Method Article

İzole Edilmiş Bağırsak Tüplerinin Fonksiyonel Aktivitelerini Gerçek Zamanlı Olarak Tespit Etmek için İn Vitro Doku Perfüzyon Sistemi Kullanma

DOI:

10.3791/66243

⸱

July 26th, 2024

 ,  ,  ,  , 
1Innovative Institute of Chinese Medicine and Pharmacy, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 2School of Basic Medical College, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 3School of Medical and Life Sciences, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 4Chengdu Integrated TCM and Western Medicine Hospital

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Sıçan bağırsak tüplerini izole etmek ve ilaçların gerginlik, frekans ve amplitüd üzerindeki etkisini in vitro olarak değerlendirmek için bir yöntem sunuyoruz. Bu yöntem, bağırsak tüplerini araştıran araştırmacılar için değerli bir yaklaşım sunmaktadır.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Görülme sıklığı yüksek olan gastrointestinal hastalıklar, insanlar için önemli zorluklar oluşturmaktadır. İnce bağırsak, gıda ve ilaç sindirimi ve emiliminin ayrılmaz bir parçasıdır ve bu hastalıkların tedavisinde çok önemli bir rol oynar. Gastrointestinal dinamikleri incelemek için yaygın ve temel bir in vitro yöntem olan bağırsak tüpü hareket deneyi kullanılır. Bu, izole edilmiş bağırsak tüpünün hazırlanmasının yanı sıra hazırlanan bağırsak tüpünün banyoda askıya alınmasını ve bir sinyal dedektörüne bağlanmasını içerir. Bunu, bağırsak motor fonksiyonunu değerlendirmek için kullanılabilecek gerginlik gibi bir dizi parametrenin kaydedilmesi ve analizinin yanı sıra bağırsak tüpünü in vitro olarak aktif tutmaya yönelik hususlar takip eder. Örneklemeden veri toplamaya kadar standartlaştırılmış program, deneysel verilerin tekrarlanabilirliğini büyük ölçüde artırır ve fizyolojik, patolojik ve ilaç müdahalesinden sonra bağırsak gerginliğinin kaydının gerçekliğini sağlar. Burada, deneysel çalışmadaki temel sorunları ve gastrointestinal motiliteyi düzenleyen ilaçları incelemek için değerli bir referans deneysel protokol sunuyoruz.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yaygın bir durum olan mide-bağırsak hastalıkları, insan hayatını ve sağlığını ciddi şekilde etkilemektedir1. Gastrointestinal motilite bozukluğu, fonksiyonel gastrointestinal hastalıkların önemli bir parçasıdır ve öncelikle zayıflatıcı semptomlar, gecikmiş mide boşalması ve ciddi mide sorunları ile kendini gösterir2. Gastrointestinal koordinasyonu bozabilir, mide boşalmasını engelleyebilir, bağırsak gıda intoleransını etkileyebilir ve hatta ince veya kalın bağırsakta fonksiyonel tıkanıklığa neden olabilir3. Gastrointestinal cerrahi geçiren hastalar için bu bozukluk doğrudan bağırsak yetmezliğine yol açabilir. Ayrıca, bağırsak bozukluğu sadece gastrointestinal hastalıklarla değil, aynı zamanda hepatit ve merkezi sinir sistemi hastalıkları gibi diğer çeşitli hastalıkların patojenik faktörleriyle de ilgilidir. Bağırsak mikrobiyal toplulukları, daha sonra mikrobiyal ekosistem içindeki kolonizasyonu etkileyen motilite de dahil olmak üzere bağırsak fizyolojisinde çok önemli bir düzenleyici rol oynar4. Hepatit B virüsü enfeksiyonu kronik hepatit B'ye ilerledikçe, bağırsak florasında değişen derecelerde değişiklikler olur. Bağırsak florasının modüle edilmesi, hepatit B virüsü tedavisinde faydalar göstermiştir5. Ek olarak, merkezi sinir sistemi bağırsağı etkileyebilir ve mikrobiyal bileşimini değiştirebilir. Mikroflora dizileme teknolojisindeki son gelişmeler, merkezi sinir sistemi hastalıklarının ortaya çıkması ve ilerlemesi ile yakından ilişkili olan bağırsak mikroflorası ile merkezi sinir sistemi fonksiyonu arasındaki çift yönlü etkileşimleri ortaya çıkarmıştır 6,7.

