$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Bu çalışma protokolü, Pekin Üniversitesi Üçüncü Hastanesi Etik Komitesi tarafından incelenip onaylandı (Onay No. M2024151). Çalışmaya katılan reşit olmayanların tüm yasal vasileri bilgilendirilmiş onay formunu imzalamıştır.
Doku kaynağı
Bu protokolde kullanılan insan yumurtalık meduller dokusu, yumurtalık teratomu teşhisi konmuş dört pediatrik hastadan (2, 6, 13 ve 16 yaşlarında) ve araştırma amacıyla yumurtalık dokusu bağışlayan dört pediatrik hastadan alınmıştır (Tablo 1). Yumurtalık korteksi yumurtalık dokusu kriyokoruma çalışmaları için kullanılırken, kalan meduller doku in vitro folikül kültürü için kullanıldı. Toplamda 33 ikincil folikül izole edildi; 16 folikül kontrol grubuna, 17 folikül ise 3D kültür grubuna atandı.
Reaktif hazırlama
Taşıma ortamı, Leibovitz'in L-15 ortamından oluşuyordu, %10 serum ikame takviyesi eklendi ve 4 °C'de depolandı. Tam sindirim çözeltisi, MEMα'ya 0.04 mg/mL Liberase DH, 10 IU/mL DNase I ve 100 IU/mL penisillin-streptomisin takviyesi verilerek hazırlanmış ve -20 °C sıcaklıkta saklanmıştır. Sindirim durdurma çözeltisi, DPBS ile %10 serum ikame takviyesi ile takviye edilip 4 °C'de saklandı. Tam büyüme ortamı, MEMα'ya %10 serum ikame takviyesi, %1 insülin-transferrin-selenyum, 50 μg/mL L-askorbin askorbin asit, 2 mM sodyum piruvat ve 100 IU/mL penisilin streptomisin takviyesi ile hazırlandı. Malzeme 4 °C'de depolanmıştır. Rekombinant insan folikül uyarıcı hormonu (FSH), kültür başlatımında nihai konsantrasyona 100 mIU/mL eklendi; önceki birçalışmada belirtildiği gibi. Erken antrum oluşumunun görsel tespiti (yaklaşık 20. gün) sonucunda, rekombinant insan luteinizasyon hormonu (LH) ortam değişimleri sırasında nihai konsantrasyon olarak 10 mIU/mL olarak eklendi. Katı kültür matrisi, %70 (v/v) bazal zar matrisi ile %30 (v/v) buz soğukluğu tam büyüme ortamı karıştırılmış ve tüm işlem aşamalarında buz üzerinde tutularak hazırlanmıştır.
Doku sindirimi ve ikincil folikül izolasyonu
Yumurtalık dokusu taşınma ortamına yerleştirildi ve 4 °C sıcaklıkta laboratuvara taşındı. Steril koşullarda, yumurtalık medullası bir bistüri kullanılarak diseksiye edildi. Doku ince parçalara (~3 × 3 × 1 mm) ayrıldı ve doku doğrayıcıyla küçük parçalara (~0,5 × 0,5 × 1 mm) parçalandı, doku her yerde nemli tutuldu. Kıyma dokusu 35 mm'lik bir kaba aktarıldı ve 100 mg doku başına 2 mL ile önceden ısıtılmış tam sindirim çözeltisi eklendi. Kuluçka işlemi 37 °C'de 45–80 dakika (ortalama: 60 ± 15 dakika) ve her 10 dakikada bir nazikçe karıştırıldı. Mikroskobik incelemede stromal matriksin gevşemesi ve bireysel foliküllerin salındığı ortaya çıkınca sindirim sona ermiştir (Şekil 1). Sağlıklı ikincil foliküller (çapı 100–200 μm, ≥ 2 granüloza hücre tabakası ve görünür bir oosit) cam ağız kontrollü pipet (iç çapı 200 μm) kullanılarak stereomikroskop altında seçildi ve önceden ısıtılmış tam büyüme ortamı ile iki kez yıkandı.
