Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Epigenom ve Tek Hücre Çözünürlüğünde Gen Ekspresyon Profillemesi için Fare Kardiyak Progenitör Hücrelerinden Çekirdek İzolasyonu

4.1K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/65328

⸱

12 Mayıs 2023

 ,  ,  ,  ,  , 
1Center for Cardiovascular Disease & Nutrition, U1263, Aix-Marseille University, 2Marseille Medical Genetics, U1251, Aix-Marseille University

Bu makalede

Özet

Burada, hücre çekirdeği hazırlığını tanımlayan bir protokol sunuyoruz. Kardiyak dokunun mikrodiseksiyonu ve enzimatik ayrışmasından sonra, progenitör hücreler donduruldu, ardından tek çekirdekli RNA dizilimi için kullanılan saf canlı hücrelerin izolasyonu ve yüksek verimli dizileme analizleri ile transpozaz erişilebilir kromatin için tek çekirdekli tahlil yapıldı.

Özet

Gelişmekte olan kalp, karmaşık düzenleyici mekanizmalar tarafından kontrol edilen çeşitli progenitör hücreleri içeren karmaşık bir yapıdır. Tek tek hücrelerin gen ekspresyonunun ve kromatin durumunun incelenmesi, hücre tipinin ve durumunun tanımlanmasını sağlar. Tek hücreli dizileme yaklaşımları, kardiyak progenitör hücre heterojenitesinin bir dizi önemli özelliğini ortaya koymuştur. Bununla birlikte, bu yöntemler genellikle taze doku ile sınırlıdır, bu da farklı deneysel koşullara sahip çalışmaları sınırlar, çünkü taze dokunun teknik değişkenliği azaltmak için aynı anda işlenmesi gerekir. Bu nedenle, bu alanda tek çekirdekli RNA dizilimi (snRNA-seq) ve yüksek verimli dizileme (snATAC-seq) ile transpozaz erişilebilir kromatin için tek çekirdekli test gibi yöntemlerden veri üretmek için kolay ve esnek prosedürlere ihtiyaç vardır. Burada, sonraki tek çekirdekli dual-omikler (kombine snRNA-seq ve snATAC-seq) için çekirdekleri hızlı bir şekilde izole etmek için bir protokol sunuyoruz. Bu yöntem, çekirdeklerin kardiyak progenitör hücrelerin dondurulmuş örneklerinden izole edilmesine izin verir ve mikroakışkan odalar kullanan platformlarla birleştirilebilir.

Giriş

Doğum kusurları arasında, konjenital kalp kusurları (KKH'ler) en yaygın olanıdır ve her yıl canlı doğumların yaklaşık% 1'inde görülür 1,2. Genetik mutasyonlar vakaların sadece küçük bir kısmında tanımlanmıştır, bu da gen regülasyonundaki anormallikler gibi diğer nedenlerin KKH 2,3'ün etiyolojisinde rol oynadığını ima etmektedir. Kardiyak gelişim, çeşitli ve etkileşimli hücre tiplerinin karmaşık bir sürecidir ve nedensel kodlamayan mutasyonların tanımlanmasını ve gen regülasyonu üzerindeki etkilerini zorlaştırır. Kalbin organogenezi, miyokardiyal, fibroblast, epikardial ve endokardiyal hücreler dahil olmak üzere farklı kalp hücreleri alt tiplerine yol açan hücresel progenitörlerle başlar 4,5. Tek hücreli genomik, kalp gelişimini incelemek ve hücresel heterojenitenin sağlık ve hastalık üzerindeki etkisini değerlendirmek için anahtar bir yöntem olarak ortaya çıkmaktadır6. Farklı parametrelerin eşzamanlı ölçümü için multi-omik yöntemlerin geliştirilmesi ve hesaplama boru hatlarının genişletilmesi, normal ve hastalıklı kalpte hücre tiplerinin ve alt tiplerinin keşfedilmesini kolaylaştırmıştır6. Bu makalede, fare embriyolarından elde edilen dondurulmuş kardiyak progenitör hücreler için aşağı akış snRNA-seq ve snATAC-seq (ayrıca snRNA-seq ve snATAC-seq kombinasyonu) ile uyumlu güvenilir bir tek çekirdekli izolasyon protokolü açıklanmaktadır7,8,9.

