Hayvan modelleme
Bu çalışma, Fujian Geleneksel Çin Tıbbı Üniversitesi'nin İkinci Bağlı Hastanesi Etik Komitesi tarafından onaylandı (Onay No. FJPSPH-IAEC2024114) ve hayvan refahı yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir. 180-200 g ağırlığındaki erkek Sprague-Dawley fareleri, 22-26°C ve %40-70 nemde kontrollü koşullarda tutuldu. SCI, Allen ağırlık bırakmayöntemi 10 ile indüklendi: %3-4 isofluran inhalasyon anestezisi, T10'da orta hat kesi, T9-T11 segmentlerinin maruziyeti, laminektomi (dura mater sağlam) ve darbe (2 mm uç, 0,5 m/s hız, 1,3 mm derinlik, 1 s süre). Sahte fareler laminektomi yaptırıldı ve çarpmadan yapıldı. Dahil etme kriterleri: Ameliyattan 24 saat sonra BBB puanı < 8; Dışlama kriterleri: enfeksiyon, omurilik kesimiyeti. Ameliyat sonrası bakım: analjezi (buprenorfin, 0.1 mg/kg s.c., 3 gün 12 saat boyunca), mesane ifadesi (1 hafta 6 saat sürer) ve steril yara bakımı. Başarılı model fareler rastgele bir model grubuna ve yüksek (2,32 g/kg, n = 10), orta (1,16 g/kg, n = 10), düşük dozlu (0,58 g/kg, n = 10) GLGZ gruplarına atandı.
Motor fonksiyon analizi
Basso, Beattie ve Bresnahan (BBB) skorları körü körüne yapıldı. Fareler açık bir alanda 5 dakika boyunca gözlemlendi; arka ayak eklemlerinin hareketi, ağırlık taşıma, yürüyüş ve koordinasyon puanlandı.
Rectus femoris sertliğini ölçmek için kesme dalgası elastografisi
Doğrusal dizi problu Doppler ultrason sistemi (18L6) kullanıldı. Fareler yan yatma pozisyonuna (kas gevşemes) yerleştirildi. SWE, prob kas ile 90° açıda, 1-2 cm derinlikte konumlandırılarak gerçekleştirildi. İlgi alanı (ROI) 0,5 × 0,5 cm olarak ayarlandı ve her ölçüm için on çerçeve alındı. Son sertlik değeri, üç geçerli ölçümün ortalamasını temsil ediyordu. Kayma dalgası hızı (SWV) kaydedildi; Yeşil kalite kontrolü geçerligörüntüleri gösterdi 11.
MRI muayenesi
MRG, 7.0T tarayıcı ile T2 ağırlıklı yağ baskısı dizisi ve hayvana özgü bir bobin kullanılarak gerçekleştirildi. Alım parametreleri şöyleydi: tekrar süresi (TR) 3.800 ms, yankı süresi (TE) 72 ms, dilim kalınlığı 1 mm, voxel boyutu 0.1 × 0.1 × 1 mm, matriks 256 × 256, görüş alanı (FOV) 25.6 × 25.6 mm, dört sinyal ortalaması ve solunum kapıları. Lezyon alanı görüntü işleme yazılımı kullanılarak ölçüldü.
Histolojik boyama
HE boyama, ardışık deparafinizasyon, rehidrasyon, hematoksilin boyama 5 dakika süreli, akan suda durulama, %1 hidroklorik asit-etanol ile 30 saniye diferensiye, 2 dakika eosin boyama, dehidrasyon, temizleme ve montaj yoluyla gerçekleştirildi. Görsel bir kontrol noktası olarak, boyalı bölümlerde mavi çekirdekler ve kırmızı sitoplazma gösterildi.
Nissl boyama, %0,1 toluidin mavisi renkte 50-60 °C sıcaklıkta 30 dakika boyunca deparafinizasyon, rehidrasyon, kuluçka ile yapıldı, ardından damıtılmış suyla durulama, etanol farklılaştırılması, dehidrasyon, temizleme ve montaj yapıldı. Görsel bir kontrol noktası olarak, sahte grupta koyu mavi Nissl cesetleri açıkça gözlemlendi.
Luxol hızlı mavi-kresil mor boyama, deparafinizasyon, rehidrasyon, Luxol hızlı mavisinde 60 °C'de 2 saat kuluçka, %95 etanol ile durulama, 30 saniye lityum karbonatla farklılaştırma, ardından %70 etanol farklılaştırma, kresil violet karşı boyama 10 dakika yapılmış, dehidrasyon, temizleme ve montaj edilmiştir. Kresil menekşesinin çalışma konsantrasyonu %0,1'di. Görsel bir kontrol noktası olarak, sahte grupta koyu mavi miyelin gözlemlendi.
Çoklu immünfloresan boyama, deparafinizasyon, rehidrasyon ve antijen geri alımıyla başlangıç olarak sitrat tamponu (pH 6.0) ile 95 °C'de 20 dakika boyunca gerçekleştirildi. Bölümler 10 dakika boyunca %3 hidrojen peroksit ile işlendi, ardından %5 BSA ile 37 °C'de 1 saat bloklandı. Birincil antikorlar gece boyunca 4 °C'de kuluçka edildi (ASC: 1:500; Caspase-8: 1:400; RIPK3: 1:500). PBS-T (%0,1 Tween-20, 3 x 5 dakika) ile yıkamadan sonra, bölümler HRP etiketli ikincil antikorlarla (1:1000) 37 °C'de 1 saat kuluçka edildi. Florokrom etiketleme uygulandı: ASC için YTR520 Plus, Caspase8 için TYR570 Plus ve RIPK3 için TYR690 Plus (30 dakika), ardından 5 dakika DAPI nükleer boyama yapıldı. Slaytlar monte edildi ve görüntüleme, 500 ms pozlama, kazanç 1.0, büyütme ×200 ile ayarlanmış floresan mikroskobu kullanılarak yapıldı; filtre setleri ilgili florokromlarla eşleşti.
Ksilen ve etanol için tüm işlemler bir duman kapasası içinde yapıldı ve kullanım sırasında eldiven ve gözlük takıldı. Boyama reaktifleri için doğrudan cilt teması kesinlikle kaçınıldı. Tüm atık reaktifleri belirlenmiş tehlikeli atık konteynerlerine atıldı. Biyolojik tehlikeli maddeler için, nihai bertaraf öncesinde biyolojik kontaminasyonu önlemek amacıyla kapsamlı otoklav sterilizasyonu yapıldı.
İstatistiksel analiz
Grup karşılaştırmaları için LSD ile tek yönlü ANOVA post-hoc testi kullanıldı. P < 0.05 istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi.