-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Basic Biology
Temel Bakım İşlemleri
Temel Bakım İşlemleri
JoVE Science Education
Lab Animal Research
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Lab Animal Research
Basic Care Procedures

5.2: Temel Bakım İşlemleri

30,176 Views
14:44 min
August 24, 2015
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Kaynak: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Notre Dame Üniversitesi, IN

Fareler ve sıçanlar, biyomedikal araştırmalar için kullanılan hayvanların% 90'ından fazlasını oluşturur. Bu araştırma hayvanlarının uygun bakımı, deneylerin sonucu için kritik öneme sahiptir. Bu farelerin ve sıçanların çoğunluğu için geçerli olan genel prosedürler vardır, ancak bağışıklığı baskılanmış olanlar gibi bazı hayvanlar, deney için onları sürdürmek için ek adımlar atılmasını gerektirir.

Yaygın olarak kullanılan bağışıklığı baskılanmış fareler, kendi içinde yetiştirilmiş farelerde doğal olarak meydana gelenleri ve genetik mühendisliği yoluyla yaratılanları içerir. Araştırmada kullanılan ilk bağışıklığı baskılanmış fareler "çıplak" farelerdi. BALB/c Nude (nu) fare, 1966 yılında, hem kılları hem de timüsleri olmayan fareler üreten bir BALB/c kolonisi içinde keşfedildi. Bu timik fareler, T hücrelerinden yoksun inhibe edilmiş bir bağışıklık sistemine sahiptir. Bu hayvanın değeri kısa süre sonra mikrobiyal enfeksiyonlar, bağışıklık yetmezlikleri ve otoimmünite çalışmalarında kullanılmak üzere keşfedildi. Çıplak fare kadar yaygın olarak kullanılmasa da, çıplak bir fare de vardır. Çıplak sıçan T hücresi eksiktir ve periferik lenfoid organların timus bağımlı bölgelerinde tükenmiş hücre popülasyonları gösterir. Doğal olarak oluşan bir başka immün yetmezlik faresi, şiddetli kombine immün yetmezlik faresidir (SCID). Bu fareler, fonksiyonel B ve T hücrelerinin üretimini bozan bir kusura sahiptir. Yeterli bir bağışıklık tepkisi oluşturamama durumunda, bu fareler insan hücrelerinin nakli için konakçı alıcılar olarak hizmet edebilir. İmmün yetmezlikleri olan genetik olarak değiştirilmiş birkaç fare türü ticari olarak temin edilebilir. 1 Eksikliğin şiddeti genetik modifikasyona göre değişir; Bununla birlikte, bağışıklığı baskılanmış tüm fareler ve sıçanlar benzer şekilde ele alınır.

Bu el yazması, hem bağışıklığı yeterli hem de bağışıklığı baskılanmış hayvanların bakımını açıklayacaktır. Barınma, diyet, çevresel gereksinimler ve taşıma her iki hayvan grubu için de tartışılacaktır.

Procedure

1. İmmünkompetan (konvansiyonel) farelerin kullanımı

Farelerin bağışıklık bozukluklarının insanlardakine çok benzer olduğu gösterilmiştir. 2 Bu hayvanların immünolojik yetenekleri sınırlı olduğundan, bu hayvanların ele alınması ve bakımına ilişkin prosedürler, mühendislik kontrolleri, hayvan bakım personeli için kişisel koruyucu ekipman ve standart işletim prosedürleri kullanılarak bulaşıcı hastalık riskini en aza indirecek şekilde tasarlanmıştır; Bunlar, hayvanların temas halinde olduğu kafes ve diğer ekipmanların kirlenmesini azaltır.

