TCGA veri tabanından veri edinimi
TCGA meme invaziv karsinomu (TCGA-BRCA) kohortuna ait RNA dizileme verileri ve klinik bilgiler genomic data commons portalından elde edildi14. STAR iş akışı RNA-seq verileri, milyon başına transkript (TPM) formatında, eşleşen klinik açıklamalarla birlikte çıkarıldı. Karşılık gelen klinik bilgileri eksik olan RNA-seq örnekleri hariç tutuldu. Ekspresyon tabanlı analizler için TPM değerleri log2(TPM + 1) olarak dönüştürüldü. MPO ekspresyonu, MPO gen sembolü ve ENSG00000005381.8 Ensembl gen ID'si kullanılarak çıkarıldı. MPO-yüksek ve MPO-düşük gruplandırma gerektiren analizler için yalnızca TCGA-BRCA tümör örnekleri dahil edildi ve komşu normal örnekler grup atamasından hariç tutuldu. Tümör örnekleri, TCGA-BRCA tümör örnekleri arasındaki log2(TPM + 1) dönüştürülmüş MPO ekspresyonunun medyan değerine göre bölündü. MPO ekspresyonu medyan değerine eşit veya daha büyük olan örnekler MPO-yüksek grubuna, medyanın altında kalan örnekler ise MPO-düşük grubuna atandı. Aksi belirtilmedikçe, bu medyan tabanlı gruplandırma stratejisi sağkalım analizi, diferansiyel ekspresyon analizi, zenginleştirme analizi, metilasyon gruplandırması ve immün hücre zenginleştirme karşılaştırmaları için kullanıldı. Cinsiyet, yaş, etnisite, patolojik T evresi, histolojik derece, PAM50 alt tipi, patolojik evre, tümör durumu gibi klinik patolojik özellikler ile genel sağkalım (OS), progresyonsuz aralık (PFI) ve hastalığa özgü sağkalım (DSS) dahil olmak üzere sağkalım son noktaları R versiyon 4.2.1 kullanılarak analiz edildi.
Kamuya Açık İmmünohistokimya Görüntü Erişimi
Komşu normal meme dokusunun ve meme kanseri dokusunun temsili MPO immünohistokimya (IHC) görüntüleri, kalitatif protein düzeyi referansları olarak kullanılmıştır. Bu görüntüler, kantitatif morfometrik veya istatistiksel analizlere dahil edilmemiştir. Kutulu alanlar, daha yüksek büyütmede gösterilen bölgeleri belirtmektedir. Ölçek çubukları, 20× görüntülerde 100 µm ve 40× görüntülerde 50 µm'yi göstermektedir.
Ekspresyon korelasyon analizi
Meme kanserinde MPO ekspresyonu ile birlikte değişkenlik gösteren genleri incelemek için TCGA-BRCA veri seti kullanılmıştır. MPO ile protein kodlayan genler arasında genom çapında Pearson korelasyon katsayıları hesaplanmış ve görselleştirme için en yüksek pozitif korelasyona sahip 30 gen ile en yüksek negatif korelasyona sahip 30 gen seçilmiştir. Birden fazla test edilen geni içeren korelasyon analizleri için nominal p-değerleri, Benjamini-Hochberg yanlış keşif oranı yöntemi kullanılarak düzeltilmiştir. MPO ile ilişkili protein-protein etkileşim (PPI) ağı, etkileşen genlerin/proteinlerin geri çağrılması için arama aracı (STRING) veri tabanı kullanılarak oluşturulmuş ve 0,40'tan büyük etkileşim skorları sergileyen protein çiftleri görselleştirme için tutulmuştur15.
Fonksiyonel zenginleştirme analizi
Diferansiyel olarak eksprese edilen genler (DEG'ler), |log2FC| > 1 ve Benjamini-Hochberg ile düzeltilmiş p-değeri < 0,05 eşik değerleri kullanılarak MPO-yüksek ve MPO-düşük TCGA-BRCA tümör grupları karşılaştırılarak belirlenmiştir. DEG'lerin fonksiyonel zenginleştirme analizi; gen ontolojisi (GO) biyolojik süreç, hücresel bileşen, moleküler fonksiyon ve Kyoto gen ve genom ansiklopedisi (KEGG) yolak analizlerini içerecek şekilde R paketinin clusterProfiler 4.4.4 versiyonu kullanılarak gerçekleştirilmiştir16,17,18,19,20. Zenginleşmiş GO ve KEGG terimleri, düzeltilmiş p-değeri < 0,05 olduğunda anlamlı kabul edilmiştir.
