Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Otolog İçsel Meme Damarları Kullanarak Çift Damar Koroner Arter Baypas Aşılama Domuz Modeli

77 görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/72141

⸱

4 Ağustos 2026

Bu makalede

Özet

Bu çalışma, otolog iç meme damarları (IMV) kullanılarak üç çift damar koroner arter bypass graftasyonu (CABG) domuz modelini başarıyla oluşturdu. Doğal LAD ve LCX liged edilmediği için, bu model teorik olarak doğal koroner akışı korur ve rekabetçi akışla ilgili ven grefti değişikliklerinin gelecekteki çalışmaları için teknik bir platform sağlayabilir.

Özet

Safen veni, koroner arter bypass greftinde (CABG) en yaygın kullanılan kanallardan biridir. Ancak, yüksek uzun vadeli başarısızlık oranı klinik etkinliğini sınırlar. Hemodinamik faktörlerin ven greft başarısızlığına (VGF) yol açtığına yaygın olarak inanılmasına rağmen, altta yatan kesin mekanizmalar belirsizdir. Şu anda, sıçanların ortak karotis arter interpozisyon ven grefti modeli, VGF'nin araştırılması için birincil hayvan modeli olarak hizmet vermektedir. Ancak, fareler ve insanlar arasındaki kardiyovasküler fizyoloji ve hemodinamikte önemli farklılıklar, araştırma bulgularının klinik aktarımını sınırlamaktadır. Domuzlar, kardiyovasküler anatomileri ve fizyolojileri insanlara çok benzediği için kardiyovasküler araştırmalar için ideal bir hayvan modelidir. Bu çalışmada, otolog sol ve sağ iç meme damarları (IMV) kullanılarak üç çift damarlı CABG domuz modeli oluşturuldu; bir greft aorttan sol ön öndeki koroner arter (LAD) ve diğeri aorttan sol sirkumfleks koroner artere (LCX) anastomoz edildi. Ameliyat dışı ultrasonografi, temsilli bir hayvanda her iki IMV greftinde akışı doğrularken, ameliyat sonrası bilgisayar tomografisi anjiyografisi (CTA) aorta-LAD IMV greftinin açıklığını açıkça gösterdi. Bu nedenle, bu çalışma VGF'nin gelecekteki çalışmaları için büyük hayvan CABG modeli oluşturmak için teknik olarak uygulanabilir bir yaklaşımı tanımlar.

Giriş

Safen veni, kullanılabilirliği, uzunluğu ve teknik yönlülüğü nedeniyle koroner arter bypass grefti (CABG) için en önemli kanal kaynaklarından biri olarak kalmaktadır. Ancak, safen ven greftlerinde CABG2'den 10 yıl sonra %61'e kadar başarısızlık oranı görülür. Bu, tekrar revaskülarizasiya ihtiyacını artırır ve hastanede ölüm riskinin artmasıyla ilişkilidir. Son yıllarda, biriken kanıtlar, özellikle rekabetçi akış ve anormal duvar kesme stresi gibi hemodinamik faktörlerin geç greft başarısızlığına başlıca katkıda bulunduğunu göstermiştir 3,4,5. Ancak, uygun hayvan modellerinin eksikliği, ilgili araştırmalar için bir darboğaz oluşturdu. Şu anda, ven grefti yetmezliğine (VGF) dair çoğu preklinik çalışma, özellikle sıçan, fare ve tavşan olmak üzere küçük hayvanlara dayanmaktadır; çünkü bu modeller ucuz ve teknik olarak erişilebilir olup, büyük hayvan greft modelleri ise nispeten sınırlıkalır. Küçük hayvan damar grefti modelleri oluşturmak için en yaygın kullanılan yöntem, ortak karotis arterinin kesilmesi ve iki kötüğün otolog alt venacava 7,8,9 ile bağlanmasıdır. Ancak, küçük hayvanlar ile insanlar arasındaki kalp atış hızı ve kan basıncındaki önemli farklarnedeniyle, küçük hayvan modellerinden elde edilen bulgular insanlardaki patofizyolojik mekanizmaları tam olarak yansıtmayabilir.

Domuzlar, kalp boyutu, koroner anatomisi ve cerrahi işlem açısından insan kalbine çok benzediği için kardiyovasküler cerrahi için idealmodellerdir 11,12. Ayrıca, domuz ve insan koroner arterler hem anatomik hem de hemodinamik özellikler açısından oldukça benzerdir ve domuzların ven grefti hastalığının patolojikfenotipini tekrarladığı gösterilmiştir 13,14. Bu nedenle, domuz modelinde damar greftleriyle CABG yapmak, VGF'yi araştırmak için üstün bir hayvan modeli sağlayabilir.