  1. Nakliye konteynırlarından ambalajın açılması: Hayvanların diğer kurumlardan veya hayvan satıcılarından alınması, hayvan tesisinde halihazırda barındırılan hayvanlar için risk oluşturur. Taşıma sırasında, hayvan taşıma kutuları patojenik ajanlarla temas edebilir. Bu nedenle, nakliye konteynırlarını ambalajından çıkarırken uygun prosedür uygulanmalıdır.
    1. Asgari Kişisel Koruyucu Ekipman (KKD) gereksinimleri, hayvanlara bakarken eldivenler, temiz laboratuvar önlüğü veya önlükleri, partikül maskesi ve koruyucu gözlüklerdir.
    2. Tel çubuk kapağı ve bariyer üstü dahil olmak üzere uygun kafesi seçin. Kafes uygun yatak takımları ve yuvalama malzemeleri ile donatılmalıdır. Hayvanlar gelmeden önce tüm kafesler hazırlanmalı ve alıcı alana yerleştirilmelidir.
    3. Varışta, taşıma kutuları güvenli ve sıcaklık kontrollü bir odaya yerleştirilir. Ardından, kapta hasar olup olmadığını inceleyin.
    4. Zararlı patojenleri yok etmek için nakliye konteynerinin dış yüzeylerini bir kolin dioksit ürünü ile dezenfekte edin. Dezenfektanın, üreticinin tavsiyelerine uygun olarak, genellikle 15-30 dakika kutu ile temas halinde olduğundan emin olun.
    5. Kabı bir Hayvan Aktarma İstasyonuna (ATS) yerleştirin. ATS, kullanıcı ile çalışma alanı arasında bir vakumlu hava bariyeri oluşturarak alerjen koruması sağlayan davlumbaz içinde HEPA filtreli hava akışı sağlar. Bu, hayvan kılı/kepek ve kafes yatak malzemelerine minimum düzeyde maruz kalmayı sağlar. Tek yönlü hava, hayvanları çevredeki oda havasından da koruyarak kontaminasyon olasılığını en aza indirir.
    6. Nakliye konteynırı açıldıktan sonra, hayvanların genel sağlığını değerlendirin. Yaralı veya hasta hayvanları not edin.
    7. Hayvanları uygun grup boyutlarında monte edilmiş kafeslere yerleştirin. Gruplama, alan düzenlemelerine ve atanacakları deney protokolüne uygun olmalıdır.
    8. Kafesi tel çubuk kapağı ile örtün. Kapakta iki alan oluşturmak için bölücüyü tel çubuk kapağına sabitleyin.
    9. Uygun yiyeceği seçin ve yiyeceği tel çubuk kapağının bir tarafına yerleştirin. Daha iyi hava sirkülasyonu sağlamak için ikinci tarafı açık bırakın.
    10. Su, su şişeleri veya otomatik sulama sistemi ile sağlanacaktır. Yeni sütten kesilmiş fareler için hidrasyon seviyelerini koruyabilmelerini sağlamak için su şişeleri kullanılır. Otomatik sulamalı IVC kafesi için, sulama borusunu rafa yerleştirmeden önce şarj edin.
    11. Kafesi bir rafa yerleştirin. IVC'ler kullanılıyorsa, kafesin rafa tam olarak oturduğunu ve yudum borusunun sulama sistemine sabitlendiğini kontrol edin.
  2. Kafes değiştiren konvansiyonel fareler
    1. Hayvan kafesleri bir ATS'de değiştirilir. ATS her seans sonunda dezenfekte edilir.
    2. Bir seferde sadece bir kafes açılabilir.
    3. Uygun yataklama ve yuvalama malzemeleri ile hazırlanan kafesler hayvan odasına getirilir. ATS'ye az sayıda kafes yerleştirilmiştir.
    4. Dahili yudum tüplerine sahip IVC kafesleri, yudum borusundaki ölü hava alanını gidermek için suyu yudumlayıcıya zorlamak için şarj edilmelidir. Düzgün şekilde şarj edilmezse, fareler, içindeki havayı çıkarmak için yudum tüpü üzerinde yeterli basıncı sağlayamayabilir.
    5. Asgari Kişisel Koruyucu Ekipman (KKD) gereksinimleri, hayvanlara bakarken eldivenler, temiz laboratuvar önlüğü veya önlükleri, partikül maskesi ve koruyucu gözlüklerdir.
    6. Değiştirilecek bir hayvan kafesi yeni bir kafese yerleştirilir ve daha sonra ATS'ye yerleştirilir.
    7. Hayvanlar ya elle ya da yastıklı bir forseps kullanılarak transfer edilir. Eldivenler ya kafesler arasında ya da fare grupları arasında değiştirilir. Eldivenler ayrıca kafesler arasında toksik olmayan bir kimyasal ile dezenfekte edilebilir.
    8. Farelerin yuvalama alanının temiz bir kafese aktarılmasının, özellikle grup halinde barındırılan erkekler için temiz kafese geçişe yardımcı olduğu gösterilmiştir. Diğer zenginleştirme öğeleri de yeni kafese aktarılır.
    9. Kafes üstü veya yemlik yeni kafese yerleştirildikten sonra yiyecek eklenir.
    10. Bariyer üstü yeni kafesin üzerine yerleştirilir ve kafes rafa geri gönderilir.
    11. Hava ve su vanalarının yerine oturduğundan emin olmak için IVC kafesleri rafa düzgün bir şekilde yerleştirilmelidir.

2. İmmün sistemi baskılanmış farelerle başa çıkma

  1. Nakliye konteynırlarından ambalajın açılması
    1. Bağışıklığı baskılanmış hayvanlar steril koşullar altında ambalajından çıkarılmalıdır. Bağışıklık yetmezliği olan farelerle ilgilenen tüm bireyler buharla sterilize edilmiş bir önlük, maske, saç bonesi ve steril eldiven giymelidir. Bu hayvanları teslim ederken her zaman aseptik teknik kullanılmalıdır.
    2. Tüm ekipman ve kafesler buhar, UV radyasyonu ile sterilize edilmeli veya en az 30 dakika boyunca %70 etanol içinde ıslatılarak kimyasal olarak sterilize edilmelidir Steril kafesleme için iki seçenek vardır: sarılmış ve buharla sterilize edilmiş standart kafes veya satıcı tarafından genellikle ışınlama yoluyla sterilize edilmiş kafes. Bu kafesler tek kullanımlık, tek kullanımlık ünitelerdir.
    3. Laminer akış başlığı altında fareleri manipüle etmeden önce, üfleyici çalışırken davlumbaza %70 etanol püskürtülür. Steril ortamı korumak için davlumbaz üfleyici her zaman açık kalmalıdır. Her kullanımdan sonra, davlumbaza bir dezenfektan püskürtülür ve tüm kalıntılar silinir ve tekrar% 70 etanol püskürtülür.
    4. Optimal olarak, bağışıklığı baskılanmış farelerin uygun şekilde alınması için iki kişi gereklidir: biri hayvanları aseptik teknikler kullanarak (steril teknisyen) ve diğeri kontamine maddeleri kullanacak (steril olmayan teknisyen). Steril olmayan kişi yine de temiz, uzun kollu bir elbise giymelidir; laboratuvar önlüğü veya önlüğü; maske; Kaput; ve davlumbazın içine ulaşmaları gerektiğinde steril iç kısmın kirlenmesini önlemek için steril eldivenler.
    5. Daha önce açıklandığı gibi bir laminer akış başlığı hazırlayın. Bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için ayrılmış bir davlumbazın olması tercih edilir. Davlumbazın, kullanımlar arasında davlumbazın içini sterilize etmek için kullanılabilecek ultraviyole (UV) sterilizasyon ışıkları ile donatılması önerilir. Davlumbaz yüzeyinin UV ışınlarına yeterli şekilde maruz kalmasını sağlamak için bir zamanlayıcı kullanılır.
    6. Davlumbazın içine yerleştirilen tüm sarf malzemelerinin dışına, yiyecek, su ve kafesin dış ambalajı da dahil olmak üzere %70 alkol püskürtülür.
    7. Nakliye konteynırlarına, davlumbaza yerleştirilmeden önce bir klor dioksit çözeltisi püskürtülür. Kaputun içine yerleştirildikten sonra 15-30 dakika açılmadan kalmalıdırlar.
    8. Belirlenen hayvan bakıcısı, kaputun altındaki steril yiyecek ve suyu açar.
    9. Steril olmayan teknisyen, kaputun altındaki nakliye kutusunu açar. Steril olmayan teknisyen, davlumbazın iç yüzeyleri ve nakliye kutusunun içi ile temastan kaçınmak için dikkatli olmalıdır.
    10. Hayvan bakıcısı steril kafesi açar ve kafesin üzerine yiyecek ve su koyarak kafesi hazırlar. Fareler daha sonra nakliye kutusundan çıkarılır ve steril kafese yerleştirilir.
    11. Hayvanın durumu, steril hayvan bakıcısı tarafından not edilir. Hasta görünen veya bariz yaraları olan hayvanlar ayrılacaktır. Veteriner müdahalesi gerektiren hayvanlarla işaretlenmiş tüm kafesler, diğer hayvanların potansiyel kontaminasyonunu azaltmak için en son elleçleme, kafes değiştirme veya deneysel manipülasyon için yerleştirilecektir.
    12. Steril olmayan kişi, doldurulmuş kafesi başlıktan çıkaracaktır. Kafesler, statik kafesler olarak standart bir rafa veya IVC'ler olarak havalandırmalı bir rafa yerleştirilebilir. IVC'lerde, termal düzenlemeye yardımcı olmak için farelere ek yuvalama malzemeleri sağlanmalıdır.
    13. Hayvan bakıcısı, hayvan gruplarının olası çapraz kontaminasyonunu önlemek için her nakliye konteynerinden sonra eldivenleri değiştirmelidir. Hastalık durumunda hayvanların kökenini takip etmek için nakliye konteyneri numarası kafes kartına kaydedilir.
    14. Kullanılmayan sarf malzemeleri, orijinal kabın yeniden kapatılabilmesi koşuluyla ileride kullanılmak üzere saklanabilir. Kullanılmayan yiyecekler odadan çıkarılır.
    15. Fareler, deneysel kullanımdan önce en az bir haftalık bir alışma periyoduna tabi tutulmalıdır.
  2. Bağışıklığı baskılanmış fareler için kafes değiştirme
    1. Fare kafesleri haftada en az bir kez veya gerekli görülürse daha sık değiştirilir.
    2. Başlık hazırlama, kafes hazırlama ve personel KKD adımları, hayvanların ambalajından çıkarılması ile aynıdır.
    3. Hayvanlar ya elle ya da yastıklı forseps kullanılarak transfer edilir. Belirlenen hayvan bakıcısı, eldivenler yırtılmış veya kontamine olmuşsa veya bir hayvan hasta görünüyorsa, her 5-10 kafesten sonra reglove yapmalıdır.
    4. Hayvanların hasta göründüğü kafesler, sağlıklı hayvanların patojenlere veya kirleticilere olası maruziyetini önlemek için kafes değiştirme sırasının sonuna yerleştirilecektir.
    5. Bir sonraki planlı kafes değişiminden önce kafese yiyecek ve/veya su eklenmesi gerekiyorsa, hazırlanan kapüşonun altında aseptik olarak yapılmalıdır.

