Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

İn Vivo Lazer Konfokal Görüntüleme ile Deri Altı Bağ Dokusunda Akupunktur Kaynaklı Dinamiklerin Gerçek Zamanlı İzlenmesi

560 görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/69173

⸱

10 Ekim 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Acupuncture and Moxibustion, Jianghan University, 2School of Medicine, Jianghan University, 3Institute of Acupuncture and Moxibustion, China Academy of Chinese Medical Sciences

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Bu çalışma, canlı sıçanlarda vazodilatasyon ve kollajen yeniden şekillenmesi gibi akupunkturun neden olduğu morfolojik dinamikleri izlemek için gerçek zamanlı bir yöntem olarak in vivo lazer konfokal görüntülemeyi ortaya koymaktadır. Floresein sodyum etiketlemesini kullanan yaklaşım, hem anlık hem de gecikmiş doku tepkilerini yakalayarak akupunktur ve yakı da dahil olmak üzere fizik tedavileri niceliksel olarak değerlendirmek için yeni bir araç sunuyor.

Özet

Akupunktur etkilerinin gerçek zamanlı dinamik izlenmesi, biyolojik mekanizmalarını aydınlatmak için çok önemlidir, ancak geleneksel histolojik yöntemler, canlı mikro ortamdaki geçici tepkileri yakalamakta başarısız olur. Burada, akupunktur müdahalesini takiben lokal dokulardaki morfolojik değişikliklerin yüksek çözünürlüklü, gerçek zamanlı olarak gözlemlenmesini sağlayan in vivo lazer konfokal görüntülemeye dayalı bir metodolojik çerçeve oluşturduk. Sıçanlarda intravenöz sodyum floresein enjeksiyonundan sonra, akupunktur sırasında mikro sirkülasyon ve hücre dışı matristeki dinamik değişiklikler (ör., kollajen lif düzenlemesi) izlendi. Sonuçlar, bu yöntemin, akupunktur tarafından indüklenen ani (örneğin, vazodilatasyon) ve gecikmiş (örneğin, inflamatuar yanıt) doku reaksiyonlarını, 0.5 μm'lik bir uzamsal çözünürlük ve 3.5 fps'lik bir zamansal çözünürlükle açıkça ayırt ettiğini göstermiştir. Sonraki nicel analiz, morfolojik parametrelerin objektif ölçümünü mümkün kıldı. Bu çalışmada açıklanan bu protokol, akupunktur mekanizmalarının in vivo çalışmaları için bir görselleştirme aracı sağlar ve diğer fiziksel uyaranların (örneğin, yakı) etkilerini değerlendirmek için teknik bir referans görevi görür.

Giriş

Geleneksel tıbbın temel taşı olan akupunktur, karmaşık doku düzeyinde tepkiler yoluyla terapötik etkiler gösterir 1,2,3,4. Bununla birlikte, mekanik içgörüler, statik anlık görüntüleri yakalayan ancak canlı doku5'teki morfolojik adaptasyonların (örneğin, vazomodülasyon, hücre dışı matris yeniden şekillenmesi) gerçek zamanlı dinamiklerini çözemeyen geleneksel histoloji ile sınırlı kalmaktadır. İntravital mikroskopi dinamik görüntüleme potansiyeli sunarken, akupunktur araştırmalarında uygulaması, özellikle fiziksel uyaranlara uzay-zamansal tepkileri ölçmek için azdır 6,7. Buna karşılık, bu konfokal görüntüleme yaklaşımı, derin dokularda (örneğin, kas katmanları ve akupunktur noktaları ST 36/GB 34) kırmızı kan hücresi hareket hızındaki değişim hızı ve kollajen düzenlemesi gibi yapısal ve dinamik parametrelerin kantitatif olarak çıkarılmasını sağlar ve uzamsal çözünürlük, hacimsel görüntüleme ve uzun süreli izlemede geleneksel intravital mikroskopinin sınırlamalarının üstesinden gelir8.