3D gömülme ve uzun vadeli kültür
Bir hücre kültürü eki, 2 mL tam büyüme ortamıyla nemlendirilmiş 35 mm'lik bir kaba yerleştirildi ve 2 saat boyunca bir kuluçka içinde (37 °C, %5 CO₂) önceden dengelendi. Seçilmiş ikincil foliküller inserte aktarıldı ve aynı koşullarda gece boyunca ön kültür yapıldı. Pre-kültürün sonunda, kontrol grubundaki foliküller doğrudan insert içinde (2D kültür) kültürlenmiştir. Buna karşılık, 3D kültür grubu için belirlenen foliküller, büyüme faktörü azaltılmış bazaz zar matrisine (toplam protein 8~12 mg/mL) gömülmek üzere hazırlandı. Matris buz üzerinde eritildi ve %30 (v/v) buz soğukluğu tam büyüme ortamıyla karıştırıldı. Karışımın 40 μL'lik damlacıkları, yaklaşık 1,5 mm yüksekliğinde uniform bir jel tabakası oluşturmak için 35 mm'lik bir kaba (her tabak başına maksimum altı damla) yerleştirildi. Daha sonra, her damlaçaya cam ağız kontrollü pipet kullanılarak tek bir ikincil folikül aktarılır ve damlanın orta-üst üçte birine dikkatlice yerleştirilerek batmasını önlüyordu. Çanak, jelleşme için 30 dakika boyunca bir kuluçka makinesine (37 °C, %5 CO₂) yerleştirildi. Katılaşmadan sonra, uzun süreli kültür başlatmak için 2 mL tam büyüme ortamı nazikçe eklenir.
Kültür bakımı ve izleme
Her 48 saatte bir taze tam büyüme ortamı (FSH içeren) ile %50 bir ortam değişimi yapıldı. Foliküller her gün stereomikroskop altında gözlemlenmiş, çapları ve morfolojik özellikleri kaydedilmiştir. Erken antrum oluşumunun görsel olarak tespit edilmesi (yaklaşık 20. gün), sonraki değişikliklerde ortama rekombinant insan LH eklendi. Kültür, 30 güne kadar veya foliküller antral aşamaya (çapı 400 μm > ve açıkça tanımlanmış sıvı dolu bir boşluğa ulaşana kadar) sürdürüldü.
Post-kültür hücre ayrışması
Kültür sonunda, antral foliküller taze DPBS içeren bir kaba aktarıldı ve steril 29-gauge şırınga kullanılarak mekanik olarak ayrıldı. İzole kümülüs-oosit kompleksleri (COC) daha fazla analiz için ayrı bir tabakaya aktarıldı. Kalan granuloza ve theca hücre süspansiyonu, 2 mL önceden ısıtılmış tam büyüme ortamı içeren yeni 35 mm bir çanağa aktarıldı, eşit dağılım için nazikçe döndü ve 48 saat (37 °C, %5 CO₂) kuluçka edildi.
İmmünoflüoresans analizi
Kültür sonrası, hücreler oda sıcaklığında %4 paraformaldehit ile 30 dakika sabitlendi. Daha sonra örnekler PBS ile üç kez yıkanmış, %0,5 Triton X-100 ile 20 dakika geçirimli hale getirilmiş ve ardından %1 BSA ile 4 °C'de gece boyunca bloklanmıştır. Hücreler gece boyunca 4 °C'de primer antikorlarla kuluçka edildi. Kullanılan birincil antikorlar anti-FSHR (tavşan, 1:200) ve anti-LHR (fare, 1:100) idi. İnkubasyon sonrası hücreler, her biri 15 dakika boyunca üç kez yıkanarak %1 BSA içeren PBS ile yıkanmıştır. Daha sonra, floresan ikincil antikorlarla (anti-tavşan ve anti-fare, 1:200) oda sıcaklığında karanlıkta 2 saat kuluçka edildi. Son olarak, hücreler her biri 20 dakika süren üç son yıkama geçirdi. Çekirdekler oda sıcaklığında 5 dakika boyunca DAPI ile boyandı. Sonra örnekler 5 dakika boyunca üç kez yıkandı, PBS %1 BSA içeriyordu. Görüntüleme, konfokal modda Operetta CLS yüksek içerikli görüntüleme sistemi kullanılarak gerçekleştirildi. Floresan sinyalleri, DAPI (405 nm), Alexa Fluor 488 (LHR) ve Alexa Fluor 647 (FSHR) kanalları kullanılarak alındı; tüm örneklerde tutarlı pozlama ayarları sağlandı.
İstatistiksel analiz
5., 10. ve 15. günlerde kontrol grubu ile 3D kültür grubu arasında folikül çapı karşılaştırmaları bağımsız bir t-testi kullanılarak yapıldı. P < değeri 0.05 istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi. Folikül çapının istatistiksel analizi 15. günden sonra yapılmadı, çünkü kontrol grubundaki neredeyse tüm foliküller 15. günden sonra hayatta kalamadı. Bu durum, yetersiz bir örneklem büyüklüğüne yol açtı ve böylece güvenilir ve anlamlı grup karşılaştırmaları mümkün olmadı. Tüm istatistiksel analizler GraphPad Prism (sürüm 9.0) kullanılarak gerçekleştirildi.