Fareler ve sıçanlar, biyomedikal araştırmalar için kullanılan hayvanların yüzde doksanından fazlasını oluşturduğundan, bu organizmalara uygun şekilde bakmak, deneylerin sonucu için kritik öneme sahiptir. Bu bakım prosedürleri, hayvanların nakliye konteynırlarından ambalajından çıkarılması, kafes değişimi, uygun barınma koşullarının sürdürülmesi, uygun beslenmenin sağlanması ve uygun ortamın sağlanması ile başlar. Laboratuvardaki farelerin ve sıçanların çoğunluğu için geçerli olan genel prosedürler olmasına rağmen, bağışıklığı baskılanmış olanlar gibi bazı hayvanlar, deneysel amaçlar için onları sürdürmek için ek dikkat gerektirir.

Bu video, hem bağışıklığı yeterli hem de bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için standartları ve temel bakım prosedürlerini açıklayacaktır. Ve son olarak, bilim adamlarının bu bilgiyi farklı araştırma amaçları için nasıl kullandıklarını gösteren bazı örnek deneyler göstereceğiz.

Hayvanların diğer kurumlardan alınması, taşıma sırasında taşıma kutuları patojenik ajanlarla temas edebileceğinden, tesis içinde halihazırda barındırılan hayvanlar için bir risk oluşturur. Bu nedenle, nakliye konteynırlarını ambalajından çıkarırken uygun bir prosedür uygulanmalıdır.

Herhangi bir hayvana dokunmadan önce, uygun Kişisel Koruyucu Ekipman veya KKD giymek önemlidir. Giyilmesi gereken minimum KKD, laboratuvar önlüğü, eldiven, koruyucu gözlük ve toz ve alerjenlere maruz kalmayı azaltacak cerrahi tip bir maskedir. Bir sonraki adım, gelen hayvanlar için uygun kafesleri seçmektir. Ardından, kafesi uygun yatak takımları ve yuvalama malzemeleri ile donatın. Ve hazırlanan kafesleri, hayvanların gelmesinden önce transfere hazır olmaları için sıcaklık kontrollü kabul odasına götürün.

Sevkiyat varışta, taşıma kutularını teslim alma odasında güvenli bir yere yerleştirin. Kabı herhangi bir hasar açısından inceleyin ve zararlı patojenleri yok etmek için dış yüzeyleri dezenfekte edin. Üreticinin tavsiyelerine göre dezenfektanın kutu ile en az 15-30 dakika temas halinde olduğundan emin olun. Ardından, kabı Hayvan Aktarma İstasyonuna veya ATS'ye yerleştirin. Bu istasyon, davlumbaz içinde Yüksek Verimli Partikül Hava veya HEPA, filtrelenmiş tek yönlü hava akışı sunar. HEPA, kullanıcıyı alerjenlerden korur ve hayvanları çevredeki oda havasından koruyarak kontaminasyon olasılığını en aza indirir. Ardından, nakliye konteynırını açın ve kemirgenlerin genel sağlığını değerlendirin. Yaralı veya hasta gibi görünen herhangi bir hayvanı not edin. Bundan sonra, bunları uygun grup boyutlarında önceden monte edilmiş kafese yerleştirin, kafesi tel çubuk kapağı ile örtün ve iki alan oluşturmak için bölücüyü sabitleyin. Uygun yiyeceği seçin ve bir tarafa koyun ve daha iyi hava sirkülasyonu sağlamak için ikinci tarafı açık bırakın. Son olarak, hayvanlar otomatik sulama ile bir rafa yerleştirilmiyorsa, yeterli su temini sağlamak için bir su şişesi ekleyin. Unutmayın, ATS'nin her seansın sonunda dezenfekte edilmesi ve dezenfeksiyon sırasında üfleyicinin kapalı olması gerekir.

Kafes değişimi için, iki kafesi - uygun yatak malzemesine sahip yeni bir kafes ve hayvanlarla birlikte kullanılmış kafes - ATS'ye yerleştirin. Hayvanlar eski kafesten yeni kafese elle veya yastıklı bir forseps kullanılarak aktarılabilir. Bu yöntemlerin her ikisi de bu koleksiyonun başka bir videosunda tartışılmıştır. Bir seferde yalnızca bir hayvan kafesinin açılabileceğini unutmayın. Erkek fareler veya çöpü olan dişiler için, farelerin yuvalama alanının temiz kafese aktarılmasının hayvanlara geçişte yardımcı olduğu gösterilmiştir. Kafes üstü yeni kafesin üzerine yerleştirildikten sonra, yiyecekleri eski kafes üstünden yeni üste aktarın ve gerekirse daha fazla yiyecek ekleyin. Ardından, bariyerin üstünü yerleştirin ve kafesi rafa geri koyun. Kafesler arasında veya gruplar arasında eldiven değiştirmek iyi bir uygulamadır.

Bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için ambalajın açılma prosedürü biraz farklıdır, çünkü her şeyin steril olması gerekir. Davlumbazın içindeki üfleyicinin kullanımdan en az 24 saat önce açık olması önerilir. İmmün sistemi olan hayvanlarda olduğu gibi, sevkiyat varışta kabı teslim alma odasına dezenfektan bir solüsyonla püskürtün ve 15-30 dakika boyunca açılmadan bırakın. Bağışıklığı baskılanmış fareler için belirlenmiş ATS'de, hayvanları manipüle etmeden 30 dakika önce laminer akış başlığına %70 etanol püskürtün. Bu ambalaj açma faaliyetine iki kişinin katılması idealdir - bir kişi, aseptik teknikler kullanarak hayvanları idare etmek için buharla sterilize edilmiş önlük ve çift steril eldiven giyen steril teknisyen ve diğeri steril olmayan teknisyen olacaktır. temiz bir izolasyon elbisesi ve kontamine olmuş maddeleri işlemek için bir çift eldiven giyiyor. Her ikisi de maske, saç bonesi ve koruyucu gözlük takmalıdır.

Davlumbazın içindeki nakliye konteynırını açmadan önce, tüm malzemeleri ve kafesleri bunların içine yerleştirin ve dışlarına alkol püskürtün. Ve sevkiyat geldikten sonra, alınan hayvan kutusunu davlumbazın içine yerleştirin ve% 70 etanol ile püskürtün. Steril kafesleme için iki seçenek vardır, ya sarılmış ve buharla sterilize edilmiş standart kafes ya da satıcı tarafından ışınlama kullanılarak sterilize edilmiş tek kullanımlık üniteler.

Steril gıdayı açarak ve ardından taşıma kutusunu açarak ambalajdan çıkarma işlemine başlayın. Bu noktada, işleyici ilk steril eldiven çiftini atmalıdır. Daha sonra, steril olmayan kişi steril kafesi açar ve aseptik olarak hayvan bakıcısına geçirir, o da daha sonra kaputu ve tel çubuk kapağını çıkarır ve bunları baş aşağı kaputun içine yerleştirir. Daha sonra, kafes üzerindeki yudum borusu, davlumbazda bulunan istasyonda su ile doldurulur. Son olarak, hayvan bakıcısı hayvanı kafese yerleştirir, tel çubuk kapağıyla sabitler, yiyecek ekler ve kaputu yerine yerleştirir. Steril ortamı korumak için davlumbaz üfleyicinin her zaman açık kalması gerektiğini unutmayın. Sonunda, steril olmayan kişi, doldurulmuş kafesi başlıktan çıkarır ve uygun bir rafa yerleştirir. Gruplar arasında olası çapraz kontaminasyonu önlemek için, hayvan bakıcısı her nakliye konteynerinden sonra eldivenleri değiştirmelidir.

Bağışıklığı baskılanmış hayvanların kafes değişimi için, davlumbaz ve kafeslerin ve KKD'nin hazırlanması, bu hayvanların ambalajlarının açılması ile aynıdır. Ve transfer tekniği, immünokompetan hayvanlarla aynıdır, ancak steril koşullar altındadır.

Şimdi, temel bakım sağlamanın bir diğer önemli yönü olan hayvanlar için uygun barınma koşullarını tartışalım. Fareler ve sıçanlar esas olarak, yatak malzemesi içeren sağlam bir tabana sahip ayakkabı kutusu tipi kafese yerleştirilir. Tipik fare kafesi, maksimum 5 yetişkin fare için yeterli olan 75 inç karelik bir taban alanı sağlar. Öte yandan, bir sıçan kafesi 142 inç karelik bir alana sahiptir ve 2 yetişkin sıçan için yeterlidir. Statik kafesler genellikle bir tel çubuk kapak ile kapatılır ve filtre malzemesi kafes üstünün üzerine bir kaput olarak eklenir. Ayrı ayrı havalandırılan kafesler veya IVC'ler ayrıca bir tel çubuk kapağına ve kaputa sahiptir, ancak bunlar kafese hava akışı sağlayan bir rafa yerleştirilir. Bu, kafesi statik kafesler kadar sık değiştirme ihtiyacını ortadan kaldırır, bu da bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için faydalı olabilir.

Tüm kafes sistemlerinde yiyecek ve su temini için bir hüküm vardır. Hayvan kafesinin içine yerleştirilmiş yemlikler vardır ya da tel çubuk kapağının bir bölümü gıda saklama için kullanılır. Yiyecekler, hayvanlar tarafından kirletilmeyecek şekilde yerleştirilmelidir. Su genellikle kafesin üstüne yerleştirilmiş bir su şişesi veya hayvan kafesinin yerleşik bir bileşeni olan otomatik bir sulama içme vanası aracılığıyla sağlanır. İçme vanası seçeneği için, kafes bir rafa takıldığında, hayvan tesisi boyunca hayvanın ihtiyaçlarını karşılamak üzere tasarlanmış otomatik bir sulama sistemi için su tüpe taşınır.

Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzu, tüm kafes aletlerinin en az 2 haftada bir dezenfekte edilmesi gerektiğini belirtir. Bazı kafeslerin ve aksesuarların, muhafazadaki koku ve amonyak seviyesine göre daha sık değiştirilmesi gerekebilir.

Şimdi bağışıklığı yetmez ve bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için uygun yiyecek ve su temini hakkında konuşalım. Değişken protein, karbonhidrat ve yağ bileşimlerine sahip ticari olarak temin edilebilen birçok yem vardır. İdeal olarak, yemler %15-19 protein, %44 karbonhidrat ve %4-9 yağ içermelidir. Bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için, yemin sterilize edildiğinden emin olun.

Musluk suyu veya RO suyu olan ters ozmoz, bağışıklığı yeterli hayvanlar için kullanılabilir, ancak bağışıklığı yetersiz hayvanlar için su bir kontaminasyon kaynağı olabilir ve bu nedenle sterilize edilmesi gerekir. Sudaki sterilite, 8 litre RO suyuna 2 damla 12 molar hidroklorik asit eklenerek korunur, bu da suyu 2.5-3 pH'a asitleştirecek ve bakteri üremesini sınırlayacaktır. Daha sonra suyu ayrı şişelere dökün ve üzerlerini alüminyum folyo ile örtün. Yudum tüplü şişe kapaklarını ayrı ayrı bir otoklav torbasına koyun ve buhar sterilizasyonu için her şeyi bir otoklava koyun.

Şimdi hayvan bakımı için gerekli olan standart çevre koşullarını tartışalım.

Kafes düzeyinde, bilimsel olarak gerekçelendirilmedikçe veya bir hayvan diğerleriyle uyumsuz olmadıkça sosyal konut zorunludur. Çevreyi kağıt kulübeler ve yuvalama malzemeleri ile zenginleştirmek, hayvanların yuva kurma ve yuva açma gibi türe özgü davranışlar sergilemesine olanak tanır, bu da stres seviyesini azaltır ve hayvanların genel refahını artırır. Yuvalama malzemeleri ayrıca, aynı kafeste birden fazla erkek farenin barınmasına yardımcı olan sakinleştirici feromonlara doymuş bir uyku alanı sağlar. Daha önce de belirtildiği gibi, kafes değiştirildikten sonra yuvalama alanını temiz kafese taşımak, hayvanlar yeni bir ortama sokulduğundan, özellikle erkeklerde saldırganlığın önlenmesine yardımcı olur. Atimik çıplak hayvanlar için, termoregülasyona yardımcı olmak için kafeslerinde ek yatak takımları ve parçalanmış kağıt türü yuvalama malzemeleri sağlamayı düşünmelidir.

Oda seviyesinde, fareler ve sıçanlar için sıcaklık 68 ila 79 ° F arasında olmalıdır. Oda nem seviyesi %30-70 olmalıdır, çünkü daha düşük seviyeler halka kuyruk olarak bilinen bir duruma neden olabilir. Üçüncü oda parametresi aydınlatmadır. Buna ışık yoğunluğu ve döngüler dahildir. Normalde, hayvan odası 12 saatlik aydınlık / 12 saatlik karanlık döngüsüne ayarlanmıştır. Aydınlatma yoğunluğu odadaki aktiviteye göre değişmelidir. Teknisyenler çalışırken, daha yüksek aydınlatma seviyeleri kullanılabilir. Ancak, tüm aktivite sona erdikten sonra yaklaşık 325 lux'e düşürülmelidir. Son olarak, oda içindeki hava akışı da dikkatli bir şekilde kontrol edilmelidir. Her saat başı en az %100 taze hava ile minimum 10-15 hava değişimi yapılmalıdır. Bu, hayvan odasındaki mikropları ve kokuları azaltır.

Son olarak, araştırmacıların deneylerinde laboratuvar hayvanlarının barınması, diyet ve çevre tercihleri hakkındaki bu bilgileri nasıl kullandıklarını görelim.

Daha önce tartışıldığı gibi, laboratuvar hayvanları genellikle stresi azaltan yuva kurma davranışı sergiler ve araştırmacılar bunu hayvan refahının bir göstergesi olarak kullanmışlardır. Bu özel deneyde, bilim adamları inşa edilen yuvayı puanlamak için tarafsız bir sistem geliştirdiler ve daha sonra ortam sıcaklığının yuva kurma davranışı üzerindeki etkisini incelemek için kullandılar. Gördüğünüz gibi, sıcaklıktaki bir artış, skorda önemli bir düşüşe neden oldu ve çevre sıcaklığının hayvan refahındaki rolünü vurguladı.

Farelerin ve sıçanların karbonhidratları sevdiği göz önüne alındığında, araştırmacılar hayvanın motor fonksiyonunu test etmek için farklı şekillerde yem kullandılar. Bu, farklı türdeki gıda işleme görevleri sırasında el becerisini analiz etmeyi ve cerrahi veya farmakolojik müdahaleleri takiben ulaşma davranışını incelemeyi içerir.

Son olarak, fare ve sıçanların gece yaşadıkları ve aydınlatılmış alanları tercih etmedikleri bilinmektedir. Bilim adamları bu bilgiyi, bu türlerdeki kaygıyı incelemek için ortam oluşturmak için kullanırlar. Örneğin, burada yapılan araştırmalar, hayvanları basit bir açık alana soktu ve vahşi tip ve nakavt farelerin iç ve dış bölgelerde, gen yıkımının anksiyete benzeri davranışlar üzerindeki etkisini analiz etmek için harcadıkları zamanı inceledi.

JoVE'nin fareler ve sıçanlar için temel bakım prosedürlerine girişini izlediniz. Artık bu hayvanların çevresinin ve muamelesinin hayvan sağlığına herhangi bir zarar vermemesini sağlamak için alınması gereken önlemleri daha iyi anlamalısınız ve ayrıca araştırmacıların farklı bilimsel hedeflere ulaşmak için bu parametreleri nasıl değiştirebileceklerini de bilmelisiniz. Her zaman olduğu gibi, izlediğiniz için teşekkürler!

