Tüm hayvan prosedürleri, laboratuvar hayvanlarının insancıl bakımı ve kullanımı için belirlenmiş kurumsal standartlara uygun şekilde gerçekleştirildi ve kurumsal Hayvan Etik Komitesi tarafından resmi olarak onaylandı. Hayvanların rahatsızlık ve sıkıntısını mümkün olduğunca azaltmak için önlemler alındı.
Kimyasal bileşikler, boyalar ve biyolojik örneklerle ilgili çalışmalar, potansiyel riskleri azaltmak için yerleşik biyogüvenlik uygulamalarına uyuldu. Paraformaldehit, bakır bazlı reaktifler ve DHE dahil olmak üzere potansiyel tehlikeli maddeler, eldiven, yüz maskesi ve koruyucu gözlük gibi uygun kişisel koruyucu ekipmanlarla ele alındı. Harcanmış reaktifler ve kirlenmiş tek kullanımlık ürünler gibi tüm atık malzemeler, belirlenmiş biyolojik tehlike kaplarına ayrılmış ve kurumsal ve çevresel güvenlik düzenlemelerine uygun olarak yetkili tehlikeli atık yönetim hizmetleri tarafından muamele edilmiştir. Genel deneysel tasarım Şekil 1'de özetlenmiştir.

Şekil 1: Bu çalışmanın iş akışı. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Hücre kültürü ve gruplanması
Normal insan beyni astrositleri (NHA) ve glioblastoma hücre hatları A172, U251, LN229 ve SHG-44 ( bkz. Materyal Tablosu), %10 fetal sığır serumu (FBS) içeren DMEM ortamında kültürlendi ve %5 CO₂ ile 3 °C sıcaklıkta inkübatörde tutuldu. Medya her iki günde bir değiştirildi ve hücreler yaklaşık %80 birleşime ulaştıklarında geçiş yapıldı. CUM için uygun doz ve maruziyet süresi MTT testi kullanılarak belirlendi. NHA, A172, U251, LN229 ve SHG-44 hücreleri, sırasıyla 24, 48 ve 7 saat boyunca farklı konsantrasyonlarda (0, 2.5, 5, 10, 20 ve 4 μM) CUM ile işlendi;bu da sırasıyla 23 oldu. Daha sonra 2 μL MTT çözeltisi eklendi. h sonrası, her kuyuya 15 μL dimetil sülfoksit eklenip nazikçe karıştırıldı. 45 nm'de optik yoğunluk (OD) mikroplaka okuyucu kullanılarak ölçüldü. Tüm deneylerde negatif kontrol olarak tedavi edilmemiş hücreler (Kontrol grubu) kullanıldı.
A172 ve U251 hücreleri tohumlanarak tedavi koşullarına göre Kontrol, CUM düşük dozlu (1 μM), CUM yüksek dozlu (2 μM), AKT inhibitörü (MK-2206), AKT inhibitörü + Wnt inhibitörü (MK-2206 + LGK974) ve Elsm-Cu (Elesclomol + CuCl₂) tedavi koşullarına göre ayrıldı. CUM gruplarındaki hücreler 4 saat boyunca 10 veya 2 μM CUM ile tedavi edildi. MK-2206 grubundaki hücreler 2 saat boyunca 1 μM MK-2206 aldı. MK-2206 + LGK974 grubundaki hücreler, MK-2206 maruziyetinden sonra saat boyunca μM LGK974 ile tedavi edildi. Elsm-Cu grup hücreleri 100 nM Elesclomol ve μM CuCl₂ ile 4saat 14 boyunca tedavi edildi.
Akış sitometrisi
Her gruptaki kültürlenmiş A172 ve U251 hücreleri, 1 μg/mL PI boyama çözeltisi içeren PBS ile 1 dakika kuluçka edildi. Hücreler daha sonra %0,25 tripsin ile işlendi ve santrifüjle (20 × g, en oda sıcaklığında) toplandı. PI-pozitif hücreler, PE kanallı bir akış sitometresi kullanılarak (uyarılma 488 nm) tespit edildi ve hücre ölümoranı 27 hesaplandı.
