküllerinin seviyelerini tespit eden floresan biyosensörleri aktive etmek için canlı hücrelere uygulanmıştır. Bu sistemlerin her birindeki dinamik değişiklikleri incelemek için, gerçek zamanlı ölçümlerin elde edilmesi arzu edilir, ancak ölçümlerin doğruluğu, florojenik reaksiyonun kinetiğinin örnekleme frekansından daha hızlı olmasına bağlıdır. Burada, sırasıyla bir numune enjektörü ve bir akış sitometresi ile donatılmış bir plaka okuyucu kullanarak florojenik RNA aptamers için in vitro ve hücresel açma kinetiğini belirleme yöntemlerini açıklıyoruz. Ispanak2 ve Brokoli aptamerlerinin floresan aktivasyonu için in vitro kinetiğin iki fazlı ilişki reaksiyonları olarak modellenebileceğini ve sırasıyla 0.56 s-1 ve 0.35 s-1'lik farklı hızlı faz hızı sabitlerine sahip olduğunu gösteriyoruz. Ek olarak, Escherichia coli'deki Ispanak2'nin floresan aktivasyonu için hücresel kinetiğin, Gram-negatif bakterilere boya difüzyonu ile daha da sınırlı olduğunu, dakika zaman ölçeğinde doğru örnekleme sıklığını sağlamak için hala yeterince hızlı olduğunu gösteriyoruz. Floresan aktivasyon kinetiğini analiz etmek için kullanılan bu yöntemler, geliştirilen diğer florojenik RNA aptamerlerine uygulanabilir.

Giriş

Florojenik reaksiyonlar, floresan sinyali üreten kimyasal reaksiyonlardır. Florojenik RNA aptamerler tipik olarak floresan kuantum verimini arttırmak için küçük bir molekül boyasını bağlayarak bu işlevi yerine getirir (Şekil 1A)1. Farklı florojenik RNA aptamer sistemleri geliştirilmiştir ve spesifik RNA aptamer dizilerinden ve buna karşılık gelen boya ligandlarından oluşur1. Florojenik RNA aptamerleri, mRNA'ların ve kodlamayan RNA'ların canlı hücre görüntülemesini sağlayan floresan etiketler olarak RNA transkriptlerine eklenmiştir 2,3,4. Ayrıca, raporlama fonksiyonu RNA seviyesi5,6 olması dışında, yeşil floresan proteininin (GFP) muhabir olarak kullanılmasına benzer şekilde, gen ekspresyonunun floresan raporlayıcıları olarak promotör dizilerinden sonra yerleştirilmişlerdir. Son olarak, florojenik RNA aptamerleri, belirli bir küçük moleküle yanıt olarak florojenik reaksiyonu tetiklemek için tasarlanmış RNA bazlı floresan biyosensörlere dahil edilmiştir. RNA bazlı floresan biyosensörler, çeşitli floresan olmayan metabolitlerin ve sinyal molekülleri 7,8,9,10,11'in canlı hücre görüntülemesi için geliştirilmiştir.

RNA lokalizasyonu, gen ekspresyonu ve küçük molekül sinyallerindeki dinamik değişiklikleri görselleştirmek için florojenik RNA aptamerlerinin geliştirilmesine artan ilgi vardır. Bu uygulamaların her biri için, gerçek zamanlı ölçümlerin elde edilmesi arzu edilir, ancak ölçümlerin doğruluğu, florojenik reaksiyonun kinetiğinin örnekleme frekansından daha hızlı olmasına bağlıdır. Burada, florojenik RNA aptamers Ispanak2 12 ve Brokoli13 için in vitro kinetiği bir örnek enjektör ile donatılmış bir plaka okuyucu kullanarak belirlemek ve bir akış sitometresi kullanarak Escherichia coli'de eksprese edilen Ispanak2 için hücresel açılma kinetiğini belirlemek için yöntemler açıklanmaktadır. Bu iki RNA aptamer seçildi çünkü RNA lokalizasyonu 2,3,4'ü incelemek için uygulandılar, muhabirler 5,6 ve biyosensörler 7,8,9,10,11'de kullanıldılar ve karşılık gelen boya ligandları (DFHBI veya DFHBI-1T) ticari olarak temin edilebilir. Literatürde belirlenen in vitro özelliklerinin bir özeti, protokol gelişimini (örneğin, kullanılan dalga boyları ve boya konsantrasyonları) bildiren Tablo 1 4,13,14'te verilmiştir. Bu sonuçlar, RNA aptamerlerinden etkilenen florojenik reaksiyonların hızlı olduğunu ve istenen hücre biyolojik uygulamaları için doğru ölçümleri engellememesi gerektiğini göstermektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. In vitro kinetik deneyi

  1. DNA şablonlarının PCR ile hazırlanması
    1. PCR reaksiyonlarını ayarlayın: PCR reaksiyonlarını hazırlamak için, aşağıdaki reaktifleri ince duvarlı bir PCR tüpünde birleştirin:
      33 μL çift damıtılmış su (ddH2O)
      Yüksek doğrulukta DNA polimeraz için 10 μL 5x tampon
      Her biri 2 mM'lik 5 μL deoksiribonükleozid trifosfat (dNTP)
      0,5 μL 40 μM ileri astar
      0,5 μL 40 μM ters astar
      DNA şablonunun 0,5 μL (10-100 ng) (yalnızca Ispanak2 PCR için; Brokoli primerleri örtüşür)
      0.5 μL yüksek doğrulukta DNA polimeraz (son ekle)
      NOT: Sentetik oligonükleotidler genellikle kuru olarak sevk edilir. Stok çözeltileri hazırlamak için, bilinen bir ddH2O hacmi (100 μL önerilir) ekleyin ve tükenme katsayısının çevrimiçi olarak en yakın komşu kuralları tarafından hesaplanabileceği Bira yasasına göre konsantrasyonu belirlemek için bu çözeltinin A260'ını ölçün. Bu stok çözeltisi daha sonra seyreltmeleri PCR'de kullanıma uygun hale getirmek için kullanılabilir.
    2. Termosikler protokolünü çalıştırın.
      1. Tam uzunlukta Ispanak2 ve Brokoli DNA şablonlarını yükseltmek için aşağıdaki termosikler protokolünü kullanın:
        İlk denatürasyon:2 dk için 98 °C
        35 döngü:
        Denatürasyon:15 s için 98 °C denatürasyon
        Tavlama:30 s için 72 °C
        Uzantı:30 s için 72 °C
        Son uzatma: 5 dakika boyunca 72 °C
      2. Reaksiyondan sonra, istenen DNA ürününün varlığını doğrulamak için ürünün küçük bir alikotunu% 2 agaroz jeli ile düşük moleküler ağırlıklı bir merdivenle (boyut aralığı: 25-766 nükleotidler) analiz edin.
