Yöntem makalesi

Mekanik Olarak Havalandırılan Sıçanlarda Ekstübasyona Yapılandırılmış Bir Yaklaşım

DOI:

10.3791/68510

⸱

18 Temmuz 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosurgery, Department of Anesthesiology, Sanbo Brain Hospital, Capital Medical University, 2Department of Neurosurgery, Department of Intensive Care Medicine, Sanbo Brain Hospital, Capital Medical University, 3Laboratory of In Vivo Electrophysiology, Core Facility Center of Capital Medical University, 4Laboratory for Clinical Medicine, Capital Medical University

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, sıçan mekanik ventilasyon (OG) modellerine uyarlanmış yapılandırılmış bir ekstübasyon yaklaşımı önermektedir. Yaklaşım, ekstübasyonla ilgili komplikasyonları en aza indirirken MV'den spontan solunuma yumuşak bir geçişi kolaylaştırır. Sütten kesme, hava yolu yönetimi ve ekstübasyon sonrası bakımın standardizasyonu, deneysel çalışmaların güvenilirliğini ve tekrarlanabilirliğini artırır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mekanik ventilasyon (MV) yoğun bakımda yaygın olarak kullanılmaktadır ancak ventilatöre bağlı akciğer hasarı, ventilatöre bağlı diyafram disfonksiyonu ve ventilatöre bağlı beyin hasarı dahil olmak üzere hem kısa hem de uzun vadeli sonuçları etkileyen çeşitli komplikasyonlarla ilişkilidir. Bunlar, yoğun bakım sonrası sendromun (PICS) temel bileşenleridir. Kemirgen modelleri, MV'nin uzun süreli etkilerini ve altta yatan mekanizmalarını araştırmak için hayati öneme sahiptir, ancak standardize ekstübasyon sonrası modeller sınırlı kalmaktadır. Ekstübasyon, mevcut sıçan modellerinde genellikle tutarsız bir şekilde gerçekleştirilen ve başarısızlıklara ve komplikasyonlara yol açan kritik bir geçiş adımıdır. Bu çalışma, ekstübasyonla ilişkili komplikasyonları en aza indirirken MV'den spontan solunuma geçişi optimize etmek için tasarlanmış, MV'nin Sprague-Dawley sıçan modelleri için dört aşamalı yapılandırılmış bir ekstübasyon yaklaşımı sunmaktadır. Dahil edilen yaklaşım: (1) propofol sedasyonunu% 50'ye düşürerek ve solunum hızı, göğüs yer değiştirmesi, arteriyel kan gazları ve refleksler yoluyla hazır olup olmadığının değerlendirilmesiyle sütten kesmenin başlatılması; (2) hava yolu temizliği ve oksijenasyonun sürdürülmesi yoluyla ekstübasyon için hazırlanma; (3) sürekli sedasyon ve kontrollü tüp çıkarılması ile ekstübasyon yapılması; ve (4) sürekli izleme ve oksijen desteğini içeren ekstübasyon sonrası bakım sağlamak. İlk başarısızlıkları takiben 20 başarılı ekstübasyon ile doğrulanan bu model, özellikle PICS bağlamında MV'nin uzun vadeli etkilerini incelemek için değerli bir platform sunar. Bu yaklaşım 6 saatlik OG için optimize edilmiştir ve diğer suşlara ve daha uzun ventilasyon sürelerine genişletilebilir olduğu varsayılmaktadır, ancak bu tür uyarlamalar güvenilirliği ve hayvan refahını sağlamak için dikkatli bir doğrulama ve izleme gerektirir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mekanik ventilasyon (MV), akut solunum yetmezliği için temel solunum desteği sağlayan ve cerrahi prosedürler için anestezi sırasında hayati bir yardımcı olarak hizmet eden kritik bakımın temel taşı olmaya devam etmektedir1. Bununla birlikte, MV, ventilatöre bağlı akciğer hasarı2, ventilasyona bağlı diyafram ve ekspiratuar kas disfonksiyonu 3,4,5,6 ve ventilatöre bağlı beyin hasarı 7,8 gibi bir dizi komplikasyonla ilişkilidir. Bu komplikasyonlar ekstübasyon başarısızlığına, yoğun bakım ünitelerinde (YBÜ) ve hastanelerde uzun süreli kalışa ve artmış mortaliteye katkıda bulunur9. YBÜ sağkalım oranları iyileştikçe, dikkatler giderek MV'nin uzun vadeli sonuçlarına doğru kaymış ve YBÜ sonrası sendrom (PICS) kritik bir endişe olarak ortaya çıkmıştır10. PICS'nin altında yatan patofizyolojik mekanizmalar, kısmen ekstübasyon sonrası iyileşmenin nüanslarını ve MV11'in uzun vadeli sekellerini yakalamak için güvenilir hayvan modellerinin olmaması nedeniyle belirsizliğini korumaktadır.

