Yöntem makalesi

Tüm Vücut Pletismografi ve Doppler Ultrason ile Farelerde Akciğer Adenokarsinomu İlerlemesi Sırasında Akciğer Fonksiyonunda ve Kan Akışında Dinamik Değişiklikler

DOI:

10.3791/68306

⸱

10 Haziran 2025

 ,  ,  ,  , 
1School of Clinical Medicine, Chengdu University of TCM, 2Chengdu Xinjin District Hospital of Traditional Chinese Medicine, 3China Civil Affairs University, 4Hospital of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, akciğer adenokarsinomunu incelemek için non-invaziv, basit ve etkili bir yöntem sunan araştırma teknikleri olarak fare pulmoner fonksiyonu ve Doppler ultrasonunu kullanır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Akciğer adenokarsinomu (LUAD) sık görülen bir malign akciğer tümörüdür ve ilerlemesi ventilasyon ve kan akışında değişikliklere yol açarak patolojik koşullar altında akciğerin farklı fonksiyonel özelliklerini vurgular. Non-invaziv tüm vücut pletismografi (WBP) sistemi, uyanık farelerde akciğer fonksiyonunun ve hava yolu duyarlılığının gerçek zamanlı olarak izlenmesini sağlayarak trakeotomi ve anesteziden kaynaklanan parazitleri önler. Yüksek frekanslı görüntüleme teknolojisini kullanan küçük hayvan Doppler ultrasonu (DU), mikrovasküler yapıları ve pulmoner kan akış hızındaki değişiklikleri non-invaziv olarak yakalar ve LUAD ile ilişkili ventilasyon ve perfüzyon anormalliklerini araştırmak için önemli destek sunar. Bu çalışmada, A/J farelerde 100 mg/kg 4- (metilnitrosamino) -1- (3-piridil) -1-bütanon (NNK) kullanılarak bir LUAD modeli kurulmuştur. Farelerde solunum fonksiyonunu ve hemodinamik parametreleri izlemek için DU ile birlikte WBP kullanıldı. Sonuçlar, %50 ekspiratuar akış (EF50), dakika ventilasyonu (MV), tepe ekspiratuar akış (PEF), tepe inspiratuar akış (PIF), gelişmiş duraklama (Penh) ve tidal hacim (TV) dahil olmak üzere temel metriklerde önemli bir düşüş (p < 0.05) ve ayrıca tümör ilerlemesi sırasında model grubunda pulmoner arteriyel kan akış hızında belirgin bir azalma (p < 0.05) ortaya koydu. Bu birleşik yaklaşım, farelerde LUAD'ın patolojik gelişimi sırasında meydana gelen fonksiyonel bozulmaları etkili bir şekilde yakalayarak, solunum yolu hastalıklarına yönelik araştırmaları ilerletmek için invaziv olmayan ve etkili bir yöntem sağlar.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Akciğer adenokarsinomu (LUAD), küçük hücreli dışı akciğer kanserinin en sık görülen alt tipidir1. Artan çevre kirliliği, tütün kullanımı ve yaşlanan nüfusla birlikte, LUAD'ın küresel prevalansı her yıl artmaktadır 2,3,4. Mevcut çalışmalar, LUAD ilerledikçe hastaların solunum fonksiyonlarında ilerleyici düşüşler ve hemodinamik bozukluklar yaşadığını göstermektedir 5,6,7,8. Pulmoner fonksiyonu ve pulmoner arter kan akışı dalgalanmalarını izlemek ve değerlendirmek için non-invaziv, verimli ve uygun maliyetli yöntemler geliştirmek, klinik LUAD yönetimi için kritik kanıtlar sağlayabilir.

