Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Yüksek Yoğunluklu Koşu Bandı Egzersiz Eğitimi Sonrası İnfrared Tedavinin Kemik Üzerine Etkilerinin Araştırılması

701 görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/68502

⸱

22 Ağustos 2025

 ,  ,  , 
1School of Exercise and Health, Shanghai University of Sport, 2College of Athletic Performance, Shanghai University of Sport, 3Institute of Orthopedic Surgery, Xijing Hospital, Air force Medical University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Uzun süreli yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersiz eğitimi, kemik oluşumunu engeller ve farelerde kemik erimesini teşvik ederek kemik kütlesinin azalmasına neden olur. Burada, kızılötesi tedavinin kemik metabolizmasındaki yüksek yoğunluklu egzersize bağlı değişiklikler üzerindeki etkilerini incelemek için bir protokol sunuyoruz. Altta yatan moleküler yolakları aydınlatmak için daha fazla mekanik çalışmaya ihtiyaç vardır.

Özet

Kemik dokusu insan vücudunun önemli bir yük taşıma organıdır. Orta derecede egzersiz, mekanik yükleme yoluyla kemik kütlesini artırırken, yüksek yoğunluklu egzersiz onu baskılayabilir. Kızılötesi terapi dolaşımı iyileştirir, ağrıyı/iltihabı azaltır ve doku onarımına yardımcı olur. Bu makale, yüksek yoğunluklu egzersize bağlı iskelet metabolik bozuklukları ve moleküler mekanizmaları üzerindeki kızılötesi tedavinin modülatör etkilerini aydınlatmak için bir protokol sunmaktadır. Bu çalışmada, 24 adet 6 haftalık fare rastgele olarak kontrol (CTR, N = 8), yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersiz eğitimi (HIT, N = 8) ve yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersizi sonrası kızılötesi tedavi (IRT, N = 8) gruplarına ayrıldı. Son iki grup 8 hafta boyunca eğitildi. İlk hafta farelere koşu bandı alıştırma eğitimi verildi. İkinci haftada, fareler 50 dakika boyunca 24 m / dak hızında egzersiz yaptılar, bu da her hafta 1 m / dak ve 10 dakika oranında artarak 80 dakika boyunca 28 m / dk'ya ulaşana kadar 6 gün boyunca 5 ° 'lik bir gradyan ile egzersiz yaptı. Beşinci haftada, HIT grubu fareler, sıcaklık 42 ° C ile 45 ° C arasında kontrol edilerek tüm vücut kızılötesi terapi müdahalesine tabi tutuldu. Tüm tedavi süreci haftada 3 kez ~ 40 dakika sürdü. Sonuçlar, HIT grubunda CTR grubundakilerle karşılaştırıldığında, kemik hacmi/toplam hacim ve trabeküler sayının önemli ölçüde azaldığını, trabeküler ayrılmanın önemli ölçüde arttığını, Atf4, Runx2 ve Ocn'nin osteojenik ilişkili genlerinin aşağı regüle edildiğini ve Ctsk ve Mmp9'un osteoklastla ilişkili genlerinin yukarı regüle edildi. IRT grubu farelerin mikro-BT sonuçları anlamlı bir fark göstermedi, ancak osteogenez ile ilişkili genler Alp, Atf4, Runx2, Ocn ve Osx femurda yukarı regüle edildi. Ek olarak, osteoklastla ilişkili gen Ctsk aşağı regüle edildi. Uzun süreli yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersizi kemik kütlesini azaltabilir. Kızılötesi tedavi kemik mineral yoğunluğunu etkilemezken, kemik metabolizmasını iyileştirebilir.

