Etik onay, Zhejiang University-Laboratory Animal Welfare and Ethics Review tarafından sağlanmıştır (Onay No. ZJU20250049).
Hayvanlar ve gruplandırma
Lisanslı bir ticari tedarikçiden (Lisans No. SCXK (Shanghai) 2013-0006) satın alınan, 4–5 haftalık, 18–20 g ağırlığındaki toplam 40 dişi NOD/SCID fare, spesifik patojenle arındırılmış (SPF) sınıfı hayvan odalarında barındırılmıştır. Tüm hayvan protokolleri standart kılavuzlara uygun olarak yürütülmüştür. Deney boyunca hayvanların serbestçe beslenip içmelerine izin verilmiş, iyi kontrol edilen bir SPF odasında gruplar halinde (kafes başına 5 fare), oda sıcaklığı 22 ± 2 °C, nem %50%–60% ve 12/12 saatlik bir ışık/karanlık döngüsü ile barındurulmuşlardır. Hayvanlara ad libitum yem ve su sağlanmış ve vücut ağırlıkları her 2 haftada bir izlenmiştir. Farelerin sürekli ağrı, kaşeksi, tümör ülserleri göstermesi, tümör boyutunun maksimum 2 cm'ye ulaşması veya diğer geri dönüşü olmayan sağlık sorunlarının oluşması durumunda, Hayvan Etik Kurulu tarafından onaylanan insani sonlandırma kriterlerine uygun olarak, vücut ağırlığına göre ≥150 mg/kg dozunda %0,45 pentobarbital sodyumun intraperitonal enjeksiyonu ile ötanazi uygulanmış; ardından solunum ve kalp atışının durması, kornea refleksinin kaybı teyit edilmiş veya gerekirse ikincil bir fiziksel yöntem uygulanmıştır. Örneklem büyüklüğü (grup başına n = 10), 1,2'lik bir etki büyüklüğü (pilot deneylerden türetilen), α = 0,05 ve β = 0,20 (%80 güç) varsayılarak yapılan bir güç analizine ve %20'lik bir yıpranma payına göre belirlenmiştir. Tümör implantasyon prosedürleri, tedaviye önceden atanmadan önce gerçekleştirilmiştir (ksenogreft oluşturma için aşağıya bakınız).
Tümör implantasyonu ve tümör tutunmasının onaylanmasının ardından fareler, NOD/SCID fare transplant tümör modelini oluşturmak amacıyla rastgele sayı tablosu yöntemi kullanılarak kontrol grubu, sorafenib grubu, gemcitabine grubu ve sorafenib ile gemcitabine kombinasyon grubu olmak üzere 4 gruba rastgele ayrılmıştır ve her grupta 10 fare (kafes başına 5 fare) yer almıştır. Modelleme sürecindeki tümör dokularının NOD/SCID farelerde genel durumun kötüleşmesine ve hatta ölüme neden olabileceği ve istatistiksel analizlerin genellikle etkili bir örneklem büyüklüğü gerektirdiği göz önünde bulundurularak, her gruba en az 10 fare dahil edilmiştir. Rastgele gruplandırma bağımsız teknisyenler tarafından gerçekleştirilmiş ve kafesler etiketlenmiştir; ilaç uygulaması veya tümör ölçümü sırasında körleme uygulanmamıştır, bu durum önemli bir kısıtlamadır. Geri kalan doku örneklemesi, biyokimyasal ve patolojik değerlendirmelerin tamamı körleme yöntemiyle laboratuvar personeli tarafından yürütülmüştür. Veriler ayrıca, istatistikler tamamlanana ve veriler körlemeden çıkarılana kadar yalnızca kodlanmış dosyalara erişimi olan istatistikçiler tarafından körleme şeklinde analiz edilmiştir. Tüm hayvanlar final analizine dahil edilmiştir. Sistemik emilimi ve tutarlı biyoyararlanımı sağlamak için her iki ilaç için de intraperitoneal yol seçilmiştir; günde bir kez dozlama, bu rejimle sürdürülen plazma konsantrasyonlarını gösteren önceki farmakokinetik çalışmalara dayandırılmıştır. Araç kontrol grubuna intraperitoneal olarak 0.2 mL steril normal salin enjekte edilmiştir. Sorafenib grubuna intraperitoneal olarak 0.2 mL 40 mg/kg sorafenib enjekte edilmiştir. Gemcitabine grubuna intraperitoneal olarak 0.2 mL 100 mg/kg gemcitabine enjekte edilmiştir. Kombinasyon tedavi grubu: 40 mg/kg sorafenib ve 100 mg/kg gemcitabine'den 0.2 mL'şer intraperitoneal olarak uygulanmıştır. Her gruba 20 gün boyunca günde bir kez uygulama yapılmıştır. Tüm hayvanlar final analizine dahil edilmiş ve çalışmadan herhangi bir fare çıkarılmamıştır. 