MPO-yüksek ve MPO-düşük gruplar arasındaki diferansiyel ekspresyon istatistiklerine dayanan ön sıralamaya tabi tutulmuş bir gen listesi kullanılarak gen seti zenginleştirme analizi (GSEA) gerçekleştirilmiştir. MSigDB v2022.1.Hs ile uyumlu ve 3.050 gen seti içeren MSigDB C2 Kanonik Yolaklar koleksiyonu c2.cp.all.v2022.1.Hs.symbols.gmt kullanılmıştır21,22. Zenginleşen terimler, Benjamini–Hochberg düzeltmeli p-değeri < 0.05, FDR q-değeri < 0.25 ve |normalize edilmiş zenginleştirme skoru| > 1 kriterlerine göre anlamlı kabul edilmiştir. Uygun olan durumlarda, anlamlı derecede zenginleşen terimler için Z-skorları, görselleştirme amacıyla GOplot paketi kullanılarak hesaplanmıştır.
Tümörlerdeki immün hücre zenginleştirmesinin analizi
TCGA-BRCA kohortundaki immün ve stromal bileşenler, R paketinin estimate versiyon 1.0.13 sürümünde uygulanan ESTIMATE algoritması kullanılarak değerlendirilmiştir. Girdi olarak Log2(TPM + 1)-transforme edilmiş ekspresyon verileri kullanılmış; her bir tümör örneği için immün skor, stromal skor ve ESTIMATE skor hesaplanmıştır. B hücreleri, CD8+ T hücreleri, CD4+ T hücreleri, makrofajlar, nötrofiller ve dendritik hücreler dahil olmak üzere, TCGA-BRCA kohortundaki MPO ekspresyonu ile ana immün hücre popülasyonlarının tahmini infiltrasyon seviyeleri arasındaki ilişkileri değerlendirmek için TIMER/TIMER2.0 kullanılmıştır23,24,25. TIMER tabanlı sonuçlar, ilgili çevrimiçi kaynaktan elde edilen immün infiltrasyon tahminleri olarak yorumlanmıştır. 24 immün hücre tipi üzerinden immün hücre zenginleştirme analizi için, R paketinin GSVA versiyon 1.46.0 sürümü kullanılarak tek örnek gen seti zenginleştirme analizi (ssGSEA) uygulanmıştır26. 22 immün hücre tipinin CIBERSORT tabanlı dekonvolüsyonu için kullanılan LM22 immün hücre imza matrisi Ek Tablo 1'de sunulmuştur. MPO ekspresyonu ile immün hücre zenginleştirme skorları arasındaki korelasyonlar, Spearman sıra korelasyonu kullanılarak değerlendirilmiştir. Medyan ile tanımlanmış MPO-yüksek ve MPO-düşük tümör grupları arasındaki immün hücre zenginleştirme skorlarındaki farklılıklar, Wilcoxon sıra toplamı testi kullanılarak karşılaştırılmıştır. Birden fazla immün hücre tipini içeren analizler için p-değerleri, Benjamini–Hochberg yanlış keşif oranı yöntemi kullanılarak düzeltilmiştir.
MPO geninin DNA metilasyonu
MPO lokusundaki DNA metilasyon modelleri MethSurv kullanılarak değerlendirildi. TCGA-BRCA için CpG metilasyon beta değerleri ve sağkalım ilişkileri MethSurv platformundan elde edildi. Seçilen MPO ile ilişkili CpG bölgeleri görselleştirildi ve bunların sağkalım sonuçlarıyla olan ilişkileri, MethSurv tarafından sağlanan sağkalım analizi çıktıları kullanılarak değerlendirildi27. Birden fazla CpG bölgesini içeren analizler için p-değerleri, test edilen MPO ile ilişkili CpG bölgeleri genelinde Benjamini-Hochberg yanlış keşif oranı yöntemi kullanılarak düzeltildi. Bu metilasyon analizleri, keşifsel epigenetik anotasyonlar olarak yorumlandı.
