Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Sıcaklık Kontrollü Kalp Koruma Sırasında Kardiyak Enerjinin Seri Ölçümleri İçin Fosfor-31 Manyetik Rezonans Spektroskopisi

308 görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/70070

⸱

17 Mart 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine, 2Division of MR Research, Russell H. Morgan Department of Radiology and Radiological Science, Johns Hopkins University School of Medicine, 3Krieger School of Arts and Sciences, Johns Hopkins University, 4Johns Hopkins University School of Medicine, 5Department of Pediatric Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Bu makalede, organ koruması sırasında miyokard enerjisinin seri ve nicel değerlendirmesini mümkün kılan ex vivo Fosfor-31 Manyetik Rezonans Spektroskopisi için tekrarlanabilir, sıcaklık kontrollü bir protokolü tanımladık.

Özet

Güvenilir organ koruma, donör erişimini artırmak ve nakil sonuçlarını iyileştirmek için kritik öneme sahiptir. Donör kalpler için statik depolama standart olarak kalsa da, koruma boyunca miyokard enerjisini izlemek için hassas yöntemlere ihtiyaç vardır.

Fosfor-31 Manyetik Rezonans Spektroskopisi (31P MRS), Fosfokreatin (PCr), Adenozin TriFosfat (ATP), inorganik fosfat (Pi) ve hücre içi pH dahil olmak üzere anahtar enerji metabolitlerinin doğrudan ve dinamik ölçümünü sağlar. Bu teknik, ex vivo depolama sırasında miyokard metabolik durumunun uzunlaması, nicel ve hassas şekilde değerlendirilmesini sağlar. MRS'nin avantajları arasında enerji durumunun dinamik değerlendirilmesi ve ventriküler enerjinin küresel bir değerlendirmesi yer alır.

Protokol, domuz donörü iyileşmesi, kardiyopleji uygulaması ve kardiektomi ile başlar. Aort kemeri, yükselen aortanın uzunluğunu maksimize etmek için brakiocephalic gövdeye proksimal olarak kesilir. Kaburga kanülü distal yükselen aortaya sabitlenir, sol atrium işaretlenir ve kalp sıcaklığa özgü kardiyopleji ile önceden doldurulmuş silindirik, yalıtılmış bir kapta yerleştirilir. Kapak kanüle bağlanır, kalbi içeride askıya alır ve kap kap kaplı olarak 1 °C sıcaklığı 1 saat boyunca tutar.

Konteyner, fosfor ayarlı bir bobin için açılan özel bir strafor kutuya yerleştirilir ve bobin merkezi sol ventrikülün (LV) ortasıyla hizalanır. Scout görüntüleri, LV konumunu 31P bobinine yakın doğruluyor. B0 şimming, uniform uyarılmayı sağlar, ardından lokal olmayan 31P MR spektrumu elde edilir. Sonradan işleme, PCr/ATP, PCr/Pi oranları ve hücre içi pH hesaplamak için spektral zirveleri belirler.

Protokolümüzde, 31P MRS 0 ile 8 arasındaki seri zaman noktalarında gerçekleştirilir. Zaman noktaları arasında, kalp istenen sıcaklıkta standart bir depolama cihazında saklanır.

31P MRS, enerji tükenmesinde zamana bağlı değişiklikleri ve depolama sıcaklığının enerji tükenmesini azaltmadaki rolünü incelememize olanak sağladı.

