Yöntem makalesi

Hücre sferoidlerinin seri üretimi için üç boyutlu akustik montaj cihazı

DOI:

10.3791/66078

⸱

13 Ekim 2023

 ,  ,  , 
1School of Automation, Hangzhou Dianzi University, 2Key Laboratory of Medical Information and 3D Bioprinting of Zhejiang Province, Hangzhou Dianzi University

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hücre sferoidleri, biyolojik uygulamalar alanında potansiyel bir model olarak kabul edilmiştir. Bu makale, tek tip hücre sferoidlerinin sağlam ve hızlı üretimi için etkili bir yöntem sağlayan bir 3D akustik montaj cihazı kullanarak hücre sferoidlerini ölçeklendirilebilir şekilde üretmeye yönelik protokolleri açıklamaktadır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hücre küreleri, birçok biyolojik alanda geniş uygulama alanları kazanmış umut verici üç boyutlu (3D) modellerdir. Bu protokol, manevra kabiliyetine sahip prosedürler aracılığıyla bir 3D akustik montaj cihazı kullanarak yüksek kaliteli ve yüksek verimli hücre sferoidleri üretmek için bir yöntem sunar. Akustik montaj cihazı, her biri bir kare polimetil metakrilat (PMMA) odasının X/Y/Z düzleminde düzenlenmiş üç kurşun zirkonat titanat (PZT) dönüştürücüsünden oluşur. Bu yapılandırma, üç sinyal uygulandığında havaya kaldırılmış akustik düğümlerin (LAN'lar) 3B nokta dizisi modelinin oluşturulmasını sağlar. Sonuç olarak, jelatin metakriloyl (GelMA) çözeltisindeki hücreler, üç boyutta tek tip hücre agregaları oluşturarak LAN'lara sürülebilir. GelMA çözeltisi daha sonra UV ışınla kürlenir ve hücre agregalarının büyümesini destekleyen bir iskele görevi görmek üzere çapraz bağlanır. Son olarak, olgunlaşmış sferoid kütleleri elde edilir ve daha sonra GelMA iskelelerinin hafif koşullar altında çözülmesiyle elde edilir. Önerilen yeni 3D akustik hücre montaj cihazı, biyolojik alanda büyük potansiyel teknoloji sunan hücre sferoidlerinin ve hatta organoidlerin ölçeklendirilmesini sağlayacaktır.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Konvansiyonel 2D kültür modellerine kıyasla daha fazla in vivo benzeri yapısal ve morfolojik özellikler sağlayan 3D in vitro kültür modelleri, doku mühendisliği, hastalık modellemesi ve ilaç taraması gibi çeşitli biyomedikal uygulamalarda umut verici sistemler olarak kabul edilmiştir 1,2,3. Bir tür 3D kültür modeli olarak, hücre sferoidleri tipik olarak hücre agregasyonuna atıfta bulunur ve gelişmiş hücre-hücre ve hücre-matris etkileşimleri ile karakterize edilen 3D küresel yapılar oluşturur 4,5,6. Bu nedenle, hücre sferoidlerinin üretilmesi, çeşitli biyolojik çalışmalara olanak sağlamak için güçlü bir araç haline gelmiştir.

Sferoidleri elde etmek için asılı damla7, yapışkan olmayan plakalar8 veya mikrokuyu cihazları9 dahil olmak üzere çeşitli teknikler geliştirilmiştir. Prensip olarak, bu yöntemler genellikle hücreler ve substrat arasındaki etkileşimleri en aza indirirken yerçekimi kuvveti gibi fiziksel kuvvetleri kullanarak hücre montajını kolaylaştırır. Bununla birlikte, genellikle emek yoğun süreçleri içerirler, düşük üretkenliğe sahiptirler veküresel boyut 10,11'i kontrol etmek için zorluklar oluştururlar. Daha da önemlisi, istenen büyüklükte ve homojenlikte yeterli miktarda sferoidlerin üretimi, spesifik biyolojik uygulamaları karşılamak için son derece önemlidir. Yukarıda belirtilen yöntemlerin aksine, akustik dalgalar, bir tür dış kuvvetle çalışan teknikolarak 12,13,14, dış kuvvetler yoluyla hücre agregasyonunu artırma ilkesine dayalı olarak, hücre sferoidlerinin yüksek kalite ve verimle seri üretimi için potansiyel göstermiştir 15,16,17,18. Elektromanyetik veya manyetik kuvvetlerin aksine, akustik tabanlı hücre manipülasyon teknikleri non-invaziv ve etiketsizdir, mükemmel biyouyumluluk ile sferoid oluşumunu sağlar19,20.