Karboksifloressein süksinimidil amin ester (CFSE) testi
A172 ve U251 hücreleri, karanlıkta 1 dakika boyunca 3 °C'de μmol/L CellTrace CFSE boyası ile kuluçka edildi. Daha sonra ortam nötralize edildi ve hücreler oda sıcaklığında minimum 20 × g ile santrifüjlendi. Toplandıktan sonra hücreler gruplarına göre kültürlenip muamele edildi. CFSE floresans yoğunluğu, akış sitometrisi (488 nm'de uyarılma) kullanılarak analiz edildi27.
Hücre klon oluşum testi
Kültüre alınan A172 ve U251 hücreleri sindirildi, yeniden süzüldü ve sayıldı. Hazırlanan hücre süspansiyonundan iki mililitre eklendi. Nazik karıştırmadan sonra hücreler yaklaşık 14 gün kuluçka altına alındı. Hücreler daha sonra %4 paraformaldehit ile 3 dakika sabitlendi ve fiksatif atıldı. %0,1 kristal violet ile boyadıktan sonra. Koloni görüntüleri çekildi ve klon oluşumoranı 14 olarak hesaplandı.
Hücre çizik testi
A172 ve U251 hücreleri (1 × 106 hücre/kuyruk) %90 birleşimine ulaşana kadar kültürlendi. Hücre monotabakası, steril 2 μL uçla bir kez çizilerek yara oluşturuldu ve ardından h ve 48 saat boyunca farklı konsantrasyonlarda CUM ile işlendi. Görüntüler mikroskop kullanılarak çekildi. Çizik iyileşme oranı ImageJ yazılımı kullanılarak değerlendirildi. Görüntüler 8 bit formatına dönüştürüldü, çizik alanını hücre alanından ayırt etmek için birleşik bir eşik belirlendi ve 0 saat ile 48 saatlik çizik alanları Parçacıkları Analiz Fonksiyonu kullanılarak hesaplandı. Çizik iyileşme oranı (%) = (0 saat mesafe − 48 saat mesafe) / 0 saat mesafe × %10023.
Transwell deneyi
A172 ve U251 hücreleri belirlenen işlemlere maruz kaldı, ardından enzimatik olarak ayrılarak oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 × g üzerinde santrifüj edildi. Hücreler serumsuz ortamda yeniden süspansiyona alındı. Matrijel, serumsuz ortamda 1:8 oranında seyreltildi, iyice karıştırıldı ve 5 μL Transwell insertinin üst odasına uygulandı, ardından 4 saat kuluçka yapıldı. Üst odaya toplamda 5 × 104 hücre kuyu başına eklenmiş, alt odaya ise %20 FBS takviyesi olan 60 μL ortam yerleştirilmiştir. 48 saatlik kuluçkadan sonra, hücreler paraformaldehit kullanılarak sabitlenip kristal menekşe ile boyandı. Her kuyunun merkezi ve çevresinden beş görsel alan seçildi. Hücreler mikroskop altında gözlemlenip görüntülendi. İnvaziv hücreler ImageJ kullanılarak hesaplandı. Görüntüler 8-bit formatına dönüştürüldü, lekelenmiş hücreleri arka plandan ayırt etmek için eşikler uygulandı ve Parçacıkları Analiz Etme fonksiyonumembrandan geçen hücreleri saydı 23.