ATAC-seq, düzenleyici açık kromatin bölgelerinin tanımlanmasına ve nükleozomların10,11'in konumlandırılmasına izin veren sağlam bir yöntemdir. Bu bilgi, transkripsiyon faktörlerinin yeri, kimliği ve etkinliği hakkında sonuçlar çıkarmak için kullanılır. Bu nedenle, remodelleyiciler de dahil olmak üzere kromatin faktörlerinin aktivitesi ve RNA polimerazın transkripsiyonel aktivitesi, yöntem, kromatin yapısı 1,2'deki nicel değişiklikleri ölçmek için oldukça hassas olduğu için analiz edilebilir. Bu nedenle, ATAC-seq, belirli bir hücre tipinde transkripsiyonel düzenlemeyi kontrol eden mekanizmaları ortaya çıkarmak için sağlam ve tarafsız bir yaklaşım sağlar. ATAC-seq protokolleri, tek hücrelerde kromatin erişilebilirliğini ölçmek için de doğrulanmıştırve hücre popülasyonları 10,12,13 içindeki kromatin mimarisindeki değişkenliği ortaya koymaktadır.

Son yıllarda tek hücreler alanında kayda değer ilerlemeler olmasına rağmen, asıl zorluk bu deneyleri gerçekleştirmek için gereken taze örneklerin işlenmesidir14. Bu zorluğun üstesinden gelmek için dondurulmuş kalp dokusu veya hücre15,16 ile snRNA-seq ve snATAC-seq gibi analizlerin yapılması amacıyla çeşitli testler yapılmıştır.

Tek hücreli genomik verileri analiz etmek için çeşitli platformlar kullanılmıştır17. Tek hücreli gen ekspresyonu ve ATAC profillemesi için yaygın olarak kullanılan platformlar, çoklu mikroakışkan damlacık kapsüllemesi için platformlardır17. Bu platformlar mikroakışkan odalar kullandığından, enkaz veya agregalar sistemi tıkayabilir ve kullanılamaz verilere neden olabilir. Bu nedenle, tek hücreli çalışmaların başarısı, bireysel hücrelerin / çekirdeklerin doğru izolasyonuna bağlıdır.

Burada sunulan protokol, konjenital kalp kusurlarını anlamak için snRNA-seq ve snATAC-seq kullanan son çalışmalara benzer bir yaklaşım kullanmaktadır 18,19,20,21,22,23. Bu prosedür, taze mikrodiseke edilmiş kalp dokusunun enzimatik ayrışmasını ve ardından fare kardiyak progenitör hücrelerinin kriyoprezervasyonunu kullanır. Çözüldükten sonra, canlı hücreler saflaştırılır ve nükleer izolasyon için işlenir. Bu çalışmada, bu protokol, fare kardiyak progenitör hücrelerinin aynı nükleer preparatından snRNA-seq ve snATAC-seq verilerini elde etmek için başarıyla kullanılmıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu çalışmada benimsenen hayvan prosedürü, Aix-Marseille Üniversitesi (C2EA-14) hayvan etik kurulları tarafından onaylanmış ve hayvan deneyleri için atanmış ulusal etik kurul (Ministère de l'Education Nationale, de l'Enseignement Supérieur et de la Recherche; Yetkilendirme Apafis N°33927-2021111715507212).

1. Diseksiyondan önce zamanlanmış çiftleşmenin ayarlanması

  1. Fare embriyoları oluşturmak için, kalp bölgesi izolasyonundan 9,5 gün önce yetişkin fareler arasında zamanlanmış bir çiftleşme gerçekleştirin. Bu prosedürde, 2-6 aylık vahşi tip C57BL / 6J fareler kullanıldı ve gece boyunca zamanlanmış çiftleşme yapıldı.
  2. Ertesi sabah, dişi farelerin vajinal tıkacı olup olmadığını kontrol edin. Fişin embriyonik gün (E) 0.5 olarak tanımlandığı günü düşünün.