Giriş

Kalp nakli, son evre kalp yetmezliği olan seçilmiş hastalar için kesin tedaviolarak kalmaktadır 1. Ancak, uygun donör organların kalıcı eksikliği ve mevcut koruma stratejilerinin sınırlamaları, optimal sonuçlar ve genişle nakil erişimi için büyükengellerdir 2,3. Geleneksel olarak, donör kalpler soğuk statik depolama kullanılarak korunur; bu basit ve maliyet etkinliklidir, ancak uzun süreli taşınım sırasında subklinik enerjik tükenmeye karşıhassastır 2,4. Programlar giderek daha yüksek riskli ve coğrafi olarak uzak organları kabul ettikçe, sadece iskemik zaman ve genel incelemeye dayanmak yerine koruma sırasında miyokardın metabolik durumunu karakterize eden nesnel araçlara ihtiyaç artmaktadır 5,6,7. Ayrıca, miyokard metabolizması ve iskemik tolerans sıcaklıktan güçlü şekilde etkilenir ve yetersiz soğutma ile aşırı hipotermi depolama sırasında enerjik tükenmeyi ve hücresel hasarı kötüleştirebilir. Bu nedenle, donör kalplerin birden fazla, klinik olarak önemli koruma sıcaklıklarında değerlendirilmesi, miyokardiyal canlılığı zaman içinde en iyi şekilde koruyan koşullarıbelirlemeye yardımcı olur 3.

Depolama sırasında miyokard biyoenerjisinin doğru ve dinamik değerlendirilmesi, koruma tekniklerini geliştirmek ve organ kullanımını maksimize etmek için gereklidir. Şu anda standart uygulama, yaklaşık 4-8 °C 8 sıcaklıklarda statik soğuk depolamaya dayanmaktadır. Bu protokol kısa depolama sürelerinde başarılı sonuçlar göstermiş olsa da, bu sıcaklıkta uzun süreli depolama miyokard bütünlüğünü tehlikeye atabilir. Bu nedenle, başarılı organ naklini sağlamak için gerekli olan optimal depolama koşullarını belirlemek amacıyla metabolik aktivitenin çeşitli sıcaklık ve süreler aralığında seri ölçümleri yapılması şarttır. Koruma yaralanmasının geleneksel değerlendirmesi genellikle histolojik inceleme veya miyokard biyopsilerinden alınan biyokimyasal testlere dayanır; biyopsiler invaziv, yıkıcı olup, doku durumu hakkında sadece aralıklı, bölgesel anlık görüntülersağlar 9. Buna karşılık, fosfor-31 manyetik rezonans spektroskopisi (31P MRS), fosfokreatin (PCr), adenozin trifosfat (ATP), inorganik fosfat (Pi) ve hücre içi pH dahil olmak üzere temel enerji metabolitlerinin sağlam kalpdokusu 6,10,11,12 içinde doğrudan ve seri ölçümünü sağlayan güçlü ve yıkıcı olmayan bir modalitedir. Aynı organda ek doku işleme olmadan tekrar edilen ölçümlere izin vererek, 31P MRS miyokardiyal enerjik duruma dair küresel ve uzunlamasına içgörü sağlar; biyopsi tabanlı veya serum taşıyıcı yaklaşımlara kıyasla deneysel hassasiyet ve tekrarlanabilirliği artırır 6,13.

31P MRS ile kalp grefti uygulanabilirliğinin değerlendirilmesi Bernard veark. 14 tarafından gözden geçirilmiştir. Burada, domuz kalbinin koruma sırasında ex vivo 3 Tesla 31P MRS için detaylı, sıcaklık kontrollü bir protokol sunulmaktadır. Bu yöntem, substrat tükenmesinin izlenmesi, depolama değişkenlerinin test edilmesi ve koruma müdahalelerinin doğrulanması için pratik bir çerçeve sağlar. Protokol, statik soğuk depolama sırasında seri, tam ventrikül ölçümleri arayan laboratuvarlar için özellikle uygundur; örneğin, sıcaklığa bağlı koruma, iskemi reperfüzyon yaralanması veya marjinal ve genişletilmiş kriterli donör kalpler için çözümlerin optimizasyonu gibi çalışmalar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu protokol, kurumsal hayvan bakım yönergelerini takip etmekte olup, Johns Hopkins Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (Protokol numarası SW24M319) tarafından cerrahi hasat dahil ve canlı hayvanlarla ilgili tüm işlemler için onaylanmıştır. Tüm sonraki ex vivo deneyler, ötenazi sonrası elde edilen dokularla gerçekleştirildi.