Bu çalışmada, Bama minyatür domuz modellerinde iki taraflı otolog iç meme damarları (IMV) kullanılarak üç pompa üzerinde çift damarlı CABG modeli oluşturuldu. Bir IMV grefti aorttan sol ön iniş koroner arter (LAD) ile diğer greft ise aortadan sol sirkumfleks koroner arter (LCX) ile aortadan yapıldı. Bir temsilci modelde, ameliyat dışı ultrasonografik değerlendirme her iki ven greftinin açıklığını doğruladı ve ameliyat sonrası bilgisayar tomografisi anjiyografisi (CTA) aortadan LAD'a IMV greftinin açıklığını gösterdi. Özellikle, hedef yerli koroner arterler bu modelde bağlanmamıştır. Bu nedenle, bu model hedef koroner arterlerde rekabetçi akışın greft hemodinamiği ve greft yetmezliği üzerindeki etkilerini araştırmak için en uygun modeldir. Ancak, hedef koroner arterlerdeki rekabetçi akış bu çalışmada doğrudan ölçülmemiştir. Bu nedenle, bu çalışma esas olarak model kurulumunun teknik uygulanabilirliğini göstermektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu çalışmadaki hayvan deneyleri, Çin Tıp Bilimleri Akademisi Fuwai Hastanesi'nin Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylandı (Onay No. 0110-1-10-ZX(X)-07). Tüm işlemler, ilgili standartlara uyum sağlamak için hayvan refahı yönetmelikleri ve etik yönergelere sıkı şekilde uyarak gerçekleştirilmiştir. Reaktifler ve kullanılan ekipmanlar Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir. Bu modelin kurulmasının amacı, rekabetçi akışın VGF üzerindeki etkisini araştırmak için potansiyel bir platform sağlamaktı. Bu nedenle, koroner arter bypass grefti tamamlandıktan sonra, doğal koroner arterler anastomozik bölgelere proksimal olarak bağlanmamıştır.

Tüm prosedürleri kurumsal biyogüvenlik ve hayvan refahı düzenlemelerine uygun olarak gerçekleştirin. Keskin silahları, elektrocerrahi cihazları, antikoagüllenmiş kan, CPB devreleri ve biyolojik malzemeleri uygun kişisel koruyucu ekipmanla kullanın. Elektrocerrahi üniteyi kullanmadan önce yeterli topraklama teyit olun. Sistemik heparinizasyondan sonra ve CPB başlatılmadan önce ACT'yi dikkatlice izleyin. CPB başlamadan önce tüm kanüllerin ve ekstrakorporeal hatların tamamen havalandırılmasını sağlayarak hava embolizmi riskini azaltın.

1. CABG için hayvanların hazırlanması

  1. Genellikle 35–40 kg ve 10–12 aylık sağlıklı erkek Bama minyatür domuzları kullanın ve ameliyattan önce 1 hafta boyunca yaşam ortamına alışmalarını sağlayın.
  2. Vücut ağırlığı kaydı, tam kan sayımı, serum biyokimyası, ekokardiyografi ve CTA dahil olmak üzere temel muayene yapın.

