Yöntem makalesi

Fare Radyal Kırıkları İçin Yeni Bir Dahili Fiksasyon Modelinin Geliştirilmesi: Kırık İyileşme Değerlendirmesi ve Dorsal Kök Ganglion İzolasyonu

DOI:

10.3791/69707

13 Mart 2026

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çalışma, sıçan radyal kırık modelinde stabil iç fiksasyon için dikişler ve titanyum iğnelerini yenilikçi bir şekilde birleştiriyor. Kırık iyileşmesi mikro-bilgisayarlı tomografi (mikro-BT) ile değerlendirildi ve birincil dorsal kök ganglion (DRG) nöronları izole edilip daha ileri inceleme için kültürlendi.

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fare radyal kırık modeli, özellikle kırığın iyileşme mekanizmalarının, ilaç taramasının ve biyolojik materyallerin değerlendirilmesi için ortopedi araştırmalarında önemli bir öneme sahiptir. Bazı sınırlamalara rağmen, bilimsel araştırmadaki rolü hâlâ yerini dolduramazdır. Sıçanların yarıçapı nispeten ince olduğundan, klinik uygulamada şu anda kullanılan çelik plakalar ve vidalar, sıçanların radyal kırıklarının tedavisi için uygun değildir. Bu sınırlamayı gidermek için, bu çalışma yenilikçi bir şekilde radial kırıklar için nispeten stabil fiksasyon sağlayan ve bu tür kırıkların iç fiksasyonunu araştırmak için sağlam bir hayvan modeli oluşturan dikiş ve titanyum iğne fiksasyonunu yenilikçi bir şekilde kullanmaktadır. In vivo görüntüleme, Sprague-Dawley (SD) sıçanlarında radyal kırık iyileşmesini tespit etmek için canlı hayvan mikro-BT sistemi kullanılarak gerçekleştirildi. Sıçan DRG'sinin çıkarılması ve uygulanması, sinirbilim araştırmalarında önemli adımlardır ve sinirbilim, patoloji ve hücre biyolojisi gibi alanlarda yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu protokol, radyal kırıkları olan sıçanlardan alınan dorsal kök ganglion nöronlarının birincil kültürü için uygundur ve nöron apoptozu ve nörotransmitter salınımı gibi sinir hasarı ve onarım mekanizmalarını incelemek için kullanılabilir.

Giriş

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Radyal kırıklar, küresel olarak önemli bir sıklık ile en yaygın klinik kırıklar arasındadır ve 1,2,3 uzuvlarda uzun kemik kırıklarının başlıca nedenlerinden biri olarak sıralanır. Popülasyon çalışmaları, radyal kırıklar için genellikle hem pediatrik hem de yaşlı popülasyonlarda zirve noktasına ulaşan iki modlu yaş dağılımınıortaya koymaktadır 4. Gecikmeli tedavi genellikle ön kol rotasyon bozukluğuna yol açar ve günlük yaşam aktivitelerini (ADL'ler) ciddi şekilde olumsuz etkiler.5,6. Radyal kırık yönetiminde, özellikle kırığın sınıflandırma sistemleri ve tedaviyöntemi seçimi 7,8 üzerine odaklanan radyal kırık yönetiminde tartışmalar devam etmektedir. Klinik kanıtlar, açık redüksiyon iç fiksasyonun (ORIF) dirsek veya bilek eklemi hareket aralığını (ROM) ve güç iyileşmesini önemli ölçüdeiyileştirdiğini göstermektedir9; ancak bu yaklaşım, ameliyat sonrası enfeksiyon ve iç fiksasyonla ilgili komplikasyonların daha yüksek oranlarıylailişkilidir 10,11.

