Name: P2X2 Ligandla Gated Katyon Kanalları ile etkileşimde Proteinler tanımlamak için Proteomik (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-18T23:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 36 s
Description: Öğrenin P2X2 reseptörlerinin C terminaliyle etkileşen beyin proteinlerini izole etmek için GST çekme deneyi ve kütle spektrometrisi yöntemlerini. Bu protokol nörolojik sinyal yollarını anlamaya katkı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

SW ve TMV Ulusal Sağlık Enstitüleri NCRR ve NHLBI tarafından desteklenmektedir. BSK ve HS, Ulusal Sağlık Enstitüleri NINDS ve NIGMS tarafından desteklenmektedir.

DENEYSEL PROSEDÜRLER (Şekil 2) deneysel işlemin kademeli bir şekilde aşağıda açıklanan dört bölümden oluşmaktadır. Bölüm 1: P2X2 reseptörlerinin C-terminalindeki Subcloning ve ifadesi. Biz onu bağlar beyin proteinleri tespit etmek için tam uzunlukta bakteriler P2X2 reseptörleri C-terminus dile getirdiler. <ol><li> P2X2 reseptör (Şekil 1) C-terminalindeki pGEX 4NT1 (GE Life Sciences) klonlanmış (kalıntıları 353-472) ve sıralama ile doğrulanmış, PCR ile amplifiye oldu. </li><li> Rekombinant plazmid E. dönüştü Rekombinant proteinler ifade coli (BL21). </li><li> Plazmid P2X2 CT-GST içeren bakteriler (E. coli BL21) Gliserol stoklarının steril bir pipet ucu ile kazınır ve uygun seçici marker (50 g / ml ampisilin) ​​ve 5 ml Luria-Bertani (LB) medya ekildi , 37 ° C&#39;de orbital çalkalayıcı bir gece inkübe edildi. </li><li> Gecede büyüdü kültürleri 600 nm dalga boyunda optik yoğunluk ulaşana kadar uygun bir antibiyotik ile (50 mg / ml ampisilin) ​​250 ml LB medya içine aşılanmış ve 37 ° C&#39;de 2-3 saat için 250 rpm&#39;de orbital çalkalayıcı inkübe ~~ 0.6-0.7. </li><li> Kültür IPTG 1 mM ile tetiklenen ve daha fazla protein ekspresyonu için 3 saat için 37 ° C&#39;de inkübe edildi. </li><li> 5000 g, kültür 4C (kültür 1ml ifade düzeyini analiz etmek için kaydedilir ve &#39;indüklenen&#39; olarak etiketlenmiş) 15 dakika sonra ayrıldı. Süpernatant atılır ve pelet Tuzlu Tris-EDTA (STE) tamponu (10 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA pH 8.0) 20 ml yeniden süspanse edildi. </li><li> Süspansiyon, 50 ml şahin tüp içinde 15 dakika süreyle 5000 g ayrıldı. Süpernatant atılır ve yarı kuru pelet at-70C gecede donduruldu. </li><li> -70C pelet buz lizis tamponu (% 2 sarkosyl (w / v), 15 mg lizozim, 150 mM NaCl, 50 mM Tris pH7.5, 5 mM DTT ve tam proteaz inhibitörü tablet) 40 ml yeniden süspanse ve süspansiyon 30 dakika buz üzerinde inkübe edildi. Bu kuluçka sırasında, 3 ml Glutatyon-sepharose 4B boncuk Phosphate Buffer Saline (PBS) ve PBS tarafından 20 ml T-PBS (% 0.1 (v / v) PBS içinde tritonX-100) 20 ml ile yıkandı. Boncuk, 1 ml PBS içinde yeniden süspanse edildi. </li><li> Bakteriyel süspansiyon, sıvı nitrojen içinde 3 kez dondurma çözülmüş ve sonicated (1s kapalı / buz üzerinde 3 dakika süreyle 30 mikron) ve daha fazla,% 