Mevcut araştırmalar, LUAD tümör büyümesinin hava yollarını aşamalı olarak tıkadığını, akciğer kapasitesini ve ventilasyonu9 azalttığını ve lokalize kronik inflamasyon10 yoluyla hava yolu darlığını şiddetlendiren inflamatuar sitokin sekresyonunu tetiklediğini göstermektedir. Sonuç olarak, azalmış pulmoner fonksiyon, ağırlaştırılmış hipoksiye ve kan akışı anormalliklerine yol açar11,12. Bu patolojik değişiklikler sıklıkla klinik olarak ilerleyici nefes darlığı ve göğüs sıkışması olarak ortaya çıkar. BT görüntüleme, LUAD ilerlemesinin neden olduğu gerçek zamanlı solunum fonksiyon parametre anormalliklerini veya hemodinamik değişiklikleri yakalayamazken, tekrarlanan kısa süreli BT taramaları da radyasyona maruz kalmayı artırır13. Buna karşılık, tüm vücut pletismografisi (WBP) ve Doppler ultrason akış metrisi, dinamik izleme için non-invaziv, operatör dostu ve tekrarlanabilir tamamlayıcı yaklaşımlar olarak hizmet eder. Solunum fonksiyonunu ve hemodinamiği izlemek için bu tekniklerin entegre edilmesi, hastalığın ilerlemesini değerlendirmeyi ve terapötik karar vermeyi iyileştirebilir.

Bu çalışmada, LUAD başlangıcını ve ilerlemesini modellemek için A / J farelerde 4- (metilnitrosamino) -1- (3-piridil) -1-bütanon (NNK) kullandık. Solunum fonksiyonu ve hemodinamik değişiklikler 4, 10 ve 20. haftalarda WBP ve Doppler ultrason (DU) ile uzunlamasına izlendi. Bu yaklaşım, LUAD patofizyolojisi ve terapötik stratejileri hakkında yeni bilgiler sağlamayı amaçlamaktadır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışmada açıklanan tüm hayvan deneyleri, Chengdu Geleneksel Çin Tıbbı Üniversitesi Hayvan Refahı Etik Komitesi tarafından onaylanmıştır ve hayvan araştırma etiği için ilgili yasa ve standartlara uygun olarak yürütülmüştür (20240616IV). Dişi akraba A / JGpt fareleri (7-8 haftalık) 20-24 ° C'de ve% 40 -% 70 bağıl nemde tutuldu. 12 saatlik aydınlık-karanlık döngüsü boyunca, farelere standart hayvan yemi ve arıtılmış su sağlandı. Hayvanlar, deneylere başlamadan 7 gün önce bu ortama alıştırıldı.

1. Hayvan modelinin oluşturulması ve hazırlanması

  1. 10 mg / mL konsantrasyonda bir stok çözeltisi hazırlamak için NNK'yi normal tuzlu su içinde çözün.
  2. 4. haftalarda (modellemeden sonra 28. gün), 10. haftada (modellemeden sonra 70. gün) ve 20. haftada (modellemeden sonra 140. gün) WBP kullanarak pulmoner fonksiyonu ölçün. Pulmoner arteriyel kan akış hızı 20. haftada (modellemeden sonra 140. gün) DU kullanılarak ölçüldü. Her ölçümden önce, stresi en aza indirmek için fareleri uygun bir ortama yerleştirin.

2. Non-invaziv solunum fonksiyon testi

NOT: WBP sistemi, özel olarak tasarlanmış bir ölçüm odası kullanarak uyanık, serbestçe hareket eden hayvanlarda solunum fonksiyonunu ölçer. Oda, havanın odaya girip çıkmasına izin veren pnömotak ekranları ile donatılmıştır. Pnömotak ızgaraları tarafından oluşturulan hava direnci, ortam havasına göre haznede küçük basınç değişikliklerine neden olur. Hazne içindeki bu basınç değişikliklerini ölçmek için hassas bir basınç dönüştürücü bağlanır ve buradan akış elde edilebilir (kutu akışı olarak adlandırılır). Yazılım, gerçek zamanlı raporlamanın yanı sıra akış ve hacim gibi solunum parametreleri sağlar.