DRG, çevresel ve merkezi sinir sistemleri (SKNS) arasında duyusal bilgi iletimi için kritik bir anatomik ve fonksiyonel köprü görevi görür. Çevresel duyusal sinyalleri (örneğin, dokunma, sıcaklık) toplama ve iletme birincil rolünün ötesinde, DRG ağrı gibi anormal hisleri aktif olarak düzenler ve böylece hem normal duyusal fonksiyonun hem de klinik ağrı yönetiminin temel bir yapısıhaline gelir 12,13,14. DRG'deki yaralanma, iltihap veya nörodejenerasyon gibi patolojik değişiklikler, duyusal anormallikleri (örneğin, uyuşma, karıncalanma) veya kronik ağrıyı tetikleyebilir ve bu durum sinirbilim ve ağrı tıbbında araştırmaların odak noktası haline gelir.

Burada, yaklaşık 200 g ağırlığındaki 8 haftalık erkek SD sıçanlar, (1) sıçanlarda radyal enine kırıklar için iç fiksasyon modeli oluşturmak ve ardından iyileşme sonrası değerlendirme yapmak ve (2) radyal kırıklar için iç fiksasyon modeli olan sıçanlardan DRG'lerin izolasyonu ve in vitro kültürü oluşturmak üzere seçildi. Bu protokol, kırık iyileşme mekanizmalarını, DRG aracılı duyusal değişiklikleri ve kırık sonrası ağrı veya işlev bozukluğu için potansiyel terapötik hedefleri inceleyen çalışmalarda tekrarlanabilir deneyleri kolaylaştırmak için tasarlanmıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm hayvan deneyleri, Nanjing Çin Tıp Üniversitesi Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylandı (No. 202508A046). Aşağıdaki testlerde kullanılan tüm fareler, belirli patojensiz (SPF) koşullarda tutuldu. Protokolü temsil eden bir şematik Şekil 1'de gösterilmiştir.

1. Farelerde radyal kırıklar için iç fiksasyon modelinin oluşturulması

NOT: Fareler, ameliyattan önce yumuşak, dağınık aydınlatmaya sahip sessiz bir ortama alıştırıldı, böylece gürültü ve sert aydınlatmadan korundular. Müdahale sırasında, farelerin karnı ve göğsü nazik manuel bir şekilde desteklendi; kuyruk tutmaktan kaçınıldı; bu uygulama, acı ve sıkıntıya yol açtığı ve mücadele ile ilgili rahatsızlığı azalttığı bilinirdi.