      3. Ticari olarak temin edilebilen jel ekstraksiyonu veya PCR temizleme kitleri ile ürünü saflaştırın ve ddH2O veya üretici tarafından sağlanan tamponla salın.
        NOT: Bir PCR temizleme kiti seçerken, kolon moleküler ağırlık kesiminin T7-Brokoliyi (81 nükleotid) tutacak kadar düşük olduğundan emin olun, aksi takdirde PCR ürünü kaybolacaktır.
        NOT: İsteğe bağlı duraklatma noktası: DNA'yı -20 °C'de saklayın.
  2. Ispanak2 ve Brokoli RNA'nın in vitro transkripsiyon (IVT) ile hazırlanması
    1. Transkripsiyon reaksiyonlarını ayarlayın.
      1. 100 μL'lik bir transkripsiyon reaksiyonu hazırlamak için, aşağıdaki reaktifleri 1.5 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpünde birleştirin: 10 μL 10x transkripsiyon tamponu + 20 μL 10 mM ribonükleozid trifosfatlar (rNTP'ler) + 1-64 μL DNA şablonu (toplam 1 μg) + 2 μL inorganik pirofosfataz + ddH 2 O ila 98 μL +2μL T7 RNA polimeraz (son ekle).
      2. Bu reaksiyonu 37 °C'de 4 saat boyunca inkübe edin. sakaroz, %0,1 sodyum dodesil sülfat (SDS), 1x Tris-Borat-EDTA (1x TBE) tamponu ve ~18 M üreden oluşan 100 μL 2x üre jel yükleme tamponu (2x ULB) ekleyerek reaksiyonu söndürün.
        NOT: İsteğe bağlı duraklatma noktası: Söndürülmüş reaksiyonu -20 °C'de saklayın.
  3. RNA'nın poliakrilamid jel elektroforezi (PAGE) saflaştırılması
    1. Ispanak2 ve Brokoli RNA'nın PAGE saflaştırılması
      DİKKAT: Polimerize olmayan (sıvı veya toz halinde) akrilamid son derece toksiktir. Toz haline getirilmiş akrilamid tartılıyorsa, bunu bir duman davlumbazında yapın. Her zaman uygun koruyucu ekipman giyin ve ellerinizi iyice yıkayarak akrilamid tozu veya çözeltisi ile kirlenmiş eldivenleri derhal çıkarın. Akrilamid cilde doğrudan temas ederse, maruz kalan bölgeyi en az 15 dakika boyunca sabun ve suyla yıkayın. Akrilamid gözlerle doğrudan temas ederse, 15 dakika boyunca suyla yıkayın.
      1. PAGE jelini hazırlayın: İstenmeyen abortif transkriptleri ve reaksiyona girmemiş rNTP'leri tam uzunluktaki üründen çıkarmak için,% 6'lık bir üre-poliakrilamid jeli hazırlayın. Genel olarak 8 delikli tarak ile 28 cm x 16,5 cm x 1,5 mm jeller kullanılabilir. Rezervuarları doldurmak için 1x TBE tampon kullanarak jel ve elektroforez ekipmanını kurun.
      2. RNA numunelerini PAGE jeline yükleyin: Jeli şerit başına bir adet söndürülmüş 200 μL reaksiyonla yükleyin. Ayrı bir şeritte, jelde sırasıyla 106 nükleotid ve 26 nükleotitte,15'te göç eden izleyici boyaları ksilen siyanol ve bromofenol mavisi ile 2x ULB yükleyin. Sonraki adımlarda olası kontaminasyonu önlemek için her numune arasında boş bir şerit bırakın.
      3. PAGE jelini çalıştırın: 95-nt Ispanak2 ve 49-nt Brokoliyi kendi kesilmiş ürünlerinden ayırmak için, jeli 25 W'ta 1.5-2 saat çalıştırın, bu noktada bromofenol mavi boyası jel uzunluğunun ~ 5 / 6'sını geçirmiş olacaktır.
      4. RNA örneklerini PAGE jelinde görselleştirin: Jelin etrafındaki cam plakaları sökün ve jeli her iki taraftaki plastik ambalajla örtün, sargı üzerindeki şeritleri etiketleyin. Karanlık bir odadaki RNA bantlarını, sarılmış jeli UV ışığı altında floresan bir TLC plakasına yerleştirerek UV gölgeleme ile görselleştirin. Ürüne karşılık gelen RNA bantlarının kenarını bir işaretleyici ile hızlı bir şekilde özetleyin ve UV ışınlarına maruz kalmaktan kaynaklanan hasarı en aza indirmek için UV lambasını kapatın.
      5. RNA numunelerini PAGE jelinden tüketin ve çıkarın: Her numune için taze bir tıraş bıçağı ile, istenen ürün bantlarını tüketin, ~ 1 mm küplere zar atın ve jel parçalarını, oda sıcaklığında (RT) 2 saat veya 4 ° C'de bir gece boyunca bir rotatörde RNA'yı çıkarmak için 500 μL ezme ıslatma tamponuna sahip 2 mL mikro santrifüj tüpüne ekleyin.
        NOT: İsteğe bağlı duraklatma noktası: numune -20 °C'de saklanabilir.
      6. RNA'yı çökeltin
        1. Jel parçalarını tamponda ekstrakte edilen RNA'dan ayırmak için, numuneyi 4 ° C'de 20 dakika boyunca 13.000 x g'de santrifüj edin ve ardından süpernatantı çıkarmak ve yeni bir 2 mL mikrosantrifüj tüpüne yüklemek için dar uçlu bir pipet kullanın.
        2. RNA'yı çökeltmek için, 1.5 mL buz gibi soğuk etanol ve 1 μL 20 mg / mL glikojen, vorteks ekleyin ve -20 ° C veya -80 ° C'de en az 1 saat saklayın.
          NOT: İsteğe bağlı duraklama noktası: RNA birkaç ay boyunca -20 ° C'de saklanabilir.
      7. RNA çökeltinin toplanması: Çökeltilmiş RNA'yı 4 ° C'de 20 dakika boyunca 13.000 x g'de santrifüjleme ile pelet edin. Süpernatantı çıkarın ve peleti 30 μL ddH2O veya 1x TE tamponunda yeniden askıya almadan önce kalan etanolün açık hava altında (~ 1 saat) buharlaşmasına izin verin.
        NOT: Bu işlem tipik olarak ~ 10 μM'lik bir son RNA konsantrasyonu ile sonuçlanır.
        NOT: İsteğe bağlı duraklama noktası: RNA örneği birkaç ay boyunca -20 ° C'de saklanabilir.
    2. RNA stok konsantrasyonlarını belirleyin.
      1. Hidroliz reaksiyonu için bir RNA aliquot hazırlayın.
        1. Bu testi yapmak için, ilk olarak, stok RNA örneğinin A 260'ını belirlemek için bir UV / Vis nano spektrofotometresi kullanın ve numunenin ddH2O'da ~10 absorbans birimine (AU) seyreltilmiş bir aliquotunu yapın.