Mitokondriyal zar potansiyeli (MMP) tespiti
Her gruptaki kültürlenmiş A172 ve U251 hücreleri, karanlıkta 30 dakika boyunca mL JC-1 çalışan çözeltisi ile inkübe edildi. Hücreler, önceden soğutulmuş JC-1 tamponu ile nazikçe yıkanmış, gözlemlenmiş ve floresans mikroskobu ile fotoğraflanmıştır. 488 nm uyarılma kullanılarak, JC-1 polimer ve monomer sinyalleri sırasıyla 590 nm ve 530 nm emisyon filtreleri kullanılarak toplandı. Kırmızı/yeşil floresans oranı (JC-1 agregaları monomerlere karşı) ImageJ yazılımı kullanılarak MMP değişikliklerini değerlendirmekiçin analiz edildi 28. Kırmızı ve yeşil kanalların görüntüleri ayrı ayrı çıkarıldı ve aynı bölgedeki ortalama floresans yoğunluğu nicelendirildi.
Oksijen tüketim oranı (OCR) tespiti
Kültüre alınmış A172 ve U251 hücreleri tohumlanmıştır. Plaka, adaptasyon için 3 °C sıcaklıkta önceden ısıtılmış bir analizöre yerleştirildi. Uyarlandıktan sonra, belirleme ortamı eklendi. Otomatik kalibrasyondan sonra, plaka 3 °C'de 15-2 dakika boyuncaCO2 olmadan dengelendi. Temel OCR ölçüldü ve analiz programı, mitokondriyal OCR'yi belirli aralıklarla kaydedecek şekilde ayarlandı. Veriler sonraki analiz için dışaaktarıldı 28.
MitoSOX floresan prob reaktif oksijen türlerinin (ROS) tespiti
A172 ve U251 hücreleri 1 ×10 4 hücre/mL yoğunluğuna ayarlandı ve her kuyu başına 1 mL konfokal tabağa tohumlandı, ardından ilaç müdahalesi gerçekleştirildi. Hücre süpernatantı atıldı ve 1 mL seyreltilmiş MitoSOX probu (1:1.000) eklendi. Hücreler karanlıkta 3 °C'de 1 dakika kuluçka altına alındı. Floresans sinyali, mitokondriyal ROSseviyeleri 29 değerlendirmek için floresans mikroskobu (uyarılma/emisyon: 510/580 nm) kullanılarak yakalanmıştır.
İmmünoflüoresans
Kapak kapakları bir kez DMEM kültür ortamıyla yıkandı. Daha sonra hücre tohumlanması ve ilaç müdahalesi için altı kuluklu plakalara yerleştirildi. 24 saat sonra, hücreler %4 paraformaldehit ile sabitlendi ve ardından %5 sığır serum albümini (BSA) ile 30 dakika bloklandı. Bloklayıcı çözelti çıkarıldı, dihidrolipoamid asetiltransferaz (DLAT) ve β-katenin hedefleyen seyreltilmiş primer antikorlar uygulandı, ardından °C30'da gece boyunca kuluçka yapıldı. Fluoresans olarak işaretlenmiş ikincil antikorlar daha sonra 3 °C'de 30 dakika boyunca inkübe edildi. Hücre çekirdekleri DAPI ile karşı boyanmış ve slaytlar antifade reaktifiyle monte edilmiştir. Floresans görüntüleri floresans mikroskobu kullanılarak alındı ve sinyal yoğunluğu ImageJ yazılımıyla nicelendirildi. Görüntüler 8 bit formatına dönüştürüldü ve hedef sinyalleri arka plan gürültüsünden ayırt etmek için tutarlı bir eşik uygulandı. Dikdörtgen aracı istenen hücre bölgelerini seçmek için kullanıldı ve ortalama floresans yoğunluğu27 ölçüldü. Mitokondrileri görselleştirmek için hücreler 30 dakika boyunca 20 nM MitoTracker Red CMXRos ile işlendi ve ardından paraformaldehit30 ile sabitlendi.