  1. Cerrahi aletleri Şekil 2'de gösterildiği gibi hazırlayın. Cerrahi aletler arasında bir bistür bıçağı, bir bistüri sapı, ameliyat makası, iğne tutucu, hemostatik forseps ve dişli doku pensepleri bulunur. Erkek Sprague-Dawley (SD) sıçan yaklaşık 8 haftalıktı ve yaklaşık 200 g ağırlığındaydı.
  2. Sıçan, izofloran gazı anestezi makinesiyle anestezi yapın. İndüksiyon için, cerrahi işlem boyunca %4 izofluran kullanın ve burun konisi kullanarak ventilyatör anestezi (%2 isofluran) sürdürün. Ameliyathane sıcaklığını yaklaşık 28 °C'de tutun.
    NOT: Anestezi başarısını hayati belirtileri (örneğin solunum ve kalp atış hızı), kornea refleksini (yanıt olmaması etkili anestezi gösterir), göz kırpma refleksini (yokluğu) ve parmak kasılma tepkisini (uyarı sonrası geri çekilme olmadan) kontrol ederek belirleyin.
  3. Fareyi yan pozisyona yerleştirin, sağ ön uzağını açığa çıkarın ve saç makası ile saçlarını tıraş edin. Steril bir örtü örtün ve cerrahi kanamayı azaltmak için proksimal sağ ön uzuvun etrafına turnike sarın.
  4. Cildi alkol ve betadin peelinglerini üç kez dönüşümlü olarak hazırlayın.
  5. Sağ ön kolun dorsal radyal tarafında Şekil 3'te gösterildiği gibi 1,5 cm boyuna bir kesi yapın. Kas boşluklarını ayırın ve sağ ön uzuv yarıçapını tamamen açığa çıkarın.
    NOT: Radius, kas aralığı boyunca kasların kesin bir şekilde ayrılmasıyla açığa çıkarılır. Sadece radiusun dorsal kasları açığa çıkar ve çevredeki kaslar tamamen soyulmaz.
  6. Enine bir çatlak oluşturmak için yarıçapı kesmek için ameliyat makası kullanın. Makaslar, yarıçapa 90 derece açı ile yönlendirilmiştir (Şekil 4).
  7. 0,8 mm çapında, 10 mm uzunluğunda bir titanyum iğne alın ve boylamasına eksen boyunca yarıçap çatlağına yerleştirilin (Şekil 5). Yarıçapı ve titanyum iğnesini dikiş (4-0 [1.5 metrik] ipek örgülü emilmeyen) ile sabitleyin, Şekil 6'da gösterildiği gibi.
  8. Dikişi ardışık üç düğümle bağlayın ve titanyum iğneyi dört kesintili dikişle yarıçapa sabitleyin.
    NOT: Kırıkın proksimal ve distal uçları sırasıyla iki kez sabittir.
  9. Deriyi dikiş (4-0 [1.5 metrik] ipek örgülü emilmeyen) deriyi dikişe at, fazla dikişi kesti ve yarayı kapat. Cildi Betadine peelinglerle dezenfekte edin.
  10. Yarayı steril gazlı bezle kapatın ve bandajlarla sabitleyin. Sıçan, iyileşmeye kadar bilincini geri kazanması için bir kafese yerleştirin.
  11. Ameliyat sonrası ağrı yönetimi:
    1. Hayvan ağrı belirtileri gösterirse, yemek yemiyorsa ve/veya arka uzuvları üzerinde yürümeye tereddüt ederse, veteriner personeline danışın ve ek analjezikler uygulanır.
      NOT: Sefuroksim sodyum bakteriyel enfeksiyonların tedavisinde kullanılır. Tramadol hidroklorür analjeziklerin uygulanmasında kullanılır.

2. Mikro BT görüntüleme

  1. Fareyi izofluran gazı (indüksiyon dozu %4) anestezi makinesiyle anestezi yapın.
  2. Fareyi tarama odasında yatağa yerleştirin, uzuv ve baş pozisyonunu hedef tarama alanını görüş alanında ortalayacak şekilde ayarlayın ve işlem boyunca sürekli ventilasyon ve anestezi (%2 izofloran) sürdürün.
  3. Sabit hayvan yatağını tarama odasına itin ve odanın kapısını kapatın.
  4. Mikro-BT tarama parametrelerini aşağıdaki şekilde ayarlayın. Tarama modu: standart; pozlama süresi: 2 dakika; görüş alanı: 72 mm; voxel boyutu: 144 μm; voltaj: 90 kV; akım: 88 μA; filtre: 3D-yumuşak.
    NOT: Tarama verileri otomatik olarak yazılıma iletilir ve üç boyutlu bir BT görüntüsü oluşturulur.
  5. Hedef dokuları ayırın.
    1. Orijinal mikro-BT görüntülerinden seçilen kemik dokusu alanını analiz edin. Transfer fonksiyon hattını kaydırarak kemiği kasdan ayırın, böylece çok fazla kas dokusu girmesini engelleyin. Segmentli kemik dokusu alanında yüksek çözünürlüklü rekonstrüksiyon yaparak 3D bir model oluşturulur.
  6. İşlenen görüntüleri dışa aktarın.
    1. Görüntüleri işledikten sonra, mevcut iş akışını tamamlamak için son butonunu bulup tıklayın.
    2. Bir açılır pencere açılır, önce dur seçeneğini seçerek statik bir görüntü (dinamik bir dizi değil) dışa aktarmak istediğinizi doğrulayın.
    3. Mevcut seçeneklerden çıktı dosya formatı olarak jpeg'i seçin.
    4. Dışa aktarılan görüntünün analiz veya dokümantasyon için uygun yüksek çözünürlüklü olmasını sağlamak için büyük boyut seçin.
    5. İhracat sürecini tamamlamak için Tamam'a tıklayın.