20 günlük tedavi süresi boyunca hiçbir grupta mortalite gözlemlenmemiştir. Takvim ve dozlar, hepatobilyer kanser modellerindeki yayınlanmış çalışmalara göre seçilmiştir. Gemcitabine'in günlük intraperitoneal uygulamasının toksisiteye neden olabileceği unutulmamalıdır. Transplant tümörlerin uzunluğu ve genişliği günlük olarak ölçülmüş ve transplant tümörlerin hacmi hesaplanmıştır. 20 gün sonra hayvanlar derin anestezi altında servikal dislokasyonla ötanize edilmiş ve transplant tümör dokuları formalinde fikse edilmiştir. Vücut ağırlığı çalışma boyunca her 2 günde bir ölçülmüştür. Fareler; piloereksiyon, kambur duruş, azalmış mobilite, diyare ve letarji dahil olmak üzere klinik toksisite belirtileri açısından günlük olarak izlenmiştir. Bununla birlikte, serum biyokimyası (örneğin, alanin aminotransferaz, aspartat aminotransferaz ve kreatinin) ve ana organların histopatolojik incelemesi yapılmamıştır. Bu nedenle, subklinik toksisite dışlanamaz.
İlaçlar ve reaktifler
Sorafenib, %10 dimetil sülfoksit (DMSO) içinde çözülmüş ve -20 °C'de saklanmıştır. Kullanımdan önce solüsyon çözdürülmüş ve hücre büyümesi üzerinde herhangi bir etkisi olmayan %0,5'ten düşük nihai DMSO konsantrasyonuna seyrelştirilmiştir. Gemcitabine ticari bir kaynaktan temin edilmiştir. Radyoimmünopresipitasyon analizi (RIPA) liz tamponu, tiazolil mavisi, gliseraldehit-3-fosfat dehidrogenaz (GAPDH), ERK, p-ERK ve VEGF'e karşı primer antikorlar, sekonder antikorlar, Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) yüksek glikozlu besiyeri, fetal sığır serumu ve HepG2 hücre hattı ticari kaynaklardan temin edilmiştir.
Sorafenib ve gemcitabine sitotoksik ajanlardır. Tüm ilaç hazırlama ve uygulama prosedürleri, uygun kişisel koruyucu ekipman (laboratuvar önlüğü, nitril eldivenler ve koruyucu gözlükler) giyilmiş halde, belirlenmiş bir biyogüvenlik kabininde gerçekleştirilmelidir. Bu protokolde kullanılan DMSO, metanol, ksilen ve diğer organik çözücüler tehlikelidir ve solunmayı veya ciltle teması önlemek için bir çeker ocak içerisinde kullanılmalıdır. Tüm reaktifler için malzeme güvenlik veri sayfaları (MSDS) kullanım öncesinde incelenmelidir.
Hücre Kültürü
HepG2 hücre hattı canlandırılmış ve 10 mL DMEM yüksek glukoz besiyeri (10% fetal bovine serum, 100 U/mL penisilin-streptomisin ve 4 mmol/L glutamin ile desteklenmiş) içeren hücre kültürü şişelerine ekilmiştir. Hücreler, %5 CO₂ içeren nemlendirilmiş bir inkübatörde 37 °C'de inkübe edilmiştir. Kültür besiyeri her 2 günde bir değiştirilmiş ve logaritmik büyümeyi sürdürmek için hücreler her 4 günde bir pasajlanmıştır. HepG2 hücre hattı ticari bir kaynaktan temin edilmiştir; ancak, bu çalışmada bağımsız hücre hattı doğrulaması (örneğin, kısa tandem tekrar profilleme) ve mikoplazma testi yapılmamıştır.