TCF/LEF1 luciferase reporter kiti
A172 ve U251 hücrelerinde Wnt/β-katenin aktivasyonu, TCF/LEF1 lusiferaz raporlayıcı kiti kullanılarak değerlendirildi. TCF/LEF raporlayıcı vektör, bir TATA kutusu ve T hücre faktörü/lenfoid güçlendirici faktör (TCF/LEF) yanıt elemanları içerir; bu da yeşil floresan protein (GFP) ekspresyonuyla β-katenin transkripsiyon aktivitesinin dolaylı olarak tespit edilmesini sağlar. Kültürlenmiş A172 ve U251 hücreleri, 5 ng TCF/LEF raporlayıcı vektörüyle ters transfekte edildi. Transfeksiyondan on altı saat sonra, floresans yoğunluğu mikroplaka okuyucu kullanılarak uyarılma ve emisyon ayarları sırasıyla 488 ve 51 nm (31) olarak kaydedildi.
Tümör taşıyan fareler
On erkek BALB/c çıplak fare (7 haftalık, 2 ± 2 g) belirli patojensiz koşullarda (2 °C, %65 nem) standart yemek ve suya sınırsız erişimle tutuldu. Tüm işlemler, Yangtze Üniversitesi Birinci Bağlı Hastanesi Etik İnceleme Komitesi tarafından onaylandı (No 2023092; onay tarihi: 18.10.2023).
GBM ksenograft modeli oluşturmak için, A172 hücreleri (4 ×10 6 hücre/mL) serumsuz ortamda askıya alındı ve her farenin sağ yanına deri altı olarak 0,1 mL enjekte edildi. Hayvanlar rastgele olarak ya bir Kontrol grubuna ya da bir CUM tedavi grubuna (n = 5 kişi) atandı. CUM grubu oral garaj yoluyla günlük 60 mg/kg kurkumin alırken, Kontrol grubu eşit miktarda salin aldı. Tümör çapları vernier kaliper kullanılarak her 7 günde bir kaydedildi ve tümör hacmi 1/2 × uzunluğu ×genişliği 2 (mm3) formülü kullanılarak hesaplandı. 5 hafta sonra, fareler servikal dislokasyon ile ötenazi edildi ve tümörler steril koşullarda32 kilo ölçümü için alındı.
TUNEL testi
Tümör dokuları %4 paraformaldehit ile 24 saat sabitlendi, etanolde kurutuldu, parafine gömülüp μm kalınlığında kesitlendi. Bölümler mumdan arındırıldı ve yeniden sıvılaştırıldı, PBS ile durulandı, antijen almak için 50 dakika boyunca proteinaz K ile işlendi ve %3 hidrojen peroksit ile kuluçka edildi. TUNEL reaksiyon karışımı 1 saat uygulandı, ardından antiifade reaktifiyle montaj yapıldı. Floresan görüntüleri mikroskopi ile alındı ve ImageJ yazılımı kullanılarak her alan başına TUNEL-pozitif hücreler nicelendirildi.
İmmünohistokimya
Parafinli tümör kesitleri 6 °C'de pişirildi, ksilenle mumdan arındırıldı ve derecelendirilmiş etanol serisi ile yeniden nemlendirildi. Antijen alımı, ısıtılmış EDTA tamponu kullanılarak gerçekleştirildi, ardından endojen peroksidaz aktivitesinin söndürülmesi yapıldı. Slaytlar, °C'de gece boyunca anti-Ki-67 birincil antikoru ile kuluçka edildi. İkincil bir antikorla 20 dakika kuluçka yapıldıktan sonra, bölümler 5 dakika diaminobenzidin (DAB) ile boyanmış ve hematoksilin ile karşı boyanmıştır. Susuz bırakıldıktan ve nötr reçine ile montaj yapıldıktan sonra, slaytlar mikroskop altında görüntülendi. Pozitif boyama kahverengi-sarı çökelti ile tanımlandı ve Ki-67 pozitif hücreler ImageJ27 kullanılarak nicelleştirildi.