Nötrofille ilişkili genlerin PPI ağının oluşturulması ve korelasyon analizi
MPO ile nötrofil ilişkili biyoloji arasındaki ilişkiyi incelemek için sistematik bir ağ analizi gerçekleştirilmiştir. Mevcut literatürden, nötrofil aktivasyonunun ve ilgili inflamatuar süreçlerin kanıtlanmış mediyatörlerini içeren bir gen seti oluşturulmuştur. Nötrofille ilişkili tam gen listesi Ek Tablo 2'de sunulmuştur. Gen sembolleri resmi gen sembolleriyle uyumlu hale getirilmiş, mükerrer girişler kaldırılmış ve mevcut genler; STRING/PPI analizi, hub-gen önceliklendirmesi ve MPO–hub gen korelasyon analizi öncesinde TCGA-BRCA ekspresyon matrisi ile kesiştirilmiştir. Bu genler arasındaki PPI ağı, orta güvenilirlikteki etkileşim skoru eşiği (>0,40) kullanılarak STRING veritabanı (versiyon 11.5) ile oluşturulmuştur. Bu ağdaki hub genler, düğüm başına doğrudan etkileşim sayısını belirleyen derece merkeziliği (degree centrality) temel alınarak algoritmik olarak önceliklendirilmiştir. En yüksek derece skoruna sahip ilk 20 gen, sonraki korelasyon analizi için seçilmiştir.
Ardından, bu hub genlerin ve MPO'nun ekspresyon profilleri TCGA-BRCA transkriptomik veri setinden çıkarıldı. MPO ile her bir hub gen arasındaki ilişki, Spearman sıra korelasyonu kullanılarak istatistiksel olarak değerlendirildi. Hub genlerin kendi aralarındaki korelasyon modellerini karakterize etmek için, tüm tümör örnekleri genelinde ikili bir Spearman korelasyon matrisi hesaplandı. Bu korelasyon analizleri; MPO-hub gen korelasyonlarının lolipop grafiği ve hub-gen korelasyon modellerini betimleyen kord diyagramı/ısı haritası dahil olmak üzere, sonraki görselleştirmeler için kantitatif temel oluşturdu.
MPO'yu hedefleyen üst akış transkripsiyon faktörlerinin ve miRNA'ların tahmini
MPO'nun hedef TF'lerini öngörmek için KnockTF veritabanı (https://bio.liclab.net/KnockTF/index.php)28,29, ChIP veritabanı (http://chip-atlas.org/)30,31 ve GTRD veritabanı32,33 (https://gtrd.biouml.org/#!) kullanıldı. Ayrıca, MPO'yu hedefleyen potansiyel miRNA bağlanma bölgelerini öngörmek için TargetScan veritabanından (https://www.targetscan.org/vert_80/) yararlanıldı. Venn diyagramları, MicroBioinformatics web sitesi (https://www.bioinformatics.com.cn/static/others/jvenn/example.html)34 kullanılarak oluşturuldu.