Lazer konfokal görüntüleme, hücresel çözünürlükte9,10,11,12,13 in vivo görselleştirme için güçlü bir araç olarak ortaya çıkmıştır. Yine de, mevcut çalışmalar öncelikle yüzeysel dokulara (örneğin, cilt veya kornea) odaklanmakta ve çok azı derin akupunktur hedeflerini ele almakta veya kantitatif morfolojik analizi entegre etmektedir. En önemlisi, bildiğimiz kadarıyla, akupunktur manipülasyonunu canlı doku kinetik değişiklikleriyle ilişkilendirmek için standart bir metodoloji mevcut değildir.

Burada, akupunkturun neden olduğu morfolojik olayların gerçek zamanlı takibi için konfokal görüntüleme tabanlı bir metodolojik platform kurarak bu boşluğu dolduruyoruz. Kontrast madde olarak sodyum floresein (% 1 konsantrasyonda, 0.1 mL / 100g vücut ağırlığında intravenöz olarak uygulanır) kullanarak, akupunktur stimülasyonu sırasında 400 μm derinliğe kadar 450 μm × 450 μm görüş alanı boyunca mikro dolaşım ve matris değişikliklerinin yüksek çözünürlüklü izlenmesini (0.5 μm uzamsal/3.5 fps zamansal çözünürlük) elde ederiz. Bu yaklaşım ayrıca, son nokta histolojisinin sınırlamalarının üstesinden gelerek, kollajen lifinin yeniden hizalanmasının 3 boyutlu yeniden yapılandırılmasını ve parametre miktarının belirlenmesini sağlar.

Bu protokolün uygulanması için pratik hususlar şunlardır: (i) önerilen donanım, ≥0,5 μm çözünürlüğe ve ≥3 fps edinme hızına sahip bir konfokal sistem içerir, (ii) tipik sınırlamalar, 90 saniyenin ötesinde sürekli görüntüleme ve solunum veya doku hareketine duyarlılığı içeren fotoağartmayı içerir ve (iii) oldukça yoğun veya saçılan dokularda derinlik penetrasyonu azaltılabilir. Bildiğimiz kadarıyla, bu çalışma sadece akupunkturla uyarılmış doku yeniden düzenlemesinin ilk dinamik atlasını sağlamakla kalmıyor, aynı zamanda canlı sistemlerde fizik tedavilerin (örneğin yakı) değerlendirilmesi için bir emsal teşkil ediyor. Geçici fizyolojik tepkileri ölçülebilir ölçümlere dönüştürerek, nöromodülatör tedavilerin mekanik çalışmaları için yeni bir paradigma sunuyoruz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm prosedürler Çin Çin Tıp Bilimleri Akademisi Akupunktur ve Yakı Enstitüsü Hayvan Etik Kurulu tarafından onaylandı (No. D2023-01-29-01). Sekiz Erkek Sprague Dawley (SD) sıçanı (8 haftalık, 200-220 g) Biotechnology Co., Ltd.'den (Lisans No. SCXK (Jing) 2020-0001). Hayvanlar, kontrollü koşullar altında sterilize edilmiş izolasyon muhafazalarına yerleştirildi: 12 saatlik aydınlık-karanlık döngüsü, 21 ±± 2 °C sıcaklık, standart yem peletlerine ve suya ad libitum erişim ile. Tüm deneyler kurumsal yönergelere ve Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzuna uygundur.

NOT: Ana prosedürleri vurgulayan bir akış şeması Şekil 1'de gösterilmektedir.

1. Hayvan ve izleyicinin hazırlanması: Floresein Sodyum (FS)

  1. %1'lik bir floresein sodyum (FS) boyama çözeltisi hazırlamak için, 0.1 g FS'yi 10 mL steril salin (%0.9 NaCl) içinde çözün. Çözeltiyi daha sonra kullanmak üzere oda sıcaklığında (RT) saklayın.
  2. SD sıçanlarını izofluran indüksiyonu yoluyla uyuşturun (indüksiyon: %5 izofluran, idame: %2.5 izofluran). Elektrikli saç kesme makineleri kullanarak kafatası bölgesindeki (baş hariç) tüyleri alın, ardından tüy dökücü kremi 5 dakika boyunca uygulayın. Ilık suyla durulayarak kalan krem ve saçları yok edin.
    NOT: Kantitatif görüntüleme analizini tehlikeye atabilecek dermal yaralanmayı önlemek için çalışma sırasında kesme bıçağını cilt yüzeyine paralel tutun. Hayvan hipotermisinin deneysel sonuçları etkilemesini önlemek için durulama için kesinlikle ılık su kullanılmalıdır.