Dihidroetidyum (DHE) floresans boyama
ROS seviyeleri DHE floresans boyama kullanılarak değerlendirildi. Donmuş tümör dokusu bölümleri PBS ile durulandı. Arka plan floresansı söndürüldü ve her bölüme 3 dakika boyunca μM DHE eklendi. PBS yıkamasından sonra bölümler karanlıkta kapandı. Floresans mikroskopla gözlemlendi (uyarılma/emisyon: 518/605 nm) ve her grup için beş rastgele görüntü toplandı. ImageJ ROS seviyelerini nicelendirmek için kullanıldı.
Cu2+ içerik algılama
GBM hücrelerinde ve tümör dokularındaki Cu2+ konsantrasyonu, kolorimetrik tespit kiti kullanılarak değerlendirildi. A172 ve U251 hücreleri, tedavi sonrası 1.500 × g'de 10 dakika °C'de santrifüj edildi. Hücre pelletleri 0. mL damıtılmış su, buz üzerinde soniklenerek tekrar santrifüjlendi. Tümör dokuları damıtılmış suda homojenleştirildi ve benzer şekilde 4 °C'de 10 dakika boyunca santrifüj edildi. Süpernatanlar (1 μL) 96 kuyu ölçüsünde bir plakaya aktarıldı, 23 μL kromojenik reaktifle karıştırıldı, kapatıldı ve 5 dakika kuluçka edildi. Optik yoğunluk (OD) mikroplaka okuyucu kullanılarak 58 nm olarak ölçüldü ve Cu2+ seviyeleri 14 olarak hesaplandı.
Western Blot (WB)
Proteinler, kültürlenmiş hücrelerden ve tümör dokularından izole edildi. Süpernatantlar, 12.000 × g sıcaklıkta 4 °C'de 15 dakika boyunca santrifüjle elde edildi ve protein konsantrasyonları BCA testi kullanılarak nicelendirildi. Denatürasyondan sonra, örnekler SDS-PAGE ile ayrıldı, PVDF membranlarına aktarıldı ve 1 saat boyunca %5 yağsız sütle bloklandı. Zarlar TBST'de yıkanıp FDX1, LIAS, DLAT, DLD, AKT, p-AKT, Wnt3a, GSK-3β, p-GSK-3β, β-katenin, p-β-katenin ve β-aktine karşı birincil antikorlarla °C'de gece boyunca inkübe edildi (bkz. Malzeme Tablosu)14,33. Ek TBST yıkamalarının ardından, zarlar 1 saat boyunca HRP ile konjuge edilmiş ikincil antikorlarla kuluçka edildi, ECL reaktifi kullanılarak geliştirildi ve kemilyüminessans ile görselleştirildi. ImageJ yazılımı, Dikdörtgen seçim aracı ve Jels analiz fonksiyonu kullanarak sinyal yoğunluğunu nicelendirmek için kullanıldı. Göreli protein ekspresyonu, hedef bant gri değerinin iç kontrol (GAPDH) oranı olarak hesaplandı. A172 ve U251 hücrelerinden elde edilen nükleer özetler, nükleer protein çıkarma kiti kullanılarak hazırlanmıştır. β-katenin ve Lamin B1'in ekspresyonu değerlendirildi; Lamin B1 nükleer yükleme kontrol34 olarak hizmet verdi.
İstatistiksel analiz
Nicel sonuçlar, üç bağımsız replikasyonun ortalamasını yansıtır. Tüm veriler normal dağılım ve varyans homojenliği açısından değerlendirildi. Tek yönlü ANOVA ve ardından Tukey'nin sonradan yaptığı test birden fazla grup arasında karşılaştırmalar için kullanıldı. Veriler ortalama ± standart sapma (SD) olarak sunulur. 0.05'in altında olan bir P-değeri istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi. Bu prosedürler, verilerin güvenilirliğini sağlamak ve sonuçların güvenilirliğini desteklemek için kullanıldı.