2. Anestezi ve izleme

  1. Anesteziden önce 8–12 saat yem ve 2–4 saat su verme.
  2. Kurumsal onaylı protokole uygun olarak, kas içi ketamin (10 mg/kg) ve midazolam (1 mg/kg) enjeksiyonuyla anestezi başlatın.
  3. Solunma izofluran (%2–3) ile birlikte deksmedetomidin (1 μg/kg/s) ve propofol (1–2 mg/kg/s) infüzyonu ile aesteziyi sürdürün.
  4. Çene tonunun gevşediğini ve parmak sıkışmasına karşı ağrı tepkisinin olmadığını doğrulayarak yeterli anestezi doğrulayın.
  5. Boyunda 4–6 cm uzunluğunda bir kesi yapılarak juguler ven ve karotis arteri ortaya çıkar.
  6. Merkezi venöz basınç (CVP) izleme ve ilaç kullanımı için 5 F üçlü lümenli merkezi venöz kateter kullanarak juguler ven üzerinden venöz erişim sağlanır.
  7. Kan basıncı ve hemodinamik parametrelerin gerçek zamanlı izlenmesi için 20 G arteriyal kateter kullanarak karotis arter erişimi kurulması.
  8. Alt uzuv tansiyonu ve oksijen doygunluğu izleme için 20 G arteriyal kateter kullanarak femoral arter erişimi kurulması.
  9. 6,5–8 mm endotrakeal tüp kullanılarak orotraxel entübasyon yapılsın. Hava akışının engellenmediğini ve %100 oksijen sağladığını doğrulayın.
  10. Alt karın bölgesinde 2–3 cm kesi açarak mesane duvarını ortaya çıkar. Mesanesi kesinin kenarlarına ince dikişlerle sabitleyin ve ardından mesane fistülü oluşturun. 10 F Foley kateteri mesane içine yerleştirin, balonu 5 mL steril suyla şişirin ve kateteri nazikçe çekerek balon mesane duvarına yaslana kadar kullanın. İdrar kateteri, idrar tahliyesi ve izleme için bir toplama torbasına bağlayın.
    NOT: Erkek domuzların üretrası uzun ve kavisli olduğundan, idrar kateterini yerleştirmek zordur. Bu nedenle, erken ameliyat sonrası idrar çıkışı izlemek için idrarın boşaltılması amacıyla mesane fistülü oluşturulmalıdır. Kateter, domuz uyanık, hemodinamik olarak stabil ve sürekli idrar takibi gerektirmediği bir sürede, ameliyattan sonra 24–48 saat içinde mümkün olan en erken dönemde çıkarılmalıdır.
  11. Elektrokardiyogram, invaziv arterial basınç, SpO2, son gelgit CO2, sıcaklık ve idrar çıkışını sürekli izleyin.

3. Cerrahi maruziyet

  1. Domuzu sırtüstü pozisyona yerleştirin.
  2. Tüm ön göğsü ve üst karın bölgesini povidon-iyot ile tıraş edin ve dezenfekte edin. Sonra, cerrahi alanı örtün.
  3. Orta servikal bölgeden xifoid sürecinin altına elektrocerrahi ünite (ESU) ile orta hat kesimi yapın.
  4. Orta çizgi boyunca xiphoid işleminden yukarıya doğru orta sternotomi yapın, sternal testere ile yapılsın. Sternal kesilmiş kenarları ESU ile yakarak kemik balmumu uygulayarak hemostaz sağlanır.
  5. Göğsü göğsün retraktoru ile açık tutun.

4. İki otolog IMV kanalının hasadı

  1. İşlem sırasında trombozu önlemek için sistemik antikoagülasyon için 300 U/kg heparin uygulanır.
  2. IMV'nin çevresindeki dokuyu ESU ile dissekse edin. Yan dalları makasla kesin ve ESU ile hemostaz elde edin.
  3. Sol IMV'nin distal ucunu hemostatik bir kelepçeyle kelepçeleyin. Bir sömürü ile kelepçeye yakın bir kesi yapın. Kesieden bir küt yıkama iğnesi geçirin ve 5-0 eminmeyen polipropilen dikişle sabitleyin. Ligasyondan sonra, sol IMV'nin distal ucunu tamamen kesin.
  4. Hasat edilen damar kanalının yeterli uzunlukta olduğundan emin olun (yaklaşık 7–8 cm). Sol IMV'nin proksimal ucunu hemostatik bir kelepçeyle kelepçelendirin. IMV'yi distal olarak sıkıştırılma bölgesine aktarın ve proksimal ucu 5-0 emilemeyen polipropilen dikiş ile bağlayın. Başarılı bir şekilde elde edilen bir IMV, 7–8 cm uzunluğunda, belirgin spazm veya burkulma olmadan ve yan dal kanaması olmadan olmalıdır.
    NOT: IMV'nin ince bir duvarı var ve spazma eğilimindedir. Doğrudan tutma, aşırı çekiş ve yüksek basınçlı yayımlanma kaçınılmalıdır. Kanal, mümkün olduğunda çevredeki doku tarafından tutulmalı ve hasattan sonra hemen buz gibi soğuk heparin-papaverin tuzlu sönümde saklanmalıdır.
  5. Sol IMV'yi buz gibi soğuk heparin-papaverin normal salinine (30 mg papaverin ve 2.500 U heparin 500 mL normal salunda çözünmüş) yerleştirin.
  6. Aynı prosedürle doğru IMV'yi topla.