Giriş

Osteoporoz (OP), özellikle yaşlılar arasında yaygın olarak görülen, en sık görülen sistemik metabolik kemik hastalıklarından biridir ve önemli bir küresel sağlık sorununu temsil etmektedir1. OP esas olarak kemik mineral yoğunluğunun (BMD), kemik kalitesinin ve kemik gücünün azalması ile karakterizedir ve bu da kemik kırığı riskini artırır2. OP'nin önlenmesi ve tedavisi, farmakolojik tedavi, yeterli kalsiyum ve D vitamini alımı, sigara ve alkol tüketiminin azaltılması ve pik kemik kütlesi seviyesini artırmak ve sürdürmek için erken fiziksel egzersiz gibi yaklaşımları kapsayan, insan yaşam kalitesini iyileştirmek için çok önemlidir 3,4.

Kemik, vücudun yapısal çerçevesi olarak, temel şekli sağlar ve iç organları korur. Sinir sisteminin düzenlenmesi altında kemik, kas kasılmaları sırasında çeşitli hareketleri kolaylaştırır. Yaşam boyunca, kemik sürekli oluşum, rezorpsiyon ve yeniden şekillenme geçirir. Osteoklastlar sürekli olarak eski kemiği emerken, osteoblastlar yeni kemik oluşturur ve mineralize eder. Bu süreçler sıkı bir şekilde bağlanır ve karşılıklı olarak düzenlenir, kemik döngüsünde dinamik bir denge sağlar5. Çok sayıda çalışma, uygun fiziksel egzersizin (aerobik egzersiz ve direnç eğitimi gibi) OP6'yı etkili bir şekilde önleyebileceğini ve tedavi edebileceğini göstermiştir. Egzersiz, iskelet üzerindeki mekanik stresi (zemin darbesi, şok ve kas bağlanma yeri gerginliği gibi) ve kan dolaşımındaki biyokimyasal faktörleri (hormonlar ve sitokinler gibi) modüle ederek kemik metabolizmasını etkiler, böylece kemik sağlığını destekler7. Bununla birlikte, uzun süreli yüksek yoğunluklu egzersiz kemik sağlığını olumsuz etkileyerek kemik kaybına neden olabilir. Örneğin, bir rotator manşet yaralanması fare modelinde yüksek, orta ve düşük yoğunluklarda (15 m / dak hızda) 8 haftalık koşu bandından sonra, kemik hacmi / toplam hacim (BV / TV), trabeküler sayı (Tb.N) ve trabeküler kalınlık (Tb.Th), kontrol ve orta / düşük yoğunluklu gruplardakilere kıyasla yüksek yoğunluklu grupta en düşüktü, trabeküler ayrılma (Tb.Sp) ise en yüksekti. Bu bulgu, yüksek yoğunluklu antrenmanın rotator manşet iyileşmesi ve kemik kütlesi üzerinde zararlı etkileri olduğunu göstermektedir8.