3. Radyal kırıkları olan farelerde DRG izolyasyonu ve kültürü

NOT: Ötenazi, %4 izofloran inhalasyon anestezisi ile uygulanır, ardından hayvanları ötenazi yapmak için hızlı servikal dislokasyon uygulanır. DRG'ler, radyal kırığın modeli oluşturulduktan 20 gün sonra çıkarılır.

  1. Omurgayı kesin, C1-C7 omurga gövdelerini çıkarın. Servikal omurgayı ön ve arka orta hatlar boyunca kesin ve sol ve sağ yarıya bölün. Gerekirse, işlemi kolaylaştırmak için omurlu süreçleri kesin.
  2. Omurilik dokusu ve omurgalar arası foraminanın içindeki sinir liflerini nazikçe temizleyin. Omurgalar arası foraminanı, PBS ile doldurulmuş bir şırıngayla durulayarak kan alarak yan girintileri ortaya çıkarın.
    NOT: DRG, yan girintilerin içinde yer alır ve açık sarı bir nodul olarak ortaya çıkar ve her iki ucunda sinir lifleri birbirine bağlıdır.
  3. DRG'yi almak için dişli doku forsepsiyle alın, nazikçe kaldırın ve ardından ameliyat makası ile sinir liflerini her iki uçtan kesin.
  4. Çıkarılan DRG'leri ekstraksiyon ortamıyla birlikte 1.5 mL santrifüj tüpüne aktarın; Buz üzerine koyun.
    NOT: Ekstraksiyon ortamını, α Minimum Temel Ortama (α-MEM) %2 fetal sığır serumu (FBS) ekleyerek hazırlayın. DRG'ler ekstraksiyon ortamında yaklaşık 30 dakika kuluçka altına alındıktan sonra bir sonraki adıma geçilir.
  5. Ekstraksiyon ortamını yavaşça aspire edin ve atın. 1 mL karışık sindirim enzimi çalışan çözeltisi ekleyin. 37 °C'lik su banyosunda 60-70 dakika sindirin.
    NOT: Karışık sindirim enzimi çalışma çözeltisini hazırlamak için, 100 mg tip I kollajenaz ve 100 mg dispazı 1 mL Fosfat Tamponlu Salin (PBS) içinde çözüň. Kullanırken 5 mg/mL çalışma çözeltisi olarak seyreldin ve buzda saklayın.
  6. Petri kabını uygun miktarda fibronektin çalışma çözeltisi pipetiyle kaplayın, ardından 37 °C'de 1 saat kuluçka yapın.
    NOT: İnsan plazma fibronektin çalışma çözeltisi (Fibronektin çalışma çözeltisi), 1 mg/mL Fibronektin stok çözeltisi ddH₂O ile 0,02 mg/mL Fibronektin çalışma çözeltisine seyreltilerek hazırlanır.
  7. Sindirim sonrası karışık sindirim enzimi çalışan çözümünü aspire edin ve atın. 1 mL tam ortam ekleyin ve DRG dokusunu birkaç kez nazikçe pipetleyin.
    NOT: Tam ortam hazırlamak için, 45 mL MEM-α ortamı, 4,5 mL FBS ve 0,5 mL Penisillin-Streptomisin (PS) çözeltisi karıştırın ve 0,22 μm steril dereceli mikrogözenekli bir membrandan filtre ile sterilize edin.
  8. Filtrat toplayın, 75 × g'de 25 °C'de 8,5 dakika boyunca santrifüj yapın.
  9. Santrifüjlemeden sonra, üst yüzeyi santrifüj tüpündeki aspirasyon ve atma ile çökeltiyi yeniden süsküylemek için 1 mL tam ortam eklenir.
  10. Petri kabını çıkar. Fibronektin çalışma çözeltisini atın ve PBS ile iki kez yıkayın.
  11. Hücreleri kaplı Petri kabına aşılayın, 1 mL tam ortam ekleyin ve %5 CO₂ ile 37 °C sıcaklıkta 8-12 saat boyunca kuluçka yapın.
  12. 8-12 saat sonra, tam ortamı yedek ortamla değiştirin. Sonra, her 2-3 günde bir hacmin yarısını yedek malzemeyle değiştirin.
    NOT: Yedek ortam hazırlamak için 44,5 mL MEM-α ortam, 4,5 mL FBS, 0,5 mL Penisillin-Streptomisin (PS) çözeltisi ve 0,5 mL Deoksiyuridin karıştırın. 0,22 μm kısırlaştırıcı dereceli mikrogözenekli bir membrandan filtre ile sterilize edilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mikro-BT görüntüleri, Şekil 7'de radyal kırığ fare modellerinin ve Şekil 8'deki fare radyal kırıkları için iç fiksasyon modelinin başarılı şekilde kurulduğunu doğrulamıştır. Mikro-BT görüntüleri, kırığın iç fiksasyon modelinin oluşturulduğu gün ile model oluşturulmasından yirmi gün sonra çekilen karşılaştırıldı. Modellemeden yirmi gün sonra, kırık model grubundaki SD sıçanların mikro-BT analizi olumlu bir prognoz ortaya koydu. G...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Radyal kırık, klinik uygulamada en yaygın uzun kemik kırıklarından biridir. İyileşme süreci, kemik dokusu onarımı ile sinir düzenlemesi (örneğin, osteoblastlar/osteoklastların nöropeptidler ve dorsal kök gangliyonundan salınan nörotrofik faktörler tarafından düzenlenmesi gibi) karmaşık etkileşimleri içerir.15,16,17,18. Fareler, net genetik geçmişleri ve kısa ür...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm yazarlar, potansiyel çıkar çatışmaları olmadığını belirtir.