1. Hasat Öncesi prosedür

  1. İnkübatörü, hedef koruma sıcaklığının 2 °C altında bir sıcaklığa ayarlayın. İnkübatörün en az 2 saat stabilleşmesine izin verin.
  2. 6-7 buz paketini inkubatöre yerleştirerek önceden ayarlanmış sıcaklığa kadar soğutun. Buz paketlerinin taşıma sırasında sıcaklığı koruyacak kadar miktarda olduğundan emin olun.
  3. Modifiye Saint Thomas kardiyopleji çözeltisi hazırlayın:
    1. 1 litre laktated ringer çözeltisi torbasına ekleyin
      1. 30 mL %8,4 sodyum bikarbonat
      2. 5 mL 30 mmol/10 mL potasyum klorür
      3. 2,5 mL 20 mmol/10mL magnezyum sülfat
      4. 15 mL %50 dekstroz
      5. 100 mg 50 mg/10 mL nitrogliserin
      6. 5000 U soğuk eritropoietin
    2. Toplam 3 L kardiyopleji çözeltisi hazırlayın ve çözeltiyi önceden soğutulmuş kuluçka makinesinde saklayın.
  4. Kalbin dikey yüksekliğinin optimal şekilde konumlandırılmasını sağlayan yerleşik silikon boru olan yalıtımlı soğutucuyu bir kenara koyun. Silikon boruya, soğutucu kapağının açıklığının hemen altındaki noktaya siyah bir referans işareti yerleştirin.
  5. Toplanan kalbi sabitlemek ve asmak için kaburgalı bir kanül ayırın. Kanülün dış yüzeyine tekrarlanabilir hizalama noktası olarak hizmet etmek üzere siyah bir referans işareti yerleştirin.

2. Hasat prosedürü

  1. Hayvanı, telazol, ketamin ve ksilazin kombinasyonunu tek bir şırıngada karıştırıp kas içi uygulanarak sedat edin; böylece birden fazla enjeksiyonla ilişkili stres ve ağrıyı en aza indirmek elde edilir.
    1. Telazol (50 mg tiletamin + 50 mg zolazepam) her bileşen için 4,4 mg/kg.
    2. Ketamin 2.2 mg/kg.
    3. Ksilazin 2.2mg/kg.
  2. Hayvanı entübe edin ve anestezi edin.
    1. Gelgit hacmi 5-10 mL/kg.
    2. Solunum hızı dakikada 12-15 nefes.
    3. 5 cm H2O pozitif son-ekspirasyon basıncı.
    4. %0,5-2 oranında solunmuş izofluran ve 1-2 L/dakika oksijen akışı ile solunmuştur.
  3. Periferik intravenöz hatlar yerleştirilin, sternotomi yapın veperikardiyum 15'i açın. Gerekirse antiaritmik uygulayın.
  4. Yükselen aortaya, aort kapağının üstünde ama aort kemerinin altına yerleştirerek karditoplaji iğnesi yerleştirin.
  5. İğneye 1 litrelik kardiyopleji solüssiyonu torbasını aşılayın.
  6. Sol atriyum, alt vena kava ve üst vena kava havalandırılır.
  7. Kemiğe proksimal bir aort çapraz kelepçesi uygulayın.
  8. Koronerlerden yaklaşık 75-80 mmHg basınçta kardiyopleji akışını başlatın. Bir hat içi gösterge kullanarak basıncı izleyin.
  9. Kalbi toplayın ve anatomik bütünlüğü koruyun.
  10. Toplanan kalbin üzerine önceden soğutulmuş tuzlu su dökerek yüzeyini hızla soğutun.
  11. Kalbi soğuk kardiyopleji çözeltisi dolu bir kaseye yerleştirin.
  12. Kalbin zirvesine miyokard sıcaklığı probu ve sıcaklığı izlemek için kardiyoplegik çözelti kasesine bir termometre yerleştirin.
  13. Aortu pulmoner arterden (PA) ayırın.
  14. Kaburgalı kanülü aortada ipek bağları ve fermuarlı bağlarla sabitleyin; böylece kanülün işaretli kısmı sol ventrikülün (LV) konumuna karşılık gelir.
  15. Soğutucuyu %60-70 kapasiteye kadar Saint Thomas çözeltisiyle doldurun, ardından kalp ve kase çözeltisini soğutucuda aktararak tam doldurma için en yüksek seviyeye daldırın.
  16. Son çözelti ve doku sıcaklığını ölçüp belgeleyin.
  17. Kaburgalı kanülü soğutucu kapağına silikon boru ile önceden belirlenmiş işarete takın. Kaburga kanülü ve silikon boru üzerindeki izlerin hizalandığından emin olun; böylece soğutucu kapalıyken LV kapağa göre tutarlı bir konumda kalır ve her taramada LV'nin tekrarlanabilir konumlandırılmasını sağlar (Şekil 1A).
  18. MR veri toplama sırasında optimal MR alan homojenliği ve iyi sinyal-gürültü oranı sağlamak için orgu havadan ayırın.
  19. Soğutucu kapağını sabitleyin, LV hizasını garanti edin.
  20. Buz paketleri ve bir soğutucu taşıma çantasına yerleştirin.