Yaygın olarak, duran yüzey akustik dalgaları (SAW'lar) ve toplu akustik dalgalar (BAW'lar) tabanlı cihazlar, karşılık gelen duran akustik alanlar 21,22,23 tarafından üretilen akustik düğümleri (AN'ler) kullanarak sferoidler oluşturmak için geliştirilmiştir. Özellikle, uygun üretim, kolay kullanım ve mükemmel ölçeklenebilirlik özelliklerine sahip BAW'lara dayalı akustik montaj cihazları, hücre sferoidlerininimalatında dikkat çekmiştir 24,25. Kısa bir süre önce, yüksek verim26 ile sferoidler üretme yeteneğine sahip, BAWS tabanlı basit bir akustik montaj cihazı geliştirdik. Önerilen cihaz, sırasıyla X/Y/Z düzleminde düzenlenmiş üç kurşun zirkonat titanat (PZT) dönüştürücüye sahip bir kare polimetil metakrilat (PMMA) odasından oluşur. Bu düzenleme, hücre montajını yürütmek için havaya kaldırılmış akustik düğümlerden (LAN'lar) oluşan bir 3B nokta dizisi modelinin oluşturulmasını sağlar. Yalnızca 1D veya 2D ANs 27,28,29 dizisi oluşturabilen daha önce bildirilen BAW'lar veya SAW'lar tabanlı cihazlarla karşılaştırıldığında, mevcut cihaz, jelatin metakriloyl (GelMA) çözeltisi içinde hızlı hücre agregası oluşumu için bir 3D nokta LAN dizisi sağlar. Daha sonra, hücre agregaları, üç günlük ekimden sonra fotokürlenmiş GelMA iskeleleri içinde yüksek canlılığa sahip sferoidlere olgunlaştı. Son olarak, aşağı akış uygulamaları için GelMA iskelelerinden tek tip boyuta sahip çok sayıda sferoid kolayca elde edildi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. 3D akustik montaj cihazının imalatı

  1. Lazer kesim30 ile 1 mm kalınlığında dört adet PMMA tabakası hazırlayarak başlayın ve ardından iç genişliği 21 mm ve yüksekliği 10 mm olan kare bir oda oluşturmak için bunları birbirine yapıştırmaya devam edin.
  2. Ardından, biyomürekkep için bir tutucu görevi görmesi için haznenin altına 1 mm kalınlığında başka bir PMMA tabakası takın.
  3. Üç kurşun zirkonat titanat (PZT) dönüştürücüsünü (her biri 20 mm uzunluğunda, 10 mm genişliğinde, 0.7 mm kalınlığında ve birincil rezonans frekansı 3 MHz, Malzeme Tablosuna bakınız) sırasıyla odanın üç ortogonal duvarının dışına dikkatlice yapıştırın. Alt PZT dönüştürücünün haznenin altında ortalandığından emin olun.
  4. Her PZT dönüştürücünün iki iletken alanına lehim telleri.
  5. Son olarak, alt PZT'nin diğer tezgahlarla temas etmesini önlemek için cihazı içi boş bir tabana sabitleyin.