Proliferasyon inhibisyon oranının belirlenmesi için MTT yöntemi
Sorafenibin ve gemcitabinin HepG2 hücre hattı üzerindeki proliferasyon inhibisyon oranı, 3-(4,5-dimetiltiyazol-2-il)-2,5-difeniltetrazolyum bromür (MTT) yöntemi kullanılarak belirlenmiştir. Logaritmik büyüme evresindeki hücreler %0,25'lik tripsin ile 2 dakika boyunca sindirilmiş ve sindirim işlemi, eşit hacimde komple besiyeri eklenerek sonlandırılmıştır. 1000'de santrifüj işleminden sonra × g hücreler 10 dakika boyunca komple medyumda süspanse edildi. Hücre yoğunluğu 1'e ayarlandı × 105 hücre/mL ve 200 µL hücre süspansiyonu, 96 kuyucuklu bir plakanın her bir kuyucuğuna ekilmiştir. Bu ekim yoğunluğu, 5 arası hücre yoğunluklarının denendiği ön optimizasyon deneylerine dayanarak seçilmiştir × 103 5'e × 104 kuyu başına 2 hücre test edildi. 2'nin yoğunluğu × 104 kuyu başına hücre sayısı, 96 saat boyunca lineer absorbans artışı sağladı ve evriltme mikroskobu altındaki görsel inceleme ile doğrulandığı üzere, bitiş noktasında konfluens %80'in altında tutuldu. MTT ölçümlerinin lineer aralıkta kaldığından emin olmak için, her bir zaman noktasında araç ile işlem görmüş kontrol kuyucuklarıyla pilot deneyler gerçekleştirildi. Besin tükenmesini ve metabolik yan ürünlerin birikimini önlemek için besiyeri her 48 saatte bir yenilendi. Konfluens, bir evriltme mikroskobu kullanılarak günlük olarak izlendi. 96. saatte, kontrol kuyucukları yaklaşık %75-80 konfluense ulaştı ve herhangi bir belirgin besin tükenmesi belirtisi gözlemlenmedi. Hücre tutunmasının ardından besiyeri atıldı ve ilaç içeren besiyeri eklendi. İşlem görmemiş kontrol grubuna (araç kontrolü için) ilaç içermeyen besiyeri eklendi. in vivo deneyler). Deney; işlem görmemiş kontrol grubu, sorafenib grubu, gemcitabine grubu ve kombinasyon tedavi grubu olmak üzere bölünmüştür. Sorafenib dozları 1.5 µmol/L, 3 µmol/L, 4.5 µmol/Lve 6 µmol/Lve gemcitabine dozları şunlardı 5 µmol/L, 10 µmol/L, 15 µmol/Lve 20 µmol/LSorafenib'in gemcitabine ile kombine edilen dozları şöyledir: 1.5 µmol/L + 5 µmol/L, 3 µmol/L + 10 µmol/L, 4.5 µmol/L + 15 µmol/Lve 6 µmol/L + 20 µmol/LHer gruptaki hücreler 24 sa, 48 sa, 72 sa ve 96 sa boyunca kültüre edilmiştir. Kültürleme işleminin ardından, 20 µL her bir kuyucuğa 5 mg/mL MTT eklendi ve hücreler bir hücre inkübatöründe 4 saat boyunca inkübe edildi. Süpernatan dikkatlice uzaklaştırıldı ve ardından 150 µL Her bir kuyucuğa DMSO eklendi ve formazanın tamamen çözünmesi için plaka 10 dakika boyunca çalkalandı; ardından her kuyucuğun optik yoğunluk (OD) değeri, çok fonksiyonlu bir mikroplaka okuyucu kullanılarak 490 nm'de ölçüldü. Deney üç kez tekrarlandı ve her grupta beş tekrarlı kuyucuk yer aldı. Veriler ortalama olarak sunuldu ± Üç biyolojik replikanın standart sapması (SD). Hücre büyüme inhibisyon oranı (%) = (1 - OD deney grubu /OD işlem görmemiş grup)× %100. İki ilaç arasındaki etkileşim, şunlara göre değerlendirilmiştir: qşu formülle hesaplanan p-değeri: Soru (veya Sorgu) = EAB / (EA + EB - EA × EB). Burada EA ve EB, A ve B ilaçlarının tek başına kullanıldığındaki inhibisyon oranları, EAB ise iki ilacın birlikte kullanıldığı durumdaki inhibisyon oranıdır. Şöyle olduğunda q 1,15'ten büyükse, iki ilaç arasında sinerjistik bir etki olduğunu gösterir; 0,85–1,15 arası additif bir etkiyi gösterir ve q 0,85'ten küçük olması antagonistik bir etkiyi gösterir. Lütfen çevirmemi istediğiniz kaynak metni paylaşın.-değeri yöntemi basit bir tarama aracıdır ve daha titiz sinerji analizlerinin yerini tutmaz. Yalnızca birkaç sabit oranlı doz çifti test edilmiş olup bu durum sinerji iddiasının güvenilirliğini sınırlamaktadır. Bu nedenle, terimi "sinerji" bu çalışmada ... anlamına gelmektedir q > belirli doz çiftlerinde ve zaman noktalarında 1,15 değerine, tüm doz-yanıt matrisi boyunca doğrulanmış bir additif etkileşime değil.