4 ile 30 dakika (v / v) triton X-100, 10 mM MgSO inkübe 4 ve 2 mM ATP buz üzerinde. </li><li> Lizat (pelet ve 1 süpernatant ml sitoplazmada ve membranlar proteinlerin miktarda test etmek için SDS sayfa için kaydedilmiş bir örnek) atılır 4C ve pelet az 15 dakika süreyle 20000 g ayrıldı. Süpernatant 1 saat (veya gece) 4C için boncuklar ile inkübe edildi. </li><li> Boncuklar, 5 dakika boyunca 500 g bükülmüş ve supernatant (örnek bağlanmamış fraksiyonu kaydedilir) atılır. Boncuk T-PBS beş kez (yıkama yıkama kontrolleri için kaydedilmiş) ile yıkandı. </li><li> Boncuk sonra% 50 (w / v) bulamaç vermek için PBS içinde yeniden süspanse ve kullanana kadar 4C buzdolabında saklanır. Protein konsantrasyonu Bradford assay (üreticinin talimatlarına göre) tarafından tahmin edilmiştir. </li></ol> Bölüm 2: tüm beyin lizatları hazırlanması P2X2 reseptörleri beyin 8 bol ifade edilmesi bilinmektedir. Mevcut analizler, sıçan tüm beyin ilginçtir (Şekil 3) P2X2 reseptörleri ile etkileşen proteinleri tespit etmek için aradı. <ol><li> Yetişkin sıçan beyin hasat (UCLA IAACUC onaylı protokole göre hayvanların ve NIH Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Kılavuzu göre kurban edildi) ve hemen buz PBS (3X) durulanır. </li><li> 10 ml (~ 5 kez hasat beyin ıslak ağırlık) buz lizis tamponu içeren 150 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 10 mM EDTA, 1 mM EGTA, 1 mM NaF, 1 mM olmuş akyuvarlar Na 3 VO 4, 1 mM PMSF leupeptin, 5 mg / ml,% 1 (v / v) NP-40, bir proteaz inhibitörü kokteyl tablet hasat beyin eklendi. </li><li> Beyin dokusu, homojen tutarlılık bir karışım elde edilene kadar, bir bardak Dounce homojenizatör ile buz homojenize edildi. </li><li> Hücre lizat kesintisiz hücreleri çıkarmak için 5 dakika 2000 g ayrıldı. Süpernatant sağlam organelleri ve membran agrega kaldırmak için 60 dakika süreyle 29000 g de tekrar toplanır ve bükülmüş oldu. </li><li> Santrifüj hemen sonra süpernatant temiz bir tüpe transfer edildi. Tüm beyin lizat protein konsantrasyonu Bradford assay ile ölçüldü (genellikle 15 mg / ml). </li><li> Lizat aliquoted ve-70C saklanır. </li></ol> Bölüm 3: P2X2 C-kuyruk ilişkili proteinlerin İzolasyon Tüm beyin lizatları P2X2 CT-GST bağlayıcı ortakları belirlemek için tahlil aşağı çekme CT-G ile yapıldıST yem olarak glutatyon sepharose 4B boncuklar üzerinde hareketsiz. Kontroller için, boncuk bağlı yalnız GST kullanılmıştır. <ol><li> Beyin lizat 4C az 1 saat süreyle GST boncuk precleared oldu. Pelet atılır ve supernatant ileri analizler için kullanılmıştır. </li><li> GST ve P2X2 glutatyon sepharose 4 B boncuk bağlı CT-GST (10 mikrogram) Eşit miktarda lizis tamponu 4C dönme ile sıçan bütün beyin lizat precleared solubilised proteinlerin 100 g gece inkübe edildi. </li><li> Boncuk 5 dakika 1000 g bükülmüş ve supernatant atılmıştır. </li><li> Boncuk lizis tamponu ile bir kez yıkanır ve modifiye Laemli tampon kaynatılmış [4% (w / v) SDS,% 10 (v / v) 