2. FS Enjeksiyonu

  1. Fareyi emniyete alın.
    1. Saçları alınmış sıçanları 1.0 g / kg'lık bir dozajda% 10 üretanın (1 g / 10 mL, salin içinde) intraperitoneal enjeksiyonu ile uyuşturun.
    2. Tam anestezi sağlandıktan sonra, hayvanları ameliyat platformunda sırtüstü pozisyonda sabitleyin. Forseps kullanarak arka pençeye hafif bir ayak parmağı tutamı uygulayın ve geri çekilme refleksinin olmadığını gözlemleyin. Korneaya nemli bir pamuk ucuyla hafifçe dokunarak kornea refleksinin kaybını doğrulayın.
    3. Prosedüre devam etmeden önce sürekli tepkisizliği ve stabil solunum hızını doğrulayın. Anestezi sırasında 37 °C'lik bir ısıtma yastığı ile hayvanın vücut ısısını koruyun.
      NOT: Görüntüleme penceresinin yerini değiştirmesini tehlikeye atacak istemsiz hareketleri önlemek için tam anestezi onaylanmalıdır.
  2. 100 g vücut ağırlığı başına 0.1 mL'lik bir dozajda kuyruk damarı yoluyla% 1 FS solüsyonunu intravenöz olarak uygulayın.
    1. 27 G iğne ile donatılmış 1 mL'lik bir şırınga kullanarak kuyruk damarı enjeksiyonu yapın. Vazodilatasyonu teşvik etmek için kuyruğu ılık suyla nazikçe silin, ardından %70 etanol ile dezenfekte edin.
    2. İğneyi damarın uzunlamasına ekseni boyunca sığ bir açıyla (≤15°) yukarı doğru yerleştirin. Çözeltiyi 0.1-0.2 mL / dak hızında yavaşça enjekte edin.
    3. Teknik dirençsiz akışı, perivasküler ödemin olmamasını sağlayın ve göz bebeklerinde, kulak kepçesinde ve pençelerde sarı renk değişikliği ile başarılı enjeksiyonu onaylayın.
      NOT: Kazara intraarteriyel enjeksiyondan kesinlikle kaçınılmalıdır.

3. İn vivo prob konfokal lazer endomikroskopi (pCLE) kurulumu

  1. pCLE sistemini etkinleştirin ve hem tarama probu konektörünün hem de distal ucun temizliğini doğrulayın.
  2. Probun distal ucunu (tarama ucu olarak da adlandırılır) fizyolojik salinle nemlendirilmiş bir pamuklu çubuk kullanarak temizleyin, ardından lens dokusuyla nazikçe kurulayın.
  3. Lazer probunu hedef gözlem bölgesine (örn. medial uyluk bölgesi) yerleştirin. Konfokal görüntüleme probunu ayarlanabilir bir kelepçe kullanarak sabitleyin, sıkıştırma artefaktları olmadan doku yüzeyiyle sabit temas sağlayın ve ayar düğmesini sıkarak sabitleyin.
  4. Probu pCLE sistemine bağlayın ve edinme parametrelerini yapılandırın (örneğin, görüş alanı [FOV], depolama dizini). Bu deneyde kullanılan spesifik parametreler aşağıdaki gibidir: Derinlik: 18 μm; Lazer: 219 mW; Parlaklık: %76; Hız: 1920 × 540; Kazanç: 2400; Yakınlaştırma: 1× (464 μm); Filtre: LP 515; Arama Tablosu: Gri Tarama.
    NOT: Görüntüleme parametreleri (tarama derinliği/lazer gücü), doku mimarisinin farklı bir şekilde görselleştirilmesi elde edilene kadar yinelemeli olarak optimize edildi. Tutarlı yoğunluk, uzunlamasına görüntü karşılaştırılabilirliği için kritik öneme sahiptir. Prob-doku arayüzüne 37 °C salin damlacıkları eklemek, ilk yinelemelerde gözlenen sinyal kaybını ortadan kaldırdı. Bu çalışmada kullanılan lazer gücü, in vivo konfokal görüntülemede fototoksisite için yaygın olarak kabul edilen eşiğin altındadır.