Toplumun yaşlanmasıyla birlikte, enterik sinir sistemindeki nöronal fonksiyonun azalması veya kaybı ve bağırsağın içsel innervasyonu ile bağlantılı olarak gastrointestinal motilite bozukluğu insidansı artmaktadır8. Gastrointestinal hastalıklar hakkındaki anlayışımız genişledikçe, potansiyel olarak yeni ilaç gelişmelerine yol açan çok sayıda yeni fikir ve yaklaşım ortaya çıkmaktadır. Bununla birlikte, bu fikirlerin çoğu hala varsayımsaldır veya 9,10'un gerçekleşmesi için olumlu klinik araştırma sonuçlarını beklemektedir. Gastrointestinal hastalıkların üstesinden gelmede etkili araştırma yöntemleri çok önemlidir. Son yıllarda, gastrointestinal ilaçlar ve motilite regülasyonu üzerine kapsamlı araştırmalar yapılmıştır. Gastrointestinal ilaçlar ve gastrointestinal dinamikler birbirinden ayrılamaz ve diğer birçok sistemik ilacın gastrointestinal dinamikler üzerinde farklı etkileri vardır. Örneğin, steroid olmayan antienflamatuar ilaçlar (NSAID'ler) ağrı ve iltihaplanma ve yavaş gastrointestinal hareket için kullanılır ve peptik ülser riskini artırır11. Öte yandan, bazı antidepresanlar gastrointestinal motiliteyi etkileyebilir12. Şu anda, gastrointestinal ilaçların ve diğer sistemik ilaçların gastrointestinal motilite üzerindeki etkilerini inceleyen ana in vitro farmakolojik deney, in vitro bağırsak hareketi testidir13. Fizyolojik koşulları simüle ederek, ilaçların bağırsak düz kas kasılması ve gevşemesi üzerindeki doğrudan etkisini gözlemler ve gastrointestinal etkilerini değerlendirirler. Bununla birlikte, gastrointestinal motilite bozukluklarının kesin nedeni belirsizliğini korumaktadır, muhtemelen genetik, çevresel, diyet ve nöroendokrin faktörlerin karmaşık bir etkileşimidir. Sonuç olarak, gastrointestinal motilite bozukluklarının tedavisi önemli zorluklar oluşturmaya devam etmektedir.