3. Spektroskopi protokolü

  1. Bu protokol, 3T MR tarayıcı için optimize edilmiştir. MR tarayıcısı, 4 kW genişbantlı radyofrekans amplifikatörü ve alıcı dahil olmak üzere çok çekirdekli spektroskopi seçeneğiyle donatılmıştır; standart tedarikçi tarafından sağlanan fosfor bobini (P140) dahildir. 31P bobin, ayar ve eşleştirme için iki çubuklu 14 cm çapında tek döngülü bir gönderici/alıcı bobindir.
  2. Taşınmadan önce MRI tesis personeline bildirin ve tarama bulunabilirliğini doğrulayın.
  3. Aşağıdaki dış boyutlara sahip bir strafor kutu hazırlayın: uzunluk 33,5 cm, genişlik 28 cm (uzun kenar), genişlik 23 cm (kısa) ve kalınlık 4 cm. Kutunun bir tarafında 3,3cm genişliğinde bir yarık yapın ki 31 P bobinin kalbe bitişik yerleştirilmesi sağlanabilir (Şekil 1B).
  4. Soğutucuyu askıda kalbi bobinin merkezi eksenine bitişik olacak şekilde yerleştirin, LV konumunu hedefleyin (Şekil 1C). 25,4 cm yüksekliğinde ve 11,4 cm genişliğinde bir soğutucu hazırlayın. Silikon boru kapağın iç yüzeyinden 7 cm uzunluğunda, kalp montaj noktasında sabitlenir (Şekil 1D).
  5. Buz paketlerini soğutucu ile bobin arasında boşluk oluşmamaya özen göstererek soğutucu etrafındaki boşluklara yerleştirin, ardından tarama sırasında stabilite sağlamak için kutu kapağını bantlayın (Şekil 1E).
  6. Soğutucuyu lazer kılavuzları ve merkezleme işareti kullanılarak mıknatıs izomerkezine merkezleyin, böylece optimal B0 homojenliği sağlanır (Şekil 1F).
  7. 31P bobini tarama konnektörüne takın ve ayar ile eşleştirme çubuklarını bobine takın (Şekil 1F).
  8. Bobin yerleşimini ve 31P bobine optimal LV yakınlığını doğrulamak için üç-düzlem lokalizör keşif görüntüleri alın (Şekil 2).
  9. Eğer LV konumlandırması yanlışsa, soğutucu kapağını döndürün ve keşif taramasını tekrar yapın.
  10. Yüksek spektral kalite için gereken ilgi alanında eşit manyetik alan sağlamak amacıyla lokalize 2. derecedenşimming 16 için statik bir alan B0-haritası edinin:
    1. B 0-haritası alındıktan sonra, o harita yüklendiğinde otomatik olarak bir "Shimtool"16 fırlanır (Şekil 3).
    2. Tüm dilimelerde kalp kasını işaretleyen düzleştirilmiş bir çokgenin tıklama noktaları (Şekil 3A).
    3. "Shimtool" daha sonra kısıtlı en küçük kareler uyumu gerçekleştirerek lokalize rezonans frekansını ve birinci (x, y, z) ile ikinci dereceden (xy, xz,yz, x2-y 2, z2-(x2+y2)/2) şim alan düzeltmelerini belirler (Şekil 3C). Bu düzeltme terimlerini tarayıcıya yükleyin ve aşağıdaki taramalara uygulayın.
  11. 31P MRS ediniminden önce, bobinin ayar çubuklarını döndürerek radyofrekans bobininin optimal ayarlanmasını ve empedansını MR sistemine eşleştirmesini sağlayarak sinyal iletiminin verimliliğini en üst düzeye çıkarır ve radyofrekans sistemindeki yansımaları en aza indirir (Şekil 4).
  12. Başlangıçta lokalize olmayan 31P MR spektrumu alın (tekrarlama süresi [TR]: 10 s, ters açı = 90°; adiabatik B1-Duyarsız Dönme-4 (BIR-4) darbeleri kullanılarak; yankı süresi [TE] = 0.1 ms; bant genişliği = 3000 hertz (Hz); 1024 spektral nokta, 5 ortalama) PCr ve γ-ATP tepeleri arasındaki merkezdeki rezonans frekansını belirleyin. Toplam satın alma süresi: 50 s.
  13. Daha sonra, 3.12 hesaplamasına göre ofset frekansını ayarlayarak tamamen gevşekleşmiş, lokalize olmayan 31P MR spektrumları elde edin (TR: 16 s, flip açısı = 90° adiabatik BIR-4 darbeleri kullanılarak; TE = 0.1 ms; bant genişliği = 3000 Hz; 512 spektral nokta, 20 ortalama). Toplam satın alma süresi: 5 dakika 20 saniye.
  14. Taramadan sonra sıvı ve miyokard sıcaklıklarını ölçün; hedeften sapmanın ≤1 °C olmasını sağlar.
  15. Kalbi bir sonraki planlanan taramaya kadar istenen sıcaklıkta kuluçka ünitesinde sakla.