Kızılötesi terapi (IRT), Çin'deki rehabilitasyon fizik tedavi cihazlarında en yaygın kullanılan ilkelerden biridir. Yerel kan dolaşımını teşvik eder, enflamatuar maddelerin emilimini hızlandırır ve besin tedarikini artırır 9,10. Non-invaziv bir fizik tedavi olarak IRT, son yıllarda spor hekimliği, rehabilitasyon bilimi ve kemik metabolizması araştırmaları alanlarında yaygın ilgi görmüştür. İRT, klinik ortamlarda diğer girişimlere göre daha sık kullanılır. Çalışmalar, kemik dokusu iyileşmesinin, iltihaplanmanın çözülmesi ve hücresel yenilenme dahil olmak üzere üç aşamaya ayrılabilen karmaşık bir süreç olduğunu göstermiştir: iltihaplanma, çoğalma ve yeniden şekillenme. Enflamatuar faz esas olarak anjiyogenez ile karakterizedir; proliferatif faz, osteoblastların çoğalmasını ve yeni kemik oluşumunu içerir; ve yeniden şekillenme aşaması, kallus içinde yeni oluşan trabeküllerin kademeli olarak artmasıyla işaretlenir ve kırık boşluğu boyunca köprü kallus tamamen kemikleşmeye uğrar11. Bir kırıktan sonra, damarlardan dokulara akan kanın hızla emilmesi gerekir, bu da osteoblast proliferasyonunu ve kemik oluşumunu uyarır. Bu hayati süreçler, uygun bir iç ortam ve destek için yeterli besin gerektirir. Belirli bir dereceye kadar termoterapi bu işlevleri etkili bir şekilde kolaylaştırabilir12. Klinik uygulamada, kızılötesi terapi, osteoporozu tedavi etmek ve ilgili semptomları hafifletmeye yardımcı olmak için yardımcı bir araç olarak kullanılabilir, ancak kemik kütlesi üzerindeki araştırmaları nispeten sınırlıdır. Bu makale, yüksek yoğunluklu egzersize bağlı iskelet metabolik bozuklukları ve moleküler mekanizmaları üzerindeki kızılötesi tedavinin modülatör etkilerini aydınlatmak için bir protokol sunmaktadır. Bu nedenle, önceki araştırma13 üzerine inşa edilen bu çalışma, kemik kütlesindeki değişiklikleri gözlemlemek ve termoterapinin yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersizinin neden olduğu kemik kaybını azaltıp azaltamayacağını daha fazla araştırmak için farelerde yüksek yoğunluklu bir koşu bandı egzersiz modeli oluşturur. Amaç, OP'nin egzersize dayalı önlenmesi ve tedavisi için bir referans sağlamaktır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu çalışma, Şanghay Spor Üniversitesi Laboratuvar Hayvanları Etik Komitesi'nden (No. 102772023DW016) etik onay almıştır ve ulusal/kurumsal hayvan araştırma yönetmeliklerine uygundur. Yirmi dört adet 5 haftalık erkek C57BL / 6 faresi, Şanghay Spor Üniversitesi'ndeki SPF sınıfı bir hayvan tesisine yerleştirildi. Fareler 22 ± 2 °C'de,% 40-70 nemde ve 12 saat aydınlık / karanlık döngülerinde barındırıldı ve ad libitum yiyecek / su sağlandı. Kemikler, kan ve RNA ekstraksiyonu reaktifi ile muamele edilmiş numuneler dahil olmak üzere tüm biyolojik materyaller, Biyolojik Tehlike Seviye II otoklav torbalarında toplanmalı, bertaraf edilmeden önce 121 °C'de 60 dakika boyunca sterilize edilmeli ve laboratuvar atık kayıtlarında uygun belgelerle birlikte toplanmalıdır.

1. Hayvanlar

  1. 1 haftalık iklimlendirmeden sonra, fareleri vücut ağırlığına göre sınıflandırın ve rastgele üç gruba atayın: kontrol (CTR grubu, N = 8), yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersiz eğitimi (HIT, N = 8) ve yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersizi sonrası kızılötesi tedavi (IRT, N = 8) grupları.

2. Yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersiz eğitimi ve termoterapi müdahale protokolü

  1. CTR grubunu statik koşullar altında müdahale etmeden besleyin.
  2. 1 haftalık iklimlendirmeden sonra, HIT ve IRT gruplarındaki fareleri 8 haftalık yüksek yoğunluklu koşu bandı eğitimine tabi tutun. İlk hafta adaptasyon aşaması olarak kabul edilir: koşu bandı grubundaki farelerin 12° eğimle sırasıyla 15, 15 ve 18 m/dk hızlarda 20, 30 ve 40 dakika boyunca koşmasını sağlayın. İkinci haftada, farelere 50 dakika boyunca 24 m / dk hızında egzersiz yapın ve daha sonra egzersizlerini her hafta 1 m / dk ve 10 dakika hızında, 80 dakika boyunca 28 m / dk'ya ulaşana kadar 5 ° 'lik bir eğimle artırın. Bu egzersiz rejimini haftada 6 gün, Pazar günleri dinlenerek uygulayın (Tablo 1).
  3. IRT grubu için, 4 haftalık koşu bandı egzersizinden sonra, beşinci haftada kızılötesi tedaviyi (IRT) başlatın.
    NOT: Kızılötesi ışınlama sırasında, fare vücut sıcaklığını kesinlikle 42 °C ile 45 °C arasında tutun.
    1. Bilinç kaybına neden olmak için fareleri intraperitoneal enjeksiyonla uyuşturun.
    2. Kızılötesi terapötik aparatı kullanarak farelerin tüm vücudunu ışınlayın, farelerin sıcaklığının 42 °C ile 45 °C arasında tutulduğundan emin olun (bir sıcaklık dedektörü tarafından algılanır). Numuneler alınana kadar 4 hafta boyunca haftada 3 kez (Pazartesi, Çarşamba ve Cumartesi) ~ 40 dakika boyunca tüm tedavi sürecini gerçekleştirin.

3. Doku toplama

NOT: Diseke fare kemiği örnekleri, RNA bütünlüğünü korumak için hemen sıvı nitrojen içinde veya -80 °C'de korunmalıdır.

  1. Serum örneği toplama ve koruma
    1. Elektronik terazi kullanarak tüm fareleri tartın.
    2. Fareleri intraperitoneal tribromoetanol enjeksiyonu ile uyuşturun.
      NOT: Tribromoetanol ile çalışırken, nitril eldiven ve göz koruması giyerken her zaman kimyasal çeker ocak altında taze solüsyonlar hazırlayın, ışık korumalı kehribar şişelerde 4 °C'de saklayın ve kullanılmayan kısımları onaylı kimyasal atık kanallarından atın.
    3. 0.5-0.6 mL kan elde etmek için kardiyak ponksiyon kullanarak aseptik olarak kan örnekleri toplayın. İlk olarak, farenin göğüs kıllarını tıraş edin ve iyodofor ile dezenfekte edin. Daha sonra, maksimal kardiyak nabız noktasını palpe edin ve üçüncü ve dördüncü interkostal boşluklar arasındaki sol torasik boşluğa bir şırıngaya bağlı 4-5 G'lik bir iğne yerleştirin. Son olarak, kanın şırıngaya kendiliğinden aktığı gözlendiğinde, kan alma prosedürünü tamamlamak için hafif aspirasyon uygulayın.
    4. Kan örneklerinin oda sıcaklığında 10 dakika pıhtılaşmasına izin verin, ardından 1,000 × g'da 15 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı (serum) alın ve -80 °C'de saklayın.
  2. Kemik örneği toplama ve koruma
    1. Hem femurları hem de tibiaları incelemek için steril mikro makas ve cımbız kullanın. Periosteumu kazımadan, uzunlamasına eksen boyunca kemik yüzeyinden kasları ve tendonları nazikçe soyun ve büyüme plakasını korumaya özellikle dikkat edin.
    2. Tüm numuneleri 1x PBS (pH 7.4) ile durulayın. Sol uyluk kemiğini 24 saat boyunca %4 paraformaldehit (PFA) içinde sabitleyin. Daha fazla analizden önce kemik mineral yoğunluğu ölçümü için sol uyluk kemiğini kullanın.
    3. Sağ uyluk kemiğini önceden etiketlenmiş 1,5 mL mikrosantrifüj tüplerine yerleştirin ve -80 °C'de saklayın.
    4. Kemik metabolizması tahlilleri için sağ uyluk kemiğini ve her iki tibiayı kullanın.