Transcript

Fareler ve sıçanlar, biyomedikal araştırmalar için kullanılan hayvanların yüzde doksanından fazlasını oluşturduğundan, bu organizmalara uygun şekilde bakmak, deneylerin sonucu için kritik öneme sahiptir. Bu bakım prosedürleri, hayvanların nakliye konteynırlarından ambalajından çıkarılması, kafes değişimi, uygun barınma koşullarının sürdürülmesi, uygun beslenmenin sağlanması ve uygun ortamın sağlanması ile başlar. Laboratuvardaki farelerin ve sıçanların çoğunluğu için geçerli olan genel prosedürler olmasına rağmen, bağışıklığı baskılanmış olanlar gibi bazı hayvanlar, deneysel amaçlar için onları sürdürmek için ek dikkat gerektirir.

Bu video, hem bağışıklığı yeterli hem de bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için standartları ve temel bakım prosedürlerini açıklayacaktır. Ve son olarak, bilim adamlarının bu bilgiyi farklı araştırma amaçları için nasıl kullandıklarını gösteren bazı örnek deneyler göstereceğiz.

Hayvanların diğer kurumlardan alınması, taşıma sırasında taşıma kutuları patojenik ajanlarla temas edebileceğinden, tesis içinde halihazırda barındırılan hayvanlar için bir risk oluşturur. Bu nedenle, nakliye konteynırlarını ambalajından çıkarırken uygun bir prosedür uygulanmalıdır.

Herhangi bir hayvana dokunmadan önce, uygun Kişisel Koruyucu Ekipman veya KKD giymek önemlidir. Giyilmesi gereken minimum KKD, laboratuvar önlüğü, eldiven, koruyucu gözlük ve toz ve alerjenlere maruz kalmayı azaltacak cerrahi tip bir maskedir. Bir sonraki adım, gelen hayvanlar için uygun kafesleri seçmektir. Ardından, kafesi uygun yatak takımları ve yuvalama malzemeleri ile donatın. Ve hazırlanan kafesleri, hayvanların gelmesinden önce transfere hazır olmaları için sıcaklık kontrollü kabul odasına götürün.

Sevkiyat varışta, taşıma kutularını teslim alma odasında güvenli bir yere yerleştirin. Kabı herhangi bir hasar açısından inceleyin ve zararlı patojenleri yok etmek için dış yüzeyleri dezenfekte edin. Üreticinin tavsiyelerine göre dezenfektanın kutu ile en az 15-30 dakika temas halinde olduğundan emin olun. Ardından, kabı Hayvan Aktarma İstasyonuna veya ATS'ye yerleştirin. Bu istasyon, davlumbaz içinde Yüksek Verimli Partikül Hava veya HEPA, filtrelenmiş tek yönlü hava akışı sunar. HEPA, kullanıcıyı alerjenlerden korur ve hayvanları çevredeki oda havasından koruyarak kontaminasyon olasılığını en aza indirir. Ardından, nakliye konteynırını açın ve kemirgenlerin genel sağlığını değerlendirin. Yaralı veya hasta gibi görünen herhangi bir hayvanı not edin. Bundan sonra, bunları uygun grup boyutlarında önceden monte edilmiş kafese yerleştirin, kafesi tel çubuk kapağı ile örtün ve iki alan oluşturmak için bölücüyü sabitleyin. Uygun yiyeceği seçin ve bir tarafa koyun ve daha iyi hava sirkülasyonu sağlamak için ikinci tarafı açık bırakın. Son olarak, hayvanlar otomatik sulama ile bir rafa yerleştirilmiyorsa, yeterli su temini sağlamak için bir su şişesi ekleyin. Unutmayın, ATS'nin her seansın sonunda dezenfekte edilmesi ve dezenfeksiyon sırasında üfleyicinin kapalı olması gerekir.

Kafes değişimi için, iki kafesi - uygun yatak malzemesine sahip yeni bir kafes ve hayvanlarla birlikte kullanılmış kafes - ATS'ye yerleştirin. Hayvanlar eski kafesten yeni kafese elle veya yastıklı bir forseps kullanılarak aktarılabilir. Bu yöntemlerin her ikisi de bu koleksiyonun başka bir videosunda tartışılmıştır. Bir seferde yalnızca bir hayvan kafesinin açılabileceğini unutmayın. Erkek fareler veya çöpü olan dişiler için, farelerin yuvalama alanının temiz kafese aktarılmasının hayvanlara geçişte yardımcı olduğu gösterilmiştir. Kafes üstü yeni kafesin üzerine yerleştirildikten sonra, yiyecekleri eski kafes üstünden yeni üste aktarın ve gerekirse daha fazla yiyecek ekleyin. Ardından, bariyerin üstünü yerleştirin ve kafesi rafa geri koyun. Kafesler arasında veya gruplar arasında eldiven değiştirmek iyi bir uygulamadır.

Bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için ambalajın açılma prosedürü biraz farklıdır, çünkü her şeyin steril olması gerekir. Davlumbazın içindeki üfleyicinin kullanımdan en az 24 saat önce açık olması önerilir. İmmün sistemi olan hayvanlarda olduğu gibi, sevkiyat varışta kabı teslim alma odasına dezenfektan bir solüsyonla püskürtün ve 15-30 dakika boyunca açılmadan bırakın. Bağışıklığı baskılanmış fareler için belirlenmiş ATS'de, hayvanları manipüle etmeden 30 dakika önce laminer akış başlığına %70 etanol püskürtün. Bu ambalaj açma faaliyetine iki kişinin katılması idealdir - bir kişi, aseptik teknikler kullanarak hayvanları idare etmek için buharla sterilize edilmiş önlük ve çift steril eldiven giyen steril teknisyen ve diğeri steril olmayan teknisyen olacaktır. temiz bir izolasyon elbisesi ve kontamine olmuş maddeleri işlemek için bir çift eldiven giyiyor. Her ikisi de maske, saç bonesi ve koruyucu gözlük takmalıdır.