2. Akustik montaj sisteminin kurulması

  1. Akustik cihazı bir mikroskop tablasına monte ederek başlayın, odanın iç kısmının üstten görünüşlü gözlemine izin verin.
  2. Cihazın PZT transdüserlerinden arındırılmış yan tarafına, odanın iç kısmının yandan görünümünün gözlemlenmesini sağlayan bir dijital mikroskop yerleştirin.
  3. Üç PZT dönüştürücüsünden gelen kabloları seri olarak üç güç amplifikatörüne ve fonksiyon üreteçlerinin üç çıkış kanalına bağımsız olarak bağlayın (Malzeme Tablosuna bakın).
  4. Sinüzoidal dalga formu, frekans ve genlik gibi parametreleri belirterek her PZT dönüştürücü için fonksiyon üreteçlerindeki ayarları programlayın.
  5. Sterilizasyonu sağlamak için, akustik cihazın haznesini 5 dakika boyunca% 75 alkolle doldurun, ardından steril PBS solüsyonu ile iyice temizleyin. Daha sonra, odayı en az 1 saat boyunca temiz bir tezgahta UV ışığı ile ışınlayın.

3. Hücre kültürü ve hasat prosedürü

  1. Bir insan hepatoselüler karsinom hücre hattı olan C3A hücrelerini, %10 fetal sığır serumu ve% 1 penisilin-streptomisin ile desteklenmiş Dulbecco'nun modifiye Eagle ortamını (DMEM) kullanarak bir T25 hücre kültürü şişesinde kültürleyerek başlayın (bkz.
  2. C3A hücreleri yaklaşık% 80 birleşmeye ulaştığında, hücre geçişini aşağıdaki gibi gerçekleştirin: ilk olarak, kültür şişesinin tabanını PBS ile iki kez yıkayın. Daha sonra, hücre kültürü şişesine 2 mL %0.05 tripsin-EDTA ekleyin ve hücre ayrılmasını kolaylaştırmak için 37 °C'de inkübe edin. 2 mL tam kültür ortamı ekleyerek tripsinizasyon işlemini durdurun.
  3. Hücre çözeltisini 15 mL'lik bir tüpe aktarın ve bir hücre peleti elde etmek için oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 × g'da santrifüjleyin.

4. Bioink'in hazırlanması

  1. 0.3 g GelMA ve 0.025 g LAP'ı (Malzeme Tablosuna bakınız) 5 mL fosfat tampon çözeltisi (PBS) içinde çözerek% 0.5 (a / h) lityum fenil-2,4,6-trimetilbenzoilfosfinat (LAP) içeren% 6 (a / h) GelMA çözeltisi hazırlayın. Karışımı 47 °C'lik bir su banyosunda 1 saat bekletin.
  2. Hücrelerle karıştırmadan önce, sterilizasyon için GelMA çözeltisini 0.22 μm'lik bir filtreden (Malzeme Tablosuna bakınız) geçirin.
  3. Yukarıda bahsedilen hücre peletini (adım 3.3) hücre kültürü ortamında yeniden süspanse edin. Az miktarda hücreyi% 0.4 tripan mavisi çözeltisi ile boyayın ve ardından hücre sayımı için temiz bir hemositometre kullanın.
  4. 2 × 106 hücre/mL hücre yoğunluğuna sahip biyomürekkebi hazırlamak için yukarıda elde edilen hücre yoğunluğuna göre hesaplanan uygun miktarda C3A hücresini sterilize edilmiş GelMA solüsyonu ile karıştırın.
  5. Birleştirilmiş hücre sferoidlerinin görselleştirilmesi için, C3A hücrelerini 2 μM hücre izleyici (DiO boyası, Malzeme Tablosuna bakınız) ile 37 °C'de 20 dakika inkübe ederek önceden boyayın. Daha sonra, etiketli hücreleri kullanmadan önce üç kez taze hücre kültürü ortamıyla yıkayın.

