RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
tr_TR
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Lipid yüklü hepatositler karaciğer rejenerasyonuna özgüdür, ancak genellikle yoğunluk gradyan santrifüjleme ile kaybolurlar. Burada, steatotik hepatositleri tutan ve farelerde parsiyel hepatektomi sonrası rejenere hepatositlerin temsili popülasyonlarını veren optimize edilmiş bir hücre izolasyon protokolü sunuyoruz.
Parsiyel hepatektomi, farelerde karaciğer rejenerasyonunu araştırmak için yaygın olarak kullanılmaktadır, ancak aşağı akış tek hücreli uygulamalar için yüksek verimli hepatositlerin izolasyonu zordur. Farelerde normal karaciğer rejenerasyonunun ilk 2 günü boyunca rejenere hepatositler içinde belirgin bir lipit birikimi gözlenir. Geçici rejenerasyonla ilişkili steatoz (TRAS) olarak adlandırılan bu durum geçicidir ancak majör proliferatif faz ile kısmen örtüşür. Yoğunluk-gradyan saflaştırma, primer hepatositlerin izolasyonu için mevcut protokollerin çoğunun bel kemiğidir. Gradyan saflaştırma, hücrelerin yoğunluğuna ve boyutuna dayandığından, steatotik olmayanları steatotik hepatosit popülasyonlarından ayırır. Bu nedenle, yağlı hepatositler sıklıkla kaybolur ve temsili olmayan hepatosit fraksiyonları ortaya çıkar.
Sunulan protokol, lipid içeriğinden bağımsız olarak rejenere hepatositlerin in vivo izolasyonu için kolay ve güvenilir bir yöntem tanımlamaktadır. Erkek C57BL/6 farelerden alınan hepatositler, hepatektomiden 24-48 saat sonra klasik iki aşamalı kollajenaz perfüzyon yaklaşımı ile izole edilir. Standart bir peristaltik pompa, portal venden çıkışlı retrograd bir perfüzyon tekniği kullanarak, kateterize inferior vena kava yoluyla ısıtılmış çözeltileri kalıntıya yönlendirir. Hepatositler, Glisson kapsülünden salınmaları için kollajenaz ile ayrışır. Yıkama ve dikkatli santrifüjlemeden sonra, hepatositler herhangi bir aşağı akış analizi için kullanılabilir. Sonuç olarak, bu yazıda farelerde parsiyel hepatektomi sonrası temsili bir rejenere hepatosit popülasyonunun izolasyonu için basit ve tekrarlanabilir bir teknik anlatılmaktadır. Yöntem ayrıca yağlı karaciğer hastalığının çalışmasına da yardımcı olabilir.
Karaciğer, büyük doku kaybından sonra bile kendini yenileyebilir. Bu eşsiz rejeneratif kapasite, ilk olarak 1931'de Higgins ve Anderson tarafından sıçanlarda tanımlanan kısmi (% 70) hepatektominin deneysel modeli ile açıkça gösterilmiştir1. Bu modelde, karaciğerin% 70'i daha büyük karaciğer loblarını keserek hayvanlardan cerrahi olarak çıkarılır. Kalan loblar daha sonra orijinal karaciğer mimarisinin restorasyonu olmadan da olsa, ameliyattan yaklaşık 1 hafta sonra orijinal karaciğer kütlesini geri yüklemek için telafi edici hipertrofi yoluyla büyür 2,3. Karaciğer kalıntısının iyileşmek için çok küçük olduğu% 86 genişletilmiş hepatektomi gibi, değişen miktarlarda doku çıkarılmasına sahip ek hepatektomiler geliştirilmiştir, sonuçta posthepatektomi karaciğer yetmezliğine (PHLF) ve ardından hayvanların% 30-50'sinde ölüme yol açmıştır 4,5,6. Bu modeller, rezeke edilen doku miktarına bağlı olarak normal ve başarısız karaciğer rejenerasyonunun incelenmesini sağlar (Şekil 1).