  1. Aşağıdaki ana bileşenleri elde edin: WBP denetleyicisi, denetleyici güç transformatörü, konsol çubuğu, uzun konsol çubuğu kablosu ve kısa konsol çubuğu kablosu, kalibratör kolonu, WBP pletismografı, akış dönüştürücü, sıcaklık ve nem probu, nebulizatör kafası (mor), önyargı akış filtresi ve hortumu, PC.
  2. Donanımı aşağıda açıklandığı gibi monte edin.
    1. Arka panel bağlantısını aşağıda açıklandığı gibi gerçekleştirin.
      1. Kontrol ünitesini bir USB 2.0 kablosu kullanarak bilgisayara bağlayın ve bağlantının sağlam olduğundan emin olun.
      2. Sütunu su doldurma hattına musluk suyuyla doldurun, denetleyicinin arkasındaki bağlantı noktasına bağlayın ve hattın kuru olduğundan emin olun.
      3. Güç transformatörünü denetleyicinin arkasına takın ve iyi bağlandığından emin olun.
      4. Konsol şeridinin yerleştirildiği yere bağlı olarak, oyun kumandasının arkasına bağlamak için uzun veya kısa bir konsol şeridi kablosu seçin.
      5. Kontrol ünitesini yerine itin ve kalibrasyon kolonunu ve güç transformatörünü düzenleyin.
    2. Ön panel bağlantısını aşağıda açıklandığı gibi gerçekleştirin.
      1. Her akış sensörünü Sensör etiketli bağlantı noktasına takın. Her bir önyargı akış filtresini ve hortumunu ön panelde Bias Flow etiketli denetleyici bağlantı noktasına takın. Önyargı akış tüpünün açık ucuna bir önyargı akış izolasyon direnci bağlayın.
    3. Hazne bağlantısını aşağıda anlatıldığı gibi gerçekleştirin
      1. Hazneyi kontrol ünitesinin önüne yerleştirin ve titreşimsiz, sağlam ve sabit bir yüzeye yerleştirildiğinden emin olun.
      2. Akış sensörünü hazneye bağlayın ve sensörü DSI işareti yukarı bakacak şekilde yönlendirin.
      3. Önyargı akış borusunu (izolasyon dirençli) pletismograf üzerindeki alt bağlantı noktasına bağlayın.
      4. Pletismografın üstündeki tapayı çıkarın ve bir nebulizatör kafası (mor) ile değiştirin.
  3. Yazılımı aşağıda açıklandığı gibi kurun.
    1. Kontrol programı yazılımını başlatın ve oturum açın. Denetleyici ana sayfasında, Donanım Yapılandırması'na tıklayın. Yeni Yapılandırma'ya tıklayarak yapılandırma sihirbazını başlatın, ardından WBP'yi (Seri Numarası: DEMO-061) seçin ve İleri'ye tıklayın.
    2. Türler açılır menüsünde Fare'yi seçin. Akış hızını varsayılan değerlere ayarlayın. 4 site seçin (her site, oturum başına en fazla 4 oda olmak üzere bir odaya karşılık gelir). Tüm aktif siteler için sapma akış hızının tutarlı olduğundan emin olun. Yazılımdaki siteleri WBP denetleyicisindeki gerçek bağlantı noktalarıyla eşleştirin. Son olarak, yapılandırmayı tamamlamak için Son'a tıklayın.
  4. Veri toplama
    1. Ana programı açın ve odaları kalibre edin, çünkü bu adım kritik öneme sahiptir. Sarı bir araç simgesi görüntülemek için fareyi donanımın üzerine getirin. Kalibrasyon arayüzüne girmek için Simgeye tıklayın, ardından dört hayvanın tümü için odaları aynı anda kalibre etmek için Tümü'ne tıklayın.
    2. Çalışma Seçenekleri Oluştur'da Doz Yanıt Etüdü'nü seçerek gerekli çalışma protokolünü oluşturun. GLP yapılandırmasını GLP'yi takip etmeyecek şekilde ayarlayın.
    3. Ölçüm parametrelerini ve görev dizilerini yapılandırmak için, Parametre Oluşturucu'yu açmak ve ölçülecek parametreleri eklemek için Yeni Parametre'ye tıklayın. Görev dizisi için varsayılan ayarları kullanın.
    4. Veri toplamaya başlamak için iş istasyonundaki Laboratuvarım sayfasına gidin, ardından hazırlanan çalışma protokolünü fare için WBP'ye sürükleyip bırakın.
    5. Veri toplamaya başlamak için her site için kırmızı üçgen düğmesini tıklayın. Dört siteyi de aynı anda başlatmak için, Oturum > Tüm siteleri kabul et'itıklatın. Alımı başlattıktan sonra, iş istasyonu Alımı Yapılandır sayfasını açar ve bunu alım sitelerindeki her farenin bilgilerini düzenlemek için kullanır.
    6. Veri toplamaya başlamak için sırayla Oturum > Tüm Siteleri Kabul Et'i tıklayın. Deney sonuçlarının doğru ve güvenilir olduğundan emin olmak için, deney farelerini önceden 30 dakika boyunca sessiz bir odada stabilize edin.
    7. Sessiz fareleri tamamen kapalı test kavanozuna yerleştirin. Veri toplamak için sistemdeki Başlat seçeneğine tıklayın. Sistem her 2 saniyede bir veri toplar, bu nedenle en az 10 dakika toplayın. Ortadaki 4 dakikalık veriyi yakalayın. Burada her grupta beş hayvan test edildi ve test 3 kez tekrarlandı.
    8. Çalışma sayfasında Rapor Oluştur'a tıklayın ve rapor türünü seçin. Deneysel verileri elektronik tablo biçiminde kaydedin. Bu deneyde, farelerin akciğer fonksiyonunu değerlendirmek için pik ekspiratuar akış hızı (PEF), pik inspiratuar akış hızı (PIF), gelişmiş duraklama (Penh) ve tidal hacim (TV) kullanıldı.