5. Akustik cihazı kullanarak hücre sferoidlerinin montajı

  1. Sterilize edilmiş hazneye 1 mL'den fazla biyomürekkebi pipetleyin. Sıvı yüzeyi ile hazne tabanı arasındaki yüz yüze mesafenin, akustik dalga boyunun yarısının tam sayı katı olduğundan emin olun.
    NOT: Eklenen biyomürekkebin hacmini ayarlayarak bu mesafe kontrol edilebilir. Akustik dalga boyu (λ), λ = c/f formülü kullanılarak tahmin edilebilir, burada c ortamdaki ses hızını temsil eder ve f, PZT dönüştürücünün frekansıdır.
  2. Fonksiyon üretecini ve gücü açın amplifier her bir PZT dönüştürücünün çalıştırılmasını başlatmak için.
    NOT: Optimum paralel hat hücresel modelini elde etmek için önce her bir PZT dönüştürücüsünün ayrı ayrı çalıştırılması önerilir. Bu, her bir PZT dönüştürücü için birincil rezonans frekansına yakın 0.001 MHz'lik bir adım boyutuna sahip bir frekans taraması gerçekleştirilerek elde edilebilir. Daha sonra, beklenen 3D noktalı hücresel modeli elde etmek için bu optimum sinyalleri aynı anda üç PZT dönüştürücüsüne de uygulayın. Her bir giriş sinyalini uygulamadan önce, hafifçe çalkalayarak hücrelerin biyomürekkep içinde eşit şekilde dağıldığından emin olun.
  3. Akustik olarak bir araya getirilen hücre agregalarını kapsülleyen bir 3D hidrojel iskele oluşturmak için mavi ışık (405 nm, 60 mW/cm2, 30 s) kullanarak biyomürekkebi çapraz bağlayın. Ardından, fonksiyon üretecini ve güç amplifikatörünü kapatın.
  4. 3D hidrojel iskeleyi hazneden dikkatlice bir Petri kabına aktarın ve temiz bir tıraş bıçağı kullanarak küçük parçalara (örn. 2 mm × 2 mm × 2 mm) kesin.
  5. Yetiştirme için hücre kültürü ortamı ekleyin.
    NOT: Kültür ortamını her gün değiştirmeyi unutmayın.

6. Hücre sferoidlerinin alınması

  1. Ters çevrilmiş bir mikroskop kullanarak iskelelerin farklı katmanlarında küresel oluşumu gözlemleyerek başlayın.
  2. 3 günlük kültürden sonra, kültür ortamını çıkarın ve hidrojel iskeleleri PBS ile iki kez iyice yıkayın.
  3. İskeleleri, bir hücre inkübatöründe 30 dakika boyunca hücre kültürü ortamı ile 1: 200 seyreltmede 2 mL'den fazla GelMA lizis tamponu ile inkübe edin. Bu adım, hidrojel iskelelerini çözmeyi amaçlar.
  4. Çözeltiyi önceki adımdan bir tüpe aktarın ve ardından hücre sferoid peletini elde etmek için oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 × g'da santrifüjleyin.
  5. Süpernatanı atın ve sonraki uygulamalar için peleti taze kültür ortamında yeniden süspanse edin.

7. Küresel canlılık analizi

  1. Hücre sferoidlerinin hidrojel iskeleleri içinde veya alınan sferoidlerde canlılığını canlı/ölü boyama kiti kullanarak değerlendirin (bkz.
  2. Numuneleri farklı kültür zaman noktalarında 1 μL Calcein-ve 2 μL Propidyum İyodür (PI) içeren 1 mL PBS çözeltisi ile 37 °C'de 15 dakika inkübe edin.
  3. Hidrojel iskelelerdeki numuneler için, bunları doğrudan PBS ile iki kez yıkayın. Alınan sferoidler için, bir küresel pelet elde etmek için oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 × g'da santrifüjleyin ve gözlemden önce iki kez yıkayın.
  4. Bir floresan mikroskobu kullanarak numuneleri gözlemleyin ve floresan görüntülerini yakalayın.
  5. Küresel canlılığı belirlemek için ImageJ kullanarak Calcein-ile boyanan alanın hem Calcein-hem de PI ile boyanan toplam alana oranını hesaplayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, hücre kürelerinin seri üretimi için bir 3D akustik montaj cihazı tasarladı. Akustik cihaz, odanın dış yüzeyinde X-düzlemine ve Y-düzlemine bağlı iki PZT dönüştürücü ve odanın tabanında bir PZT dönüştürücü bulunan kare bir odadan oluşuyordu (Şekil 1A,B). PZT transdüserlerini harekete geçirmek için üç bağımsız sinüzoidal sinyal üretmek için iki fonksiyon üretecinden üç çıkış kanalı üç güç amplifikatörüne bağlandı (Şekil 1C).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

3D akustik montaj cihazı gibi teknolojiler kullanılarak yüksek verime sahip hücre sferoidlerinin verimli ve istikrarlı üretimi, biyomedikal mühendisliğini ve ilaç taramasınıilerletmek için büyük umut vaat ediyor 1,2,3. Bu yaklaşım, basit prosedürlerle hücre sferoidlerinin seri üretimini basitleştirir.