Sıçan modelleri, MV kaynaklı yaralanmaların anlaşılmasını ilerletmede çok önemli olmuştur ve ölçeklenebilirlik, tekrarlanabilirlik ve mekanik içgörüler sunar. Bununla birlikte, mevcut modellerin çoğu MV'nin akut etkilerine odaklanmaktadır ve trakeostomi deneysel ortamlarda MV için baskın yöntemdir 12,13,14. Trakeostomi MV ve sonrası sütten kesmeyi kolaylaştırırken, kritik bir anatomik ve fonksiyonel bariyer olan üst solunum yolunu atlar. Bu, ventilatörle ilişkili pnömoni gibi pulmoner komplikasyonlara duyarlılığı artırır15,16. Ek olarak, trakeostomi modellerinde nazal hava akımının olmaması beyin ağı senkronizasyonunu bozar. Bu, bilişsel ve nörolojik sonuçlara ilişkin araştırmaları karmaşıklaştırır17,18. Buna karşılık, endotrakeal entübasyon / ekstübasyon modelleri üst solunum yolunun bütünlüğünü korur. Trakeostomi'nin doğal dezavantajlarından kaçınırlar ve MV'den sütten kesmenin klinik yörüngesine daha çok benzerler.

Bununla birlikte, mevcut ekstübasyon modelleri genellikle standardizasyondan yoksundur ve MV'den spontan solunumageçişte önemli değişkenliğe yol açar 19,20. Bu yapı eksikliği, hayvan ölümleriyle sonuçlanabilecek hava yolu tıkanıklığı, solunum sıkıntısı ve aspirasyon dahil olmak üzere ekstübasyonla ilgili komplikasyon risklerini beraberinde getirir. Bu tür başarısızlıklar yalnızca uzun vadeli sonuçları araştırma yeteneğini tehlikeye atmakla kalmaz, aynı zamanda ilk MV modelini etkisiz hale getirerek değerli zaman, kaynak ve finansal yatırımı boşa harcar. Bu sorunlar, başarılı ekstübasyon sonrası sağkalım ve sağlam uzun vadeli çalışmalar sağlamak için yapılandırılmış bir ekstübasyon yaklaşımına olan kritik ihtiyacın altını çizmektedir.