4. Parametrelerin ölçülmesi

  1. Kan şekeri seviyesi ölçümü
    1. Doku toplamadan önce, farelerin kuyruk damarından kan örnekleri alın. Taşınabilir bir glikoz analizörü kullanarak kan şekeri seviyelerini ölçün.
  2. Kan laktat seviyesi ölçümü
    1. Son koşu bandı egzersiz seansından hemen sonra kuyruk damarından kan örnekleri alın. Taşınabilir bir laktat analizörü kullanarak kan laktat seviyelerini belirleyin.
  3. Rotarod testi
    NOT: Tüm müdahaleler tamamlandıktan sonra, her gruptan fareler üzerinde rotarod testleri yaptık. Rotarod testi yaparken, önce bir grup fareyi test etmek yerine, tutarlı bir dinlenme süresi sağlamak için aynı anda test edilecek farklı fare gruplarını seçeriz, böylece dinlenme süresinin neden olduğu farklılıkları hariç tutabiliriz.
    1. Fareleri, baş ters dönüş yönüne bakacak şekilde bir rotarod aparatına yerleştirin ve bir adaptasyon denemesine izin verin.
    2. Rotarod hızını 30 rpm'ye ayarlayın; Başladıktan sonra, cihaz ayarlanan hıza eşit şekilde hızlanır.
    3. Fare ilk düşene kadar geçen süreyi kaydedin. Farelerin motor koordinasyon yeteneğini değerlendirmek için bu ölçümü kullanın.
  4. Femoral trabeküler kemik kütlesinin ölçülmesi
    1. Steril mikro makas ve forseps kullanarak kemiklere bağlı kas ve bağ dokusunu çıkarın ve PBS ile yıkayın.
    2. Aşağıdaki tarama parametrelerini kullanarak sol uyluk kemiğindeki trabeküler kemiğin parametrelerini değerlendirmek için mikro-BT taraması yapın: mikro-BT taraması, 9 μm izotropik vokseller, 31.0 mm FOV, 250 ms maruz kalma, doğal çözünürlük (388 katman/segment) ve 1.200 mgHA/cc BH kalibrasyonu ile sürekli rotasyon modunda 55 kVp/145 μA'da (8 W) gerçekleştirildi.
    3. Trabeküler ve kortikal mikromimarinin aşağıdaki sonuçlarını ölçün.
      1. Üç boyutlu (3D) işleme ve görselleştirme için yeniden yapılandırılmış görüntüleri CT-vox'a aktarın.
      2. Çok düzlemli görünümleri (koronal, sagital ve enine düzlemler) kullanarak, morfometrik özelliklerinin bağımsız analizini sağlamak için kortikal ve trabeküler kemiği farklı doku bölgelerine ayırın ve çıkarın.
      3. Kemik gelişimini ve mineralizasyon durumunu değerlendirmek için Kemik Hacmi/Toplam Hacim (BV/TV), Trabeküler Sayı (Tb.N) ve Trabeküler Kalınlık (Tb.Th) Trabeküler Ayrılma (Tb.Sp) dahil olmak üzere temel mikroyapısal parametreleri ölçün.
  5. Parafin kesiti ve histolojik boyama
    1. Her gruptan üç sol femorayı PBS ile yıkayın ve tam dekalsifikasyon meydana gelene kadar% 10 EDTA'da (pH 7.15) kireçten arındırın.
    2. Numuneleri kademeli etanol konsantrasyonları (%70, %90, %95 ve %100) yoluyla dehidre edin, ksilen ile temizleyin, parafin ile sızın ve bunları gömün (bkz. Tablo 2).
    3. 5.0 μm kalınlığında seri kesitler kesin.
    4. Hematoksilen ve eozin (HE) boyaması
      1. Dilimleri önce ksilen mum gidermeye, gradyan etanol rehidrasyonuna tabi tutun ve ardından 5 dakika hematoksilen içinde bekletin.
      2. Fazla lekeyi çıkarmak için yıkayın, 3 saniye boyunca% 1 hidroklorik asit alkolde farklılaştırın, 3 dakika boyunca eozin ile lekeleyin, dereceli etanol ile kurutun, ksilen ile temizleyin ve nötr sakız ile monte edin (bkz. Tablo 3).