Ancak, bu akustik cihazı kullanırken göz önünde bulundurulması gereken kritik faktörler vardır. Duran...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Çin Ulusal Anahtar Araştırma ve Geliştirme Programı (2022YFA1104600) ve Çin Zhejiang Eyaleti Doğa Bilimleri Vakfı (LQ23H160011) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
0.22-μ m filtreMerckSLGSM33SSGelMA solüsyonu sterilizasyonu için kullanılır
35 mm hücre kültürü kabıCorning430165Hücreleri kültürlemek için kullanılır
Konfokal mikroskopNikonA1RHD25Floresan hücre gözlemi
DiO boyasıBeyotimeC1038Hücreleri boyamak için kullanılan boya
DMEMGibco12430054Hücre kültürü ortamı
FBSGibco10099141CHücre kültürü ortamı takviyesi
Fonksiyon üreteciRigolDG5352RF sinyal üretimi için
GelMARegenovoyokBiyomürekkep hazırlamak için kullanılır
GelMA lizis tamponuEFLEFL-GM-LS-001GelMA iskelelerini çözmek için kullanılır
Ters mikroskopNikonTi-UHücre gözlemi
LAPSigma-Aldrich900889Foto başlatıcı olarak kullanılır
Live-Dead kitiBeyotimeC2015MHücre vability analizi
PBSGibco10010002Tampon olarak kullanılır
Penisilin-streptomisinGibco15070063Hücre kültürü kontaminasyonunu önleyin
Güç amplifikatörüMini devreLCY-22+Arttırın RF sinyalinin voltaj genliği
PZT dönüştürücülerYantai Xingzhiwen Trading Co.,Ltd.PZT-41Akustik montaj cihazı için fonksiyonel birimler
T25 hücre kültürü şişesiCorning430639Hücreleri kültürlemek için kullanılır
Tripan mavisi Gibco15250061Hücre sayımı
Tripsin-EDTA Gibco25200056Hücre ayrışma enzimi