Bu zorlukların üstesinden gelmek için, Sprague-Dawley (SD) sıçan modelleri için MV'den sütten kesme için klinik uygulamalarla yakından uyumlu olan yapılandırılmış bir ekstübasyon yaklaşımı geliştirilmiştir. Bu yaklaşım dört temel aşamayı kapsar: sütten kesmeye yaklaşma, ekstübasyona hazırlanma, ekstübasyon yürütme ve ekstübasyon sonrası bakım. Temel prosedür önerileri, sütten kesme sırasında hafif ila orta derecede sedasyonun sürdürülmesini, özellikle propofol infüzyonunun tam MV sırasında kullanılan dozun% 50'sine düşürülmesini içerir - ajitasyonu önlerken spontan solunuma izin vermek için. Ekstübasyon hazırlığı, dakikada 60-70 nefeslik stabil bir solunum hızına ve basit, kalibre edilmiş ev yapımı bir ölçek kullanılarak yaklaşık olarak tahmin edilebilen yeterli spontan tidal hacimlere dayanarak değerlendirilmelidir. Ekstübasyondan önce bilincin tam olarak geri kazanılması gerekli değildir. Entübasyona bağlı ajitasyon riskini daha da azaltmak için ekstübasyon sırasında propofol infüzyonu kesilmelidir. Ekstübasyon sürecini standardize ederek, bu yaklaşım değişkenliği en aza indirdi, ekstübasyonla ilişkili komplikasyonları önledi ve sağkalım oranlarını artırdı. Bu model, 6 saate kadar OG süreleri için optimize edilmiştir; MV'nin bu sürenin ötesine uzatılması, sağkalımı ve güvenilir sonuçları sağlamak için modifiye sedasyon protokolleri, artımlı sütten kesme stratejileri ve dikkatli fizyolojik izleme gerektirebilir. SD sıçanlarda doğrulanmış olmasına rağmen, protokol, suşa özgü solunum mekaniğini ve akciğer hasarına karşı değişen duyarlılıkları hesaba katmak için ventilasyon ayarlarını ayarlayarak diğer suşlar için uyarlanabilir. Uygun modifikasyonlarla, yapılandırılmış yaklaşım, deneysel modeller arasında hem tekrarlanabilirliği hem de translasyonel alaka düzeyini artırarak daha uzun vadeli ventilasyon çalışmalarını da destekleyebilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çalışma, ekstübasyon sonrası davranışsal testlere odaklandı ve Capital Medical University Hayvan Deneyleri ve Deney Hayvanları Refahı Komitesi tarafından onaylandı (No. AEEI-2024-391). 8 haftalık tüm sıçanlar (SD, erkek, 200-250 g), deneyden 3 gün önce Capital Medical University'deki hayvan tesisinde iklimlendirildi. Sıçan, sabah 8:00'de başlayan 12 saatlik bir aydınlık/karanlık döngüsü, 25 °C ± 1 °C sıcaklık ve nem %50 ± %10'da tutularak kontrollü bir ortam altında barındırıldı. Yiyecek ve su ad libitum olarak sağlandı. Anestezi, aspirasyon ve kan işleme ile ilgili tüm prosedürler, kişisel koruyucu ekipman kullanımı, steril teknikler ve kurumsal biyogüvenlik protokollerine uyum dahil olmak üzere uygun güvenlik önlemleri ile gerçekleştirildi. Tüm prosedürler ARRIVE yönergelerine uygun olarak gerçekleştirildi. Mevcut çalışmada kullanılan tüm ekipmanlar Şekil 1'de sunulmuştur. Reaktiflerin ve kullanılan ekipmanın listesi Malzeme Tablosunda verilmiştir.

1. Video laringoskopi yardımlı oral entübasyon

  1. Entübasyon cihazını hazırlayın.
    1. Bir kulak kiri temizleme cihazından uyarlanmış, özel olarak modifiye edilmiş bir entübasyon cihazı kullanın (kepçe çapı 5,5 mm, bir dil bastırıcıya kıvrılmış). Bu cihaz, gerçek zamanlı görselleştirme için bir akıllı telefona Bluetooth bağlantılı bir ışık kaynağı ve kamera ile donatılmıştır (Şekil 2A).
  2. Bir endotrakeal tüp seçin.
    1. Sıçanın ağırlığına göre 16 G'lik bir endotrakeal tüp seçin.
  3. Anesteziyi indükleyin (kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek).
    1. Kuyruk damarı yoluyla propofol (2 mg / 100 g) enjekte edin. Görsel ve ayak parmağı sıkışma tepkilerinin olmadığını doğrulayarak anesteziyi onaylayın. Oksijenasyon durumunun bir göstergesi olarak distal cilt rengini izleyin.
  4. Fareyi konumlandırın.
    1. Anestezi uygulanmış fareyi küçük bir hayvan masasına sabitleyin. Uzuvları ve kesici dişleri sabitleyin ve küçük bir hayvan ısıtma battaniyesi kullanarak vücut ısısını 37-38 °C'de tutun.
  5. Entübasyon gerçekleştirin.
    1. Dili yavaşça sağ ağız köşesine doğru çekin. Entübasyon cihazını dilin tabanına yerleştirin ve epiglottise doğru ilerletin.
    2. Glotisi ortaya çıkarmak için cihaz ucunu kaldırın. İnhalasyon sırasında endotrakeal tüpü yerleştirin (Şekil 2-C). Entübe edildikten sonra, sıçan ventilatöre bağlanacaktır.