ERK ve p-ERK protein ekspresyonunun Western blot analizi
Hücre kültürü ve deneysel gruplandırma yukarıda açıklandığı şekilde gerçekleştirilmiştir. Western Blot yöntemiyle ERK ve p-ERK tespiti için sorafenib dozu 3 µmol/L; gemcitabine dozu 10 µmol/L ve kombinasyon dozu 3 µmol/L + 10 µmol/L olarak uygulanmıştır. 72 saatlik tedavinin ardından hücreler RIPA liziz tamponu ile lizize edilmiş ve her deneysel gruptan toplam protein ekstraksiyonu yapılmıştır. Protein konsantrasyonu bikarboninik asit (BCA) yöntemi ile belirlenmiştir. Eşit miktarda protein (hat başına 30 µg), %10 sodyum dodesil sülfat-poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE) ile 120 V'da 90 dakika boyunca yüklenmiş ve ayrıştırılmıştır. Proteinler, 4 °C'de 300 mA ile 90 dakika boyunca poliviniliden diflorür (PVDF) membranlara (0,45 µm gözenek boyutu) aktarılmıştır. %0,1 Tween-20 içeren Tris tamponlu salin (TBST) içindeki %5 yağsız süt ile oda sıcaklığında 1 saat boyunca bloklama yapıldıktan sonra, membranlar primer antikorlarla 4 °C'de hafif çalkalama ile gece boyunca inkübe edilmiştir. TBST ile üç kez yıkamanın ardından (her biri 10 dk), membranlar oda sıcaklığında 1 saat boyunca sekonder antikorlarla inkübe edilmiştir. Protein bantları, geliştirilmiş kemilüminesans (ECL) substratı kullanılarak görselleştirilmiş ve dijital jel görüntüleme sistemi ile görüntülenmiştir. Doygunluğu önlemek için her antikor için pozlama süreleri optimize edilmiştir. Densitometrik kantifikasyon, jel analiz aracı kullanılarak ImageJ yazılımı ile gerçekleştirilmiştir. Tüm hedef protein bant yoğunlukları, yükleme kontrolü olarak GAPDH'ye normalize edilmiş ve p-ERK ekspresyonu ayrıca toplam ERK ekspresyonuna normalize edilmiştir. %5 yağsız süt dışında ek bloklama adımı uygulanmamıştır. Kantifikasyon sonuçları, 1,0 olarak belirlenen kontrol grubuna göre kat değişimi (fold change) olarak sunulmuştur. Her deney bağımsız olarak üç kez tekrarlanmıştır. Temsili immünoblotlar gösterilmiştir.