        2. 0.5 mL'lik bir PCR tüpünde aşağıdaki reaksiyonu hazırlayın: 16 μL ddH 2 O + 2 μL 10x Na 2 CO3 tamponu + ~ 10 AU'ya seyreltilmiş2μL RNA aliquot. Reaksiyonu 95 ° C'de 90 dakika boyunca inkübe edin ve ardından RT'ye soğumasını bekleyin.
      2. Nükleotid absorbanslarını kullanarak RNA konsantrasyonunu belirleyin: Bu numunenin A260'ını bir UV / Vis nano spektrofotometre ile ölçün ve aşağıdaki formülü kullanarak RNA konsantrasyonunu hesaplayın:
        figure-protocol-1
        burada c, RNA'nın konsantrasyonudur, b yol uzunluğudur, i, spesifik nükleotiddir (A, C, G veya U), n i, RNA dizisindeki nükleotid i'nin frekansıdır ve ε i, nükleotid i'nin molar yok olma katsayısıdır. Orijinal stok RNA konsantrasyonunu belirlemek için, c'yi seyreltme faktörü ile çarpın.
        NOT: İsteğe bağlı duraklatma noktası: RNA birkaç ay boyunca -20 ° C'de saklanabilir.
  4. Bir in vitro plaka okuyucu kinetik tahlili
    1. RNA renatürasyon programını ayarlayın: Kaydet'e basmadan önce aşağıdaki adımların her birini eklemek için Yeni Program Oluştur > Yeni Faz Ekle > Yeni Adım Ekle'yi birden çok kez seçerek aşağıdaki termosikler protokolünü oluşturun:
      3 dk için 70 °C
      45 sn için 65 °C
      45 sn için 60 °C
      45 sn için 55 °C
      45 sn için 50 °C
      45 sn. için 45 °C
      45 sn için 40 °C
      45 sn için 35 °C
      45 sn için 30 °C
    2. RNA'yı yeniden doğandırın: Ispanak2 ve Brokoli RNA'larını yeniden denatüre etmek için, 0,5 mL ince duvarlı birPCR tüpünde ddH 2 O'da her RNA'nın 2 μM stoğunu hazırlayın ve ardından 1 μM RNA çözeltisi yapmak için eşit hacimde 2x renatürasyon tamponu (80 mM HEPES, pH 7.5 [KOH], 250 mM KCl, 6 mM MgCl2) ekleyin. Tüpleri termosiklusa ekleyin, kaydedilen renatürasyon programını açın ve Çalıştır'a basın.
      NOT: Bir termosikler mevcut değilse, RNA'lar bunun yerine 70 ° C'lik bir ısı bloğunda 3 dakika boyunca inkübe edilebilir ve daha sonra tezgahta RT'ye yavaşça soğumaya bırakılabilir.
    3. Bağlayıcı reaksiyon tamponunu hazırlayın: Tamponu bir aptamer-boya bağlama reaksiyonuna hazırlamak için, tampon bileşenleri içeren bir ana karışım yapın (69,5 μL ddH 2 O + 4 μL 1 M HEPES, pH 7,5 [KOH] + 6,2 μL 2 M KCl + 0,3 μL 1 M MgCl2). Kaç numune ve çoğaltmaya ihtiyaç duyulduğuna bağlı olarak, bu değerleri numune sayısı artı bir ile çarpın. Genel olarak, RNA örneği başına üç replika tatmin edicidir.
    4. Plaka okuyucuyu hazırlayın.
      1. Plaka okuyucu enjektör programını ayarlayın: Floresan plaka okuyucusunda, Sıcaklık'ı seçin ve istenen sıcaklığı 37 ° C'ye ayarlayın, kinetiği deneylere başlamadan önce sıcaklığın bu değere eşit olduğundan emin olun. Plaka okuyucu yazılımını açın, Ayarlar > Edinme Görünümü'nü seçin ve kinetik ölçümler için aşağıdaki programı girin:
        Döngü: Her kuyu için
        Temel ayar: 60 anahat okuması
        SmartInject ayarları: 10 μL enjeksiyon (taban çizgisi okunduktan sonra gerçekleşir)
        Floresan (veya FL) şunları okur:
        Uyarma: 448 nm (bant genişliği: 9 nm)
        Emisyon: 506 nm (bant genişliği: 15 nm)
        Kartuş: MONO (s/n 3297)
        Zamanlama:
        Toplam okuma süresi: 10 dk
        Okuma aralığı: 0,5 s
        PMT ve Optik: Okuma başına 6 flaş
        Döngü: Sonraki kuyu
      2. Enjektörü hazırlayın
        1. Enjektörü yıkayın ve aspire edin: Plaka okuyucu enjektörünü hazırlamak için önce Plaka okuyucuya enjekte et'i seçin, yönlendirildiğinde plaka okuyucuya bir atık toplama plakası sağlayın ve ardından Yıka'yı seçin ve plaka okuyucudaki talimatları izleyerek enjeksiyon tüpünü 1 mL hacimli ddH2O, ddH2O'da u etanol ile temizleyin, ve sonra ddH2O. Ardından, enjektörün fazla sıvıyı çıkarmasına izin vermek için Aspirat'ı seçin.
        2. Enjektörü astarlayın: Önceki ekrana çıktıktan sonra, deneyler sırasında numunelere saf, konsantre ligand eklenmesini sağlamak için enjekte edilecek iki adet 260 μL hacim ligand ile enjektörü astarlamak için Prime'ı seçin - bu durumda, ddH2O'da 100 μM DFHBI ile astarlayın.
    5. İn vitro kinetik deneyler gerçekleştirin : Bir kinetik deneyi gerçekleştirmek için, önce 96 kuyucuklu berrak alt plakanın bir kuyucuğuna 80 μL bağlayıcı tampon ana karışımı ekleyin, ardından 10 μL renatüre RNA. Bu plakanın ve enjektördeki DFHBI çözeltisinin, plaka okuyucuda 15 dakika boyunca 37 ° C'ye dengelenmesine izin verin.
    6. Okuma Alanı altındaki plaka okuyucu yazılımı Ayarları'nda, analiz edilecek kuyuyu seçin ve ardından daha önce açıklanan kinetik programını yürütmek için Giriş sekmesi altında Çalıştır'ı seçin. Tüm denemeler tamamlanana kadar bu işlemi tekrarlayın.
      NOT: Kritik olarak, RNA kinetiğinin replikalar ve numuneler arasında aynı koşullar altında ölçülmesini sağlamak için kinetiği deneyleri her seferinde bir kuyu halinde yapılmalıdır.
    7. Enjektörü yıkayın: Kalan DFHBI çözeltisini enjeksiyon tüpünden çıkarmak için, enjeksiyon tüpünü adım 1.4.4.2.1'de açıklandığı gibi 1 mL ddH 2 O hacimleri, ddH2O'da% 75 etanol ve ardındanddH2O ile yıkayın.