3. Pulmoner arteriyel kan akış hızı ölçümü

  1. Hayvan hazırlama
    1. Fareyi bir anestezi indüksiyon odasına yerleştirin ve% 5 izofluran ile uyuşturun (akış hızı: 1 L / dak). Vücut ısısını korumak için platform sıcaklığını 35-37 °C'de tutarak fareyi bir hayvan taşıma platformuna sabitleyin.
    2. Farenin ağzını ve burnunu bir anestezi maskesine yerleştirin. Anesteziyi %1-2 izofluran ile koruyun (akış hızı: 0.6-1 L / dak). Fare, sabit kalp atış hızı ve düzenli solunum ritmi, tam kas gevşemesi, uzuv hareketinin olmaması, vibrissae seğirme tepkisi olmaması, pedal çekme refleksinin kaybolması, pembe mukoza zarları ve pupiller genişleme olmaması ile stabil bir sırtüstü pozisyonu koruduğunda, uygun bir anestezi derinliğine ulaştığı kabul edilir.
    3. Bu aşamada, steril bir pamuklu çubuk kullanarak alt konjonktival keseye 2-3 mg veteriner merhemi uygulayın. Göz küresini sıkıştırmadan kapanmayı sağlamak için üst ve alt göz kapaklarını nazikçe okayın ve merhemin kornea yüzeyi boyunca eşit dağılımını sağlayın.
  2. Görüntüleme alanı hazırlığı
    1. Tüy dökücü krem ve tüy dökücü bir cihaz kullanarak göğüs tüylerini alın. Uygulama yapılan alanı nemli bir gazlı bez veya ıslak mendille temizleyin, ardından 0,3 mm'lik homojen bir kalınlık elde etmek için önceden ısıtılmış 37°C'ye ısıtılmış birleştirme maddesini pamuklu çubukla eşit şekilde uygulayın ve görünür hava kabarcıklarının olmamasını sağlayın.
  3. Doppler ultrason görüntüleme
    1. Parasternal uzun eksen görünümünden pulmoner arteriyel kan akış hızını ölçmek için 40 MHz Doppler ultrason probu kullanın. Probu 45° sola ve ameliyat masasını 15° sağa eğin. Probu göğsün sağ tarafından indirin ve anatomik uzamsal ilişkileri, morfolojik özellikleri ve hemodinamik akış yönü tarafından yönlendirilen sağ ventrikül ve pulmoner arteri bulmak için X ve Y eksenlerine ince ayar yapın.
    2. Doppler moduna geçmek için CF düğmesine basın. Mavi pulmoner arteriyel kan akış sinyalini görselleştirin. Örnekleme hattını pulmoner arter üzerine yerleştirin ve pulmoner arteriyel kan akış spektrumunu görüntülemek için PW düğmesine basın.
    3. Görüntüyü dondurmak için Dondur düğmesine basın, ardından Ölç düğmesine basın ve dokunmatik ekranda Hız seçeneğini seçin. Maksimum pulmoner arteriyel kan akış hızını elde etmek için ölçüm çizgisini spektrumun zirvesine yerleştirin.
  4. Veri toplama
    1. Pulmoner arteriyel atımlı Doppler verilerini seçmek için çevrimdışı analiz yazılımını kullanın. Kardiyak Paket ölçüm paketine erişin, RV ve PV İşlevini seçin ve pulmoner arteriyel kan akış hızını ve kayıtlı görüntüleri çıkarın.