Sindirim, emilim ve ilaç metabolizması için çok önemli bir bölge olan ince bağırsak, gastrointestinal fonksiyonda önem taşır. Sonuç olarak, izole bağırsak tüpü hareket testi, gastrointestinal hastalıkları incelemek için önemli bir araçtır. Bu, hayvanın izole edilmiş bağırsak tüpünün bir banyoya hazırlanmasını ve yerleştirilmesini, bir enerji eşanjörüne bağlanmasını, mekanik hareketleri amplifikasyon için elektrik sinyallerine dönüştürmek için bir dönüştürücü kullanılmasını ve fizyolojik bir kayıt cihazı ile kaydedilmesini içerir. Bağırsak tüpünün motor fonksiyonunu değerlendirmek için frekans, ortalama titreşim genliği, gerginlik ve eğrinin altındaki alan gibi çeşitli parametreler ölçülebilir. Bu yöntem, basitlik, ekonomik fizibilite, deney koşullarının kolay kontrolü, minimum etki faktörleri, yüksek tekrarlanabilirlik, doğru ve güvenilir sonuçlar gibi avantajlar sunar. Ayrıca, uyuşturucu etki mekanizmasının araştırılması için özellikle yararlıdır. Bununla birlikte, izole bağırsak tüpü deneyinin çalışmasında dikkate değer zorluklar vardır, örneğin, bağırsak aktivitesinin uzun süre sürdürülmesi zordur. Bu sorunları ele almak ve in vitro deneylerdeki deneyimlerden yararlanmak için, bu makale deneysel operasyondaki temel sorunlara ayrıntılı bir giriş sağlayacak ve gastrointestinal motiliteyi düzenleyen ilaçları incelemek için değerli bir referans deneysel protokol sunacaktır.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol daha önce yayınlanmış literatürdentüretilmiştir 14,15,16,17. Bu çalışma için erkek Sprague Dawley (SD) sıçanları (260-300 g, 8-10 haftalık) kullanıldı. Hayvan protokolü, Chengdu Geleneksel Çin Tıbbı Üniversitesi Yönetim Komitesi tarafından gözden geçirildi ve onaylandı (Kayıt No. 2023017). Deneyden önce, sıçanlara 24 saat oruç tutmaları talimatı verildi. Deney sırasında, fareler bir hayvan odasında tutuldu ve yiyecek ve suya serbestçe erişebildiler.

1. Çözelti hazırlama

  1. 118 mM NaCl, 4.7 mM KCl, 2.5 mM CaCl2, 1.2 mM KH2PO4, 1.2 mM MgCl2∙6H2O, 25 mM NaHCO3, 11 mM D-glikoz ve 5 mM HEPES içeren fizyolojik tuz çözeltisi (PSS) hazırlayın (Malzeme Tablosuna bakınız).
  2. Çözeltileri doyurun ve %95O2 ve %5 CO2 karışımlı bir gazla kabarcıklandırın. Bu arada, çözeltinin pH değerlerini 2 mM NaOH ile 7.38 ile 7.42 arasında tutun.
  3. Sonraki deneyler için PSS'nin 1/3'ünü 4 °C'ye önceden soğutun ve geri kalanını 37 °C'ye ısıtın.
    NOT: PSS orijinal olarak oda sıcaklığında adım 1.1-1.2'de hazırlanmıştır

2. Sıçan bağırsak kanal diseksiyonu

  1. 4°C PSS, cerrahi cımbız ve makasla doldurulmuş Petri kaplarını toplayın. Sıçanı yaklaşık 5 dakika inhalasyon yoluyla uyuşturmak için% 2 izofluran uygulayın. Bir ayak parmağı sıkıştırma testi yaparak farenin derin bir şekilde uyuşturulduğunu doğrulayın. Gerekirse, ek anestezikler uygulayın. Daha sonra, karın boşluğunu bir ameliyat masasında açarak bağırsak kanalını ortaya çıkarın.
  2. Mide ve bağırsak tüplerini hızlı bir şekilde %95O2 ve %5 CO2 doymuş 4 °C PSS (pH 7.40) ile doldurulmuş bir Petri kabına yerleştirin. İnce bağırsağın başlangıcı olan duodenum'u mide pilorunda bulun. Cımbız kullanarak, bitişik dokuyu nazikçe kaldırın ve bağırsağın kenarından makasla dikkatlice kesin. Daha sonra bağırsağı 1-2 cm'lik segmentlere bölün; bu sürecin tamamı Şekil 1'de gösterilmiştir.