2. Doku hazırlığı ve hücre izolasyonu

  1. 2-6 aylık hamile kadın C57BL/6J'yi CO2 yoluyla gebe kaldıktan sonra 9.5. günde artan konsantrasyon ve ardından servikal çıkık ile ötenazi yapın. Karnın alt kısmını% 70 etanol ile temizleyin.
    NOT: Servikal çıkıktan önce anesteziklerin kullanılması önerilmez, çünkü bu, embriyoları sonraki transkriptomik ve epigenomik çalışmaları etkileyebilecek çevresel değişikliklere maruz bırakacaktır.
  2. Karın ve periton makasla açın. Rahim boynuzlarını görselleştirin ve her iki boynuzu da çıkarmak için forseps kullanın.
  3. Boynuzları% 1 FBS ile soğuk komple ortam içeren bir Petri kabına yerleştirin. Belirli bir hacim gerekmese de, embriyoların ortama tamamen daldırıldığından emin olmak için özen gösterilmelidir. 10 cm Petri kabı başına yaklaşık 10 mL'lik bir hacim uygundur.
  4. 5x büyütmede ayarlanmış stereomikroskop altında ve forseps kullanarak, endometriyal dokuyu, plasentayı ve yumurta sarısı kesesini her embriyodan çıkarın.
  5. Embriyoları% 1 FBS ile soğuk komple ortama sahip bir Petri kabına yerleştirin. Embriyonik kalp bölgesini, Şekil 1'de gösterilen şematik embriyoda tarif edildiği gibi, soğuk tam ortamda diseke edin.
  6. Beş fare embriyosundan disseke edilen kalp bölgelerini 1.5 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpünde bir araya getirin. Ön soğutma sallanan kova santrifüjleri 4 °C'ye kadar santrifüjler.
  7. Sallanan kovalı bir santrifüjde RT'de 1 dakika boyunca 300x g'de santrifüj. Süpernatanı çıkarın ve 1 mL doku kültürü dereceli PBS ekleyerek dokuları yıkayın.
  8. RT'de 1 dakika boyunca 300 x g'de santrifüj. Süpernatanı çıkarın ve toplam iki yıkama için yıkama adımlarını tekrarlayın. PBS'yi %0,05 tripsin/EDTA (1x) ile değiştirerek yıkamayı iki kez tekrarlayın.
  9. Doku sindirimi için, 37 ° C'de 10 dakika boyunca 50 μL% 0.25 tripsin / EDTA ekleyin. Geniş delikli bir filtre ucu kullanarak 5 dakika sonra yukarı ve aşağı hareketlerle nazik mekanik ayrışma uygulayın.
  10. Ayrışmış hücrelere 350 μL tam ortam ekleyerek tripsin sindirim aktivitesini inaktive edin. Yeniden askıya alınan hücreleri 40 μm'lik bir hücre süzgecinden geçirin.

3. Hücre sayımı ve canlılık değerlendirmesi

NOT: Hücre sayısı ve canlılığı, tek hücreli deneylerin başarısı için kritik parametrelerdir. snATAC-seq yaklaşımı, hücre sayısındaki küçük değişikliklere duyarlıdır. Çok az hücre, kromatinin aşırı sindirilmesine neden olur, bu da daha fazla sayıda okuma ve erişilemeyen kromatin bölgelerinin haritalanmasına (gürültü) neden olur. Benzer şekilde, çok fazla hücreye sahip olmak, sıralanması zor olan yüksek moleküler ağırlıklı parçalar üretir. Hücre ve çekirdek konsantrasyonlarının doğru bir şekilde belirlenmesi için, hücre sayısı ve canlılığı iki farklı yöntemle değerlendirildi.

  1. Aşağıda açıklandığı gibi hücre sayımı için bir tripan mavisi testi yapın.
    1. Vorteks% 0.4 tripan mavisi boyama çözeltisi, 2.000 x g'de oda sıcaklığında 10 s boyunca döndürün ve 10 μL'yi bir mikrotüpe aktarın.
    2. Bir pipet kullanarak, hücre süspansiyonunu karıştırın ve önceden alıntılanmış 10 μL tripan mavisi çözeltisine 10 μL süspansiyon ekleyin. Bir pipetle 10 kez dikkatlice karıştırın.
    3. Boyanmış hücrelerin 10 μL'sini bir sayım slaytına aktarın. Hücre konsantrasyonunu ve canlılığını otomatik olarak hesaplamak için slaytı sayaca yerleştirin.
  2. Aşağıda açıklandığı gibi floresan bazlı bir mortalite değerlendirmesi yapın.
    NOT: Bu tahlil, hücre canlılığını değerlendirmek için floresan boyaların (ethidyum homodimer-1, EthD-1 ve kalsein) kullanımına dayanmaktadır. Ticari olarak temin edilebilen bir kit kullanıldı ve uygun hazırlık ve kullanım için sağlayıcının talimatlarına uyuldu.
    1. 1 mL steril doku kültürü sınıfı D-PBS'ye birlikte verilen 2 mM EthD-1 stok çözeltisinin 5 μL'sini ekleyerek 10 μM EthD-1 çözeltisi hazırlayın ve tam karıştırmayı sağlamak için 5 sn boyunca vorteks yapın.
    2. Birlikte verilen 4 mM kalsein stok çözeltisinin 2,5 μL'sini önceden hazırlanmış EthD-1 çözeltisine aktarın. Tam karıştırma sağlamak için 5 sn vorteks.
    3. Elde edilen 10 μM EthD-1 ve 10 μM kalsein çalışma çözeltisinden 10 μL'sini 10 μL hücre süspansiyonuna ekleyin.
      NOT: Kalsein, sulu çözeltilerde hidrolize karşı oldukça hassastır, bu nedenle bu çalışma solüsyonunu 1 gün içinde kullanın.
    4. Boyanmış hücrelerin 10 μL'sini bir sayım slaydı üzerine aktarın. Slaytı otomatik floresan hücre sayacına yerleştirin. GFP filtresi kullanarak canlı hücreleri ve RFP filtresi kullanarak ölü hücreleri sayın.
      NOT: İki sayım yöntemi benzer hücre sayıları ve canlılığı verdi ve yeni ayrışmış hücrelerin toplam sayısının embriyonik kalp bölgesi başına ortalama 20.000 hücre (0.06mm3) olduğu tahmin edildi.