      3. Kemik iliği boşluğundaki kemik dokusu yapısını ve hücre morfolojisini ve dağılımını gözlemlemek için mikroskobik görüntüler yakalayın.
    5. Tartarat dirençli asit fosfataz (TRAP) boyaması
      1. Dilimleri ksilen ile mumdan arındırın ve gradyan etanol ile rehidre edin.
      2. Dilimleri TRAP reaktifi ile 37 ° C'lik bir fırında 1 saat inkübe edin, kurutun ve şeffaflaştırın (bkz. Tablo 4).
      3. Cam sürgün üzerine bir damla nötr reçine uygulayın, ardından kabarcık oluşumunu en aza indirmek için lamel bir kenardan 45°'lik bir açıyla dikkatlice indirin. Mikroskobik gözlem ve görüntülemeye devam etmeden önce monte edilen sürgünün çeker ocakta tamamen kurumasını bekleyin.
  6. Tibia kemik dokusunda gen ekspresyon analizi
    1. Kemik İliği İzolasyonu
      1. Fare kaval kemiğini diseksiyon yapın ve steril aletler kullanarak fazla kas/fasyayı çıkarın.
      2. Temizlenmiş tibiaları 1.5 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpüne yerleştirin.
      3. Kemiğin her iki ucunu steril makasla kesin.
      4. Kemik iliğini 1x PBS kullanarak steril öğütme boncukları içeren bir öğütme tüpüne yıkayın.
        NOT: Kemik iliği boşluğunu, boşluk soluk görünene ve tüm görünür kemik iliği dokusu çıkarılana kadar PBS ile yıkayın.
    2. RNA ekstraksiyonu
      NOT: Kloroform/izopropanol atıkları, belirlenmiş halojenli solvent kaplarında ayrılmalı ve toksik gaz oluşumu nedeniyle asla ağartıcı ile karıştırılmamalıdır.
      1. Tüp başına 1 mL RNA ekstraksiyon reaktifi ekleyin. Numuneleri bir tezgah üstü homojenizatör (30 s darbe, 4 °C) kullanarak homojenize edin. Lizatları oda sıcaklığında 5 dakika inkübe edin.
      2. 200 μL kloroform ekleyin, 15 saniye vorteksleyin ve 4 °C'de 30 dakika inkübe edin.
      3. 12.000 × g'da 4 °C'de 30 dakika santrifüjleyin.
      4. Üst sulu fazı yeni bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın. 500 μL izopropanol ekleyin, karıştırmak için 10x'i ters çevirin ve 4 °C'de 20 dakika inkübe edin.
      5. 12.000 × g'da 4 °C'de 30 dakika santrifüjleyin. RNA peletini bozmadan süpernatanı dikkatlice atın.
      6. Peleti 1 mL %75 etanol (DEPC ile arıtılmış su ile hazırlanmış) ile yıkayın. Kısa bir süre vorteksleyin ve 4 ° C'de 5 dakika boyunca 7.500 × g'da santrifüjleyin.
      7. Pelets ocakta 5-10 dakika havayla kurutun (aşırı kurutmadan kaçının).
      8. RNA'yı 20-50 μL DEPC ile arıtılmış suda çözün.
      9. Bir spektrofotometre kullanarak konsantrasyonu ve saflığı (A260/A280 oranı ≥ 1.8) ölçün.
    3. cDNA sentezi
      1. 1 μg toplam RNA ve bir ters transkripsiyon kiti kullanarak cDNA'yı sentezleyin.
      2. qPCR analizi için cDNA'yı -20 °C'de saklayın.
    4. qPCR analizi
      1. Osteojenik belirteçler için gen ekspresyonunu analiz edin: Alp, Atf4, Runx2, Ocn, Osx; osteoklast belirteçleri: Nfatc1, Mmp9, Ctsk; sitokinler: Tnf-α, Il-1β, Il-10 (bakınız Tablo 5).
      2. Tablo 6'da listelenen astar dizilerini kullanın (tavlama sıcaklıklarını dahil edin).