3. Bağırsak kanalının askıya alınması ve sabitlenmesi (Şekil 2)

  1. İn vitro doku perfüzyon sistemini açın ve cihazdaki banyo sıcaklığını 37 °C'ye ayarlayın. PSS'yi (37 °C) banyoya yerleştirin.
  2. 15 cm'lik bir cerrahi sütür hazırlayın ( Malzeme Tablosuna bakınız) ve %95 O2 + %5 CO2 ile doyurulmuş 4 °C PSS'ye batırın. Sütürü kullanarak bağırsak kanalının bir ucunu sabitleyin ve diğer ucunu sabitlemek için çelik bir iğne kancası kullanın.
  3. Bağırsak tüpünü takın. Segmenti banyonun altındaki çelik iğne kancası ile monte edin ve cerrahi hattın diğer ucunu dönüştürücüye takın. Banyoda kabarcıkların ortaya çıkmasına izin vermek için gaz anahtarını açın.
  4. Veri toplama yazılımını açın ( Malzeme Tablosuna bakın) ve ilgili yol sinyalinin kaydedildiğinden emin olmak için Başlat'a tıklayın.

4. Normalleşme

  1. Bağırsak tüplerini doğal durumlarına gevşetmek için banyonun spiral eksenini saat yönünün tersine çevirin. Yazılımda bağırsak tüpünün başlangıç geriliminin 0 g olarak ayarlandığından emin olmak için Setup-Zero All Inputs'a tıklayın.
  2. Gerilim değerini 1 g'a çekmek için banyonun spiral eksenini saat yönünün tersine çevirin ve pH = 7.40,% 95 O2 +% 5 CO2 doymuş 37 ° C PSS'de 30 dakika boyunca sabitleyin.
    NOT: Bağırsak tüpünün normalleşmesi, ön yükünü en uygun duruma getirmektir. Boşluk numuneleri için, in vitro olarak istisnai aktiviteyi sürdürmek için optimal bir ön yük gerekliydi. Sıçan bağırsak tüpünün optimal ön yükü 1 g18 idi.

5. Reaktivitenin tespiti

  1. Yazılımdaki ritmik spontan kasılma dalgalarını gözlemleyin ve yeterli bir yanıtı gösterdiği için bir sonraki deneye geçin.

6. Deneysel gözlem

  1. İlacın bağırsak tüpü fonksiyonu üzerindeki etkisini incelemek için test ilacını (asetilkolin vb.) banyoya ekleyin.
    NOT: İlacın etkisi, bağırsak daralma eğrisindeki uygulama öncesi ve sonrası değişiklikler karşılaştırılarak değerlendirildi. İlaç eklendiğinde, ilacı karıştırmak için kabarcığı artırmak ve karıştırdıktan sonra kabarcığı normale ayarlamak uygundur.

7. Veri analizi

NOT: İn vitro doku perfüzyon sistemi, dört aynı veya farklı ilacın dört bağırsak tüpü üzerindeki etkileri üzerinde aynı anda testler yapabilen dört kanala sahiptir. Deneysel parametreler ve analiz yöntemleri tüm kanallar için aynı olduğundan, veri analizi için örnek olarak bir kanal seçilmiştir.

  1. Veri toplama yazılımını durdurun ve bu veri toplama yazılımı üzerinde veri analizi yapın. Veri panosunu düzenleyin ve analiz parametrelerini aşağıdaki gibi seçin: Window-Data Pad'e tıklayın ve kanal için ortalama gerilimi seçin.
  2. Uygulamadan önce kasılma eğrisini seçin ve Veri Pedi'ne Ekle'ye tıklayın; Uygulamadan sonra kasılma eğrisini seçin ve Veri pedine ekle'ye tıklayın. Uygulamadan önceki ve sonraki ortalama gerginlik değeri sırayla veri pedinde görünecektir.
  3. Verileri istatistiksel analiz için diğer istatistiksel analiz yazılımlarına kopyalamak için Window-Data Pad'e tıklayın (Malzeme Tablosuna bakın).
  4. Ortalama genlik, ortalama frekans ve integral (eğrinin altındaki alan) gibi diğer parametreleri analiz edin, ortalama gerilimi ilgili parametreyle değiştirin ve işlem 6.1-6.3 adımlarıyla aynıdır.
  5. Kasılma eğrisini kaydedin: Kasılma eğrisini seçin, daralma eğrisini çizmek için verileri çizim yazılımına kopyalamak için Labchart Verilerini Düzenle-Kopyala'ya tıklayın ( Malzeme Tablosuna bakın).