NOD/SCID farelerde HepG2 ksenogreft tümörlerde VEGF ekspresyonunun immünohistokimyasal tespiti
Xenograft oluşturulması için: Logaritmik büyüme fazındaki HepG2 hücreleri tripsinizasyon yoluyla toplandı, steril fosfat tamponlu salin (PBS) ile iki kez yıkandı ve serumsuz DMEM içinde yeniden süspanse edildi. NOD/SCID farelerde bir HepG2 deri altı xenograft modeli oluşturmak için, 0,2 mL serumsuz DMEM (Matrigel olmadan) içindeki toplam 2 × 106 hücre, her bir NOD/SCID faresinin sağ aksiller bölgesine (zengin kan akışına sahip bir alan) 1 mL'lik bir şırınga kullanılarak deri altına enjekte edildi. Tümör tutulumu her 2 günde bir izlendi. Tümör boyutu her iki günde bir ölçüldü ve tümör çapı 0,3–0,5 cm'ye ulaştığında (enjeksiyondan yaklaşık 7–10 gün sonrası, tedavi başlangıç noktası olarak tanımlanmıştır), fareler deney için rastgele 4 gruba ayrıldı. Deri altı xenograftın uzunluğu (L) ve genişliği (W) dijital kumpaslar kullanılarak her gün ölçüldü ve tümör hacmi (V), V = (L × W2) / 2 formülüne göre hesaplandı. Tüm ölçümler, grup tahsislemesine kör olan bir araştırmacı tarafından gerçekleştirildi. 20 gün sonra hayvanlar derin anestezi altında servikal dislokasyonla ötaniyaziye tabi tutuldu ve xenograft dokusu, oda sıcaklığında 24 saat boyunca %10 nötr tamponlu formalin içinde fikse edildi, ardından parafinle gömüldü. Doku kesitleri (5 µm kalınlığında) döner mikrotom kullanılarak kesildi ve poli-L-lizin kaplı cam lamlara monte edildi. İmmünohistokimya için kesitler ksilenle (üç değişim, her biri 5 dk) deparafine edildi ve dereceli bir etanol serisi ( %100, %95, %70, %50; her biri 3 dk) ile yeniden hidrate edildi. Antijen geri kazanımı, kesitlerin bir mikrodalgada 10 mM sodyum sitrat tamponu içinde 15 dk ısıtılması ve ardından oda sıcaklığında 20 dk soğutulmasıyla gerçekleştirildi. Endojen peroksidaz aktivitesi, oda sıcaklığında 10 dk boyunca metanoldeki %3 hidrojen peroksit ile bloke edildi. Non-spesifik bağlanma, oda sıcaklığında 1 saat boyunca PBS içindeki %5 normal keçi serumu ile bloke edildi. Ardından kesitler, nemlendirilmiş bir hazne içinde 4 °C'de gece boyu primer anti-VEGF antikoru (dilüsyon 1 : 200) ile inkübe edildi. PBS ile yıkamanın ardından (üç kez, her biri 5 dk), kesitler oda sıcaklığında 1 saat boyunca horseradish peroxidase (HRP)-konjuge keçi anti-tavşan sekonder antikoru (1 : 500) ile inkübe edildi. Sinyal, 3,3′-diaminobenzidin (DAB) substratı kullanılarak tespit edildi. Kesitler 30 saniye boyunca hematoksilin ile karşı boyandı, dehidrate edildi, şeffaflaştırıldı ve kalıcı montaj medyumu kullanılarak lamellerle kapatıldı. Görüntüleme, parlak alan ayarlarında ×100 büyütmede floresan evirtmiş mikroskop kullanılarak gerçekleştirildi. Temsili görüntüler kalitatif gösterim için sunulmuştur.
Kontamine olmuş tüm uçlar, tüpler ve hücre kültürü atıkları biyo-tehlikeli atık olarak toplandı ve bertaraf edilmeden önce otoklavlandı. İlaç içeren çözeltiler, DMSO, ksilen ve metanol dahil olmak üzere kimyasal atıklar, ayrıştırılmış ve etiketlenmiş atık konteynerlerinde toplandı ve tehlikeli kimyasal atıklara yönelik yerel kurumsal düzenlemeler uyarınca bertaraf edildi.
İstatistiksel analiz
İstatistiksel analizler için SPSS 19.0 yazılımı kullanılmıştır. Deneysel veriler, in vitro deneyler için üç bağımsız biyolojik tekrardan elde edilen ortalama ± SD olarak ve in vivo deneyler için grup başına n = 10 fareden elde edilen ortalama ± standart sapma (SD) olarak ifade edilmiştir. İki grup arasındaki karşılaştırmalar için iki kuyruklu bağımsız t-testleri kullanılmıştır. Birden fazla grup arasındaki karşılaştırmalar için tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ve ardından Tukey post hoc testi kullanılmıştır. p < 0.05, p < 0.01 ve p < 0.001 değerleri rapor edilmiştir.