5. İstatistiksel analiz

  1. Tüm verileri ortalamanın standart hatası ± ortalama (SEM'± ortalama) olarak sunun.
  2. Post-hoc testler için Bonferroni ve Tamhani'yi kullanın.
  3. Gruplar arasındaki farklılıkları değerlendirmek için tek yönlü varyans analizi yapın.
  4. P < 0.05'i istatistiksel olarak anlamlı kabul edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Uzun süreli yüksek yoğunluklu koşu bandı egzersiz antrenmanı nedeniyle yorgunluk
Egzersiz altındaki iskelet değişikliklerini ve kızılötesi tedavinin kemikler üzerindeki etkilerini incelemek için uzun vadeli yüksek yoğunluklu bir platform koşu egzersiz modeli oluşturduk (Şekil 1A). Müdahalenin sonunda, farelerde vücut ağırlığındaki değişiklikler gözlendi. CTR grubundaki farelerin vücut ağırlığı ile karşılaştırıldığında, HIT grubunda önemli bir değişiklik tespit edilmezken,...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Tüm metabolik kemik hastalıkları arasında OP en yaygın ve önemli bir küresel halk sağlığı sorunudur11. OP, osteoblastik ve osteoklastik fonksiyonların disfonksiyonel olduğu ve prevalansının yüksek olduğu durumlarda ortaya çıkar18. Egzersiz, düşük maliyeti ve az yan etkisi ve OP'nin gelecekteki tedavisi ve önlenmesindeki büyük potansiyeli göz önüne alındığında, OP'nin önlenmesi ve tedavisi için potansiyel bir strateji olarak doktorlar ve ara...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların bildirecek herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (No. 82172475, 82222046, 82272608); Şanghay İnsan Sporları Yetkinlik Geliştirme ve Bakım Anahtar Laboratuvarı (Şanghay Spor Üniversitesi) (No. 11DZ2261100).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Uzak kızılötesi terapi cihazı  Cofoe Medikal TeknolojiKızılötesi radyasyon daha sonra deri altı kılcal ağdaki kanı ısıtmak için bir ısı kaynağı olarak uygulandı. Tedavi sıcaklığı 42 ° arasında kontrol edildi; C ve 45 &derece; C ve tüm tedavi haftada 3 kez yaklaşık 40 dakika sürdü
Mikro CTSCANCO Medikal AGVIVACT80Sol femurdaki trabeküler kemiğin BV/TV, Tb.N, Tb.Th, Tb.Sp ve kortikal kalınlık (Ct.Th) dahil olmak üzere parametrelerini değerlendirmek için mikro-BT taraması yapıldı. 
Fare koşu bandıAnhui Zhenghua Biyolojik Aparat Tesisleri Co, LtdFarelerde çalışan yüksek yoğunluklu koşu bandı
Parafin gömme makinesiLeicaParafin gömme makinesi dokuları gömebilir
Parafin DilimleyiciLeicaParafin mikrotomu dokuları dilimleyebilir
PrimeScript RT Reaktif kit 
SPSS 
Tribromoetanol Ters
TRIzol Doğru BiyolojiAG21101/AG21102