5. Kardiyopulmoner bypassın (CPB) kurulması ve başlatılması

  1. Perikardı boylamasına açın ve çekiş dikişleriyle askıya alın.
  2. 480 saniye > aktif pıhtı süresini (ACT) garanti edin.
  3. 5-0 emiyor polipropilen dikişler kullanarak iki konsantrik sarı iplikli dikiş yerleştirin. 18 F arterial kanül ile merkezi arterial kanülasyon oluşturun. Kapsamlı havalandırmadan sonra, arteriyel kanülü kardiyopulmoner bypass devresinin arteriyel hattına bağlayın.
  4. Sağ atriyumda 24 F venöz kanül ile venöz kanülasyon oluşturun ve bunu venöz hattına bağlayın.
  5. CPB başlatın. Yavaş yavaş arteriyel giriş, ardından venöz drenaj oluşur. Sistemik arter basıncı, venöz dönüş, rezervuar seviyesi ve küresel perfüzyon parametrelerine göre önümüzdeki birkaç dakika içinde pompa akışını artırın.
    NOT: Bama minyatür domuzlarının kan hacmi nispeten küçük olduğundan, CPB devresi 2 L laktasyon Ringer çözeltisi ve 500 mg metilprednizolon ile yeterli şekilde hazırlanmalıdır. Aşırı hemodilisyon durumunda, gerekirse kan nakli düşünülebilir.

6. Aort çapraz kelepçelenmesi ve kardiyoplejik durma

  1. Antegrad kardiyopleji kanülünü aort köküne bir çanta ipli dikiş aracılığıyla yerleştirin. Kardiyopleji kanülünü kardiyopleji hattına bağlayın.
  2. Yükselen aorta, arterial kanül ile kardiyopleji erişim bölgesi arasında çapraz kelepçelen.
  3. 4 °C soğuktan modifiye St. Thomas çözeltisi (10–15 mL/kg) ile kalp durması indüklenir. Hızlı soğutma ve miyokard koruması için kalp yüzeyine buz çamuru uygulayın.
    NOT: St. Thomas çözeltisi Pfizer Hastanesi US Plegisol, NDC 00409-7969-05 uyarısına göre hazırlanmıştır: her 100 mL sodyum klorür 643 mg, potasyum klorür 119,3 mg, magnezyum klorür heksahidrat 325,3 mg ve kalsiyum klorür dihidrat 17,6 mg enjeksiyon için suda enjekte edilmiş, her 1000 mL'ye hemen kullanılmadan önce 10 mL %8,4 sodyum bikarbonat eklenmiştir.

7. IMV greftlerinin distal anastomozu

  1. Gemiye 4 °C heparin-papaverin normal salin (4.5-ci adımda tarif edildiği gibi hazırlanmış) enjeksiyon yapın, grefte bir duman iğneyle sıvı sızıntısı kontrol edilsin, serbest ucu kesin ve 8-0 emilmeyen polipropilen dikiş.
  2. LCX'i mikrocerrahi makasla açın. Bir intraluminal şant yerleştirin.
  3. 8-0 kullanan emilmez polipropilen dikiş, IMV greftinin bir ucu ile LCX arasında paraşüt dikişi tekniğiyle uçtan yana anastomoz gerçekleştirir.
  4. Şantı çıkarın. İmv greftine hepparinize otolog kan enjekte ederek damarı dışarı atarak hapsolmuş havayı dışarı atabilir ve anastomoz bölgelerinde ve yan dallarda herhangi bir sızıntı olup olmadığını kontrol edin. Heparinizlenmiş otolog kan enjeksiyonundan sonra, greft, yan dallardan odak daralma, burkulma veya sızıntı olmadan ya da distal anastomoz olmadan düzgün bir şekilde ayrılmalıdır. IMV grefti ile LCX arasındaki anastomozu tamamla.
    NOT: Heparinizlenmiş otolog kan doğrudan CPB devresinden alınır. Heparinizlenmiş otolog kanın toplam hacmi en az 50 mL olmalı ve her enjeksiyonun tam hacmi greft yayılımı ve greftlerden veya anastomozik bölgelerden sızıntıya göre ayarlanmalıdır.
  5. Aynı yöntemi kullanarak diğer IMV greftinin bir ucunu tamamen LAD'nin yanına anastomoz edin.