2. Mekanik ventilasyon

  1. Oksijen konsantratörünü bağlayın.
    1. Uygun oksijen konsantrasyonunu ayarlayın ve ventilatöre bağlanın (genellikle% 80).
  2. Ventilatör parametrelerini ayarlayın.
    1. Akciğer koruyucu ayarlara sahip küçük bir hayvan ventilatörü kullanarak fareyi 6 saat boyunca havalandırın: tidal hacim: 4-6 mL / kg, PEEP: 0 cmH2O.
  3. Anesteziyi koruyun: Bir şırınga pompası ile propofol (4 mg / kg / saat) infüze edin.
  4. Kan gazlarını izleyin.
    1. Bir kan gazı analizörü kullanarak arteriyel kan gazlarını her 3 saatte bir test edin. Oksijenasyon durumunun bir göstergesi olarak kan gazı analizleri arasında distal cilt rengini sürekli olarak izleyin.

3. Havayolu basıncı son nokta kontrolü (APEC) ekstübasyon prosedürü

NOT: Planlanan mekanik ventilasyon süresi tamamlandıktan sonra, dört aşamalı ekstübasyon protokolüne devam edin: (1) Sütten kesmeye yaklaşma, (2) Ekstübasyonun hazırlanması, (3) Ekstübasyonun yürütülmesi ve (3) Ekstübasyon sonrası bakım (Şekil 3). Bu sistematik yaklaşım, ekstübasyonla ilgili komplikasyonları en aza indirirken ve deneysel modelin bütünlüğünü korurken spontan solunuma yumuşak bir geçiş sağlar.