8. Ameliyat sonrası tedavi

  1. Ameliyattan sonra, kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek hayvanlara ötenazi yapın.
    NOT: Bu çalışma için, hayvanlara fazla izofluran solunarak ötenazi uygulandı.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çalışmanın ilk bölümünde izole edilmiş barsak tüplerinin vücuttan ayrıştırılarak in vitro olarak 2 cm'lik tüpler haline getirilmesi işlemi üzerinde durulmaktadır. Bu işlem Şekil 1'de ayrıntılı olarak gösterilmiştir. İkinci kısım, izole edilmiş bağırsak tüpü halkasının askıya alınmasını ve standardizasyonunu içerir. Bu işlemin başarısı, normal bir tüpün otomatik ritmik kasılmasını gösteren Şekil 2'de gösterilmiştir. Son olarak, çalışma, temsili kasılma ajanlarının ve gevşeticilerin izole edilmiş bağırsak tüpü halkası üzerindeki etkilerini incelemektedir. Asetilkolin (0.3 μmol/L) ve baryum klorürün (1.2 mmol/L) bu tüplerdeki gerilimi arttırdığı, atropin (300 μmol/L), epinefrin (1 μmol/L) ve nifedipinin (10 μmol/L) Şekil 3'te gösterildiği gibi gerginliklerini inhibe ettiği bulunmuştur.

Bu yöntem esas olarak izole edilmiş bağırsak tüpünün motor fonksiyonunun belirlenmesini sağlar. Bağırsak hareketleri bir dizi faktörden etkilenir ve etkilerin çoğu bağırsaktaki reseptörler aracılığıyla uygulanır. Gastrointestinal sistemde, kolinerjik M reseptörleri, adrenerjik α ve β reseptörleri, 5-HT reseptörleri, histamin reseptörleri ve gastrointestinal hormon reseptörleri19 dahil olmak üzere çeşitli reseptörler vardır. İzole edilmiş bağırsaktaki spazm, asetilkolinin M reseptörleri üzerindeki etkisinden kaynaklanabilir. Bu etki, M reseptörleri için bir bloke edici ajan olarak işlev gören atropin tarafından bloke edilebilir (Şekil 3A). Bununla birlikte, baryum iyonlarının baryum klorür içine girmesi ve bunların kalmodulin ile bağlanması sonucu oluşan bağırsak segmentinin düz kasındaki spazm, atropin tarafından bloke edilemez (Şekil 3B). Epinefrin hem α hem de β reseptörleri için bir agonist olarak işlev görür (Şekil 3C). İnce bağırsağın α reseptörünü ve β2 reseptörünü uyararak düz kasın gevşemesine ve ince bağırsağın kasılmasının zayıflamasına neden olur. Sonuç olarak, peristaltizm yavaşlar ve emilim oranı azalır. Buna karşılık, nifedipin Ca2 + 'nın iç akışını önler ve bağırsak gevşemesini teşvik eder (Şekil 3D). Bu, bağırsak spazmını hafifletmeye, bağırsak basıncını azaltmaya ve bağırsaktaki suyun emilimini kolaylaştırmaya yardımcı olur.