8. IMV greftlerinin proksimal anastomozu

  1. Kardiyopleji kanülünü çıkarın. O yerde 3,5 mm delik bir delik kullanarak bir açıklık oluşturun.
  2. Oda sıcaklığında heparin-papaverin normal salini (4.5. adımda tarif edilen heparin, papaverin ve normal salin oranlarıyla) LAD'a kör bir yıkama iğnesi ile anastomoz edilen IMV greftine enjekte edin. IMV grefti genişletildikten sonra, kısmen sıkıştırılın ve küt yıkama iğnesine bağlı ucunu kesin. Serbest ucu doku makasla daha da kesin.
    NOT: Bu adımda greft spazmını azaltmak için 4 °C heparin-papaverin normal salin kullanmaktan kaçının. Heparin-papaverin normal salinin spesifik enjeksiyon hacmi, IMV greftinin yayılmasını korumak için gereken miktara göre belirlenmelidir.
  3. Arteriyal kateterin bir segmentini kesin ve sol ventriküler ventrikül ventiline bağlayın. Bağlantıdan sonra, delikli açıklıktan arteriyel kateteri aortaya yerleştirin.
  4. IMV greftini, LCX'e anastomoz edilen şekilde 8.2. adımda tarif edilen şekilde işleyin.
  5. Aort kökünün sol tarafında 3,5 mm bir delik kullanarak bir açıklık oluşturun.
  6. IMV greftinin serbest ucunun uçtan yana anastomozu yapılın, LCX'ye aort kökünün sol tarafındaki açıklığa anastomoz yapılarak anastomozu tamamlanmamış bırakın.
  7. Sol kalp vent kateterini bu anastomozik açıklıktan aort köküne yerleştirin.
  8. IMV greftinin serbest ucunun, aort kökündeki diğer açıklığa LAD'a distal olarak anastomoz edilmesini yap.
  9. Sol kalp vent kateterini çıkarın. Her iki IMV greftini mikrocerrahi hemostatik klipslerle kelepçeleyin. Her iki IMV greftinin aortaya anastomozlarını tamamla.
    NOT: Reperfüzyon öncesi, her iki IMV grefti de gerginlik veya bükülme olmadan yatmalı, proksimal ve distal anastomozlarda belirgin bir sızıntı göstermemelidir.

9. Reperfüzyon, CPB'den ayrılma ve dekanulasyon

  1. Aort çapraz kelepçesini serbest bırakın ve kalbi tekrar perfüze edin.
  2. Ek bir 8-0 yapın hemostaz sağlamak için anastomoz bölgelerinde veya IMV greftleri boyunca emilebilir olmayan polipropilen dikişleri kullanılır.
  3. Domuz hemodinamik olarak stabil hale geldiğinde ve kalp yeterli fonksiyonu kazandığında CPB'den ayrılın.
  4. Aort ve sağ atriumu dekanulasyon yapın ve tüm kanülasyon noktalarında hemostazı güvence altına alın.
  5. CPB'den ayrıldıktan sonra, her iki grefti kurumsal standart protokole uygun olarak intraoperatif ultrasonografi ile değerlendirin. Aorta-LAD ve aorta-LCX greftlerindeki kan akışı sinyallerini belirlemek için renkli Doppler görüntüleme kullanın ve greftin konumu, akış yönü ve niteliksel açıklığı kaydetmelisiniz. Mümkünse, genel greft akışı değerlendirmesi için geçiş süresi akışı ölçümü (TTFM) yapın.

10. Hemostaz ve göğüs kapanması

  1. Proksimal aort anastomozlarında, distal koroner anastomozlarda, iç meme damar hasat yataklarında, aort ve atriyal kanülasyon bölgelerinde ve sternotomi kenarlarında titiz hemostaz alın.
  2. İki drenaj borusu yerleştirin.
  3. Göğsü ve yakın kas, fasya, deri altı dokusu ve deriyi katmanlar halinde yeniden yaklaştırın.
  4. Domuzu izleme altında olan ameliyat sonrası iyileşme alanına nakledin.