Davlumbazın içindeki nakliye konteynırını açmadan önce, tüm malzemeleri ve kafesleri bunların içine yerleştirin ve dışlarına alkol püskürtün. Ve sevkiyat geldikten sonra, alınan hayvan kutusunu davlumbazın içine yerleştirin ve% 70 etanol ile püskürtün. Steril kafesleme için iki seçenek vardır, ya sarılmış ve buharla sterilize edilmiş standart kafes ya da satıcı tarafından ışınlama kullanılarak sterilize edilmiş tek kullanımlık üniteler.

Steril gıdayı açarak ve ardından taşıma kutusunu açarak ambalajdan çıkarma işlemine başlayın. Bu noktada, işleyici ilk steril eldiven çiftini atmalıdır. Daha sonra, steril olmayan kişi steril kafesi açar ve aseptik olarak hayvan bakıcısına geçirir, o da daha sonra kaputu ve tel çubuk kapağını çıkarır ve bunları baş aşağı kaputun içine yerleştirir. Daha sonra, kafes üzerindeki yudum borusu, davlumbazda bulunan istasyonda su ile doldurulur. Son olarak, hayvan bakıcısı hayvanı kafese yerleştirir, tel çubuk kapağıyla sabitler, yiyecek ekler ve kaputu yerine yerleştirir. Steril ortamı korumak için davlumbaz üfleyicinin her zaman açık kalması gerektiğini unutmayın. Sonunda, steril olmayan kişi, doldurulmuş kafesi başlıktan çıkarır ve uygun bir rafa yerleştirir. Gruplar arasında olası çapraz kontaminasyonu önlemek için, hayvan bakıcısı her nakliye konteynerinden sonra eldivenleri değiştirmelidir.

Bağışıklığı baskılanmış hayvanların kafes değişimi için, davlumbaz ve kafeslerin ve KKD'nin hazırlanması, bu hayvanların ambalajlarının açılması ile aynıdır. Ve transfer tekniği, immünokompetan hayvanlarla aynıdır, ancak steril koşullar altındadır.

Şimdi, temel bakım sağlamanın bir diğer önemli yönü olan hayvanlar için uygun barınma koşullarını tartışalım. Fareler ve sıçanlar esas olarak, yatak malzemesi içeren sağlam bir tabana sahip ayakkabı kutusu tipi kafese yerleştirilir. Tipik fare kafesi, maksimum 5 yetişkin fare için yeterli olan 75 inç karelik bir taban alanı sağlar. Öte yandan, bir sıçan kafesi 142 inç karelik bir alana sahiptir ve 2 yetişkin sıçan için yeterlidir. Statik kafesler genellikle bir tel çubuk kapak ile kapatılır ve filtre malzemesi kafes üstünün üzerine bir kaput olarak eklenir. Ayrı ayrı havalandırılan kafesler veya IVC'ler ayrıca bir tel çubuk kapağına ve kaputa sahiptir, ancak bunlar kafese hava akışı sağlayan bir rafa yerleştirilir. Bu, kafesi statik kafesler kadar sık değiştirme ihtiyacını ortadan kaldırır, bu da bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için faydalı olabilir.

Tüm kafes sistemlerinde yiyecek ve su temini için bir hüküm vardır. Hayvan kafesinin içine yerleştirilmiş yemlikler vardır ya da tel çubuk kapağının bir bölümü gıda saklama için kullanılır. Yiyecekler, hayvanlar tarafından kirletilmeyecek şekilde yerleştirilmelidir. Su genellikle kafesin üstüne yerleştirilmiş bir su şişesi veya hayvan kafesinin yerleşik bir bileşeni olan otomatik bir sulama içme vanası aracılığıyla sağlanır. İçme vanası seçeneği için, kafes bir rafa takıldığında, hayvan tesisi boyunca hayvanın ihtiyaçlarını karşılamak üzere tasarlanmış otomatik bir sulama sistemi için su tüpe taşınır.

Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzu, tüm kafes aletlerinin en az 2 haftada bir dezenfekte edilmesi gerektiğini belirtir. Bazı kafeslerin ve aksesuarların, muhafazadaki koku ve amonyak seviyesine göre daha sık değiştirilmesi gerekebilir.

Şimdi bağışıklığı yetmez ve bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için uygun yiyecek ve su temini hakkında konuşalım. Değişken protein, karbonhidrat ve yağ bileşimlerine sahip ticari olarak temin edilebilen birçok yem vardır. İdeal olarak, yemler %15-19 protein, %44 karbonhidrat ve %4-9 yağ içermelidir. Bağışıklığı baskılanmış hayvanlar için, yemin sterilize edildiğinden emin olun.

Musluk suyu veya RO suyu olan ters ozmoz, bağışıklığı yeterli hayvanlar için kullanılabilir, ancak bağışıklığı yetersiz hayvanlar için su bir kontaminasyon kaynağı olabilir ve bu nedenle sterilize edilmesi gerekir. Sudaki sterilite, 8 litre RO suyuna 2 damla 12 molar hidroklorik asit eklenerek korunur, bu da suyu 2.5-3 pH'a asitleştirecek ve bakteri üremesini sınırlayacaktır. Daha sonra suyu ayrı şişelere dökün ve üzerlerini alüminyum folyo ile örtün. Yudum tüplü şişe kapaklarını ayrı ayrı bir otoklav torbasına koyun ve buhar sterilizasyonu için her şeyi bir otoklava koyun.

Şimdi hayvan bakımı için gerekli olan standart çevre koşullarını tartışalım.

Kafes düzeyinde, bilimsel olarak gerekçelendirilmedikçe veya bir hayvan diğerleriyle uyumsuz olmadıkça sosyal konut zorunludur. Çevreyi kağıt kulübeler ve yuvalama malzemeleri ile zenginleştirmek, hayvanların yuva kurma ve yuva açma gibi türe özgü davranışlar sergilemesine olanak tanır, bu da stres seviyesini azaltır ve hayvanların genel refahını artırır. Yuvalama malzemeleri ayrıca, aynı kafeste birden fazla erkek farenin barınmasına yardımcı olan sakinleştirici feromonlara doymuş bir uyku alanı sağlar. Daha önce de belirtildiği gibi, kafes değiştirildikten sonra yuvalama alanını temiz kafese taşımak, hayvanlar yeni bir ortama sokulduğundan, özellikle erkeklerde saldırganlığın önlenmesine yardımcı olur. Atimik çıplak hayvanlar için, termoregülasyona yardımcı olmak için kafeslerinde ek yatak takımları ve parçalanmış kağıt türü yuvalama malzemeleri sağlamayı düşünmelidir.