      NOT: İsteğe bağlı duraklatma noktası.
  5. Florojenik RNA aptamerlerinin in vitro kinetiğinin analizi.
    1. Verileri analiz yazılımına girin: Verileri işlenmek üzere kolayca kopyalamak için deneysel verileri elektronik tablo olarak dışa aktarın. Analiz yazılımında, XY formatında yeni bir veri tablosu oluşturun. X sütununa, her okuma zaman noktasını girin, t = 0 DFHBI enjeksiyonunun zamanıdır. Y sütununa, ilgili zaman noktasındaki replikalar arasındaki ortalama floresan değerlerini t = 0'dan başlayarak girin.
    2. Verileri normalleştirin ve grafiklendirin: Floresan değerlerini normalleştirmek için Normalleştir'> > Veri İşlemeyi Analiz Et'e ve ardından Tamam'a tıklayın. Normalleştirme, sonuçları kesirler halinde sunma ve Sonuçların Grafiğini Çizme için veri kümesinin en küçük ve en büyük değerlerini kullanmayı seçin ve ardından Tamam'a tıklayın. Zaman içinde normalleştirilmiş ortalama floresan grafiğini oluşturmak için [Veri Kümesi Adı] Normalleştir simgesine tıklayın ve Grafik Ailesi: Yalnızca Noktalarla XY'yi seçin.
      NOT: Hata çubukları, az sayıda zaman noktasının grafiğinin çizildiği durumlarda görmek için yararlı olabilir. Bunlar istenirse, XY biçiminde bir veri tablosu seçerken, çoğaltma değerlerini yan yana sütunlara girmek için "Y" altındaki seçeneği belirleyin. Elde edilen tablonun grafiğini varsayılan seçenekler seçiliyken çizmek, hata çubukları olan bir grafik oluşturur.
    3. Kinetik parametreleri elde etmek için eğri uydurma gerçekleştirin: Kinetik verilere bir eğri sığdırmak için Verileri Analiz Et > Analiz Et'e tıklayın ve XY Analizleri sekmesi altında Doğrusal Olmayan Regresyon (Eğriye Sığdırma) seçeneğini belirleyin. Model sekmesi altında, kinetik verileri aşağıdaki iki fazlı ilişkilendirme denklemiyle sığdırmak için Üstel > İki Fazlı İlişkilendirme'ye tıklayın:
      figure-protocol-2
      burada Y, X zamanındaki floresandır, Y 0, t = 0'daki floresandır, KHızlı ve K Yavaş, sırasıyla hızlı ve yavaş hız sabitleridir ve SpanFast ve SpanSlow, sırasıyla hızlı ve yavaş hızlar tarafından hesaplanan floresan açma aralıklarıdır (temsili sonuçlara bakınız, Şekil 1). Hız sabitlerini, t1/2 değerlerini ve PercentFast değerlerini görüntülemek için Nonlin Fit sekmesine tıklayın.
      NOT: Tüm bu değerler için standart sapma elde etmek amacıyla, bireysel plaka okuyucu deney kopyaları yukarıda açıklandığı şekilde işlenebilir.

2. Hücresel kinetik deneyi

  1. E. coli suşlarının hazırlanması
    1. BL21 Star (DE3) E. coli hücrelerini, üreticinin protokolünü izleyerek ~ 100 ng pET31b tRNA-Ispanak2 yapısı ile dönüştürün.
      NOT: Plazmid yapısı ticari olarak temin edilebilir (Plazmid #79783).
    2. Karbenikilin (Karbonhidrat: 50 mg/mL) plakaları içeren LB agar üzerindeki hücreleri plakalayın ve 12-16 saat boyunca 37 °C'de inkübe edin. Plazmidler içeren hücreler plaka üzerinde koloniler halinde büyüyecektir.
      NOT: İsteğe bağlı duraklama noktası: Plakalar üzerindeki dönüştürülmüş BL21 Yıldız hücreleri, 1 hafta boyunca parafilme sarılmış 4 °C'de saklanabilir.
  2. Büyüyen hücreler ve florojenik RNA aptamer ekspresyonunu indüklemek
    1. Karbenikilin (Karbonhidrat: 50 mg / mL) içeren 2 mL'lik bir indükleyici olmayan ortam (NI) kültürünü, dönüştürülmüş BL21 Yıldız hücrelerinin tek bir kolonisi ile aşılayın. Bunu en az üç biyolojik kopya için tekrarlayın. Kültürleri 37 ° C'de 22-24 saat boyunca 250 rpm'de bir inkübatörde / çalkalayıcıda inkübe edin.
      NOT: İsteğe bağlı duraklama noktası: NI ortamında yetiştirilen hücreler plazmidi tutar ve 1 hafta boyunca 4 ° C'de saklanabilir.
    2. NI ortamındaki büyümeden sonra, kültürü 100x, karbenikilin (Karbonhidrat: 50 mg / mL) içeren taze bir 3 mL ZYP-5052 otoindüksiyon ortamına (AI) seyreltin. İfadeyi indüklemek için hücreleri 37 ° C'de 250 rpm'de 250 rpm'de 16-18 saat boyunca büyütün.
      NOT: Kültürler için tipik OD600 , 18 saatlik büyümeden sonra 2.0-3.3 arasında değişecektir. Optimum hücre yoğunluğu aralığı 2.5-3.0 arasındadır.
  3. Hücresel kinetik deneyinin gerçekleştirilmesi
    1. Akış sitometresini kurun.
      1. Akış sitometresini ve cihaza bağlı bilgisayarı açın. Akış sitometresi yazılımına giriş yaptıktan sonra, Cihaz sekmesinin altında, Başlangıç simgesine tıklayın. Doğru ölçümlü izleme başlatmayı sağlamak için yazılım ekranında belirtilen adımları izleyin.
        NOT: Bazı akış sitometreleri cihaz başlatma dizisini Astarlama olarak adlandırır. Deney için kullanılacak akış sitometresi için üreticinin protokolünü izlediğinizden emin olun.
      2. Bir performans testi çalıştırın (varsa). Ana Menü sekmesi altında, Performans Testi'ne tıklayın. Bir kültür tüpünde, üreticinin performans izleme boncuklarından üç damlayı 3 mL odaklama sıvısına ekleyin.
      3. Kültür tüpünü numune tüp kaldırıcıya yerleştirin ve kaldırıcıyı kaldırın. Performans Testini Çalıştır'ı tıklamadan önce, izleme boncuklarının tüpünün Lot numarasının Performans Testi Kurulumu ekranında belirtilenlerle aynı olduğundan emin olun. Testi çalıştırmak için Performans Testi'ni tıklatın.