11. Ameliyat sonrası bakım ve takip

  1. Sıcak desteği sürekli olarak ısıtıcı pedler veya zorla hava ısıtıcı battaniyeler kullanarak domuzun çekirdek vücut sıcaklığını 37,0–38,5 °C arasında tutun.
  2. Domuz modelinin sıvı alım ve çıkışını, bilinç seviyesini, kalp atış hızını, arterial kan basıncı, merkezi venöz basıncı, tam kan sayımını ve kan gazı sonuçlarını günlük olarak kaydedin.
  3. Erken postoperatif aşamada %100 oksijen kullanarak mekanik ventilasyon desteği sağlanarak stabil gaz değişimini garanti etmek ve hipoksi kaynaklı akciğer vazokonstriksiyonunu önlemek. Domuz güçlü, düzenli spontan nefes almaya devam ettiğinde, koruyucu yutma refleksi gösterdiğinde ve tatmin edici arterial kan gazı sonuçlarına ulaştığında hayvanı ventilatörden ayırın ve endotrakeal tüpü çıkarın.
  4. Ameliyat sonrası antimikrobiyal profilaksi: Ameliyattan sonra 48–72 saat boyunca her 8–12 saatte bir sefuroksim sodyum (3–5 mg/kg) uygulanır. Hayvanları enfeksiyon belirtileri açısından günlük olarak değerlendirin. Sternotomi kesisi ve drenaj tüpü bölgelerini anormal söküntü veya apse oluşumu açısından günlük olarak kontrol edin.
  5. Hayvanın ağrı belirtilerini standart domuz davranışsal ağrı ölçekleriyle her 2–4 saatte bir değerlendirin. Sternotomi sonrası ağrının yaygın belirtilerini takip edin; bunlar arasında ses çıkarma, kambur duruş, hareket etmeye isteksizlik, diş gıcırdatma veya sosyal izolasyon var. Hayvanın davranışına göre yeterli ağrı giderici ve sorunsuz iyileşme sağlamak için opioidler veya steroid olmayan anti-enflamatuar ilaçlar (NSAID) uygulanır.
  6. Vazoaktif ilaçları (örneğin dopamin, epinefrin) ve sıvı desteğini stabilize bir arterial kan basıncını (>70 mmHg) korumak için derhal ayarlayın.
  7. Ameliyat sonrası greft açıklığını, ameliyat sonrası 1. gün ve 28. gün CTA ile kurumsal standart görüntüleme protokolüne uygun olarak değerlendirin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Üç Bama minyatür domuzu, P1, P2 ve P3, çift kaplı CABG prosedüründen geçti. Üç hayvan da 7 günden fazla hayatta kaldı. Şekil 1, median sternotomi, iki taraflı otolog IMV'lerin toplanması, büyük damarların açılması için perikardiyotomi (CPB) oluşturulması, aortadan kardiyoplejik çözeltinin iletilmesi, kalbin buz çamuruyla soğutulması, çift damar CABG için distal ve proksimal anastomozlar, CPB'den ayrılma, greft açıklığının ultrasonografik değerlendirmesi, göğüs kapanması gibi önemli cerra...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu çalışmada, çift kaplı CABG domuz modeli iki taraflı otolog IMV'ler kullanılarak oluşturuldu. İki IMV greftinden biri aorttan LCX'e bir bypass yapmak için, diğeri ise aorttan LAD'e bir bypass yapmak için kullanıldı. Safen ven, CABG için standart klinik venöz kanal olmasına rağmen, IMV'ler seçildi çünkü Bama minyatür domuzlarının safen damarları, aorta-LAD ve aort-LCX bypass yapımında gerginlik olmadan iki serbest greft sağlayamayacak kadar kısa idi. Başarılı model inşası için birkaç te...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar çıkar çatışması belirtmemektedir.