  1. Sütten kesmeye yaklaşıyor
    1. Propofol infüzyonunu azaltın: Uzuv ve kafa hareketlerini en aza indirirken diyaframın yeniden aktivasyonuna izin vermek için propofol infüzyon hızını %50 azaltın.
    2. Sütten kesmeye hazır olup olmadığını değerlendirin: Ventilatörün bağlantısını kesmeden önce aşağıdaki parametreleri kontrol edin: - Solunum hızı: 60-70 nefes/dk; Göğüs yer değiştirmesi: ≥1 mm (ksifoid işlemine yerleştirilen çelik bir iğne kullanarak ölçün); PaCO2: 35-45 mmHg; pH: 7.35-7.45; Bıyık ve dil reflekslerinin varlığı (isteğe bağlı).
      NOT: Bıyık ve dil refleksleri ikili göstergeler (yok veya var) olarak tanımlandı. Bıyık refleksi, hafif dokunsal stimülasyona yanıt olarak vibrissaların istemsiz hareketini veya seğirmesini ifade eder. Dil refleksi, hafif stimülasyon üzerine dilin geri çekilmesi veya hareket etmesi ile karakterize edildi.
    3. Ventilatörün bağlantısını kesin: Tüm kriterler karşılandığında ventilatörün bağlantısını kesin ve fareyi ekstübasyon için hazırlamaya devam edin.
  2. Ekstübasyon için hazırlanıyor
    1. Oksijenasyonu sağlayın: Yeterli oksijenasyonu (genellikle %80) sürdürmek için kendi kendine yapılan bir yüz maskesi kullanın ve oksijenasyon durumunun bir göstergesi olarak cilt rengini kullanın.
    2. Açık hava yolu salgıları: Kendi kendine yapılan bir aspirasyon cihazı kullanın (10 mL'lik bir şırıngaya bağlı kısaltılmış epidural kateter [~ 5,5 cm]). Emme hızını seans başına 3-4 saniye boyunca ~2 mL/s'de kontrol edin.
    3. Yeterli hazırlık ve hava yolu temizliğini takiben, prosedür ekstübasyonun yürütülmesine devam eder.
      NOT: Tipik sekresyon hacmi emme başına <0.5 mL'dir. Birikimi en aza indirmek için OG sırasında her 30 dakikada bir emme yapılır. Ekstübasyon sırasında, emme frekansı genellikle 5-8 kez idi ve toplamda tahmini miktar 2-4 mL'dir.
  3. Ekstübasyon yürütme
    1. Sedasyonu koruyun: Ekstübasyon sırasında ajitasyonu önlemek için propofolü yarım dozda tutun.
    2. Endotrakeal tüpü çıkarın: İki elle kullanılan bir teknik kullanın ve farenin kafasını sol işaret parmağı ve başparmağınızla sabitleyin. Tüpü sağ işaret parmağınız ve başparmağınızla nazikçe çıkarın.
    3. Propolü bırakın: Ekstübasyondan hemen sonra propofol infüzyonunu durdurun.
      NOT: Başarılı ekstübasyon hipoksemi veya hiperkapni ile sonuçlanmamalıdır. Başarılı bir ekstübasyondan sonra, gayretli bir ekstübasyon sonrası bakım şarttır.
  4. Ekstübasyon sonrası bakım
    1. Yaşamsal belirtileri izleyin: Solunum hızını, inspiratuar genliği ve distal cilt rengini izleyin.
    2. Oksijenasyon sağlayın: Yeterli oksijen kaynağını sağlamak için (genellikle ~%80) kendi kendine yapılan bir yüz maskesi kullanın.
    3. Yeniden entübasyon için hazırlanın: Tüm entübasyon cihazlarını (Şekil 1) elinizin altında ve gerekirse hemen kullanıma hazır bulundurun.
      NOT: Doğrultma refleksi restorasyonuna kadar ortalama gözlem süresi 48.5 dk ± 10.4 dk'dır. Arteriyel kan gazı analizi medyan 20 dakikada, PaO2 73.2 mmHg ± 4.6 mmHg ve PaCO2 48.3 mmHg ± 3.6 mmHg ile yapıldı.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu yapılandırılmış ekstübasyon yaklaşımı, dört başarısız ekstübasyon ve 20 başarılı ekstübasyon üzerinde geliştirilmiştir. İlk dört denemede, deneyime veya bireysel yargıya dayalı olarak ekstübasyon yapıldı. Dört sıçanın başarısız ekstübasyonunun nedenleri arasında ekstübasyon sırasında ajitasyon (n = 2), ekstübasyon sonrası solunum yetmezliği (n = 1) ve sekresyonlarla hava yolu tıkanıklığı (n = 1) vardı. Bu başarısızlıklar, optimal sedasyon, berrak bir hava yolu ve yeterli oksijenasyonun...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışmada, MV'nin bir sıçan modeli için, ilk dört başarısız ekstübasyon ve altta yatan nedenlerden esinlenerek yapılandırılmış bir APEC ekstübasyon yaklaşımı oluşturulmuştur. Bu yaklaşım kullanılarak ekstübe edilen 20 sıçanın tümü, takip eden üç gün içinde başarılı oldu ve sonraki davranış testlerini tamamladı. Dört ana adımdan oluşan yaklaşım - Sütten kesmeye yaklaşma, Ekstübasyon hazırlama, Ekstübasyon yürütme ve Ekstübasyon sonrası bakım - ekstübasyonla ilişkili komplikasyonları en...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar tarafından finansal veya başka türlü hiçbir çıkar çatışması beyan edilmez.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hiç kimse.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
16G Endotrakeal TüpNJKEWBIONAEndotrakeal tüp
Kan Gazı AnalizörüEpocal IncEPOC okuyucuKan gazlarını izleyin
İntravenöz KateterIntrocan Güvenliği4254074BAtardamarlarda ve toplardamarlarda kalır
Mikro Şırınga PompasıSLGO Medikal TeknolojiCP-1000 Serisiİlaçların infüzyonu
Evcil Hayvan Oksijen KonsantratörüPekin zhongshidichuang Bilim ve teknoloji geliştirme Co, LtdZS-MVOksijen temini
Küçük Hayvan Isıtma BattaniyesiPekin zhongshidichuang Bilim ve teknoloji geliştirme Co, LtdZS-TSıcaklığı koruyun
Küçük Hayvan VantilatörüNJKEWBIOKW-100 SerisiNefes almayı sağlayın