4. Veri analizi

  1. Veri analizi için R4.4.2 ve GraphPad Prism 9.5.1'i kullanın ve verileri çizin. Solunum fonksiyon verilerinin gruplar arası karşılaştırmaları bağımsız örneklemler t-testi kullanılarak yapılırken, grup içi karşılaştırmalarda tekrarlı ölçümler ANOVA kullanıldı. Gruplar arası pulmoner arteriyel kan akım hızı karşılaştırmaları bağımsız örneklemler t-testi ile analiz edildi ve istatistiksel anlamlılık p < 0.05 olarak belirlendi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pulmoner fonksiyonun ve pulmoner arteriyel kan akışı değerlendirme metodolojisinin fizibilitesini, doğruluğunu ve tekrarlanabilirliğini doğrulamak için, boş grupta 4. hafta izleme süresi boyunca hayati kapasitenin P'sinde (EF50, 10 kat büyütülmüş) PIF, PEF ve ekspiratuar akışın dakika dakika ortalama eğrilerini çizdik (Şekil 1A). Bu panelde gösterildiği gibi, karşılık gelen üç eğri, şekil olarak yüksek derecede uygunluk sergiler. Özellikle EF50'deki minimal mutlak değişikliklere rağmen, bu v...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışmada, önceki raporlara göre bir akciğer adenokarsinomu modeli oluşturmak için A/J fareleri ile kombine NNK seçildi. İlgili çalışmalar, A/J farelerle kombine edilen NNK'nın 10. haftada minimal tümör oluşumuna ve 16. ila 20. haftalarda stabil tümör oluşumuna sahip olabileceğini göstermiştir 18,19. Bu nedenle, tümör gelişiminin erken evresinde akciğer fonksiyonu ve pulmoner arter kan akışında...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların ifşa edecek hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Chengdu Geleneksel Çin Tıbbı Üniversitesi Temel Tıp Bilimleri Okulu'ndan Profesör Cong Huang'a destekleri için teşekkür ederiz. Bu araştırma Sichuan Bilim ve Teknoloji Programı tarafından desteklenmiştir (Proje Onay No: 2024YFFK0173)

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
A / J farelerGemPharmatech LLC.
0.5ml EDTA tüpleriLabshark 
1-Bütanon, 4- (metilnitrosoamino) -1- (3-piridinil)Gu Shi Gong Yuan Tıbbi Cihazlar A.Ş.
%75 etanolChengDu Chron Kimyasallar A.Ş. Ltd2023052901
Anestezi indüksiyon odasıShanghai Tawans Intelligent Technology Co., Ltd.MZ-MR
Tüy dökücü kremShanghai Yuyan Instruments Co., Ltd.
Tüy dökücü cihazShanghai Yuyan Instruments Co., Ltd.3180
IsofluraneŞanghay Duma Biyoteknoloji Co, LtdDM-M9462
Tıbbi bantBeijing Lanbokangs Technology Co., Ltd.19-5023
tıbbi tricorderMedChemexpress69652
PBS tampon çözeltisiShanghai Fusheng Co., Ltd.A-RY5256
Tuzlu su (tıp)Beijing Biolabs Technology Co.GL1736‌
Ultrason birleştirme ajanıQisheng (Şangay) Tıbbi Ekipman Co., Ltd.
N000018130201070N5897702023062320212060273