4. Hücre dondurma

  1. Hücre süspansiyonunu 500 x g'de 4 °C'de 5 dakika boyunca santrifüjleyin. Süpernatantı tüpün dibine dokunmadan dikkatlice çıkarın ve peleti 1 mL soğutulmuş dondurma ortamında tekrar askıya alın.
  2. Hücre süspansiyonunu önceden soğutulmuş bir kriyovyal içine aktarın ve kriyovali önceden soğutulmuş bir dondurma kabına yerleştirin.
  3. Kabı 4 saat ila 8 saat boyunca −80 ◦C'ye yerleştirin. Aşağı akış tek çekirdekli RNA ve ATAC dizileme deneyleri için kriyovyal sıvı azota aktarın.
    NOT: Kriyoviyal kullanımdan önce kuru buz üzerinde taşınmalıdır. Deneyimlerimize göre, hücreler hücre canlılığı kaybı olmadan en az 6 ay boyunca sıvı azotta saklanabilir. Buz kristallerinin oluşumunu önlemek için depolama sıcaklığı her zaman -150 ° C'nin altında tutulmalıdır.

5. Hücre çözülmesi ve ölü hücrelerin çıkarılması

  1. Kriyovyalleri 1-2 dakika boyunca 37 ° C'lik bir su banyosuna yerleştirin. Kriyoviyalde küçük bir kristal kaldığında çıkarın.
  2. 1 mL önceden ısıtılmış (37 °C) tam ortam ekleyin. Bir pipetle üç kez karıştırın. Süspansiyonu, 10 mL sıcak tam ortam içeren 15 mL'lik bir konik tüpe aktarın.
  3. Tüm hücre süspansiyonunu 30 μm'lik bir süzgeçten geçirin. Süzgeci 1-2 mL ılık tam ortam ile durulayın ve akışı aynı konik tüpte toplayın.
  4. 5 dakika boyunca 300 x g'de santrifüj yapın ve süpernatanı çıkarın. PBS ile bir kez yıkayın ve hücre süspansiyonunu 1,5 mL'lik bir mikrotüpe aktarın.
  5. 5 dakika boyunca 300 x g'de santrifüj yapın ve hücre topağını bozmadan süpernatantı çıkarın.
  6. Peletlenmiş hücrelere sağlanan manyetik mikroboncuklardan 100 μL ekleyin ve geniş delikli bir pipet ucu kullanarak beş kez homojenize edin. RT'de 15 dakika boyunca inkübe edin.
  7. Bu arada, manyetik ayırma kolonunu (kapasite: 1 x 107 ila 2 x 108 hücre) 500 μL 1x bağlama tamponu ile durulayın.
  8. İnkübasyon tamamlandıktan sonra, mikroboncukları içeren hücre süspansiyonunu 500 μL 1x bağlayıcı tampon ile seyreltin.
  9. Hücre süspansiyonunu (0.6 μL) hazırlanan manyetik ayırma kolonuna uygulayın. Akış, negatif olarak seçilmiş canlı hücre fraksiyonudur ve manyetik olarak tutulan fraksiyon, pozitif olarak seçilen ölü hücrelerdir.
  10. Canlı hücre atık suyunu 15 mL'lik bir santrifüj tüpünde toplayın. Hücre süspansiyonunu içeren 1,5 mL mikrotüpü ve sütunu 2 mL 1x bağlama tamponu ile durulayın ve atık suyu aynı 15 mL tüpte toplayın.
  11. 5 dakika boyunca 300 x g'de santrifüj. Hücre topağını bozmadan süpernatantı çıkarın.
  12. PBS-BSA çözeltisinden 1 mL ekleyin ve geniş delikli pipet ucu kullanarak beş kez pipetleyerek hafifçe karıştırın. Hücre süspansiyonunu 1,5 mL'lik bir mikrotüpe aktarın.
  13. 5 dakika boyunca 300 x g'de santrifüj. Hücre topağını bozmadan süpernatantı çıkarın.
  14. Peletin yeniden askıya alınması için 1 mL PBS-BSA ekleyin ve toplam iki yıkama için yıkama adımını tekrarlayın.
  15. Hücreleri 100 μL PBS-BSA çözeltisinde yeniden askıya alın. 10 kez pipetleyerek hafifçe karıştırın.
  16. Daha önce açıklanan yöntemleri kullanarak hücrelerin konsantrasyonunu ve canlılığını belirleyin (adım 3.1 ve adım 3.2). Bir sonraki adıma geçmek için, hücre sayısının ≥100.000 hücre olduğundan emin olun. Temsili sonuçlar için Şekil 2'ye bakın.
    NOT: Kriyoprezervasyon, canlı hücrelerin ilk başlangıç materyalinin yaklaşık% 40'ının kaybına neden olur. Başlangıç hücre sayısına bağlı olarak, manyetik bir sütun üzerindeki boncuk ayrımı yüksek hücre canlılığı ile sonuçlanır, ancak toplam hücre sayısını iki kat ila beş kat arasında böler. Ölü hücreleri çıkarmak için kolon tabanlı bir manyetik kitin kullanılması, yalnızca yeterli başlangıç malzemesi mevcut olduğunda tavsiye edilir.