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Dasta, J. F., Mclaughlin, T. P., Mody, S. H., Piech, C. T. Daily cost of an intensive care unit day: The contribution of mechanical ventilation. Crit Care Med. 33 (6), 1266-1271 (2005).
  2. Slutsky, A. S. History of mechanical ventilation. From Vesalius to ventilator-induced lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 191 (10), 1106-1115 (2015).
  3. Reynolds, S. C., et al. Mitigation of ventilator-induced diaphragm atrophy by transvenous phrenic nerve stimulation. Am J Respir Crit Care Med. 195 (3), 339-348 (2017).
  4. Shi, Z. H., et al. Changes in respiratory muscle thickness during mechanical ventilation: Focus on expiratory muscles. Anesthesiology. 134 (5), 748-759 (2021).
  5. Shi, Z. H., et al. Expiratory muscle dysfunction in critically ill patients: Towards improved understanding. Intensive Care Med. 45 (8), 1061-1071 (2019).
  6. Van Den Berg, M., et al. Super-relaxed myosins contribute to respiratory muscle hibernation in mechanically ventilated patients. Sci Transl Med. 16 (758), eadg3894(2024).
  7. González-López, A., et al. Mechanical ventilation triggers hippocampal apoptosis by vagal and dopaminergic pathways. Am J Respir Crit Care Med. 188 (6), 693-702 (2013).
  8. Pun, B. T., Ely, E. W. The importance of diagnosing and managing ICU delirium. Chest. 132 (2), 624-636 (2007).
  9. Trudzinski, F. C., et al. Risk factors for prolonged mechanical ventilation and weaning failure: A systematic review. Respiration. 101 (10), 959-969 (2022).
  10. Voiriot, G., et al. Chronic critical illness and post-intensive care syndrome: From pathophysiology to clinical challenges. Ann Intensive Care. 12 (1), 58(2022).
  11. Brück, E., et al. Plasma HMGB1 levels and physical performance in ICU survivors. Acta Anaesthesiol Scand. 65 (7), 921-927 (2021).
  12. Bruells, C. S., et al. Influence of weaning methods on the diaphragm after mechanical ventilation in a rat model. BMC Pulm Med. 16 (1), 127(2016).
  13. Gayan-Ramirez, G., et al. Intermittent spontaneous breathing protects the rat diaphragm from mechanical ventilation effects. Crit Care Med. 33 (12), 2804-2809 (2005).
  14. Thomas, D., et al. Time course of diaphragm function recovery after controlled mechanical ventilation in rats. J Appl Physiol. 115 (6), 775-784 (2013).
  15. Henrich, D. E., Blythe, W. R., Weissler, M. C., Pillsbury, H. C. 3rd Tracheotomy and the intensive care unit patient. Laryngoscope. 107 (7), 844-847 (1997).
  16. Hsu, C. L., et al. Timing of tracheostomy as a determinant of weaning success in critically ill patients: A retrospective study. Crit Care. 9 (1), R46-R52 (2005).
  17. Gretenkord, S., et al. Coordinated electrical activity in the olfactory bulb gates the oscillatory entrainment of entorhinal networks in neonatal mice. PLoS Biol. 17 (1), e2006994(2019).
  18. Salimi, M., et al. Disrupted connectivity in the olfactory bulb-entorhinal cortex-dorsal hippocampus circuit is associated with recognition memory deficit in Alzheimer's disease model. Sci Rep. 12 (1), 4394(2022).
  19. Bruells, C. S., et al. Recovery of diaphragm function following mechanical ventilation in a rodent model. PLoS One. 9 (1), e87460(2014).
  20. Dénervaud, V., Gremlich, S., Trummer-Menzi, E., Schittny, J. C., Roth-Kleiner, M. Gene expression profile in newborn rat lungs after two days of recovery of mechanical ventilation. Pediatr Res. 78 (6), 641-649 (2015).
  21. De Souza, A. B. F., et al. Effects in vitro and in vivo of hesperidin administration in an experimental model of acute lung inflammation. Free Radic Biol Med. 180, 253-262 (2022).
  22. Almeida, M. R., et al. The effects of different ventilatory modes in female adult rats submitted to mechanical ventilation. Respir Physiol Neurobiol. 284, 103583(2021).
  23. Cândido, L. D. S., et al. Different tidal volumes may jeopardize pulmonary redox and inflammatory status in healthy rats undergoing mechanical ventilation. Oxid Med Cell Longev. 2021, 5196896(2021).
  24. Da Silva, A. C. L., et al. Sigh maneuver protects healthy lungs during mechanical ventilation in adult Wistar rats. Exp Biol Med (Maywood). 245 (15), 1404-1413 (2020).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Mekanik VentilasyonS an Ekst basyonuYap land r lm Ekst basyonVentilat r Kaynakl YaralanmaDiyafram DisfonksiyonuBeyin HasarS rme ProtokolEkst basyon Sonras Bak mHavayolu Temizli iPropofol Sedasyonu

İlgili makaleler