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Eiraku, M., et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 472 (7341), 51-56 (2011).
  2. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 1247125(2014).
  3. Habanjar, O., Diab-Assaf, M., Caldefie-Chezet, F., Delort, L. 3D cell culture systems: tumor application, advantages, and disadvantages. International Journal of Molecular Sciences. 22 (22), 12200(2021).
  4. Decarli, M. C., et al. Cell spheroids as a versatile research platform: formation mechanisms, high throughput production, characterization and applications. Biofabrication. 13 (3), 032002(2021).
  5. Lee, Y. B., et al. Engineering spheroids potentiating cell-cell and cell-ECM interactions by self-assembly of stem cell microlayer. Biomaterials. 165, 105-120 (2018).
  6. Zhuang, P., Chiang, Y. H., Fernanda, M. S., He, M. Using spheroids as building blocks towards 3d bioprinting of tumor microenvironment. International Journal of Bioprinting. 7 (4), 444(2021).
  7. Foty, R. A simple hanging drop cell culture protocol for generation of 3D spheroids. Journal of Visualized Experiments. 51, e2720(2011).
  8. Laschke, M. W., Menger, M. D. Life is 3D: boosting spheroid function for tissue engineering. Trends in Biotechnology. 35 (2), 133-144 (2017).
  9. Fu, W., et al. Combinatorial drug screening based on massive 3d tumor cultures using micropatterned array chips. Analytical Chemistry. 95 (4), 2504-2512 (2023).
  10. Kang, S. M., Kim, D., Lee, J. H., Takayama, S., Park, J. Y. Engineered microsystems for spheroid and organoid studies. Advanced Healthcare Materials. 10 (2), 2001284(2021).
  11. Kim, S. J., Kim, E. M., Yamamoto, M., Park, H., Shin, H. Engineering multi-cellular spheroids for tissue engineering and regenerative medicine. Advanced Healthcare Materials. 9 (23), 2000608(2020).
  12. Yang, Y., et al. 3D acoustic manipulation of living cells and organisms based On 2D array. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 69 (7), 2342-2352 (2022).
  13. Armstrong, J. P. K., et al. Engineering anisotropic muscle tissue using acoustic cell patterning. Advanced Materials. 30 (43), 1802649(2018).
  14. Drinkwater, B. W. A perspective on acoustical tweezers-devices, forces, and biomedical applications. Applied Physics Letters. 117 (18), 180501(2020).
  15. Bouyer, C., et al. A Bio-Acoustic Levitational (BAL) assembly method for engineering of multilayered, 3d brain-like constructs, using human embryonic stem cell derived neuro-progenitors. Advanced Materials. 28 (1), 161-167 (2016).
  16. Chansoria, P., Narayanan, L. K., Schuchard, K., Shirwaiker, R. Ultrasound-assisted biofabrication and bioprinting of preferentially aligned three-dimensional cellular constructs. Biofabrication. 11 (3), 035015(2019).
  17. Wu, Y., et al. Acoustic assembly of cell spheroids in disposable capillaries. Nanotechnology. 29 (50), 504006(2018).
  18. Hu, X., et al. On-chip hydrogel arrays individually encapsulating acoustic formed multicellular aggregates for high throughput drug testing. Lab on a Chip. 20 (12), 2228-2236 (2020).
  19. Wu, Z., et al. The acoustofluidic focusing and separation of rare tumor cells using transparent lithium niobate transducers. Lab on a Chip. 19 (23), 3922-3930 (2019).
  20. Chen, B., et al. High-throughput acoustofluidic fabrication of tumor spheroids. Lab on a Chip. 19 (10), 1755-1763 (2019).
  21. Sriphutkiat, Y., Kasetsirikul, S., Zhou, Y. Formation of cell spheroids using Standing Surface Acoustic Wave (SSAW). International Journal of Bioprinting. 4 (1), 130(2018).
  22. Guex, A. G., Di Marzio, N., Eglin, D., Alini, M., Serra, T. The waves that make the pattern: a review on acoustic manipulation in biomedical research. Materials Today Bio. 10, 100110(2021).
  23. Harley, W. S., et al. Advances in biofabrication techniques towards functional bioprinted heterogeneous engineered tissues: A comprehensive review. Bioprinting. 23, 00147(2021).
  24. Yang, Y., Dejous, C., Hallil, H. Trends and applications of surface and bulk acoustic wave devices: a review. Micromachines (Basel). 14 (1), 43(2022).
  25. Ma, Z., et al. Acoustic holographic cell patterning in a biocompatible hydrogel). Advanced Materials. 32 (4), 1904181(2020).
  26. Miao, T. K., et al. High-throughput fabrication of cell spheroids with 3D acoustic assembly devices. International Journal of Bioprinting. 9 (4), 733(2023).
  27. Jeger-Madiot, N., et al. Self-organization and culture of Mesenchymal Stem Cell spheroids in acoustic levitation. Scientific Reports. 11 (1), 8355(2021).
  28. Cai, H., et al. Acoustofluidic assembly of 3D neurospheroids to model Alzheimer's disease. Analyst. 145 (19), 6243-6253 (2020).
  29. Mei, J., Zhang, N., Friend, J. Fabrication of surface acoustic wave devices on lithium niobate. Jove-Journal of Visualized Experiments. (160), e61013(2020).
  30. Niculescu, A. G., Chircov, C., Bîrcă, A. C., Grumezescu, A. M. Fabrication and applications of microfluidic devices: a review. International Journal of Molecular Sciences. 22 (4), 2011(2011).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

3B H cre K lt rSferoid retimiGelMA skelePZT Transd serlerBiyo m rekkep Haz rlamaFloresan MikroskopiH cre AgregatlarY ksek Verimli Sferoidler

İlgili makaleler