$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Prosedür
Fibronektin ile slaytları Kaplama
Mikroakışkan cihaz montajı için, önce cam slaytlar fibronektin ile sterilize edin. Coat bir biohood slaytlar kısırlık korumak için. Steril bir PDMS ayırıcı slayt kenarları boyunca hizalayın ve kalıcı bir belirteç ile karşı karşıya yan işareti. Pipet cam slayt bütünlüğü üzerinde PDMS ayırıcı içinde fibronektin bir 5 mg / ml solüsyon (Sigma) 1 ml. Bir saat boyunca rahatsız slaytlar bırakın, daha sonra tamamen bir N 2 tabancası kullanarak kurutun. Slaytlar, daha sonraki deneyler için 4 o C'de saklanabilir.
Cihazın montajı
Tüm cihaz montaj protokolü aşağıdaki yordamları kullanarak, steril koşullar altında biohood yapılır:
- % 70 etanol ile aşağı silme ve N 2 tabanca ile kurutma desenli mikro silikon ana temizleyin. Steril bir PDMS ayırıcı ana kabartma özellikleri çevresinde forseps kullanılarak 1 mm yüksekliğe yerleştirin.
- Agaroz toz 0.3 g (Fisher Scientific) ve 10 ml CO ağırlığındaki cihaz kullanılan agaroz jel hazırlayın 2 50 ml beher bağımsız medya (Invitrogen). YÜKSEK 20 saniyelik bir mikrodalga ısı ve spatula ile karışımı karıştırınız. Çözünmemiş granül varsa, başka bir 10 saniye ve girdap kalan son granül kurtulmak için sıcak karışım karışım ısı. 8 saniyelik bir ısıtma süresi ile bu işlemi tekrarlayın ve sonra 5 saniye.
- Agaroz çözümü hızla PDMS ayırıcı çevrili silikon ana üzerine dökün ve hemen steril bir cam slayt agaroz karışımı kapsayacak. Sağlamak için yaklaşık 2 dakika için slayt bir sabit, hafif basınç uygulayın agaroz jel PDMS ayırıcı olarak aynı sabit 1 mm yükseklik.
- Agaroz jeller sonra, desenli agaroz jel silikon master ve slayt karşı karşıya agaroz jel mikro fibronektin kaplı cam slayt transfer PDMS ayırıcı ile soyulabilir. Rezervuar bölgeye giriş ve çıkış kere mikro delikler 16 gauge enjektör ucu kullanın. 500 ul CO 2 bağımsız medya, mikro kuruma önlemek için slayt desenli agaroz jel ekleyin .
- Cihazda kullanılan akrilik manifoldu% 70 etanol ile yıkayın ve DI su ile durulayın. Agaroz jel içine mikro delikli delikli manifoldu deliklerini. Daha sonra, jel, PDMS ayırıcı ve cihazın metal çerçeve ile fibronektin slayt manifoldu hizalayın. Cihazın içine, vidalarını yerleştirin ve bir tornavida ile direnç noktasına sıkın. Bu cihaz, deforme agaroz mikro ölçüde fazla sıkılmazsa olduğunu sağlamak için yapılır. Cihazın içinde jel kayma olmadığından emin olmak için bir saat sipariş vidalarını sıkın. 1ml bir şırınga yardımıyla mikro sızıntı ve tıkanıklıkları için cihaz test edin. CO 2-bağımsız medya mikro enjekte etmek için şırınga, boru sonunda bir jel yükleme pipet ile Tygon boru ile donatılmıştır . Bir Mikrokanallı medya, medya ilgili girişine enjekte edildiğinde sadece Mikrokanallı çıkış çıkmak için görülmektedir başarıyla oluşmuş sayılır. Şimdi, cihaz kullanıma hazırdır.
Cihaz hücrelerin hazırlanması ve Yayımlamak
Hücreleri (hücre yoğunluğu yaklaşık 100.000 hücre / ml)% 70 confluency ulaştığında, cihazın içine numaralı seribaşı olarak hazırlanır.
Hücrelerin iki DPBS Konu (Invitrogen) yıkar. Hücreleri ayırmak için tripsin-EDTA (Invitrogen) 200 ul ekleyin. Hücreler, tripsin inaktive içeren serum M2 medya 5ml içeren 15 ml santrifüj tüpüne aktarın. 5 dakika için 1000 RPM hücrelerin büyüme ortamı Santrifüj. Süpernatantı kapalı aspire ve hücre pelet DPBS 5 ml tekrar süspansiyon haline getirin. Aynı koşullar altında tekrar DPBS hücreleri santrifüjleyin. Süpernatant tekrar kapalı aspire ve 500 ul CO 2 bağımsız medya hücre pelletini tekrar süspansiyon haline getirin.