Hepatektomilerin fare modelleri uzun yıllardır başarıyla kullanılmasına rağmen, son zamanlarda tek hücre düzeyinde daha derin bir içgörü sağlayan daha gelişmiş analitik yöntemlere sahiptir. Bununla birlikte, bu yöntemlerin çoğu için, bireysel hepatositlerin varlığı temel bir önkoşuldur. Primer hepatositlerin izolasyonu için çoğu protokol, iki aşamalı bir kollajenaz perfüzyon tekniğine ve ardından canlı hepatositleri enkaz ve parankimal olmayan hücrelerden ayırmak için yoğunluk gradyanı saflaştırılmasına ve ayrıca ölü hücreleredayanmaktadır 7,8,9. Bu yöntem ilk olarak 1969 yılında Berry and Friend tarafından tanımlanmış10 ve Seglen ve meslektaşları tarafından 1972 yılında uyarlanmıştır11,12. Bununla birlikte, gradyan santrifüjleme hücrelerin yoğunluğuna ve boyutuna dayandığından, lipit yüklü hepatositler genellikle standart saflaştırma sırasında kaybolur. Bu tür bir kayıp birçok araştırma sorusu için ihmal edilebilir olsa da, erken karaciğer yenilenmesi için çok önemli bir husustur. İlk 2 gün boyunca, yenilenen fare karaciğeri içindeki hepatositler lipitleri biriktirir, böylece boyut olarak büyür ve yoğunluğa dalar. Bu geçici rejenerasyonla ilişkili steatoz (TRAS) rejeneratif yakıt sağlamaya hizmet eder ve geçicidir, ancak kısmen majör proliferatif faz ile örtüşür ve karaciğer lobülleri içinde eşit olmayan bir şekilde dağılır - karaciğerin fonksiyonel birimleri13,14. Bununla birlikte,% 86'lık uzatılmış hepatektomiden sonra, TRAS da ortaya çıkar, ancak devam eder, çünkü rejenerasyon durur ve lipitler oksitlenmez14. Bu nedenle,% 70 veya% 86 hepatektomiyi takiben hepatositlerin gradyan saflaştırılması, çoğu lipit yüklü hepatositin düşük yoğunluklu15 nedeniyle kaybolması nedeniyle temsili olmayan fraksiyonlar verecektir.
Bu modifiye izolasyon protokolünde, C57BL/6 farelerden alınan hepatositler, klasik iki aşamalı kollajenaz perfüzyon yaklaşımı ile hepatektomiden 24-48 saat sonra izole edilir. Genellikle, hücre izolasyonu için kalıntının kanülasyonu ve perfüzyonu portal ven yoluyla yapılır. Ancak majör rezeksiyon sonrası kalan küçük rezentlerde portovasküler direnç16 yüksekliğindedir ve bu nedenle perfüzyon hassastır. Vena kava hepatektomilerden etkilenmediği için, perfüzyon vena kavanın kanülasyonu yoluyla retrograd yönde kolayca yapılabilir. Standart bir peristaltik pompa, portal venden çıkışla retrograd perfüzyon kullanarak, kateterize inferior vena kava yoluyla ısıtılmış çözeltileri karaciğer kalıntısına yönlendirir (Ek Şekil S1). Hepatositler kollajenazlar tarafından ayrışır ve Glisson kapsülünden salınır. Düşük hızlı bir santrifüjleme yaklaşımı kullanılarak kademeli izolasyon ile canlı hepatositlerin yıkanması ve dikkatli bir şekilde işlenmesinden sonra, hepatositler herhangi bir aşağı akış analizi için kullanılabilir.
Tüm hayvan deneyleri İsviçre Federal Hayvan Yönetmeliklerine uygundur ve Zürih Veterinerlik Ofisi (n° 007/2017, 156/2019) tarafından onaylanmıştır. 10-12 haftalık erkek C57BL / 6 fareleri, yiyecek ve suya serbest erişimi olan 12 saatlik bir gündüz / gece döngüsünde tutuldu. Her deney grubu altı ila sekiz hayvandan oluşuyordu. Bu protokolde kullanılan tüm malzemeler, ekipmanlar ve reaktiflerle ilgili ayrıntılar için Malzeme Tablosu'na bakın.
1. Farelerde parsiyel hepatektomi
RAS, hepatektomi sonrası 16 saatte zirve yapar ve standart hepatektomiden 32-48 saat sonra yavaş yavaş kaybolur, ancak genişletilmiş hepatektomiden sonra 48 saatin üzerinde devam eder. Makroskopik olarak, TRAS karaciğer kalıntısının soluk bir teni olarak kolayca görülebilir (Şekil 1F) ve ameliyattan sonra 16 saat ile 48 saat arasında hepatetomize farelerde görülebilir.