figure-results-1
Şekil 1: Bağırsak tüplerinin izolasyonu. (A) sıçanlarda bağırsak tüpleri; (B) Bağırsak tüpleri vücuttan çıkarıldı ve 4 °C fizyolojik tuz çözeltisi içeren bir Petri kabına yerleştirildi; (C) çevre dokunun çıkarılmasından sonra bağırsak tüpü; (D) Deneyde kullanılan 2 cm uzunluğunda bağırsak tüpü. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-2
Şekil 2: İzole edilmiş bağırsak tüpü halkalarının süspansiyonu ve standardizasyonu süreci. (A) İn vitro doku perfüzyon sistemi (bkz . Malzeme Tablosu); (B) Bağırsak tüpünün her iki ucunun bir demir kanca ve bir cerrahi ip ile 4 °C fizyolojik tuz çözeltisi içeren bir Petri kabına sabitlenmesi; (C) Bağırsak tüpünün 37 °C fizyolojik tuz çözeltisi içeren banyolardan birine sabitlenmesi, (D) ön yük verme ve normal dalga formunu kaydetme. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-3
Şekil 3: İlaçların izole bağırsak tüpleri üzerindeki etkileri. (A) asetilkolin (0.3 μmol / L) ve atropin (300 μmol / L), (B) baryum klorür (1.2 mmol / L), (C) epinefrin (1 μmol / L) ve (D) nifedipinin (10 μmol / L) izole bağırsak tüpleri üzerindeki etkileri. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Gastrointestinal motilite, bir dizi hassas koordineli düz kas kasılması ve gevşemesi ile gerçekleştirilir. Bu süreç, bir grup kas grubunun ritmik kasılmasını, birden fazla grubun koordineli kasılmasını ve özel itici kasılmayı içerir20,21. Gastrointestinal motilite bozukluklarının ortaya çıkması, merkezi sinir sistemi, otonom sinir sistemi, enterik sinir sistemi ve gastrointestinal düz kas gibi farklı düzeylerdeki işlev bozuklukları ile ilişkili olabilir. Bu doku yapıları, farklı fizyolojik işlevleri yerine getirmek için karşılık gelen reseptörlere bağlanan çeşitli nörotransmiterlerin ve humoral faktörlerin salınması yoluyla birlikte işlev görür22. Bu nedenle, ilacın yerel etki mekanizmasını incelemek esastır ve in vitro ince bağırsak deneyleri yapmak, yabancı maddelerden ve merkezi sinir sistemi düzenlemesinden kaynaklanan etkileşimi dışlayarak daha doğru bilgiler sağlayabilir.

Gine domuzu ileum, tavşan jejunum ve duodenumun izole edilmiş bağırsak tüpü örnekleri deney hayvanlarında yaygın olarak kullanılmaktadır. Ek olarak, sıçanların ve kedilerin ileum, duodenum ve jejunumu da in vitro deneyler için kullanılabilir. Bu yöntem izole dokular için uygundur. Bağırsak düz kası, otomatik ritmik kasılma özelliklerine sahiptir ve bağırsak duvarındaki sinir pleksusundan etkilenir. Birçok hayvanın izole edilmiş bağırsak tüpleri, uygun bir hayatta kalma ortamında spontan motor fonksiyonlarını koruyabilir. İn vitro bağırsak tüpü deneyi, basit kullanım, deney koşullarının kolay kontrolü, az sayıda etkileyen faktör, iyi tekrarlanabilirlik, doğru ve güvenilir sonuçlar gibi avantajlara sahiptir ve ilaç etki mekanizmasının tartışılmasına daha elverişlidir. Ek olarak, bu yöntem ekonomik ve uygulanabilir olarak kabul edilir.

İn vitro bağırsak tüpü deneyinin, deneyin güvenilirliğini etkileyebilecek safsızlıklar, inorganik iyonlar, saponinler ve tanenler içeren saflaştırılmamış ham Çin tıbbı preparatlarının kullanılması gibi sınırlamaları da vardır. Bu nedenle, sıvının pH'ı ve çeşitli elektrolitik ve safsızlık parçacıkları dahil olmak üzere, safsızlıkların ve fizikokimyasal faktörlerin deneysel sonuçlar üzerindeki etkisini tam olarak değerlendirmek gerekir. Ayrıca, in vitro deneysel cihazın stabilitesinin ve in vitro bağırsak tüpü için koruma tekniğinin iyileştirilmesi gereklidir. İn vitro deneyler tasarlarken, kullanılan ilaçların veya preparatların bu deneylerin gereksinimlerini karşılayıp karşılamadığını (örneğin, safsızlık seviyeleri) dikkate almak önemlidir.

