Yöntem makalesi

Nötrofil İzolasyon Protokolü

DOI:

10.3791/745

⸱

23 Temmuz 2008

 ,  , 
1Institute for Medicine and Engineering, University of Pennsylvania

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nötrofiller inflamatuar immün yanıt sitesinde ulaşmak için ilk hücreleri arasında olup, görevlerini ve mekanizmalar in vitro yoğun çalışmalar yapılmıştır. Biz piyasada bulunan ayırma medya kullanılarak, tam kan, insan nötrofil izole etmek için standart bir yoğunluk gradiyenti ayırma yöntemi göstermektedir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Polimorfonükleer nötrofil granülositler (PMN), insanlarda ve inflamatuar immün yanıt sitesinde ulaşmak için ilk hücreleri arasındaki en bol lökosit vardır. Inflamasyon kilit rol nedeniyle, hareketlilik, sitokin üretimi, fagositoz ve tümör hücre mücadele gibi nötrofil işlevlerini yoğun olarak çalışılmaktadır. Nötrofil kısa ömürlü ve toplama 2-4 saat içinde kullanılması gereken bu yana özellikle nötrofil özel fonksiyonlar karakterize için diğer kan hücreleri ayırarak, temiz, hızlı ve güvenilir bir yöntem, in vitro çalışmalar için arzu edilir. Burada, piyasada bulunan sodyum metrizoate ve Dextran'ın 500 karışımı ayırma medya kullanılarak, tam kan, insan nötrofil izole etmek için standart bir yoğunluk gradiyenti ayırma yöntemi göstermektedir. Prosedür yoğunluk gradiyenti orta, santrifüj, nötrofil tabakasının ayrılması ve kalıntı eritrositlerin parçalanması üzerine katman tam kan oluşur. Hücreler daha sonra, yıkanmış, sayılır ve istenilen konsantrasyon için tampon yeniden süspanse. Doğru yapıldığında, bu yöntem>>% 95 canlılığı% 95 nötrofil örnekleri verim görülmüştür.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nötrofil İzolasyon Protokolü

  1. Tüm reaktifler oda sıcaklığına getirin.
  2. 5.0 ml santrifüj tüpüne nötrofil izolasyon medya toplayın. Ayrılması medya üzerindeki kan dikkatlice katman 5.0 ml. Yavaş ve dikkatli bir şekilde ve medya yüzeyine yakın kan ve medya karışmasını önlemek için pipet ile bu adımı gerçekleştirin.
  3. 20-25 dakika süreyle 35 500 RCF santrifüjleyin ° C Plazma, monositler, izolasyon medya, nötrofiller, daha fazla izolasyon medya ve kırmızı kan hücre pelletini (Şekil 1): kan, 6 farklı bölümlere ayırmalıdır. Bu bantları açık değilse, ayırma işlemi temiz değil ve tekrar edilmesi gerekecektir.
  4. Bir pipet kullanarak en üst üç katman (plazma, monositler ve izolasyon ortam) dikkatlice çıkarın. Bu katmanlar atın.
  5. Nötrofil ve nötrofil altındaki izolasyon medya katman dikkatlice pipetle. Çözüm temiz bir santrifüj tüpü içine yerleştirin.
  6. Ca 2 + Mg / 2 + olmadan HBSS nötrofil çözeltinin 10 ml. Hücreleri askıya alma tüpü birkaç kez ters çevirin.
  7. 10 dakika için 350 RCF nötrofil çözüm santrifüjleyin. Kırmızı bir pelet nötrofil ve kalan kırmızı kan hücreleri (eritrositler) içeren tüpün alt kısmında mevcut olmalıdır. Dikkatle pelet rahatsız olmadığını ifade eden bir pipet ile süpernatantı.
  8. Kalan eritrositlerde lyse için tüpe 2 ml Kırmızı Hücre Lizis Tampon ekleyin. Pelet, vorteks bir ayarda 3-4 flakon tekrar süspansiyon. Nötrofil aktive neden olabilir bu yana, 4 yukarıdaki vorteks ayarını artırarak kaçının. Birkaç saniye vorteks için gerekli olabilir, ya da pelet çözmek için vorteks "darbe".
  9. 5 dakika boyunca 250 RCF tüp santrifüjleyin. Pipet ile süpernatantı. Gerekirse parçalama işlemi tekrarlayın.
  10. Ca 2 + Mg / 2 olmadan 500 ul HBSS ekle + Her bir tüp . Yine, bir ayarda 3-4 pelletini tekrar karıştırın. Ca 2 + Mg / 2 + olmadan HBSS ile 10 ml ye tamamlanır.
  11. 5 dakika boyunca 250 RCF tüpler santrifüjleyin. Süpernatantı aspire ve atın.
  12. 250 ul HBSS / HSA Çözüm (2% HSA) pelletini tekrar. Hücreler daha sonra sayılır ve istenilen konsantrasyon için ayarlanmış olabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yoğunluk gradiyenti ayırma yöntemi tam kan sodyum metrizoate ve Dextran'ın 500 karışımı kullanarak insan nötrofil izole etmek için kullanılır. Bu yöntem, nötrofil ayrılması için Ferrante ve Thong (1980) tarafından güncellenmiştir Boyum (1968) tarafından mononükleer lökosit ayırma yöntemi dayanıyor.

Bir bağış toplama sonra, tam kan, EDTA, sitrat veya heparin ile antikoagüle olabilir. Kısa ömürlü olduğundan, nötrofil toplama 2-4 saat içinde kullanılmalıdır. Prosedür yoğunluk gradiyenti orta, santrifüj, nötrofil tabakasının ayrılma...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

NIH R01 HL56621 fon.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Lymphocyte Poly(R)ReaktifCedarlane LabsAlternatif olarak PolymorphprepTM kullanılabilir
Kalsiyum Klorür içermeyen Hank’s Dengeli Tuz ÇözeltisiReaktifInvitrogen
İnsan Serum AlbüminiReaktifZLB Bioplasma
Kırmızı Kan Hücresi Lizis TamponuReaktifRoche Group
SantrifüjAraç
VorteksleyiciAraç
Pasteur Pipetleri ve pompasıAraç
PolymorphprepTMReaktifAxis-ShieldLymphocyte-Poly (R) için alternatif reaktif
Şırınga FiltresiDiğerEMD MilliporeSLGV033RSMillex-GV, 0.22 μm, PVDF, 33 mm, gama sterilize edilebilir
Kalsiyum Klorür içeren Hank’s Dengeli Tuz ÇözeltisiReaktifInvitrogen

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Boyum, A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow. Scand. J. Clin. Invest. 21, Suppl 97. 77-83 (1968).
  2. England, J. M., Rowan, R. M. The assignment of values to fresh blood used for calibrating automated blood cell counters. Clin. Lab. Haemat. 10, 203-212 (1988).
  3. Garcia, A. Comparison of two leukocyte extraction methods for cytomegalovirus antigenemia assay. J. Clin. Microbiol. 34, 182-184 (1996).
  4. Ferrante, A., Thong, Y. H. Optimal conditions for simultaneous purification of mononuclear and polymorphonuclear leucocytes from human peripheral blood by the Ficoll-Hypaque method. J. Immunol. Methods. 36, 109-109 (1980).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Yo unluk Gradyan ile Ay rmaTam Kan Santrif jasyonuEritrosit LizisiHBSS Sol syon Haz rlamansan Serum Alb miniN trofil Canl l k De erlendirmesiH cre Y kama ProtokolSantrif j Kullan mKan rne i leme

İlgili makaleler