4. Veri analizi

  1. Tam gevşedilmiş 31P MRS verilerini şu şekilde dışa aktarın. SDAT veri dosyalarını ve işleme için grafiksel kullanıcı arayüzüne yüklenmesini sağlar (Şekil 5A)17.
  2. Öncelikle, spektrumları 15 Hz Lorentzian filtre kullanarak apodize edin (Şekil 5B), ardından 0 ve 1. dereceden faz kayması uygulayın ve PCr zirvesinin merkezinde frekansı 0 milyonda parça (ppm) olarak ayarlayın (Şekil 5C).
  3. Tablo 1'de listelenen bilgi değerleri kullanılarak AMARESfonksiyonu 18 kullanılarak spektrumları uyarlayın.
  4. Bir sonraki pencerede (Şekil 6) yeterli uyum analizini gözden geçirin; her zirvenin doğru şekilde tanımlandığından (bireysel bileşenler) ve analizden sonra minimum kalıntı sinyalin kaldığından emin olun (kalıntı).
  5. Spektroskopik zirve genliğine göre miyokard metabolit oranları PCr/ATP ve PCr/Pi hesaplayın (Şekil 7). ATP'nin bir ölçüsü olarak γ-ATP rezonansı kullanılır.
  6. Ayarlamadan sonra Pi ile PCr arasındaki kimyasal kaymaya dayanarak hücre içi pH'ı hesaplayın, böylece sıcaklıkkoşulu 14 yansıtılır.
    NOT: Protokol her MRI taramasından sonra duraklatılabilir (adım 3.15). Sıcaklık kontrolünün her zaman sürdürüldüğünden emin olun.