Teşekkürler

Bu çalışma, Çin Ulusal Anahtar Araştırma ve Geliştirme Programı (2023YFF0724701), Çin Bilim ve Teknoloji Bakanlığı'nın Ulusal Ana Ar-Ge Programı'nın Sınır Biyoteknoloji Anahtar Projesi (2023YFC3404300; Jiangping Song'a), Fuwai Hastanesi Merkezi Yüksek Düzey Hastaneleri için Klinik Araştırma Fonları ve Çin Tıp Bilimleri Akademisi, Ortotopik Kalp Nakli için Ksenogenetik Çok Genli Donör Domuz Kalpleri Üzerine Preklinik Çalışma tarafından desteklenmiştir Kalp Yetmezliği (2025-GSP-ZD-4) ve Çin Tıp Bilimleri Akademisi, Fuwai Hastanesi Devlet Kardiyovasküler Hastalıklar Anahtar Laboratuvarı, Ortotopik Kardiyak Ksenotransplantasyonun Uzun Süreli Sağkalımı İçin İlaç Hedeflerinin Taranması ve Geliştirilmesi projesi (2025-GSP-GG-42).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
10-degree aortic cross-clampSinoviewCP40431-19CABG Surgery
45-degree aortic cross-clampSinoviewCP40044-18CABG Surgery
Affinity Fusion Oxygenation SystemMedtronicBB841Cardiopulmonary bypass
Anesthesia machineMindrayA9Anesthesia and others
Arterial cannulaMedtronic18FrCardiopulmonary bypass
AtracuriumHengrui Pharmaceutical-Anesthesia and others
Atraumatic flat forcepsSureMedGF04021-25CABG Surgery
Atraumatic flat forcepsSureMedGF04016-25CABG Surgery
Balanced handle pen-stylemicrosurgical forcepsSinoviewFC12010-21CABG Surgery
Bama miniature pigsInstitute of Zoology, ChineseAcademy of Sciences, NorthernLarge Animal Research Facility-Experimental animals
Belzer UW Cold Storage SolutionBridge to Life Ltd.1000 ml/bagCABG Surgery
Black-handle extreme-sharp scissorsSinoviewSC35101-23UCCABG Surgery
Blood gas analyzerEdiagnosisPT1000Anesthesia and others
Blunt Fill NeedleBD305180Flush and distend IMV grafts
Bone WaxEthiconW31GHemostasis
Cardiopulmonary bypass circuitMedtronicB-HL-159Cardiopulmonary bypass
Central venous catheterBaihe Medical-Anesthesia and others
Curved forcepsSureMedGC01002-12CABG Surgery
Curved forcepsSureMedGC01002-16CABG Surgery
Disposable blood microembolus filterSansinFAF-2Cardiopulmonary bypass
Disposable blood reservoir filterSansinFCR300KCardiopulmonary bypass
Disposable cardioplegia delivery systemMedtronicXP41Cardiopulmonary bypass
DopamineJiuan Pharmaceutical-Anesthesia and others
Electrosurgical unitMedtronicVLFT10FXGENCABG Surgery
Endotracheal tubeYaxin MedicineYS-0000Anesthesia and others
EpinephrineJinyao Pharmaceutical-Anesthesia and others
Fine dissecting forcepsSureMedGC01090-20CABG Surgery
Gold-handle ultra-sharp scissorsSinoviewSC35001-23SCCABG Surgery
Heart-lung machineLivaNovaS5Cardiopulmonary bypass
HeparinNorth China Pharmaceutical-Anesthesia and others
Ice bucketSureMedGQ13018-00DCABG Surgery
Infusion pumpSino MDTSN-C8Anesthesia and others
Intraluminal shuntMedtronic31200CABG Surgery
Intravenous catheterKDL16G-26GAnesthesia and others
IsofluraneLunan Pharmaceutical-Anesthesia and others
IsoproterenolHarvest Pharmaceutical-Anesthesia and others
KetamineHikma Pharmaceuticals0143-9509-10Anesthesia and others
Lactated Ringer's SolutionKelun Pharmaceutical-Anesthesia and others
Large basinSureMedGQ13033-00DCABG Surgery
LaryngoscopeHanfeiylTD-C-IIIAnesthesia and others
Lidocaine hydrochloride injectionKelun Pharmaceutical co.,LtdH20057816CABG Surgery
Magnesium sulfate for injectionZdjt Pharmaceutical co.,LtdH20051792CABG Surgery
Medical electric sternum sawJingdong xijiHF-X01CABG Surgery
Medium basinSureMed-CABG Surgery
Medium-sized sternum retractorSureMedGR04130-00CABG Surgery
MidazolamHikma Pharmaceuticals0641-6220-10Anesthesia and others
Modified St. Thomas SolutionSelf-made-Anesthesia and others
Multiparameter monitorMindrayBenoversion N17Anesthesia and others
Needle passer for purse-string suturesSureMedGR04074-00CABG Surgery
NorepinephrineHarvest Pharmaceutical-Anesthesia and others
Papaverine hydrochlorideSigma-AldrichP3510Store IMV conduits
Pediatric sternum retractorSureMedGR04114-00CABG Surgery
Pen-style microsurgical needle holderSinoviewNH11300-21CABG Surgery
Potassium chloride injectionKelun Pharmaceutical co.,LtdH42021164CABG Surgery
PropofolHikma Pharmaceuticals0641-6194-10Anesthesia and others
Protamine SulfateYoucare Pharmaceutical-Anesthesia and others
Purse-string suture introducerSureMedGR04074-00CABG Surgery
Resano atraumatic magic forcepsSinoviewFC25501-23SCABG Surgery
Right-angle forcepsSureMedGC01110-14CABG Surgery
Right-angle forcepsSureMedGC01089-18CABG Surgery
Small basinSureMed-CABG Surgery
Sodium acetate Ringer's injectionDuo Rui Pharmaceutical co.,LtdH20163331CABG Surgery
Sodium bicarbonate injectionKelun Pharmaceutical co.,LtdH20043739CABG Surgery
St. Thomas SolutionPfizer Hospital US00409-7969-05Cardioplegia
Sternal retractor (medium size)SureMedGR04130-00CABG Surgery
Straight forcepsSureMedGC01001-12CABG Surgery
Straight forcepsSureMedGC01001-16CABG Surgery
Suture 5-0 Prolene BBEthicon-CABG Surgery
Suture 8-0 ProleneEthicon-CABG Surgery
Suture Prolene Blum 4-0 SH 36Ethicon-CABG Surgery
Sutures 2-0 Prolene Blu M SHEthicon-CABG Surgery
Sutures BB 4-0 ProleneEthicon-CABG Surgery
Temperature probe3M