6. Çekirdek izolasyonu

NOT: snATAC ve snRNA-seq kombine temiz ve sağlam çekirdeklerin süspansiyonu ile gerçekleştirilir. Kullanılan hücre tipi için lizis koşullarının (lizis süresi ve NP40 konsantrasyonu) optimizasyonu önerilir. En uygun lizis zaman noktası ve deterjan konsantrasyonu, nükleer morfolojiyi bozmadan maksimum sayıda hücrenin lize edilmesine neden olanlardır. Hücre/çekirdek kaybı, sabit açılı santrifüj yerine sallanan kovalı santrifüj kullanılarak azaltılabilir. Plastiklerde çekirdek tutulmasını en aza indirmek için, düşük retansiyonlu pipet uçlarının ve santrifüj tüplerinin kullanılması önerilir. Bu, çekirdek geri kazanımını artırabilir. Pipet uçlarının ve santrifüj tüplerinin %5 BSA ile kaplanması daha ucuz ancak daha fazla zaman alan bir alternatiftir.

  1. Çalışma yerini ve malzemeleri% 70 etanol ve RNaz giderici çözelti ile temizleyin.
  2. Ön soğutma sallanan kova santrifüjleri 4 °C'ye kadar santrifüjler. Lizis tamponu, lizis seyreltme tamponu, 0.1x lizis tamponu ve yıkama tamponunu taze hazırlayın (bakınız Tablo 1). Tamponları buz üzerinde tutun.
  3. Hücre süspansiyonunu 500 x g'de 4 °C'de 5 dakika boyunca sallanan kovalı bir santrifüjde santrifüjleyin. Hücre topağının yerinden çıkmasını önlemek için tüpün dibine dokunmadan tüm süpernatantı yavaşça çıkarın.
  4. 100 μL soğutulmuş 0.1x lizis tamponu ekleyin. 10 kez pipetleyerek hafifçe karıştırın. Buz üzerinde 5 dakika kuluçkaya yatırın.
  5. 1 mL soğutulmuş yıkama tamponu ekleyin ve beş kez pipetleyerek yavaşça karıştırın. 4 °C'de 5 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj. Çekirdek topağını bozmadan süpernatantı çıkarın.
  6. Soğutulmuş yıkama tamponu ile yıkamaları toplam üç yıkama için tekrarlayın. Seyreltilmiş çekirdek tamponunu hazırlayın. Yeniden süspansiyondan sonra, çekirdek stok çözeltisini buz üzerinde tutun.

7. İzole edilen çekirdeklerin kalite ve miktar değerlendirmeleri

NOT: İlk hücre sayısına dayanarak ve hücre lizisi sırasında yaklaşık% 50 çekirdek kaybını tahmin ederek, soğuk seyreltilmiş çekirdek tamponunda uygun sayıda hücreyi yeniden askıya alın. Soğutulmuş seyreltilmiş çekirdek tamponu ile yeniden süspansiyon hacminin hesaplanması, hedeflenen çekirdek geri kazanımına ve üreticinin kullanım kılavuzu tarafından önerilen ilgili çekirdek stok konsantrasyonlarına dayanır. Ek Protokol 1'de bu hesaplamanın bir örneğine bakın.