4. Organizasyon yapısının pCLE ile görüntülenmesi ve edinilmesi

  1. Probu cilt yüzeyine yerleştirin ve doku mimarisini görselleştirmek için veri toplamayı başlatın.
    1. Probu kalem tutuşu şeklinde tutun; Hedef bölgelere (örneğin, görüş alanı içinde damar sistemi veya fibröz bağ dokusu bulunan alanlar) manevra yapın, distal ucu doğrudan görüntüleme bölgesine yerleştirin, ardından prob kolu aracılığıyla stabilize edin.
  2. İlk olarak, fizyolojik koşullar altında 1 dakika boyunca temel doku mimarisini elde edin, ardından akupunktur müdahalesi sırasında 5 dakika kayıt yapın. Müdahale sonrası edinimi sonlandırın. Veri dosyaları otomatik olarak adım 3.3-3.4'te belirtilen dizine kaydedilir.
    NOT: Dosyalar katman yığınları (.tiff) ve tek tek çerçeveler (.tiff) olarak kaydedilir.

5. Akupunktur müdahalesi

NOT: Görüntüleme adımındaki edinim, müdahale sırasında gerçekleştirilir.

  1. Prob tarafından gözlemlenen dokuya bitişik akupunktur noktasına 1 cun (Çin uzunluk ölçü birimi yaklaşık 13 mm'dir) tek kullanımlık paslanmaz çelik bir iğne yerleştirin. Bir ucu paslanmaz çelik iğneye bağlayın ve diğer referans elektrodu farenin kuyruğuna sabitleyin.
  2. Aşağıdaki parametreleri kullanarak elektroakupunktur (EA) stimülasyonu uygulayın: 5 dakika boyunca 1 mA yoğunluk, yoğun dağılımlı dalga (2/15 Hz).
    NOT: Görüntü stabilitesini tehlikeye atan EA kaynaklı dermal titremeleri önlemek için iğne yerleştirme bölgesi ile prob arasında yeterli mesafeyi (>3 mm) koruyun.

6. Görüntü analizi

  1. Elde edilen görüntü yığınlarını ImageJ'de açın. Uzamsal kalibrasyonu mikrometreye dönüştürün ve eklenti uyumluluğu için görüntü formatını 8 bit'e dönüştürün (Görüntü > Türü > 8 bit).
    NOT: Varsayılan görüntü boyutları inç cinsindendir (sisteme özel ayar).
  2. Aşağıdakiler için ilgi alanını (ROI'ler) tanımlayın: mikro sirkülasyon: tek kılcal segment, matris yapısı: kolajen lif bölgesi. Boylamsal tutarlılık için sıralı görüntülerde aynı yatırım getirilerini koruyun.
  3. Mikro sirkülasyon analizi
    1. Gözlemlenmesi gereken kırmızı kan hücrelerini içeren bölgeyi seçin ve diğer engelleyici alanları kaldırmak için görüntüyü kırpın (Dikdörtgen > Görüntü > Kırp). Kırmızı kan hücrelerini (RBC) özel olarak segmentlere ayırmak için eşik aracını kullanın (Görüntü > Ayarla > Eşik aracı).
    2. MTrack2 eklentisini yükleyin. Paraziti hariç tutmak ve doğru RBC izlemeyi sağlamak için RBC boyutuna (bu deneyde 10-42 piksel) göre uygun izleme parametrelerini ayarlayın (MTrack2> Eklenti > İzleme).
  4. Matris yapısal analizi
    1. Yönlülük eklentisini yükleyin, Fourier bileşenleri modunu seçin ve kolajen liflerinin 0° ila 180° yönelimleri boyunca dağılım oranı üzerinde istatistiksel analiz yapın (Yönlülüğü Analiz >).

7. Verilerin sonuçlandırılması

  1. Analiz edilen verileri adlandırma kuralını kullanarak TIFF/XSL formatlarında dışa aktarın: [Group]_[Date].extension. Tüm ham ve işlenmiş dosyaları belirlenmiş güvenli bir sunucuya yedekleyin. İstatistiksel analiz için nicel çıktıları bir özet elektronik tabloya kaydedin.