Oda düzeyinde, fareler ve sıçanlar için sıcaklık 68 ile 79 arasında olmalıdır. F. Oda nem seviyesi %30-70 olmalıdır, çünkü daha düşük seviyeler halka kuyruk olarak bilinen bir duruma neden olabilir. Üçüncü oda parametresi aydınlatmadır. Buna ışık yoğunluğu ve döngüler dahildir. Normalde, hayvan odası 12 saatlik aydınlık / 12 saatlik karanlık döngüsüne ayarlanmıştır. Aydınlatma yoğunluğu odadaki aktiviteye göre değişmelidir. Teknisyenler çalışırken, daha yüksek aydınlatma seviyeleri kullanılabilir. Ancak, tüm aktivite sona erdikten sonra yaklaşık 325 lux'e düşürülmelidir. Son olarak, oda içindeki hava akışı da dikkatli bir şekilde kontrol edilmelidir. Her saat başı en az %100 taze hava ile minimum 10-15 hava değişimi yapılmalıdır. Bu, hayvan odasındaki mikropları ve kokuları azaltır.

Son olarak, araştırmacıların deneylerinde laboratuvar hayvanlarının barınması, diyet ve çevre tercihleri hakkındaki bu bilgileri nasıl kullandıklarını görelim.

Daha önce tartışıldığı gibi, laboratuvar hayvanları genellikle stresi azaltan yuva kurma davranışı sergiler ve araştırmacılar bunu hayvan refahının bir göstergesi olarak kullanmışlardır. Bu özel deneyde, bilim adamları inşa edilen yuvayı puanlamak için tarafsız bir sistem geliştirdiler ve daha sonra ortam sıcaklığının yuva kurma davranışı üzerindeki etkisini incelemek için kullandılar. Gördüğünüz gibi, sıcaklıktaki bir artış, skorda önemli bir düşüşe neden oldu ve çevre sıcaklığının hayvan refahındaki rolünü vurguladı.

Farelerin ve sıçanların karbonhidratları sevdiği göz önüne alındığında, araştırmacılar hayvanın motor fonksiyonunu test etmek için farklı şekillerde yem kullandılar. Bu, farklı türdeki gıda işleme görevleri sırasında el becerisini analiz etmeyi ve cerrahi veya farmakolojik müdahaleleri takiben ulaşma davranışını incelemeyi içerir.

Son olarak, fare ve sıçanların gece yaşadıkları ve aydınlatılmış alanları tercih etmedikleri bilinmektedir. Bilim adamları bu bilgiyi, bu türlerdeki kaygıyı incelemek için ortam oluşturmak için kullanırlar. Örneğin, burada yapılan araştırmalar, hayvanları basit bir açık alana soktu ve vahşi tip ve nakavt farelerin iç ve dış bölgelerde, gen yıkımının anksiyete benzeri davranışlar üzerindeki etkisini analiz etmek için harcadıkları zamanı inceledi.

JoVE'nin fareler ve sıçanlar için temel bakım prosedürlerine girişini izlediniz. Artık bu hayvanların çevresinin ve muamelesinin hayvan sağlığına herhangi bir zarar vermemesini sağlamak için alınması gereken önlemleri daha iyi anlamalısınız ve ayrıca araştırmacıların farklı bilimsel hedeflere ulaşmak için bu parametreleri nasıl değiştirebileceklerini de bilmelisiniz. Her zaman olduğu gibi, izlediğiniz için teşekkürler!

Explore More Videos

Bakım prosedürleri fareler sıçanlar biyomedikal araştırmalar hayvanlar deneyler ambalajın açılması kafes değiştirme barınma koşulları diyet çevre bağışıklığı baskılanmış hayvanlar standartlar temel bakım prosedürleri bağışıklığı yeterli hayvanlar örnek deneyler alıcı hayvanlar taşıma kutuları patojenik ajanlar kişisel koruyucu ekipman (KKD) laboratuvar önlüğü eldivenler koruyucu gözlükler

Related Videos

Kemirgen Taşıma ve Kısıtlama Teknikleri

13:40

Kemirgen Taşıma ve Kısıtlama Teknikleri

Lab Animal Research

190.8K Görüntüleme

Islah ve sütten kesmenin temelleri

13:54

Islah ve sütten kesmenin temelleri

Lab Animal Research

38.1K Görüntüleme

Kemirgen Tanımlama I

13:04

Kemirgen Tanımlama I

Lab Animal Research

59.5K Görüntüleme

Kemirgen Tanımlama II

13:46

Kemirgen Tanımlama II

Lab Animal Research

27.9K Görüntüleme

Bileşik Yönetim I

15:06

Bileşik Yönetim I

Lab Animal Research

109.6K Görüntüleme

Bileşik Uygulama II

12:32

Bileşik Uygulama II

Lab Animal Research

40.6K Görüntüleme

Bileşik Yönetim III

12:34

Bileşik Yönetim III

Lab Animal Research

34.5K Görüntüleme

Bileşik Yönetim IV

12:21

Bileşik Yönetim IV

Lab Animal Research

56.9K Görüntüleme

Kan Alma I

16:35

Kan Alma I

Lab Animal Research

187.9K Görüntüleme

Kan Alma II

12:27

Kan Alma II

Lab Animal Research

80.9K Görüntüleme

Anestezi İndüksiyonu ve Bakımı

12:35

Anestezi İndüksiyonu ve Bakımı

Lab Animal Research

54.8K Görüntüleme

Kemirgen Cerrahisinde Dikkat Edilmesi Gerekenler

10:12

Kemirgen Cerrahisinde Dikkat Edilmesi Gerekenler

Lab Animal Research

24.0K Görüntüleme

Tanısal Nekropsi ve Doku Hasadı

18:52

Tanısal Nekropsi ve Doku Hasadı

Lab Animal Research

62.9K Görüntüleme

Steril Doku Hasadı

12:24

Steril Doku Hasadı

Lab Animal Research

36.4K Görüntüleme

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code