  1. İlk hücre sayısına dayanarak ve hücre lizisi sırasında yaklaşık% 50 çekirdek kaybını tahmin ederek, soğuk seyreltilmiş çekirdek tamponunda uygun sayıda hücreyi yeniden askıya alın.
  2. Gerçek çekirdek konsantrasyonunu belirleyin. 2 μL çekirdek stok çözeltisini 8 μL seyreltilmiş çekirdek tamponu ile karıştırın ve karışımı önceden alıntılanmış 10 μL tripan mavisi veya EthD-1/calceinAM çalışma çözeltisine ekleyin. Otomatik bir hücre sayacı kullanarak çekirdekleri sayın. Hücrelerin% 5'inden azı canlı olmalıdır. Temsili sonuçlar için Şekil 3'e bakın.
  3. Transpozisyon reaksiyonu için önerilen konsantrasyonda toplam 5 μL hacim elde etmek için çekirdek stoğunun hacmini ve seyreltilmiş çekirdek tamponunun hacmini hesaplayın (üreticinin kullanım kılavuzuna bakın). Hemen kullanım kılavuzu17'ye göre transpozisyon reaksiyonuna geçin.
    NOT: Transpozisyon reaksiyonundan ATAC ve GEX kütüphanelerinin inşasına kadar tüm adımlar, snRNA-seq ve snATAC-seq kombine17 için kullanılan kitin kullanım kılavuzuna göre gerçekleştirilmiştir.

8. snRNA-seq ve snATAC-seq kütüphanelerinin kalite analizi

  1. Yeni nesil dizilemeye geçmeden önce, son snATAC-seq ve gen ekspresyonu GEX kütüphanelerinin kalite ve boyut dağılımını doğrulayın. Parça analiz sistemlerini kullanarak kütüphanelerde tanımlanan dizilerin kalitesini ve miktarını değerlendirin. Temsili kalite değerlendirme sonuçları için Şekil 4'e bakınız.
    NOT: snATAC-seq kütüphanelerinin son izi, nükleozom sargısının periyodikliğini göstermeli ve boyutlar 200 bp ile birkaç Kbp arasında değişmeli, oysa gen ekspresyon kütüphanesindeki boyutlar 300 bp ila 600 bp arasında değişmelidir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Tek hücreli yaklaşımlar için tek hücreli süspansiyonların hazırlanmasına kıyasla, tek çekirdekli süspansiyonların hazırlanması çok daha zordur ve daha yüksek derecede çözünürlük ve işleme gerektirir. Başarılı kombine snRNA-seq ve snATAC-seq için anahtar faktör, temiz ve sağlam bir çekirdek süspansiyonudur. Etkili çekirdek izolasyonu protokolü, her doku tipine ve durumuna (taze veya dondurulmuş) uyarlanmalıdır. Burada, çekirdeklerin dondurulmuş fare embriyonik kalp hücrelerinden izolasyonu için optimize edilmiş bir protok...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Gelişmekte olan kalbin hücresel bileşiminin kombine snRNA-seq ve snATAC-seq çalışmaları ile analizi, konjenital kalp hastalığının kökeni hakkında daha derin bir anlayış sağlar26. Birkaç araştırma laboratuvarı, kardiyak doku kriyoprezervasyonunun snRNA-seq27 üzerindeki etkilerini incelemiştir. İnsan hastalığının fare modellerinden taze mikro-disseke edilmiş doku kullanarak snRNA-seq ve snATAC-seq iletmek, farklı deneysel koşulları karşılaştırırken lojistik olarak zor olabili...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