      4. Bu deney için akış sitometresi yazılımını, tek hücreli floresan için aşağıdaki edinme parametreleriyle ayarlayın:
        Uyarma Lazeri: 488 nm
        Emisyon Kanalı: GFP (FITC olarak da adlandırılır)
        Edinme Hacmi: 40 μL (toplam çekme hacmi 90 μL)
        Akış Hızı: 200 μL/dk
        Her ölçüm için hücre sayısı: 30.000
        Cihaz Ayarları:
        Gerilim:
        FSC: 480 V
        SSC: 400 V
        BL1: 540 V
        BL2: 392 V
        BL3: 422 V
    2. Deneme dosyalarını ayarlayın.
      1. Akış sitometresi kullanıcı adını sağ tıklayarak Deneme Gezgini sekmesinde yeni bir deneme dosyası oluşturun. Açılır pencerede Yeni Deneme'yi seçin. Bilgisayar ekranında yeni bir pencere açıldığında Tamam'ı seçin.
      2. Yeni deneme dosyasında, "Grup" klasörüne sağ tıklayın ve Yeni Örnek Tüp Ekle'yi seçin. Her belirli zaman noktası için numune tüplerini etiketleyin ve Örnek'e sağ tıklayıp açılır menüden Yeniden Adlandır'ı seçerek çoğaltın. Çalışmanın amaçlanan zaman akışı için toplam çoğaltma sayısı ve zaman noktaları için bu adımı yineleyin.
    3. Seyreltik bir hücre çözeltisi hazırlayın: Yeni bir kültür tüpünde, 1,5 mL 1x PBS çözeltisi ekleyin. Ardından, seyreltilmiş bir hücre çözeltisi oluşturmak için AI ortamındaki 3 μL indüklenmiş hücreyi 1x PBS çözeltisine ekleyin. Farklı kültür tüplerindeki her biyolojik çoğaltma için bu adımı tekrarlayın.
    4. Hücrelerin arka plan floresansını ölçün: Boya eklemeden önce, 1x PBS çözeltisindeki hücreleri içeren her biyolojik replikasyon kültür tüpünün okumalarını alın. Bu, hücrelerin floresan arka planının, boya eklendikten sonra kıvrımın zamanla açıldığını gözlemlemek için ölçülmesidir.
      1. Bir okuma yapmak için, kültür tüpünü numune tüp kaldırıcıya yerleştirin ve kaldırıcıyı elle numune enjeksiyon iğnesine kaldırın. Koleksiyon Paneli sekmesinde uygun örnek dosyayı seçin ve Kaydet'i tıklatın.
      2. Çalıştırma tamamlandığında, numune tüp kaldırıcıyı kültür tüpü ile elle indirin. Bu, akışkan sistemi yıkayacak ve her biyolojik replikasyon numunesi arasındaki taşımayı en aza indirecek bir Durulama adımı başlatacaktır. Çalıştırma tamamlandıktan sonra veriler otomatik olarak bilgisayara kaydedilir.
      3. En az üç biyolojik replikasyon için hücresel floresan arka planını ölçmek üzere 2.3.4 içindeki adımları tekrarlayın. Sonraki örnek dosyaya geçmek için, Kayıt simgesinin altındaki örnek tüp adının yanındaki sağ ok simgesini tıklatarak bir sonraki örnek dosyayı seçin.
    5. Boya içeren hücreler için zaman noktalarında floresan ölçün.
      1. 50 μM DFBHI-1T'lik bir nihai konsantrasyon vermek için hücrelerle 1x PBS çözeltisine 1.4 μL konsantre bir boya stoğu (DMSO'da 50 mM DFHBI-1T) ekleyin. Ardından, kültür tüpü kapağını sabitleyin ve ardından ilk kez nokta okumayı yapmadan önce çözeltiyi eşit şekilde karıştırmak için kültür tüplerini 3x-5x ters çevirin.
        NOT: E. coli için kültür tüpleri içindeki DMSO'nun toplam yüzdesi% 10'u geçmemelidir, çünkü bu hücre canlılığını etkileyebilir16.
      2. Kapağı çıkarın ve kültür tüpünü numune tüp kaldırıcıya yerleştirin. Tutucuyu elle numune enjeksiyon iğnesine kaldırın ve uygun numune dosyasının altında Kaydet simgesini tıklatın. Ayrıca, deneme için Başlat'a basarak bir zamanlayıcı başlatın.
      3. Çalıştırma tamamlandıktan sonra tüp kaldırıcıyı elle indirin ve 2.3.5.1-2.3.5.2 arasındaki adımları tekrarlayın. (zamanlayıcı çalışırken) konsantre DFHBI-1T'nin 1.4 μL'sini ekleyerek, kültür tüplerini ters çevirerek ve kalan tüm biyolojik kopyalar için okumalar alarak. Bu ilk kayıtlar, tüm biyolojik kopyalar için 0 dakikada elde edilen okumalar olacaktır. Bunu her biyolojik replikasyon için birer birer yapın.
        NOT: Kayıt akışı sitometrisi alımına basıldığı zamanı not edin. Deneme boyunca zaman noktaları için bu zaman dilimine bağlı kalın.
      4. Numune tüp kaldırıcıdaki kültür tüplerini numune enjeksiyon iğnesine kaldırarak, uygun numune dosyasını seçerek, Kaydet'i tıklatarak ve her çalıştırma tamamlandıktan sonra kaldırıcıyı elle indirerek okumalar yapmaya devam edin. Test edilen tüm ek zaman noktaları ve biyolojik kopyalar için bunu yapın. Deneme tamamlanana kadar adımları tekrarlayın.
        NOT: DFHBI-1T'nin çözelti içinde alüminyum folyo ile kaplanarak fotobeyazlatılmasını önlemek için numuneleri ışıktan uzak tutun.
    6. Boyasız hücreler için zaman noktalarında floresan ölçün (Kontrol).
      1. Üreticinin protokolünü takip eden negatif kontrollerle deneyi tekrar etmeden önce akış sitometresi için uygun temizleme protokollerini çalıştırın. Bu, önceki deneyden kontrol zaman noktası analizi deneyine geçişi en aza indirmek için yapılır. Aşağıda, deneyler arasındaki akış sitometresi için izlenen adımlar verilmiştir:
        1. Tüp kaldırıcıya boş bir kültür tüpünü elle yerleştirin, tüp tutucuyu kaldırın ve Cihaz sekmesindeki Kaydı Aç simgesine tıklayın. Bu, yapışkan numuneleri temizlemek için akışkan sistemde bir geri yıkama çalıştıracaktır. Tüp tutucuyu elle indirin ve Unclog dizisi tamamlandıktan sonra tüpü çıkarın.
        2. Yeni bir kültür tüpü ile,% 10'luk bir ağartıcı çözeltisinin 3 mL'sini ekleyin, kültür tüpünü tüp tutucuya yerleştirin ve tutucuyu elle numune enjeksiyon iğnesine kaldırın. Ek olarak, akış sitometresine uygunsa, otomatik numune alma cihazına temiz bir 96 delikli plaka yerleştirin.