Bu yöntemde dikkat edilmesi gereken birkaç önlem vardır. Başlangıç olarak, bağırsak tüpü farenin karın boşluğundan çıkarılmalı ve deneyden önce soğuk bir PSS'ye batırılmalıdır. Ayrıca, tüm tüpü birden fazla parçaya bölmek ve buzdolabında saklamak önemlidir, bu da bağırsaklara herhangi bir stimülasyonu en aza indirir. Dozlama işlemi sırasında, dozaj tüpünün bağırsak tüpünün asılı olduğu hat ile temas etmemesini sağlamak çok önemlidir. Ek olarak, banyoya eklenen ilaç miktarı doğru olmalı ve sonuçları etkilememek için ilaç banyonun duvarına veya doğrudan bağırsak tüpüne eklenmemelidir. Bağırsak tüpünü durularken, nazik bir yaklaşım kullanılmalı ve doku kontraktürünü önlemek için yüksek basınçlı durulamadan kaçınılmalıdır. Herhangi bir aktivite kaybını önlemek için bağırsak tüpünün cımbızla tutulması ve uzun süre havaya maruz bırakılmasından kaçınılması önerilir.

Bu makale, gastrointestinal sistem üzerindeki gastrointestinal motiliteyi düzenleyen ilaçların etki mekanizmasını araştırmak için etkili bir yaklaşım sağlayan, bağırsak tüpü hareketi üzerindeki etkilerini göstermek için bağırsak reseptörleri üzerine etki eden çeşitli geleneksel ilaçların etkilerini kullanarak, izole bağırsak tüpü deneyleri için deneysel metodolojinin bir gösterimini sunmaktadır.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklanacak herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Chengdu Geleneksel Çin Tıbbı Üniversitesi'nin "Xinglin Akademisyenleri ve Disiplin Yetenekleri Araştırma Teşvik Planı" (33002324) için Özel Yetenek Programı tarafından desteklenmiştir.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Asetilkolin Sigma, ABDA6625
atropinSangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinIA06501
Baryum klorürMacklin Biochemical Co., Ltd., Şangay, ÇinB861682
CaCl2Sangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinA501330
D-glikozSangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinA610219
çizim yazılımıGraphPad Software, San Diego, California, ABD&
EpinefrinSigma, ABDE4642
HEPESXiya Reagent Co., Ltd., Shandong, ÇinS3872
İn vitro doku perfüzyon sistemiPowerLab, ADInstruments, AvustralyaML0146
KClSangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinA100395
KH2PO4Sangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinA100781
LabChart Professional sürüm 8.3 ADInstruments, Avustralya—
MgCl2 ve orta nokta; 6H2OSangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinA100288
NaClSangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinA100241
NaHCO3Sangon Biotech Co., Ltd., Şangay, ÇinA100865
nifedipinMacklin Biochemical Co., Ltd., Şangay, ÇinN5087
istatistiksel analiz yazılımGraphPad Yazılımı, San Diego, Kaliforniya, ABD& mdash;
Cerrahi sütürlerJohnson, ABD—