8. Güvenlik ve atık yönetimi

  1. Kişisel koruyucu ekipman (PPE): Üretan, izofluran veya floresein sodyumla çalışırken nitril eldiven, laboratuvar önlüğü ve koruyucu gözlük takın.
  2. Anestezik kullanım: Soluma maruziyetini en aza indirmek için çeker ocak içinde üretan veya izofluran içeren prosedürleri gerçekleştirin.
  3. Kesici alet önlemleri: Tüm iğneleri ve keskin nesneleri derhal delinmeye karşı dayanıklı kesici alet kaplarına atın.
  4. Elektroakupunktur (EA) güvenliği: Kaçak akımları veya kısa devreleri önlemek için EA ekipmanının elektriksel izolasyonunu doğrulayın ve kablo bağlantılarını güvenli hale getirin.
  5. Atık bertarafı: İzofluran şişelerini kurumsal yönergelere göre tıbbi atık olarak atın. Boya ile kirlenmiş malzemeleri (örn. swablar, mendiller) atıkları kapalı tehlikeli atık konteynerlerine atın. Keskin nişancıları sertifikalı kesici alet imha kutularında toplayın.
    NOT: Tüm prosedürler kurumsal güvenlik ve çevre sağlığı yönetmeliklerine uygun olmalıdır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu protokol, akupunkturun mikro sirkülasyon ve hücre dışı matris mimarisi üzerindeki etkilerinin gerçek zamanlı dinamik değerlendirmesi için pCLE'nin faydasını göstermektedir. Kuyruk veni yoluyla intravenöz sodyum floresein uygulamasından sonra, lokal kılcal damarlar içindeki eritrosit hızındaki değişiklikler ve kollajen lif düzenlemesinin yeniden düzenlenmesi gözlemlenerek değişiklikler değerlendirildi.

Akupunkturdan 5 dakika s...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Sonuçlarda gösterildiği gibi, bu çalışmada oluşturulan in vivo konfokal görüntüleme protokolü, ticari olarak temin edilebilen standart ekipman ve rutin floresan etiketleme kullanılarak akupunktur müdahalesi sırasında mikro dolaşım ve hücre dışı matris dinamiklerinin eşzamanlı kantitatif analizini sağlar. Bu protokolün başarısı iki kritik adıma dayanır: sodyum floresein enjeksiyonunun hassas zamanlaması, sürekli mikrovasküler kontrast14 sağlanması ve uzunl...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Bu araştırma Çin Ulusal Anahtar Araştırma ve Geliştirme Programı (2024YFA1209900, 2024YFA1209903, 2024YFA1209904); Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı'nın Özel Fonları (82050006); Hubei Eyaleti TCM Tıp İdaresi TCM Araştırma Projesi (ZY2025Z015); Jianghan Üniversitesi Araştırma Fonu (2024JCYJ13).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
1 cun akupunktur iğnesiHwato, Suzhou, ÇinYOK13 mm/0,25 mm
%10 floresein sodyumGuangxi Wuzhou İlaç Co Ltd, ÇinH45021477
Hayvan anestezi makinesiRWD, Shenzhen, ÇinR620IE Serisi
Vücut ısısı monitörüRWD, Shenzhen, Çin69026
Elektrikli akupunktur aparatıHwato, Suzhou, ÇinSDZ-III Serisi
Tüy dökücü kremVeet, Fransa
ResimJUlusal Sağlık Enstitüleri, ABDhttps://imagej.nih.gov/ij/
İn vivo prob konfokal lazer endomikroskopiOptiscan, AvustralyaGörünümnVivoB30Çap: 4 mm el tipi rijit prob, bükülmeye karşı dayanıklıdır ve zaman içinde yapısal bütünlüğü korur. Uzunluk: ≥ 46 mm. Tarama Modu: Yakınlaştırmalı tarama özelliği.
İzofluranRWD, Shenzhen, Çin
R510-22-16
ÜretanSigma-Aldrich, Amerika Birleşik Devletleri94300