Teşekkürler

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Jiangsu geleneksel Çin tıp derneği'nin Bilimsel araştırma projesi (XYLD2024038) ve Nantong Sağlık ve Wellness Komitesi'nin bilimsel araştırma projesi (QNZ2023115) hibeleriyle desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
5-Fluoro-2' deoksiyuridinSigmaF0503
Sefuroksim sodyum Shandong Runze İlaç Şirketi, Ltd., ÇinGuoyao Zhunzi H20205058
DAPI Boyama ÇözeltisiBiyotimeC1005
DispersazŞanghay Yuanye Biyoteknoloji Şirketi, Ltd.S25046
Fetal sığır serumu (FBS)Termo16000-044
hemostatik forsepsler Şanghay Tıbbi Enstrümanlar (Grup) Co., Ltd. J31070
İnsan plazma fibronektini (İnsan Fibronektini) SigmaF0895
İzofluranRWDR510-22-10 
Canlı hayvan mikro-BT görüntüleme sistemiPerkinElmer ABD'deKuantum GX 
MEM-ALPHA Kültür ortamı BIC3060
iğne tutucusu Şanghay Tıbbi Enstrümanlar (Grup) Co., Ltd. 200622
Makas işletmek Şanghay Tıbbi Enstrümanlar (Grup) Co., Ltd. J21130
PenisilinSolarbio140051251
Penisillin-streptomisin çözeltisi NovaCellsN-PSS125
Povidon-iyotMeilunbioMB1313800g
Skalpel bıçağıŞanghay Tıbbi Aletler (Grup) Co., Ltd.RYY070
bistüri sapıŞanghay Tıbbi Enstrümanlar (Grup) Co., Ltd. J11010
Dikiş Johnson & Johnson MEDICAL (CHINA) Ltd. SA84G
Dikiş İğnesiŞanghay Xiaoyu Tibbi Ekipmanlar. Δ 3/8 ve orta nokta; 3& kez; 6
Titanyum iğneTianjin Yutong Tıbbi Cihazı 2-0X250 
dişli doku forsepsleri/nbsp;Şanghay Tıbbi Enstrümanlar (Grup) Co., Ltd. J41055
Tramadol hidroklorürJiangsu Jiuxu İlaç Şirketi, Ltd., ÇinCYHB2201997
Tubulin beta-IIISigmaCBL412X
Tip I kollajenaz Termo17100-017
Zeiss Axio Vert A1 Ters Floresans MikroskobuZeissAxio Vert A1