Bu araştırma SS'ye ERA-CVD-2019 ve ANR-JCJC-2020 tarafından desteklenmiştir. U 1251/Marsilya Tıbbi Genetik laboratuvarından Genomik ve Biyoinformatik tesisine (GBiM) ve değerli yorumlar sağlayan isimsiz hakemlere teşekkür ederiz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
2100 Biyoanalizör CihazıAgilentHayır katalog numarası
5M Sodyum klorür (NaCl)Sigma59222C-500ML 
BSA %10 SigmaA1595-50ML
Krom Sonraki GEM Çip J Tek Hücre Kiti, 16 rxns10X Genomik1000230
Krom Sonraki GEM Tek Hücreli Çoklu ATAC + Gen Ekspresyon Reaktif Paketi, 4 rxns (Çekirdek Tamponu 20X dahil)10X Genomik1000285
Kontes hücre sayma odası slaytlarıInvitrogenC10283
Kontes III FLThermofisherKatalog numarası yok
Digitonin (%5)ThermofisherBN2006
DMSOSigmaD2650-5x5ML
DNA LoBind Tüpleri Eppendorf22431021
D-PBSThermofisher14190094Steril ve RNaz İçermeyen
Çift İndeks Kiti TT Set A 96 rxns10X Genomik1000215
Falcon 15 mL Konik Santrifüj Tüpleri Fisher Bilimsel 
Falcon 50 mL Konik Santrifüj Tüpleri Fisher Bilimsel 
HI-FBSThermofisherA3840001Isı ile etkisiz hale getirilmiş
Yüksek hassasiyetli DNA kitiAgilent5067-4626
Igepal CA-630SigmaI8896-50ML
CANLI/ÖLÜ Canlılık/Sitotoksisite KitiThermofisherL3224
MACS Ölü Hücre Temizleme kiti: Ölü Hücre Romoval Mikro Boncuklar, Bağlayıcı Tampon 20XMiltenyi Biotec130-090-101
MACS Akıllı Süzgeçler (30 & mikro; m)Miltenyi Biotec130-098-458
Magnezyum klorür (MgCl2< / sub>)SigmaM1028-100ML
Ortamı McCoy 5A & nbsp;Thermofisher16600082
MS SütunlarıMiltenyi Biotec130-042-201
NovaSeq 6000 S2IlluminaKatalog numarası yok
Penisilin Streptomisin (Kalem/Strep)Thermofisher15070063
PluriStrainer Mini 40µ mPluriSelectV-PM15-2021-12
Kaya inhibitörüEnzo Life SciencesALX-270-333-M005
Tek İndeks Kiti N Set A, 96 rxn10X Genomik1000212
Standardı 90mm Petri kabı SterilinThermofisher101R20
Steril çift damıtılmış suThermofisherR0582
Trizma Hidroklorür çözelti (HCl)SigmaT2194-100ML ve nbsp;
Tripan Mavi leke (% 0.4)InvitrogenT10282
Tripsin% 0.05 - EDTA 1XThermofisher25300054
Tween20SigmaP9416-50ML 
Geniş delikli filtreli pipet uçları 200 μ lLabcon1152-965-008-9
ZEISS SteREO Discovery.V8ZEISSKatalog numarası yok
35209610788561