5. Denklemler

  1. Daha önce açıklandığı gibi hücre içi pH (pHi)hesaplanın: 19:
    Denklem 1
    Burada T, °C cinsinden sıcaklıktır ve δ0 , PCr ve Pi rezonansları arasındaki gözlemlenen kimyasal kayma farkıdır, ppm cinsinden.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Lokalize 2. dereceden şimming16 , ilgi alanında daha homojen bir B0 manyetik alan yarattı; bu, her zaman noktasında standart sapmanın azalmasıyla gösterildi (0 saat: 14,0 ila 4,0 Hz; 4 saat: 17,5 ila 3,2 Hz; 8 saat: 16,0 ila 3,2 Hz). Bu, her zaman noktasında mükemmel spektral kalitenin sağlanmasını sağladı (Şekil 7). Ex vivo soğuk depolama sırasında miyokard metabolik değişiklikleri, yüksek enerjili fosfat depolarının hızlı tükenmesini v...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu el yazması, kalp koruma sırasında miyokard enerjisinin seri değerlendirmesi için cerrahi bir hazırlık ve 31P MRS alma ve analiz protokolünü tanımlar. 31P MRS, farklı soğuk depolama sıcaklıklarında önemli kalp metabolitlerinin seri ve yıkıcı olmayan değerlendirmesini sağlar ve miyokardiyal dokunun metabolik canlılığı hakkında yeni bilgiler sağlar. Bu 31P MRS protokolü nispeten hızlıdır ve minimal tarayıcı süresi gerektirir; bu da önemli doku sıcaklığı d...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Çıkar çatışmamız yok.

Teşekkürler

Johns Hopkins'teki kalp cerrahisi ve radyoloji bölümündeki ekibimize bu araştırmayı başarıyla yürütmelerine yardımcı olduğumuz için teşekkür etmek istiyoruz. Bu çalışma, Amerikan Toraks Cerrahisi Derneği (AATS) tarafından finanse edilmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Kuluçka makinesiBenchmark Scientific H2265-HCMyTemp 65HC Isıtma Soğutma Kuluçka Makinesi
Yalıtma soğutucuGatoradeUPC 052000047097Gatorade Yalıtımlı Spor İçecek Soğutucusu
jMRUI sürüm 7.0Javawww.jmrui.euVeri analizi için grafiksel kullanıcı arayüzü
Miyokard sıcaklık probuDeRoyal81-030415DeRoyal 400 serisi miyokardiyal sıcaklık probu (15mm)
Manyetik Rezonans TarayıcıPhilipshttps://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingAchieva 3T, Philips Healthcare
Tek döngü fosfor bobiniPhilips Healthcare https://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingP140, Philips Healthcare