Tahmini nihai verim, farelerde p hepatektomi sonrası 10-15 × 10 6 hepatosit ve %86 uzatılmış hepatektomi sonrası 4-9 × 106'dır ve ortalama nihai canlılık sırasıyla x ve e'tir. Bu, bütün bir fare karaciğerinden 50-70 × 106 toplam verime kıyasla beklenen yüzdeye karşılık gelir (Şekil 6A, C). Parsiyel hepatektomilerden sonra, hepatositler normal karaciğerlere kıyasla artmış bir hücre boyutu gösterir ve bu da artmış lipit içeriğine karşılık gelir (Şekil 6B). Geçit stratejisi Ek Şekil S4'te gösterilmiştir.

Şekil 6: Hepatosit verimi, hücre büyüklüğü ve canlılığı . (A) Bir bütün fare karaciğerinin ve kalıntıların hücre sayısı% 70 ve% 86 hepatektomi sonrası 24 saat. (B) İzole hepatositlerin hesaplanmış hücre hacmi. Hepatektomi sonrası 24 saat hücre boyutundaki belirgin artışa dikkat edin, hem % 70 hem de% 86 için. (C) Saflaştırma işleminin her adımından sonra izole hepatositlerin hücre canlılığı. Canlılık, Alexa Fluor 488 Zombi yeşil canlılık boyası kullanılarak akış sitometrisi ile ölçüldü. Yüzdeler tüm hepatosit singletlarından alınır. Geçit stratejisi için Ek Şekil S6 ve Ek Şekil S4'e bakınız. Hata çubukları, n = 6-8/grup ile standart sapmaları ifade eder. Kısaltmalar: sHx = standart hepatektomi; eHx = genişletilmiş hepatektomi; rezeksiyon olmadan = sahte cerrahi. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Parsiyel hepatektomiden 24 saat sonra murin hepatositlerde artmış lipid içeriği, granülerlikte bir artış (Şekil 7; geçit stratejisi için bakınız Ek Şekil S5) veya genişlemiş hepatositlerin içinde lipid veziküllerinin varlığı ile doğrudan gözlenebilir (Şekil 8 ve Ek Dosya 1).

Şekil 7: Akım sitometrisi ile ölçülen artmış granülerlik ve hücre boyutu . (A) Lipid veziküllerinin varlığı için dolaylı bir belirteç olarak hepatektomi sonrası 24 saat izole hepatositler arasında artmış granülerlik. (B) SSC'yi gösteren histogram. (C) Yüzdeler, SSC sinyali ile ölçülen yüksek sitoplazmik granüler yoğunluğa sahip hücrelerin fraksiyonunu temsil eder. Hata çubukları, n = 6-8/grup ile standart sapmaları ifade eder. Kısaltmalar: sHx = standart hepatektomi; eHx = genişletilmiş hepatektomi; rezeksiyon olmadan = sahte cerrahi; FSC = ileri saçılma sinyali; SSC = yan dağılım. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 8: İzole edilmiş taze hepatositlerin yağ içeriğinin bir belirteci olarak Sudan IV boyaması. (A) Önceden ameliyat edilmeden taze bir bütün fare karaciğerinden hepatositler. Hepatektomi sonrası 24 saat (B) ve (C
Yazarlar, rakip çıkarları olmadığını beyan ederler.
Lipid yüklü hepatositler karaciğer rejenerasyonuna özgüdür, ancak genellikle yoğunluk gradyan santrifüjleme ile kaybolurlar. Burada, steatotik hepatositleri tutan ve farelerde parsiyel hepatektomi sonrası rejenere hepatositlerin temsili popülasyonlarını veren optimize edilmiş bir hücre izolasyon protokolü sunuyoruz.
Bu çalışma İsviçre Ulusal Fonud (proje hibesi 310030_189262) tarafından desteklenmiştir.
| Alexa Fluor 488 Zombi yeşili | BioLegend | 423111 | Amin reaktif canlılık boyası |
| Attane Isoflurane ad us. 99.9 | %Provet AG | QN01AB06 | DİKKAT: havalandırma EDTA |
| çözeltisi | gerekirSigma-Aldrich | E8008-100ML-Etanol | |
| Sigma-Aldrich | V001229 | %70 | |
| Fetal sığır serumu (FCS) | ile suyla seyreltin,Gibco | A5256701-Hanks'in | |
| Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS), Ca < sup> 2 + < / sup>, Mg < sup > 2 + < / sup>, fenol kırmızısı | Sigma-Aldrich | H9269-6x600ML | Sindirim / koruma için |
| Hanks'in Dengeli Tuz çözeltisi (HBSS), Ca 2 + < / sup> olmadan, Mg2+ olmadan, fenol kırmızısı içermez | Sigma-Aldrich | H6648-6x500ML | Perfüzyon tamponu |
| HEPES çözeltisi için, 1 M | Sigma-Aldrich | 83264-100ML-F-Histoakril | |
| doku yapıştırıcısı (butil-2-siyanoakrilat) | B. Braun | 1050052 | Kanülasyon bölgesinin stabilizasyonu için |
| Hoechst 33258 Boyama Boya Çözeltisi | Abcam | ab228550 | - |
| Liferaz Araştırma Sınıfı | Roche | 5401119001 | Liyofilize kollajenazlar I/II |
| NaCl %0.9 500 mL Ecotainer | B. Braun | 123-Paralube | |
| Veteriner Merhem | Dechra | 17033-211-38-Fosfat | |
| tamponlu salin (PBS) | Gibco | A1286301-Sudan | |
| IV – Lipid boyama | Sigma-Aldrich | ||
| V001423-Temjezik (Buprenorfin hidroklorür), Enjeksiyon Çözeltisi 0.3 mg / mL | Indivior Europe Ltd. | 345928 | Narkotik. Güvenli bir şekilde saklayın. |
| Tripan mavisi, %0,4, steril filtreli | Sigma-Aldrich | T8154 | Hücre sayımı için |
| Williams' Orta E | Sigma-Aldrich | W4128-500ML- | |
| 25 mL serolojik pipet, Greiner Cellstar | Merck | P7865-50 | |
| mL Falcon tüpleri | TPP | - | |
| BD Neoflon, Pro IV Kateter 26 G | BD Falcon | 391349 | |
| Hücreli sıyırıcı, döner bıçak genişliği 25 mm | TPP | 99004-Falcon | |
| Hücre Süzgeci 100 & m Naylon | BD Falcon | 352360-Fenestrated | |
| steril cerrahi örtü | - | Yeniden kullanılabilir kumaş malzeme | |
| 16 # boru boyutu için doldurma nozulu (ID 3.1 mm) | Drifton | DOLDURMA NOZULU # 16 | Tüplere girmek için |
| Akış sitometri tüpleri, 5 mL | BD Falcon | 352008-Erkek | |
| Luer - Barb, Boru Kimliği 3.2 mm | Drifton | LM41 | Bağlantı tüpü şırınga için |
| Petri kapları, 96 x 21 mm | TPP | 93100-Prolene | |
| 5-0 | Ethicon | 8614H | Sternumu geri çekmek için |
| Prolene 6-0 | Ethicon | 8695H | Cilt sütürü için |
| Prolene 8-0 | Ethicon | EH7470E | Ligature safra kesesi |
| Tüpü 16 #, WT 1.6 mm, ID 3.2 mm, OD 6.4 mm | Drifton | SC0374T | Perfüzyon tüpü |
| BD LSRFortessa Hücre Analiz Cihazı Akış Sitometresi | BD | - | |
| Isis kemirgen tıraş makinesi | Aesculap | GT421-Isofluran | |
| istasyonu | Provet | - | |
| Düşük hızlı santrifüj ve ndash; Scanspeed 416 | Labogene | - | |
| Neubauer - geliştirilmiş sayma odası | Marienfeld | - | |
| Oksijen konsantratörü ve ndash; EverFlo | Philips | 1020007 | 0 & ndash; 5 L/dk |
| Pipetboy – Pipetör Turbo-Fix | TPP | 94700-Shenchen | |
| perfüzyon pompası > YZ1515x | Shenchen | YZ1515x-Cerrahi | |
| mikroskop – SZX9 | Olympus | - | |
| ThermoLux ısınma matı | Thermo Lux | - | |
| Vortex Genie 2, 2700 UpM | NeoLab | 7-0092-Su | |
| banyosu ve ndash; Hassas GP 02 | Termo bilimsel-42 | dereceye ayarlayın > Ç |