Kaynaklar

  1. Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis treatment: recent developments and ongoing challenges. Lancet Diabetes Endocrinol. 5 (11), 898-907 (2017).
  2. Rachner, T. D., Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis: now and the future. Lancet. 377 (9773), 1276-1287 (2011).
  3. Portier, H., Benaitreau, D., Pallu, S. Does physical exercise always improve bone quality in rats. Life (Basel). 10 (10), 217(2020).
  4. Reid, I. R., Billington, E. O. Drug therapy for osteoporosis in older adults. Lancet. 399 (10329), 1080-1092 (2022).
  5. Srivastava, R. K., Sapra, L., Mishra, P. K. Osteometabolism: Metabolic alterations in bone pathologies. Cells. 11 (23), 3943(2022).
  6. Cauley, J. A., Giangregorio, L. Physical activity and skeletal health in adults. Lancet Diabetes Endocrinol. 8 (2), 150-162 (2020).
  7. Rubin, C. T., Lanyon, L. E. Regulation of bone formation by applied dynamic loads. J Bone Joint Surg Am. 66 (3), 397-402 (1984).
  8. Chen, H., et al. Effect of exercise intensity on the healing of the bone-tendon interface: A mouse rotator cuff injury model study. Am J Sports Med. 49 (8), 2064-2073 (2021).
  9. Shemilt, R., et al. Potential mechanisms for the effects of far-infrared on the cardiovascular system - a review. Vasa. 48 (4), 303-312 (2019).
  10. Yu, S. Y., et al. Biological effect of far-infrared therapy on increasing skin microcirculation in rats. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 22 (2), 78-86 (2006).
  11. Jurić, F., et al. Thermal changes during clavicle fracture healing in children. J Clin Med. 13 (23), 7213(2024).
  12. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: mechanisms and interventions. Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  13. Yan, K., et al. Establishment and identification of an animal model of long-term exercise-induced fatigue. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 915937(2022).
  14. Proia, P., et al. Lactate as a metabolite and a regulator in the central nervous system. Int J Mol Sci. 17 (9), 1450(2016).
  15. Westerblad, H., Bruton, J. D., Katz, A. Skeletal muscle: energy metabolism, fiber types, fatigue and adaptability. Exp Cell Res. 316 (18), 3093-3099 (2010).
  16. Zarrouk, N., et al. Assessment of acute neuromuscular fatigue manifestations and functional performances after heavy resistance exercise. J Sports Med Phys Fitness. 61 (12), 1596-1604 (2021).
  17. Warden, S. J., Davis, I. S., Fredericson, M. Management and prevention of bone stress injuries in long-distance runners. J Orthop Sports Phys Ther. 44 (10), 749-765 (2014).
  18. Aibar-Almazán, A., et al. Current status of the diagnosis and management of osteoporosis. Int J Mol Sci. 23 (16), 9465(2022).
  19. Chang, X., Xu, S., Zhang, H. Regulation of bone health through physical exercise: Mechanisms and types. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 1029475(2022).
  20. Klein-Nulend, J., Bacabac, R. G., Bakker, A. D. Mechanical loading and how it affects bone cells: the role of the osteocyte cytoskeleton in maintaining our skeleton. Eur Cell Mater. 24, 278-291 (2012).
  21. Pacifici, R. Estrogen, cytokines, and pathogenesis of postmenopausal osteoporosis. J Bone Miner Res. 11 (8), 1043-1051 (1996).
  22. Xie, M., et al. Advancements in photothermal therapy using near-infrared light for bone tumors. Int J Mol Sci. 25 (8), 4139(2024).
  23. Peris, P. Stress fractures. Best Pract Res Clin Rheumatol. 17 (6), 1043-1061 (2003).
  24. Bourrin, S., et al. Adverse effects of strenuous exercise: a densitometric and histomorphometric study in the rat, (1985). J Appl Physiol. 76 (5), 1999-2005 (1994).
  25. Koenen, K., et al. Sprint interval training induces a sexual dimorphism but does not improve peak bone mass in young and healthy mice. Sci Rep. 7, 44047(2017).
  26. Bertels, J. C., He, G., Long, F. Metabolic reprogramming in skeletal cell differentiation. BoneRes. 12 (1), 57(2024).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Kemik MetabolizmasY ksek iddetli EgzersizKo u Band E itimiKemik K tlesiskelet Metabolik BozukluklarOsteojenik GenlerOsteoklast GenleriMikro BT AnaliziDoku Onar m
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.