Kaynaklar

  1. Lechiancole, A., et al. Graft preservation in heart transplantation: current approaches. Front Cardiovasc Med. 10, 1253579(2023).
  2. Kounatidis, D., et al. Donor heart preservation: current knowledge and the new era of machine perfusion. Int J Mol Sci. 24 (23), 16693(2023).
  3. Ughetto, A., et al. Heart graft preservation technics and limits: an update and perspectives. Front Cardiovasc Med. 10, 1248606(2023).
  4. Wang, C. C., et al. Understanding preservation time thresholds in the modern era of heart transplantation. Sci Rep. 15 (1), 1-10 (2025).
  5. Tang, P. C., et al. Risk factors for heart transplant survival with greater than 5 h of donor heart ischemic time. J Card Surg. 36 (8), 2677-2684 (2021).
  6. Peterzan, M. A., Lewis, A. J. M., Neubauer, S., Rider, O. J. Non-invasive investigation of myocardial energetics in cardiac disease using 31P magnetic resonance spectroscopy. Cardiovasc Diagn Ther. 10 (3), 625-639 (2020).
  7. Lerman, J. B., et al. Donor heart recovery and preservation modalities in 2024. JACC Heart Fail. 12 (3), 427-437 (2024).
  8. Al-Ani, M. A. Z., Farr, M. A., Shah, P. Cold precision: enhancing organ preservation with controlled hypothermia. J Heart Lung Transplant. 43 (9), 1527-1529 (2024).
  9. Mishra, P. K., et al. Guidelines for evaluating myocardial cell death. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 317 (5), H891-H922 (2019).
  10. Abdurrachim, D., Prompers, J. J. Evaluation of cardiac energetics by non-invasive 31P magnetic resonance spectroscopy. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 1864 (5), 1939-1948 (2018).
  11. Sourdon, J., Lewsey, S. C., Schär, M., Weiss, R. G. Measuring myocardial energetics with cardiovascular magnetic resonance spectroscopy. Heart Fail Clin. 17 (1), 149-156 (2021).
  12. Samuel, T. J., et al. Myocardial ATP depletion detected noninvasively predicts sudden cardiac death risk in patients with heart failure. JCI Insight. 7 (12), e157557(2022).
  13. Buchthal, S. D., et al. 31P-magnetic resonance spectroscopy studies of cardiac transplant patients at rest. J Cardiovasc Magn Reson. 2 (1), 51-56 (2000).
  14. Bernard, M., Kober, F., Caus, T. Assessing cardiac transplant viability with MRS. eMagRes. 4 (3), 627-633 (2015).
  15. Pla, M. M., et al. A porcine heterotopic heart transplantation protocol for delivery of therapeutics to a cardiac allograft. J Vis Exp. (180), e63114(2022).
  16. Schär, M., Kozerke, S., Fischer, S. E., Boesiger, P. Cardiac SSFP imaging at 3 Tesla. Magn Reson Med. 51 (4), 799-806 (2004).
  17. Naressi, A., Couturier, C., Castang, I., De Beer, R., Graveron-Demilly, D. Java-based graphical user interface for MRUI, a software package for quantitation of in vivo/medical magnetic resonance spectroscopy signals. Comput Biol Med. 31 (4), 269-286 (2001).
  18. Vanhamme, L., Van den Boogaart, A., Van Huffel, S. Improved method for accurate and efficient quantification of MRS data with use of prior knowledge. J Magn Reson. 129 (1), 35-43 (1997).
  19. Taylor, D. J., Bore, P. J., Styles, P., Gadian, D. G., Radda, G. K. Bioenergetics of intact human muscle: a 31P nuclear magnetic resonance study. Mol Biol Med. 1 (1), 77-94 (1983).
  20. Kothari, P. Ex vivo preservation of heart allografts-an overview of the current state. J Cardiovasc Dev Dis. 10 (3), 105(2023).
  21. Kober, F., Caus, T., Riberi, A., Le Fur, Y., Bernard, M. Time course of high-energy phosphate depletion during cold storage of human heart grafts using the Celsior solution. Transpl Int. 37, 12994(2024).
  22. Tsampasian, V., Cameron, D., Sobhan, R., Bazoukis, G., Vassiliou, V. S. Phosphorus magnetic resonance spectroscopy (31P MRS) and cardiovascular disease: the importance of energy. Medicina (Kaunas). 59 (1), 174(2023).
  23. Gupta, A. Cardiac 31P MR spectroscopy: development of the past five decades and future vision-will it be of diagnostic use in clinics. Heart Fail Rev. 28 (2), 485-532 (2023).
  24. Michel, S. G., et al. Preservation of donor hearts using hypothermic oxygenated perfusion. Ann Transplant. 19, 409-416 (2014).
  25. Caenegem, O. V., et al. Hypothermic continuous machine perfusion enables preservation of energy charge and functional recovery of heart grafts in an ex vivo model of donation following circulatory death. Eur J Cardiothorac Surg. 49 (5), 1348-1353 (2016).
  26. Spencer, B. L., et al. Extending heart preservation to 24 h with normothermic perfusion. Front Cardiovasc Med. 11, 1325169(2024).
  27. Iyer, A., et al. Normothermic ex vivo perfusion provides superior organ preservation and enables viability assessment of hearts from DCD donors. Am J Transplant. 15 (2), 371-380 (2015).
  28. Brouckaert, J., Dellgren, G., Wallinder, A., Rega, F. Non-ischaemic preservation of the donor heart in heart transplantation: protocol design and rationale for a randomised, controlled, multicentre clinical trial across eight European countries. BMJ Open. 13 (12), e073729(2023).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Fosfor-31 SpektroskopisiMiyokardiyal MetabolizmaEx Vivo KalpEnerji MetabolitleriKardiyopleji UygulamasıPCr/ATP OranıHücre İçi pH

Bu makale yayımlandı

Video yakında

Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.