Kaynaklar

  1. Emmert MY, et al. Consensus statement-graft treatment in cardiovascular bypass graft surgery. Front Cardiovasc Med. 2024;11:1285685.
  2. Back L, Ladwiniec A. Saphenous vein graft failure: current challenges and a review of the contemporary percutaneous options for management. J Clin Med. 2023;12(22):7118.
  3. Hwang HY, et al. Association between angiography-derived Murray law-based quantitative flow ratio and 1-year coronary artery bypass graft patency. JACC Cardiovasc Interv. 2025;18(19):2326-2334.
  4. Szafron JM, Heng EE, Boyd J, Humphrey JD, Marsden AL. Hemodynamics and wall mechanics of vascular graft failure. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2024;44(5):1065-1085.
  5. Spadaccio C, et al. Fractional flow reserve-based coronary artery bypass surgery: current evidence and future directions. JACC Cardiovasc Interv. 2020;13(9):1086-1096.
  6. Koch SE, et al. Animal studies for the evaluation of in situ tissue-engineered vascular grafts: a systematic review, evidence map, and meta-analysis. NPJ Regen Med. 2022;7(1):17.
  7. Zou Y, Dietrich H, Hu Y, Metzler B, Wick G, Xu Q. Mouse model of venous bypass graft arteriosclerosis. Am J Pathol. 1998;153(4):1301-1310.
  8. Zou Y, Hu Y, Mayr M, Dietrich H, Wick G, Xu Q. Reduced neointima hyperplasia of vein bypass grafts in intercellular adhesion molecule-1-deficient mice. Circ Res. 2000;86(4):434-440.
  9. Hu Y, et al. Abundant progenitor cells in the adventitia contribute to atherosclerosis of vein grafts in ApoE-deficient mice. J Clin Invest. 2004;113(9):1258-1265.
  10. Milani-Nejad N, Janssen PM. Small and large animal models in cardiac contraction research: advantages and disadvantages. Pharmacol Ther. 2014;141(3):235-249.
  11. Fashina O, et al. Large animal model of vein graft intimal hyperplasia: a systematic review. Perfusion. 2023;38(5):894-930.
  12. Jia H, Chang Y, Song J. The pig as an optimal animal model for cardiovascular research. Lab Anim (NY). 2024;53(6):136-147.
  13. De Nisco G, et al. Comparison of swine and human computational hemodynamics models for the study of coronary atherosclerosis. Front Bioeng Biotechnol. 2021;9:731924.
  14. Li X, et al. Establishment and evaluation of a porcine vein graft disease model. J Vis Exp. 2022;(185):63896.
  15. Lee MY, et al. Comparative analysis of heart functions in micropigs and conventional pigs using echocardiography and radiography. J Vet Sci. 2007;8(1):7-14.
  16. Mo J, et al. Blood metabolic and physiological profiles of Bama miniature pigs at different growth stages. Porcine Health Manag. 2022;8(1):35.
  17. George TJ, et al. Hemoglobin drift after cardiac surgery. Ann Thorac Surg. 2012;94(3):703-709.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

TıpSayı 234Sayı 234Boş DeğerSayıintermammar venotolog greft

Bu makale yayımlandı

Video yakında