        3. Akışkan sistemi boyunca ağartıcı içeren bir temizleme dizisi çalıştırmak için SIP'i Sanitize Et /Otomatik Numune Alma Cihazı SIP'i Sanitize Et simgesine tıklayın. Temizleme sırasını tamamlamak için tüp tutucuyu indirin.
      2. Denetim zaman noktası çözümleme çalışması için örnek dosyaları adım 2.3.3'teki yönergeleri izleyerek ayarlayın.
      3. Yeni bir kültür tüpünde, 1.5 mL'lik 1x PBS çözeltisinde seyreltik bir hücre çözeltisi hazırlayın. Seyreltilmiş bir hücre çözeltisi oluşturmak için AI ortamındaki indüklenmiş hücrelerin 3 μL'sini 1x PBS çözeltisine ekleyin. Her biyolojik çoğaltma için bu adımı yineleyin.
      4. Kültür tüpüne hücrelerle 1x PBS çözeltisine birer birer 1,4 μL DMSO ekleyin ve aynı zaman noktalarını test edin. Kültür tüpü kapağını sabitleyin ve ardından ilk kez nokta okumayı yapmadan önce çözeltiyi eşit şekilde karıştırmak için kültür tüplerini 3x-5x ters çevirin. Bunu her biyolojik replikasyon için birer birer yapın.
      5. Kontrol hücrelerinin analizi için, 2.3.5.2-2.3.5.4 adımlarını kullanarak, boyalı hücrelerle aynı protokolü izleyin.
    7. Akış sitometresini kapatın: Enstrümantasyonun düzgün bir şekilde kapatılması için üreticinin protokolünü izleyin. Akış sitometresi için, cihaz aşağıdaki şekilde kapatılmaya hazırlanır:
      1. 2.3.6.1.1-2.3.6.1.3 adımlarını izleyerek akış sitometresi için ilk temizleme protokolünü gerçekleştirin.
      2. Kültür tüpünü% 10 ağartıcı çözeltisi ile 3 mL odaklama sıvısı içeren bir kültür tüpü ile değiştirin. Tüp tutucuyu elle kaldırın ve Kapat simgesinin altında açılır menüye tıklayın ve Tamamlandı'yı seçin.
        NOT: İsteğe bağlı duraklatma noktası.
  4. Akış sitometrisi verilerinin analizi
    1. Analiz için tüm FCS dosyalarını dışa aktarın. FCS dosyalarını bir akış sitometrisi analiz yazılımıyla açın.
    2. Yalnızca Hücre FCS dosyalarından birini kullanarak, ileri dağılım (FSC) ve yan dağılım (SSC) nokta grafiğinden (FSC-Alanı/SSC-Alanı) bir kapı oluşturun ve her iki günlük eksenini kullanarak herhangi bir sinyali enkazdan hariç tutun. Bu kapıyı oluşturmak için, akış sitometrisi analiz yazılımındaki AutoGate simgesine tıklayın ve Gate 1 olarak adlandırın. Aynı geçidi, veri işleme çalışma alanındaki Tüm Örnekler sekmesi altında test edilen tüm örneklere uygulayın. Bu, tüm FCS dosyalarının altındaki Kapı 1'in işlenmesine neden olur.
    3. Adım 2.4.2'de kullanılan Yalnızca hücre FCS dosyasını, çift tıklatarak yeni bir alt küme dosyası oluşturun. Eksen ayarlarını FSC-Alanı/FSC-Yüksekliği olarak değiştirin, her ikisi de günlük eksenlerini kullanır. Oval bir kapı oluşturmak için akış sitometrisi analiz yazılımındaki AutoGate simgesine tıklayın ve buna Kapı 2 adını verin. Bu kapıyı, test edilen tüm örneklere adım 2.4.2'de kapı kümesinin altında bir alt küme olarak uygulayın. Bu, tüm örneklerin her FCS dosyasıyla ilişkilendirilmiş Kapı 1 > Kapı 2'ye sahip olmasına neden olur.
    4. Adım 2.4.2 ve adım 2.4.3'te ayarlanan her iki geçidin de Kapı 2'yi çift tıklatarak uygulandığı başka bir alt küme dosyası oluşturun. Eksen ayarlarını FSC-Alanı/Histogram olarak değiştirin. Bu histogram geçidini test edilen tüm örneklere bir alt küme olarak uygulayın, böylece tüm örneklerde her FCS dosyasıyla ilişkilendirilmiş Kapı 1 > Kapı 2 > Kapı 2 bulunur.
      NOT: Histogramlar, histogramların düzen penceresine taşınmasına yardımcı olmak ve veri işleme ile daha fazla organizasyon oluşturmak için Kapı 2'den Histogram'a yeniden adlandırılabilir.
    5. Ortalama floresan yoğunluğu (MFI) değerlerini analiz etmek için düzen penceresini açın. Her zaman noktası için histogram geçitlerini tıklatıp mizanpaj penceresine sürükleyin.
    6. MFI sonuçlarını düzen penceresinde görüntülemek üzere test edilen her numune için "∑ Ortalaması: BL1-A" (GFP) için istatistiksel bir analiz gerçekleştirin.
    7. En az üç bağımsız biyolojik kopya için zaman noktası analizi başına MFI değerleri için standart sapmayı hesaplayın.
    8. Mizanpaj penceresini PDF dosyası olarak dışa aktararak her zaman noktası için histogram ve MFI değerlerini kaydedin.
      NOT: İsteğe bağlı duraklatma noktası.
  5. Grafik akışı sitometri verileri
    1. Her zaman noktası için histogram ve MFI değerlerini içeren PDF dosyasını açın. MFI değerleri bir veri analiz yazılımına kopyalanır. Veri grafik yazılımında, XY biçiminde yeni bir veri tablosu oluşturun.
      1. Aşağıdakilerin seçili olduğu bir XY Tablosu oluşturmak için seçin:
        Veri Tablosu: Yeni bir tabloya veri girme veya alma
        Seçenekler:
        X: Geçen Süreler
        Y: Yan yana alt sütunlara (üç ila dört) çoğaltma değerleri girin
      2. X ekseninde, deneme ve kontrol çalıştırmaları için tüm zaman noktalarını etiketleyin.
      3. Grup A'da, boya eklenmiş hücrelerin floresan analizi için tüm biyolojik replikalar için MFI değerlerini her zaman noktasına girin.
      4. Grup B'de, boya (DMSO) eklenmemiş hücrelerin analizi için tüm biyolojik replikaların MFI değerlerini her zaman noktasına girin.