Kaynaklar

  1. Mo, Y., et al. Acupuncture as adjunctive treatment for linezolid-induced peripheral neuropathy: a case series report. Front Neurol. 21 (15), 1388544(2024).
  2. Roynard, P., Frank, L., Xie, H., Fowler, M. Acupuncture for small animal neurologic disorders. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 48 (1), 201-219 (2018).
  3. Zhou, L., Li, X., Ao, J., Duan, N. Acupuncture and cellular mechanisms: the role of foxo transcription factors in autophagy and senescence. J Pak Med Assoc. 74 (12), 2150-2154 (2024).
  4. Chen, Y., Zhang, F., Zheng, P., Cui, D., Fan, X. Postpartum stress urinary incontinence: current advances in non-pharmacological therapies. Arch Esp Urol. 78 (1), 1-9 (2025).
  5. Dietel, M. 20 years of pathology: from conventional histology to next-generation pathology. Pathologie. 45 (3), 167-172 (2025).
  6. Cao, L., Kobayakawa, S., Yoshiki, A., Abe, K. High resolution intravital imaging of subcellular structures of mouse abdominal organs using a microstage device. PLoS One. 7 (3), e33876(2012).
  7. Vaghela, R., Arkudas, A., Horch, R. E., Hessenauer, M. Actually seeing what is going on-intravital microscopy in tissue engineering. Front Bioeng Biotechnol. 9 (17), 627462(2021).
  8. Zhang, H., He, Z., Jin, Z., Yan, Q., Wang, P., Ye, X. The development and clinical application of microscopic endoscopy for in vivo optical biopsies:endocytoscopy and confocal laser endomicroscopy. Photodiagnosis Photodyn Ther. 38, 102826(2022).
  9. Streba, C. T., et al. Utility of confocal laser endomicroscopy in pulmonology and lung cancer. Rom J Morphol Embryol. 57 (4), 1221-1227 (2016).
  10. Chaw, S. Y., Wong, T. T. L., Venkatraman, S., Chacko, A. M. Spatio-temporal in vivo imaging of ocular drug delivery systems using fiberoptic confocal laser microendoscopy. J Vis Exp. (175), e62685(2012).
  11. Tian, S., et al. The role of confocal laser endomicroscopy in pulmonary medicine. Eur Respir Rev. 32 (167), 220185(2023).
  12. Villard, A., et al. Confocal laser endomicroscopy and confocal microscopy for head and neck cancer imaging: recent updates and future perspectives. Oral Oncol. 127, 105826(2022).
  13. Sievert, M., et al. Systematic interpretation of confocal laser endomicroscopy:larynx and pharynx confocal imaging score. Acta Otorhinolaryngol Ital. 42 (1), 26-33 (2022).
  14. Ren, W., et al. Expanding super-resolution imaging versatility in organisms with multi-confocal image scanning microscopy. Natl Sci Rev. 11 (9), nwae303(2024).
  15. Xia, Q., Li, D., Yu, T., Zhu, J., Zhu, D. In vivo skin optical clearing for improving imaging and light-induced therapy: a review. J Biomed Opt. 28 (6), 060901(2023).
  16. Zhang, C., Feng, W. Assessment of tissue-specific changes in structure and function induced by in vivo skin/skull optical clearing techniques. Lasers Surg Med. 54 (3), 447-458 (2022).
  17. Leal-Campanario, R., Martinez-Conde, S., Macknik, S. L. In vivo fiber-coupled pre-clinical confocal laser-scanning endomicroscopy (pCLE) of hippocampal capillaries in awake mice. J Vis Exp. (194), e57220(2023).
  18. Huo, Z. J., et al. The ameliorating effects of long-term electroacupuncture on cardiovascular remodeling in spontaneously hypertensive rats. BMC Complement Altern Med. 14, 118(2014).
  19. Yunshan, L., Chengli, X., Peiming, Z., Haocheng, Q., Xudong, L., Liming, L. Integrative research on the mechanisms of acupuncture mechanics and interdisciplinary innovation. Biomed Eng Online. 24 (1), 30(2025).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Akupunktur DinamiğiIn Vivo GörüntülemeMikrosirkülasyon DeğişimleriKolajen Lif DüzeniEkstraselüler MatriksVazodilatasyon YanıtıKantitatif Morfoloji
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.