Kaynaklar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. GBD 2019 Fracture Collaborators. Global, regional, and national burden of bone fractures in 204 countries and territories, 1990-2019: a systematic analysis from the Global Burden of Disease Study 2019. Lancet Healthy Longev. 2 (9), e580-e592 (2021).
  2. Zeng, Y., et al. The incidence, prevalence, and health burden of forearm fractures in China from 1992 to 2021 and forecasts for 2036. Front Public Health. 13, 1566421(2025).
  3. Miskiewicz, M., Hakimi, A., Ling, K., Tesoriero, J., Komatsu, D., Wang, E. Epidemiology, risk factor, and economic analysis of peripheral nerve injury following distal radius fractures. Eur J Orthop Surg Traumatol. 35 (1), 292(2025).
  4. Olech, J., Ciszewski, M., Morasiewicz, P. Epidemiology of distal radius fractures in children and adults during the COVID-19 pandemic - a two-center study. BMC Musculoskelet Disord. 22 (1), 306(2021).
  5. Liu, K., Grigor, E. J. M., Antflek, D., Ho, G., Baltzer, H. L., Paul, R. Time to surgical management of distal radius fractures: effects on health care utilization and functional outcomes. Can J Surg. 67 (4), E286-E294 (2024).
  6. Khan, S., Persitz, J., Shrouder-Henry, J., Khan, M., Chan, A., Paul, R. Effect of time-to-surgery on distal radius fracture outcomes: A systematic review. J Hand Surg Am. 48 (5), 435-443 (2023).
  7. Hunt, J. J., Lumsdaine, W., Attia, J., Balogh, Z. J. AO type-C distal radius fractures: the influence of computed tomography on surgeon's decision-making. ANZ J Surg. 83 (9), 676-678 (2013).
  8. Gutiérrez-Espinoza, H., et al. Effectiveness and safety of different treatment modalities for patients older than 60 years with distal radius fracture: A network meta-analysis of clinical trials. Int J Environ Res Public Health. 20 (4), 3697(2023).
  9. Rozental, T. D., Blazar, P. E., Franko, O. I., Chacko, A. T., Earp, B. E., Day, C. S. Functional outcomes for unstable distal radial fractures treated with open reduction and internal fixation or closed reduction and percutaneous fixation: A prospective randomized trial. J Bone Joint Surg Am. 91 (8), 1837-1846 (2009).
  10. Bentohami, A., De Burlet, K., De Korte, N., Selles, R. W., Goslings, J. C., Schep, N. W. Complications following volar locking plate fixation for distal radial fractures: a systematic review. J Hand Surg Eur. 39 (7), 745-754 (2014).
  11. Jiang, J. J., Phillips, C. S., Levitz, S. P., Benson, L. S. Risk factors for complications following open reduction internal fixation of distal radius fractures. J Hand Surg Am. 39 (12), 2365-2372 (2014).
  12. Qiu, X., et al. Satellite glial cells in sensory ganglia play a wider role in chronic pain via multiple mechanisms. Neural Regen Res. 19 (5), 1056-1063 (2024).
  13. Krames, E. S. The role of the dorsal root ganglion in the development of neuropathic pain. Pain Med. 15 (10), 1669-1685 (2014).
  14. Sapunar, D., Kostic, S., Banozic, A., Puljak, L. Dorsal root ganglion-a potential new therapeutic target for neuropathic pain. J Pain Res. 5, 31-38 (2012).