      5. Sonuçları gözlemlemek için, Grafikler sekmesinin altındaki [Veri Kümesi Adı Ekle] öğesine tıklayın. Bu, veri noktalarını, her zaman noktasında standart sapmayı (s.d.) temsil eden hata çubuklarıyla birlikte araç olarak görüntüler. X ekseni geçen süreyi, Y ekseni ise MFI değerlerini temsil eder.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

In vitro kinetik
Sentetik oligonükleotidler olarak satın alınan DNA şablonlarının ve primerlerinin dizileri Tablo 2'de, reaktif tarifleri ise Ek Dosya 1'de gösterilmiştir. PCR amplifikasyonu, sonraki in vitro transkripsiyon (IVT) reaksiyonu için gerekli olan T7 promotörü ile DNA şablonunun miktarını artırmak için kullanılır. Ek olarak, PCR amplifikasyonu aynı reaksiyonda iki amaç için kullanılabilir: primer uzantısı ile tam uzunlukta...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

In vitro kinetik deneyi için, aynı genel protokol, hem ligand bağlayıcı hem de florofor bağlayıcı alan8 içeren RNA tabanlı bir floresan biyosensörün in vitro kinetiğini ölçmek için değiştirilebilir. Bu durumda, RNA, ligand yanıt kinetiği elde etmek için ligand enjekte edildikten sonra ölçümlerden önce florofor ile inkübe edilmelidir. Replikalar arasında yüksek değişkenlik gözlenirse, her numunenin ölçümden önce 96 delikli plakada aynı süre boyunca dengelenmesine izin verilip ver...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Bu çalışma MCH'YE aşağıdaki hibelerle desteklenmiştir: NSF-BSF 1815508 ve NIH R01 GM124589. MRM, eğitim hibesi NIH T32 GM122740 tarafından kısmen desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
AgaroseThermo Fischer ScientificBP160500
Agaroz jel elektroforez ekipmanıThermo Fischer ScientificB1A-BP
Alfa D-(+)-laktoz monohidratThermo Fischer Scientific18-600-440
Amber 1.5 mL mikrosantrifüj tüpleriThermo Fischer Scientific22431021
Amonyum persülfat (APS)Sigma-AldrichA3678
Amonyum sülfat ((NH4)2SO4)Sigma-AldrichA4418
Attune NxT Akış sitometresiThermo Fischer ScientificA24861
Attune 1x Odaklama SıvısıThermo Fischer ScientificA24904
Attune Kapatma ÇözümüTermo Fischer ScientificA24975
Attune Performans İzleme BoncuklarıThermo Fischer Scientific4449754
Attune Yıkama SolüsyonuThermo Fischer Scientific  J24974
Borik asitSigma-AldrichB6768
Bromofenol mavisiSigma-AldrichB0126
Karbenisilin disodyum tuzuSigma-AldrichC3416
Klorlu AğartıcıAmazonB07J6FJR8D
Corning Costar 96 kuyulu plakaDaigger ScientificEF86610A
Kültür Tüpleri, 12 mm x 75 mm, 5 mL çift konumlu kapaklıGlobe Scientific05-402-31
DFHBISigma-AldrichSML1627
DFHBI-1TSigma-AldrichSML2697
D-Glikoz (susuz)Acros OrganicsAC410955000
Dimetil sülfoksit (DMSO)Sigma-AldrichD8418
Dithiothreitol (DTT)Sigma-AldrichDTT-RO
DNA yükleme boyasıNew England BiolabsB7025S
DNA LoBind Tüpleri (2.0 mL)Eppendorf22431048
dNTP'ler: dATP, dCTP, dGTP, dTTPNew England BiolabsN0446S
EDTA, pH 8.0Gibco, Yaşam TeknolojileriAM9260G
Etanol (EtOH)Sigma-AldrichE7023
Filtre uçlu mikropipetleyici uçlarıThermo Fischer ScientificAM12635, AM12648, AM12655, AM12665
FlowJo YazılımıBD BiosciencesN/AFlowJo v10 Yazılımı
Isıtma kontrollü floresan plaka okuyucuVWR10014-924
Jel elektroforez güç kaynağıThermo Fischer ScientificEC3000XL2
GliserolSigma-AldrichG5516
Glikojen AM95010Thermo Fischer ScientificAM95010
GraphPad PrismDotmaticsN/AAcademic Group Lisansından Analiz yazılımı 
Isı bloğu Thomas Scientific1159Z11
HEPESSigma-AldrichH-4034
İnorganik pirofosfatazSigma-AldrichI1643-500UN
Düşük Moleküler Ağırlıklı DNA MerdiveniNew England BiolabsN3233LÜcretsiz Jel Yükleme Boyası, Mor (6x), SDS (NEB #B7025) ile birlikte verilir.
Magnezyum klorür hekzahidrat (MgCl2)Sigma-AldrichM2670
Magnezyum sülfat (MgSO4)Fisher ScientificMFCD00011110
Mikrosantrifüj tüpleri (1.5 mL)Eppendorf22363204
Sıcaklık kontrollü mikrosantrifüjMarshall ScientificEP-5415R
MikropipetleyicilerGilsonFA10001M, FA10003M, FA10005M, FA10006M
Mikropipetleyici uçlarıSigma-AldrichZ369004, AXYT200CR, AXYT1000CR
BioPak üniteli Millipore su filtresiSigma-AldrichCDUFBI001, ZRQSVR3WW
Dar mikropipetleyici pipet uçlarıDOT ScientificRN005R-LRS
PBS, 10xTermo Fischer BilimselBP39920
PCR temizleme kitiQiagen28181
PCR primerleri ve şablonlarıEntegre DNA teknolojileri
İnce duvarlı PCR tüpleri için PCR termodöngüleyici
PCR termodöngüleyiciTechne5PRIME/C
pET31b-T7-Ispanak2 Plazmid EklentisiPlazmid #79783
Phusion Yüksek Sadakatli DNA polimeraz New England BiolabsM0530LPhusion Yüksek Kaliteli Enzim Satın Alımı, 5x Phusion HF Tamponu, 5x Phusion GC Tamponu ve MgCl2 ve DMSO çözeltileri ile sağlanır.