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jiang, Z., et al. Therapeutic role of wuda granule in gastrointestinal motility disorder through promoting gastrointestinal motility and decreasing inflammatory level. Front Pharmacol. 14, 1-15 (2023).
  2. Talley, N. J. What causes functional gastrointestinal disorders? A proposed disease model. Am J Gastroenterol. 115 (1), 41-48 (2020).
  3. Frazer, C., Hussey, L., Bemker, M. Gastrointestinal motility problems in critically ill patients. Crit Care Nurs Clin North Am. 30 (1), 109-121 (2018).
  4. Waclawikova, B., Codutti, A., Alim, K., El, A. S. Gut microbiota-motility interregulation: insights from in vivo, ex vivo and in silico studies. Gut Microbes. 14 (1), 1997296(2022).
  5. Kwak, D. S., et al. Short-term probiotic therapy alleviates small intestinal bacterial overgrowth, but does not improve intestinal permeability in chronic liver disease. Eur J Gastroenterol Hepatol. 26 (12), 1353-1359 (2014).
  6. Tang, A. T., et al. Endothelial Tlr4 and the microbiome drive cerebral cavernous malformations. Nature. 545 (7654), 305-310 (2017).
  7. Mayer, E. A. Gut feelings: the emerging biology of gut-brain communication. Nature Rev Neurosci. 12 (8), 453-466 (2011).
  8. Singh, R., Zogg, H., Ghoshal, U. C., Ro, S. Current treatment options and therapeutic insights for gastrointestinal dysmotility and functional gastrointestinal disorders. Front Pharmacol. 13, 1-20 (2022).
  9. Sanger, G. J., Alpers, D. H. Development of drugs for gastrointestinal motor disorders: Translating science to clinical need. Neurogastroenterol Motil. 20 (3), 177-184 (2008).
  10. Valentin, N., Acosta, A., Camilleri, M. Early investigational therapeutics for gastrointestinal motility disorders: From animal studies to phase ii trials. Expert Opin Investig Drugs. 24 (6), 769-779 (2015).
  11. Shoor, S. Athletes, nonsteroidal anti-inflammatory drugs, coxibs, and the gastrointestinal tract. Curr Sports Med Rep. 1 (2), 107-115 (2002).
  12. Lacy, B. E., et al. Effects of antidepressants on gastric function in patients with functional dyspepsia. Am J Gastroenterol. 113 (2), 216-224 (2018).
  13. Lin, R. K., et al. The effects of ginsenosides on contractile activity of antibiotic-treated isolated small intestinal smooth muscle in mice. Lishizhen Medicine and Materia Medica Research. 33 (04), 790-793 (2022).
  14. Jespersen, B., Tykocki, N. R., Watts, S. W., Cobbett, P. J. Measurement of smooth muscle function in the isolated tissue bath-applications to pharmacology research. J Vis Exp. (95), e52324(2015).
  15. Park, K. H., et al. Ex vivo assessment of contractility, fatigability and alternans in isolated skeletal muscles. J Vis Exp. (69), e4198(2012).
  16. Semenov, I., Herlihy, J. T., Brenner, R. In vitro measurements of tracheal constriction using mice. J Vis Exp. (64), e3703(2012).
  17. Han, J., Chen, X. J. Study overview of invisible spectro intestine experiment. Guiding Journal of Traditional Chinese Medicine and Pharmacy. 14 (3), 94-96 (2008).
  18. Hao, F. F., Liu, W. Q., Wang, J. N., Nie, K. Experimental study on the effect of Forsythia suspensa water extract on the movement of isolated intestinal tract in rats. Shandong Journal of Traditional Chinese Medicine. 37 (1), 63-66 (2018).
  19. Ruoff, H. J., Fladung, B., Demol, P., Weihrauch, T. R. Gastrointestinal receptors and drugs in motility disorders. Digestion. 48 (1), 1-17 (1991).
  20. Foong, D., Zhou, J., Zarrouk, A., Ho, V., O'connor, M. D. Understanding the biology of human interstitial cells of cajal in gastrointestinal motility. Int J Mol Sci. 21 (12), 4540(2020).
  21. Mössner, J. Motilitätsstörungen des gastrointestinaltrakts. Der Internist. 56 (6), 613-614 (2015).
  22. Yin, J., Chen, J. D. Z. Gastrointestinal motility disorders and acupuncture. Autonomic Neuroscience. 157 (1-2), 31-37 (2010).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Intestinal Tube PerfusionIn Vitro PerfusionIntestinal Motor FunctionGastrointestinal MotilityIsolated Intestinal TubesDrug InterventionTension MeasurementPhysiological Salt SolutionData AcquisitionContraction Analysis

Related Articles