Kaynaklar

  1. vander Bom, T., et al. The changing epidemiology of congenital heart disease. Nature Reviews. Cardiology. 8 (1), 50-60 (2011).
  2. Bouma, B. J., Mulder, B. J. Changing landscape of congenital heart disease. Circulation Research. 120 (6), 908-922 (2017).
  3. Postma, A. V., Bezzina, C. R., Christoffels, V. M. Genetics of congenital heart disease: The contribution of the noncoding regulatory genome. Journal of Human Genetics. 61 (1), 13-19 (2016).
  4. Buijtendijk, M. F. J., Barnett, P., vanden Hoff, M. J. B. Development of the human heart. American Journal of Medical Genetics. Part C, Seminars in Medical Genetics. 184 (1), 7-22 (2020).
  5. Sylva, M., vanden Hoff, M. J., Moorman, A. F. Development of the human heart. American Journal of Medical Genetics. Part A. 164 (6), 1347-1371 (2014).
  6. Gromova, T., Gehred, N. D., Vondriska, T. M. Single-cell transcriptomes in the heart: When every epigenome counts. Cardiovascular Research. 119 (1), 64-78 (2022).
  7. Tanay, A., Regev, A. Scaling single-cell genomics from phenomenology to mechanism. Nature. 541 (7637), 331-338 (2017).
  8. Schwartzman, O., Tanay, A. Single-cell epigenomics: Techniques and emerging applications. Nature Reviews. Genetics. 16 (12), 716-726 (2015).
  9. Macaulay, I. C., Ponting, C. P., Voet, T. Single-cell multiomics: Multiple measurements from single cells. Trends in Genetics. 33 (2), 155-168 (2017).
  10. Buenrostro, J. D., Wu, B., Chang, H. Y., Greenleaf, W. J. ATAC-seq: A method for assaying chromatin accessibility genome-wide. Current Protocols in Molecular Biology. 109, 1-9 (2015).
  11. Stefanovic, S., et al. Hox-dependent coordination of mouse cardiac progenitor cell patterning and differentiation. Elife. 9, e55124(2020).
  12. Xu, W., et al. A plate-based single-cell ATAC-seq workflow for fast and robust profiling of chromatin accessibility. Nature Protocols. 16 (8), 4084-4107 (2021).
  13. Buenrostro, J. D., et al. Single-cell chromatin accessibility reveals principles of regulatory variation. Nature. 523 (7561), 486-490 (2015).
  14. Denisenko, E., et al. Systematic assessment of tissue dissociation and storage biases in single-cell and single-nucleus RNA-seq workflows. Genome Biology. 21 (1), 130(2020).
  15. Safabakhsh, S., et al. Isolating nuclei from frozen human heart tissue for single-nucleus RNA sequencing. Current Protocols. 2 (7), e480(2022).
  16. Pimpalwar, N., et al. Methods for isolation and transcriptional profiling of individual cells from the human heart. Heliyon. 6 (12), 05810(2020).
  17. 10x Genomics. Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Kits User Guide. 10x Genomics. , CG000338_ChromiumNextGEM_Multiome_ATAC_GEX_User_Guide_RevF.pdf (2022).
  18. Jia, G., et al. Single cell RNA-seq and ATAC-seq analysis of cardiac progenitor cell transition states and lineage settlement. Nature Communications. 9 (1), 4877(2018).
  19. Wang, L., et al. Single-cell dual-omics reveals the transcriptomic and epigenomic diversity of cardiac non-myocytes. Cardiovascular Research. 118 (6), 1548-1563 (2022).
  20. Wang, Z., et al. Cell-type-specific gene regulatory networks underlying murine neonatal heart regeneration at single-cell resolution. Cell Reports. 35 (8), 109211(2021).
  21. Ameen, M., et al. Integrative single-cell analysis of cardiogenesis identifies developmental trajectories and non-coding mutations in congenital heart disease. Cell. 185 (26), 4937-4953 (2022).
  22. Gao, R., et al. Pioneering function of Isl1 in the epigenetic control of cardiomyocyte cell fate. Cell Research. 29 (6), 486-501 (2019).
  23. Manivannan, S., et al. Single-cell transcriptomic profiling unveils dysregulation of cardiac progenitor cells and cardiomyocytes in a mouse model of maternal hyperglycemia. Communications Biology. 5 (1), 820(2022).
  24. Cao, Y., et al. Integrated analysis of multimodal single-cell data with structural similarity. Nucleic Acids Research. 50 (21), e121(2022).
  25. What is CellRanger. 10x Genomics. , Available from: https://support.10xgenomics.com/single-cell-gene-expression/software/pipelines/latest/what-is-cell-ranger (2023).
  26. Hill, M. C. Integrated multi-omic characterization of congenital heart disease. Nature. 608 (7921), 181-191 (2022).
  27. Chen, Z., Wei, L., Duru, F., Chen, L. Single-cell RNA sequencing: In-depth decoding of heart biology and cardiovascular diseases. Current Genomics. 21 (8), 585-601 (2020).
  28. Machado, L., Relaix, F., Mourikis, P. Stress relief: Emerging methods to mitigate dissociation-induced artefacts. Trends in Cell Biology. 31 (11), 888-897 (2021).
  29. Tabula Muris, C., et al. Single-cell transcriptomics of 20 mouse organs creates a Tabula Muris. Nature. 562 (7727), 367-372 (2018).
  30. Machado, L., et al. Tissue damage induces a conserved stress response that initiates quiescent muscle stem cell activation. Cell Stem Cell. 28 (6), 1125-1135 (2021).
  31. Haghverdi, L., Lun, A. T. L., Morgan, M. D., Marioni, J. C. Batch effects in single-cell RNA-sequencing data are corrected by matching mutual nearest neighbors. Nature Biotechnology. 36 (5), 421-427 (2018).
  32. Yang, Y., et al. SMNN: Batch effect correction for single-cell RNA-seq data via supervised mutual nearest neighbor detection. Briefings in Bioinformatics. 22 (3), 097(2021).
  33. Stefanovic, S., Christoffels, V. M. GATA-dependent transcriptional and epigenetic control of cardiac lineage specification and differentiation. Cellular and Molecular Life Sciences. 72 (20), 3871-3881 (2015).
  34. Gunthel, M., Barnett, P., Christoffels, V. M. Development, proliferation, and growth of the mammalian heart. Molecular Therapy. 26 (7), 1599-1609 (2018).
  35. Stefanovic, S., Etchevers, H. C., Zaffran, S. Outflow tract formation-embryonic origins of conotruncal congenital heart disease. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 8 (4), 42(2021).
  36. Hao, Y., et al. Integrated analysis of multimodal single-cell data. Cell. 184 (13), 3573-3587 (2021).
  37. Bai, H., Lin, M., Meng, Y., Bai, H., Cai, S. An improved CUT&RUN method for regulation network reconstruction of low abundance transcription factor. Cellular Signalling. 96, 110361(2022).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Tek ekirdek RNA SeqTek ekirdek ATAC SeqDual Omik ProfillemeDondurulmu Doku ProtokolH cre Canl l De erlendirmesiManyetik Ay rmaKromatin Eri ilebilirli iKalp Geli imi
Epigenom ve Tek Hücre Çözünürlüğünde Gen Ekspresyon Profillemesi için Fare Kardiyak Progenitör Hücrelerinden Çekirdek İzolasyonu
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.