Poliakrilamid jel elektroforez jel tarağı, CBS BilimselC.B.S. BilimselVGC-1508
Poliakrilamid jel elektroforez ekipmanıCBS ScientificASG-250
Potasyum klorür (KCl)Sigma-AldrichP9333
Potasyum fosfat monobazikSigma-AldrichP5655
Tıraş bıçaklarıGenesee Bilimsel38-101
rNTP'ler: ATP, CTP, GTP, UTPNew England BiolabsN0450L
SDSSigma-AldrichL3771
Kısa dalga UV ışık kaynağıThermo Fischer Scientific11758221
Sodyum karbonat (Na2< / sub>CO3< / sub>)Sigma-AldrichS7795
Sodyum klorür (NaCl)Sigma-AldrichS7653
Sodyum hidroksit (NaOH)Sigma-AldrichS8045
Sodyum fosfat dibazik, susuzThermo Fischer ScientificS375-500
SoftMax ProMoleküler CihazlarN/ASoftMax Pro 6.5.1 (plaka okuyucu yazılımı) Akademik Grup Lisansı ile alınmıştır
Steril filtre üniteleriThermo Fischer Scientific09-741-88
SükrozSigma-AldrichS0389
SYBR Güvenli DNA jel lekesiThermo Fischer ScientificS33102
agaroz jel elektroforezi için TAE tamponuThermo Fischer ScientificAM9869
Tetrametiletilendiamin (TEMED)Sigma-AldrichT9281
Tris tabanıSigma-AldrichTRIS-RO
Tripton (granül)Thermo Fischer ScientificM0251S
T7 RNA polimerazNew England BiolabsM0251S
Urea-PAGE Jel sistemi ve nbsp;Ulusal TeşhisEC-833
UV floresan TLC plakasıSigma-Aldrich1.05789.0001
UV/Vis spektrofotometresiThermo Fischer ScientificND-8000-GL
Vorteks karıştırıcıThermo Fischer Scientific2215415
Ksilen siyanolSigma-AldrichX4126
Maya Özü (Granül)Termo Fischer BilimselBP9727-2
0,5 mL tüpler için Bio-Rad 1851148

Kaynaklar

  1. Su, Y., Hammond, M. C. RNA-based fluorescent biosensors for live cell imaging of small molecules and RNAs. Current Opinion in Biotechnology. 63, 157-166 (2020).
  2. Zhang, J., et al. Tandem spinach array for mRNA Imaging in living bacterial cells. Scientific Reports. 5, 17295(2015).
  3. Wang, Z., et al. In spatial complementation of aptamer-mediated recognition enables live-cell imaging of native RNA transcripts in real time. Angewandte Chemie. 57 (4), 972-976 (2018).
  4. Strack, R. L., Disney, M. D., Jaffrey, S. R. A superfolding Spinach2 reveals the dynamic nature of trinucleotide repeat-containing RNA. Nature Methods. 10 (12), 1219-1224 (2013).
  5. Thavarajah, W., et al. Point-of-use detection of environmental fluoride via a cell-free riboswitch-based biosensor. ACS Synthetic Biology. 9 (1), 10-18 (2020).
  6. You, M., Litke, J. L., Jaffrey, S. R. Imaging metabolite dynamics in living cells using a Spinach-based riboswitch. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (21), 2756-2765 (2015).
  7. Kellenberger, C. A., Wilson, S. C., Sales-Lee, J., Hammond, M. C. RNA-based fluorescent biosensors for live cell imaging of second messengers cyclic di-GMP and cyclic AMP-GMP. Journal of the American Chemical Society. 135 (13), 4906-4909 (2013).
  8. Manna, S., Truong, J., Hammond, M. C. Guanidine biosensors enable comparison of cellular turn-on kinetics of riboswitch-based biosensor and reporter. ACS Synthetic Biology. 10 (3), 566-578 (2021).
  9. Bose, D., Su, Y., Marcus, A., Raulet, D. H., Hammond, M. C. An RNA-based fluorescent biosensor for high-throughput analysis of the cGAS-cGAMP-STING pathway. Cell Chemical Biology. 23 (12), 1539-1549 (2016).
  10. Wang, X. C., Wilson, S. C., Hammond, M. C. Next-generation RNA-based fluorescent biosensors enable anaerobic detection of cyclic di-GMP. Nucleic Acids Research. 44 (17), 139(2016).
  11. Paige, J. S., Thinh, N. -D., Wenjiao, S., Jaffrey, S. R. Fluorescence imaging of cellular metabolites with RNA. Science. 335 (6073), 1194(2012).
  12. Paige, J. S., Wu, K. Y., Jaffrey, S. R. RNA mimics of green fluorescent protein. Science. 333 (6042), 642-646 (2011).
  13. Filonov, G. S., Moon, J. D., Svensen, N., Jaffrey, S. R. Broccoli: Rapid selection of an RNA mimic of green fluorescent protein by fluorescence-based selection and directed evolution. Journal of the American Chemical Society. 136 (46), 16299-16308 (2014).
  14. Song, W., Strack, R. L., Svensen, N., Jaffrey, S. R. Plug-and-play fluorophores extend the spectral properties of spinach. Journal of the American Chemical Society. 136 (4), 1198-1201 (2014).
  15. Sambrook, J., Fritsch, E., Maniatis, T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. (1989).
  16. Basch, H., Gadebusch, H. H. In vitro antimicrobial activity of dimethylsulfoxide. Applied Microbiology. 16 (12), 1953-1954 (1968).
  17. Kallansrud, G., Ward, B. A comparison of measured and calculated single- and double-stranded oligodeoxynucleotide extinction coefficients. Analytical Biochemistry. 236 (1), 134-138 (1996).
  18. Wilson, S. C., Cohen, D. T., Wang, X. C., Hammond, M. C. A neutral pH thermal hydrolysis method for quantification of structured RNAs. RNA. 20 (7), 1153-1160 (2014).
  19. Szatmári, D., et al. Intracellular ion concentrations and cation-dependent remodelling of bacterial MreB assemblies. Scientific Reports. 10, 12002(2020).
  20. Boulos, L., Prévost, M., Barbeau, B., Coallier, J., Desjardins, R. LIVE/DEAD® BacLightTM: Application of a new rapid staining method for direct enumeration of viable and total bacteria in drinking water. Journal of Microbiological Methods. 37 (1), 77-86 (1999).
  21. Huang, H., et al. A G-quadruplex-containing RNA activates fluorescence in a GFP-like fluorophore. Nature Chemical Biology. 10 (8), 686-691 (2014).
  22. Jeng, S. C. Y., Chan, H. H. Y., Booy, E. P., McKenna, S. A., Unrau, P. J. Fluorophore ligand binding and complex stabilization of the RNA Mango and RNA Spinach aptamers. RNA. 22 (12), 1884-1892 (2016).
  23. Han, K. Y., Leslie, B. J., Fei, J., Zhang, J., Ha, T. Understanding the photophysics of the Spinach-DFHBI RNA aptamer-fluorogen complex to improve live-cell RNA imaging. Journal of the American Chemical Society. 135 (50), 19033-19038 (2013).
  24. Wang, P., et al. Photochemical properties of Spinach and its use in selective imaging. Chemical Science. 4 (7), 2865-2873 (2013).
  25. Dao, N. T., et al. Photophysics of DFHBI bound to RNA aptamer Baby Spinach. Scientific Reports. 11, 7356(2021).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

In Vitro KinetikHücresel KinetikFloresan AktivasyonuPlaka OkuyucuAkış SitometrisiSpinach2 AptameriBroccoli AptameriRNA Tabanlı Biyosensörler
Florojenik RNA Aptamers için In Vitro ve Hücresel Turn-on Kinetiğinin Belirlenmesi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.