MPO'nun tek hücre analizi
GSE161529 numaralı spesifik veri seti Gene Expression Omnibus (GEO) kaynaklıdır. Veri ön işleme aşamasında, düşük kaliteli hücreleri hariç tutmak için hücre düzeyinde filtreleme yapılmıştır; bu kapsamda şu kriterlerden herhangi birini karşılayan hücreler dışlanmıştır: mitokondriyal gen ekspresyonunun %25'i aşması, toplam benzersiz moleküler tanımlayıcı (UMI) sayısının 5000'in altında olması veya 2500'den az gen saptanması. Ardından, ortam RNA kontaminasyonu ve teknik grup (batch) etkileri düzeltilmiştir35. Hücresel benzerliği değerlendirmek amacıyla boyut indirgeme için temel bileşen analizi (PCA) yapılmış, ardından hücre kümeleme ve görselleştirme için UMAP uygulanmıştır. Daha sonra, hücrelerin tipik marker genlerine göre farklı kümeler hücre tipleri olarak tanımlanmıştır11. Tek hücre imza skorlaması için kullanılan MPO ilişkili gen seti Ek Dosya 1'de sunulmuştur. Skorlamadan önce, gen sembolleri resmi gen sembolleriyle harmonize edilmiş, yinelenen girişler kaldırılmış ve mevcut genler GSE161529 ekspresyon matrisi ile kesiştirilmiştir. Hücre başına MPO ilişkili skorları hesaplamak için AUCell, Seurat AddModuleScore ve ssGSEA kullanılmıştır. Üç yöntemden elde edilen skorlar Z-skoru ile normalize edilmiş, karşılaştırılabilir bir aralığa ölçeklendirilmiş ve sonraki tanımlayıcı analizler için kompozit bir MPO ilişkili skor oluşturacak şekilde entegre edilmiştir. MPO ilişkili sinyale göre katmanlandırılmış epitelyal tümör hücreleri ile çeşitli partner hücre tipleri arasındaki çıkarılan ligand-reseptör iletişim modellerini karşılaştırmak için hücre-hücre etkileşim ağları incelenmiştir. Bu çıktılar, MPO eksprese eden hücrelerin hücreler arası iletişimi doğrudan yönettiğine dair bir kanıttan ziyade, tanımlayıcı iletişim modelleri olarak yorumlanmıştır.
scTenifoldKnk kullanarak MPO'nun tek hücreli sanal nakavtı ve yol zenginleştirme analizi
MPO'nun tek hücreli sanal nakavtı (virtual knockdown), Seurat ve scTenifoldKnk entegre edilerek gerçekleştirilmiştir. Standart kalite kontrolünün ardından (hücre başına 200–6.000 gen; mitokondriyal fraksiyon < %10), veriler log-normalleştirilmiş ve boyut indirgeme ile kümeleme için 2.000 yüksek değişkenli gen seçilmiştir. MPO ile ilgili bağlamları zenginleştirmek amacıyla, bir myeloid/nötrofil gen modülünde ilk %50'lik dilimde yer alan hücreler tutulmuştur. Bu hücreler arasından, PCA uzayında k = 40 en yakın komşu kullanılarak MPO-pozitif tohumlardan genişletme yapılarak bir MPO-komşuluk alt kümesi tanımlanmıştır. Genişletilen alt küme, saf bir MPO-pozitif popülasyon olarak değerlendirilmemiş ve bu KNN genişletme adımından herhangi bir hücre tipi oranı sonucu çıkarılmamıştır. Bu alt küme, yüksek değişkenli genlerin ve MPO'nun (≥25 hücrede ifade edilen) birleşimi gen seti olarak kullanılarak scTenifoldKnk aracılığıyla sanal nakavt analizine tabi tutulmuştur. Anlamlı düzeyde pertürbe olmuş genler belirlenmiştir (FDR < 0,05, BH-düzeltmeli). Elde edilen genler, GO Biyolojik Süreçler ve KEGG yolakları açısından fonksiyonel zenginleştirme için ileri analizlere tabi tutulmuştur (q < 0,05).
Keşifsel ilaç-gen erişimi ve ADMET anotasyonu
Öncelikle MPO ile ilişkili ilaç–gen veya kimyasal–gene etkileşim kayıtlarını elde etmek için DGIdb sorgulandı. Veritabanı kaynaklı etkileşim listeleri, heterojen kanıt türleri tarafından desteklenen girişler içerebileceği ve klinik olarak uygulanabilir terapötik ajanlarla doğrudan örtüşmeyebileceği için, geri getirilen bileşikler öncelikli tedavi adaylarından ziyade keşif amaçlı notlar olarak değerlendirildi. Ardından, tahmin edilen fizikokimyasal, farmakokinetik ve toksikolojik özellikleri özetlemek için SwissADME ve ADMETlab kullanıldı. Bu in silico notlar, bileşik düzeyindeki yorumlamalar için ön bilgi sağlamak ve herhangi bir terapötik ilişki değerlendirilmeden önce daha fazla farmakolojik, toksikolojik ve klinik kürasyon ihtiyacını vurgulamak amacıyla kullanıldı36.