  15. Liang, T. Z., et al. Targeting the central and peripheral nervous system to regulate bone homeostasis: mechanisms and potential therapies. Mil Med Res. 12 (1), 13(2025).
  16. Tuzmen, C., Campbell, P. G. Crosstalk between neuropeptides SP and CGRP in regulation of BMP2-induced bone differentiation. Connect Tissue Res. 59 (sup1), 81-90 (2018).
  17. He, H., et al. CGRP may regulate bone metabolism through stimulating osteoblast differentiation and inhibiting osteoclast formation. Mol Med Rep. 13 (5), 3977-3984 (2016).
  18. Wang, L., et al. Calcitonin-gene-related peptide stimulates stromal cell osteogenic differentiation and inhibits RANKL induced NF-kappaB activation, osteoclastogenesis and bone resorption. Bone. 46 (5), 1369-1379 (2010).
  19. Harris, I., Hatfield, A., Donald, G., Walton, J. Outcome after intramedullary nailing of femoral shaft fractures. ANZ J Surg. 73 (6), 387-389 (2003).
  20. Lin, C., Sun, J. S., Hou, S. M. External fixation with or without supplementary intramedullary Kirschner wires in the treatment of distal radial fractures. Can J Surg. 47 (6), 431-437 (2004).
  21. Board, T. N., Yang, L., Saleh, M. Why fine-wire fixators work: an analysis of pressure distribution at the wire-bone interface. J Biomech. 40 (1), 20-25 (2007).
  22. Bäcker, H. C., Heyland, M., Wu, C. H., Perka, C., Stöckle, U., Braun, K. F. Breakage of intramedullary femoral nailing or femoral plating: how to prevent implant failure. Eur J Med Res. 27 (1), 7(2022).
  23. Lethaby, A., Temple, J., Santy-Tomlinson, J. Pin site care for preventing infections associated with external bone fixators and pins. Cochrane Database Syst Rev. 2013 (12), CD004551(2013).
  24. Arciola, C. R., Campoccia, D., Montanaro, L. Implant infections: adhesion, biofilm formation and immune evasion. Nat Rev Microbiol. 16 (7), 397-409 (2018).
  25. Box, M. W., et al. Intramedullary nail fixation versus open reduction and internal fixation for treatment of adult diaphyseal forearm fractures: a systematic review and meta-analysis. J Orthop Surg Res. 19 (1), 719(2024).
  26. Burnikel, A., Faucher, G. Treatment of metacarpal and phalangeal fractures: Intramedullary screw technique. JBJS Essent Surg Tech. 15 (4), e23.00032(2025).
  27. Aktan, C., Ertan, M. B., Turan, A., Kose, O. Fixation of small osteochondral fragments in a comminuted distal humerus fracture with magnesium bioabsorbable screws: A case report. Cureus. 10 (12), e3752(2018).
  28. Shyamalan, G., Theokli, C., Pearse, Y., Tennent, D. Volar locking plates versus Kirschner wires for distal radial fractures-a cost analysis study. Injury. 40 (12), 1279-1281 (2009).
  29. Wang, D., Huang, X., Lv, W., Zhou, J. The toxicity and antibacterial effects of povidone-iodine irrigation in fracture surgery. Orthop Surg. 14 (9), 2286-2297 (2022).
  30. Shiels, S. M., Muire, P. J., Wenke, J. C. FK506 increases susceptibility to musculoskeletal infection in a rodent model. BMC Musculoskelet Disord. 23 (1), 716(2022).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

S an Radyal K rMikro BT G r nt lemeTitanyum ne FiksasyonuS t r FiksasyonuDRG zolasyonuPrimer N ron K lt rKemik yile mesi De erlendirmesi

İlgili makaleler