Yerçekimine bağlı akış ile cihazın Mikrokanallı merkezi haline Tohum hücrelerinin süspansiyon. Sırasıyla, hücre süspansiyonu 60 ul ve CO 2 bağımsız orta 20 ul Mikrokanallı merkezinin giriş ve çıkış ekleyin. Hücre adezyon bakmak için bir aydınlık alan mikroskobu altında Mikrokanallı merkezi uyun. Hücreler genellikle 10 dakika sonra yapışır. Hücreleri, uygun bir yoğunlukta kanal alt bağlı kalan hücre süspansiyonu giriş ve çıkışında medya pipeted. Merkezi kanal giriş ve çıkış hem de CO Yeri 60 ul 2-bağımsız medya. Yeri PDMS th üzerinde kapsare merkezine giriş ve çıkış medya merkezi kanal buharlaşmasını en aza indirmek için.
Görüntüleme cihaz hücreleri
Önce cihazın montajı, mikroskop (Olympus X81) üzerinden hava istasyonu, steril peristaltik boru iplik ve peristaltik pompa (Watson-Marlow 205U/CA) ile bağlanmak. PBS 4 RPM hızında boru ile yıkayın. Cihazın montajı sonra, 15 ml santrifüj tüplerine CO 2 bağımsız medya epidermal büyüme faktörü (EGF) (Sigma) çözümleri, uygun konsantrasyonda hazırlar . Vortex EGF çözümleri ve 5 saniye boyunca tüp bağlanabilir. Cihaza karşılık gelen EGF konsantrasyonları ile işaretlenmiş borulama bağlayın. EGF kanal sırt çapında yaygın ve istikrarlı bir kimyasal degrade kurmak için yaklaşık bir saat sürer.
Bir görüntüleme yazılımı, Slidebook, deneysel bir dönemde yaklaşık 5 saat boyunca her 10 dakikada bir dizi görüntü almak için kullanılır. Xy otomatik sahne programlanmış Aynı merkez kanal ve üç merkezi kanallarının toplam iki alt-alanlar (400μm x400μm bir alana sahip her) belirli bir zaman noktasında görüntülü böyle. Farklı merkezi kanalları (genellikle 3 bir vadede) hücreler, tüp üzerinde işaretli farklı EGF konsantrasyonları var.
Malzemeleri ve Ekipmanları
Postnatal fare beyincik 6, 7 dış germinal tabakadan elde edilen hücre hatları: C17.2 hücreleri NSC'lerde . Bu hücre hattı kullanarak, retrovirüs transfeksiyon yöntemi kullanarak diğer iki fare kök hücre hatları geliştirdik. Bu iki stably transfekte hücre hatları (1) wtEGFR - insan vahşi tip EGFR aşırı ifade ettiğini ve (2) ΔEGFR - yapısal olarak aktif EGFR mutant. Algılama kolaylığı için, retrovirüsler ribozomal bağlanma (IRES) ve Yeşil floresan proteini (GFP) için dahili bir site tarafından takip çıkarlarını gen ile bir omurga taşır.
Hücre kültürü: fare C17.2 NSC'lerde ve bunların varyantları M2 medyada 6 plaka (% 10 fetal sığır serumu (FBS) (Invitrogen),% 5 at serumu (HS) (Invitrogen DMEM (Invitrogen) yetiştirilen ) ve% 1 penisilin / streptomisin (Invitrogen).) Hücreler% 80 hava ve% 5 CO 2, 37 ° C'de tutuldu .
Mikroakışkan cihaz: Bir plastik manifoldu, PDMS ayırıcı, ve paslanmaz cihazı yerinde tutmak için bir çerçeve.
Görüntüleme
Ters bir floresan mikroskobu (Olympus IX-81) yoğun bir CCD kamera (Orca, Hamamatsu) ile bağlantılı olarak kullanılır. Mikroakışkan cihaz otomatik bir xyz sahne üzerine monte edilmiştir ve sahne 37 o C lik bir sıcaklık koruyan bir çevre odası tarafından içine Genellikle otomatik xyz sahne kullanarak aynı zamanda noktada filme olacak aynı çip üzerinde 3-4 cihazlar vardır.
Korumak Akış
8 paralel çizgiler (Watson-Marlow 205U/CA) otomatik bir peristaltik pompa, lavabo ve kaynak kanallarının tüm akışını korumak için kullanılır.

Şekil Üç MGK suşlarının çeşitli EGF konsantrasyonlarda 1 Motilite (ebeveyn, wtEGFR ve D EGFR) yörüngeleri 5 saat film izleme (wtEGF 100ng/ml, 4hour hariç) alınan ve tüm parçaları kökeni. karşılaştırma amacı için (0,0) repositioned.

Şekil EGFR ekspresyon seviyesi ve motilite (a) iki görüntü wtEGF NSC'lerde 100ng/ml EGF ile mikroakışkan kanal yüzeyinde 2 Korelasyon. Sol görüntü floresan görüntü ve doğru iletilen bir aydınlık alana görüntü. Ölçekleme çubuğu 100μm ve Kanal genişliği 400 mm. Hücreler ifade GFP parlaklık iki popülasyonun ayrılır. Hücreler mavi daireler sönük, böylece daha az EGFR ekspresyon seviyesi var ve kırmızı daireler hücrelerin brigher, böylece daha yüksek EGFR ekspresyon seviyesi var. (B) düşük ve yüksek EGFR ekspresyon seviyesi ile hücreler Yörüngeler. Bu yörüngeleri dört saat süren bir film alınmıştır .