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Melocchi, V., et al. Aggressive early-stage lung adenocarcinoma is characterized by epithelial cell plasticity with acquirement of stem-like traits and immune evasion phenotype. Oncogene. 40 (31), 4980-4991 (2021).
  2. Cardoso, D., Painho, M., Roquette, R. A. A geographically weighted regression approach to investigate air pollution effect on lung cancer: A case study in Portugal. Geospat Health. 14 (1), (2019).
  3. Cockburn, M. G., Wu, A. H., Bernstein, L. Etiologic clues from the similarity of histology-specific trends in esophageal and lung cancers. Cancer Causes Control. 16 (9), 1065-1074 (2005).
  4. Liu, B. D., et al. Expert consensus on image-guided radiofrequency ablation of pulmonary tumors: 2018 edition. Thoracic Cancer. 9 (9), 1194-1208 (2018).
  5. Chen, Y., et al. Club cells employ regeneration mechanisms during lung tumorigenesis. Nat Comm. 13 (1), 4557(2022).
  6. Yang, M., et al. Alveolar type I cells can give rise to KRAS-induced lung adenocarcinoma. Cell Rep. 42 (12), 113286(2023).
  7. Roche, O., et al. Identification of non-coding genetic variants in samples from hypoxemic respiratory disease patients that affect the transcriptional response to hypoxia. Nucleic Acids Res. 44 (19), 9315-9330 (2016).
  8. Zhai, R., Yu, X., Shafer, A., Wain, J. C., Christiani, D. C. The impact of coexisting COPD on survival of patients with early-stage non-small cell lung cancer undergoing surgical resection. Chest. 145 (2), 346-353 (2014).
  9. Chang, W. H. Complete spontaneous resolution of a giant bulla without rupture or infection: a case report and literature review. J Thoracic Dis. 9 (6), E551-E555 (2017).
  10. Wang, X., et al. SAA suppresses α-PD-1 induced anti-tumor immunity by driving TH2 polarization in lung adenocarcinoma. Cell Death Dis. 14 (11), 718(2023).
  11. Best, S. A., et al. Distinct initiating events underpin the immune and metabolic heterogeneity of KRAS-mutant lung adenocarcinoma. Nat Comm. 10 (1), 4190(2019).
  12. Fujimoto, J., et al. Development of Kras mutant lung adenocarcinoma in mice with knockout of the airway lineage-specific gene Gprc5a. Int J Cancer. 141 (8), 1589-1599 (2017).
  13. Zhang, D., et al. Reducing radiation dose to selected organs by selecting the tube start angle in MDCT helical scans: a Monte Carlo based study. Med Phys. 36 (12), 5654-5664 (2009).
  14. Yang, X. X., et al. Pharmacological effects of Bufei Jianpi granule on chronic obstructive pulmonary disease and its metabolism in rats. Front Pharmacol. 13, 1090345(2022).
  15. Hankinson, J. L., Odencrantz, J. R., Fedan, K. B. Spirometric Reference Values from a Sample of the General U.S. Population. Am J Resp Crit Care Med. 159 (1), 179-187 (1999).
  16. Quindry, J. C., Ballmann, C. G., Epstein, E. E., Selsby, J. T. Plethysmography measurements of respiratory function in conscious unrestrained mice. J Physiol Sci. 66 (2), 157-164 (2016).
  17. Rivera, D. A., Buglione, A. E., Ray, S. E., Schaffer, C. B. MousePZT: A simple, reliable, low-cost device for vital sign monitoring and respiratory gating in mice under anesthesia. PloS One. 19 (3), e0299047(2024).
  18. Song, M., et al. Dietary 5-demethylnobiletin inhibits cigarette carcinogen NNK-induced lung tumorigenesis in mice. Food Function. 8 (3), 954-963 (2017).
  19. Upadhyaya, P., Kenney, P. M., Hochalter, J. B., Wang, M., Hecht, S. S. Tumorigenicity and metabolism of 4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanol enantiomers and metabolites in the A/J mouse. Carcinogenesis. 20 (8), 1577-1582 (1999).
  20. Hu, P., et al. Haemoptysis as a prognostic factor in lung adenocarcinoma after curative resection. British J Cancer. 109 (6), 1609-1617 (2013).
  21. Popper, H. Primary tumor and metastasis-sectioning the different steps of the metastatic cascade. Transl Lung Cancer Res. 9 (5), 2277-2300 (2020).
  22. Jin, C., et al. Commensal Microbiota Promote Lung Cancer Development via γδ T Cells. Cell. 176 (5), 998-1013.e16 (2019).
  23. Zhao, S., et al. Clinical manifestations of pulmonary mucosa-associated lymphoid tissue lymphoma: single-center experience with 18 patients. OncoTargets Ther. 11, 555-561 (2018).
  24. Liu, C. H., et al. Lipopolysaccharide-Mediated Chronic Inflammation Promotes Tobacco Carcinogen-Induced Lung Cancer and Determines the Efficacy of Immunotherapy. Cancer Res. 81 (1), 144-157 (2021).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Pulmonary VentilationAirway ResponsivenessPulmonary Blood FlowMouse Tumor ModelRespiratory Disease
Video yakında

İlgili makaleler