2-merkaptoetanol,% 2 (v / v) gliserol,% 0.004 (w / v) Bromophenol Mavi ve 0.125 M TrisCl pH 6.8] 5 dk. </li><li> Örnekleri 5 dakika ve% 10 SDS-PAGE (Şekil 4) ile ayrılmış süpernatant 5000 g spun. Jeller SYPRO Ruby protein leke jel (üreticinin talimatlarına göre) ve ultraviyole ışık altında görüntülendi ile boyandı. P2X2 CT ile ilişkili proteinler GST boş yem olarak kullanarak kurtarıldı ile karşılaştırıldı. Dört biyolojik (dört beyinleri ve dört bağımsız çekme çıkışlar) yapıldı çoğaltır. </li></ol> Bölüm 4: proteinlerin belirlenmesi. Jel elektroforezi ile ayrılmış Proteinler jel eksize ve kütle spektrometresi 12 tarafından belirlenen Not: Bu süreç boyunca toz olmaması keratin kirliliği azaltmak için kritik öneme sahiptir. Deneyci her zaman, saç net ve eldiven maske takınız ve eldiven kullanılmadan ilgi jel bölgeye asla dokunmayın. <ol><li> Aşağı P2X2 çekme kurtarıldı tüm görünür protein bantları, temiz bir jilet ile eksize ve doğranmış (Şekil 4). GST boş jel Sorumlu bölgelerde sokaktan aşağı çekin seviyesinin altında proteinlerin varlığını sigortalamak için bant boyama (GST boş yem için özel bantlar da eksize ve tespit edilmiştir) dikkate alınmaksızın aynı şekilde eksize edildi boyama hassasiyet cevapsız değildi. </li><li> Jel adet 200% 50 50 mM amonyum bikarbonat ul (v / v) asetonitril (ACN) ve RT 15 dakika vortekslenmiş tüpleri ile inkübe edildi. Bu yıkama adımı yineleyin. </li><li> Jel adet 200 ul asetonitril (shrink jel parçaları ve opak renkli olması gerektiğini) ekleyerek susuz. </li><li> Acetontrile kaldırılır ve jel parçaları yaklaşık 10 dakika süreyle speedvac kurutuldu. </li><li> Jel parçaları daha sonra parçaları batırmayın 30 ul taze hazırlanmış 10 mM DTT/10 mM Tris (2-karboksi-etil) yeterli hacim fosfin hidroklorür (TCEP) ile inkübe edildi. Bu 56C su banyosunda 30 dakika kaldı. </li><li> Sonraki DTT çözümü 100 ul 500% 50 asetonitril çözüm mM amonyum bikarbonat ve ammounium bikarbonat ile yıkanır jel dilimleri ile değiştirildi. </li><li> Yıkama solüsyonu aspire ve 200 ul asetonitril jeller kurutmak eklendi. </li><li> Asetonitril sonra kaldırılır ve 100 ul taze hazırlanmış 100 mM iodoacetamide çözümü serbest sülfidril alkylate eklendi. Bu adım, karanlıkta, oda sıcaklığında 25 dakika devam etti. </li><li> Iodoacetamide çözüm kaldırıldı ve vorteks sırasında jel adet 200 ul 2 dakika süreyle% 50 acetontrile (pH 8.0) 50 mM amonyum bikarbonat ile yıkandı. Bu yıkama adım tekrarlandı. </li><li> Yıkama çözeltisi çıkardıktan sonra, jel adet 200 ~ 10dk sonra speedvac tarafından kaldırıldı ul asetonitril ile inkübe edildi. </li><li> Bu aşamada jel parçaları tripsin sindirim için hazırız. Jel adet 30 ul tripsin çözüm (20 ng / mcL çalışma konsantrasyonu) inkübe ve iyi şişmiş jeller için 10 dakika boyunca buz üzerine yerleştirildi. Aşırı tripsin kaldırıldı ve 50 mM amonyum bikarbonat ile 30 ul ile kaplanmış, 37 ° C&#39;de 12 ila 16 saat boyunca devam etmesine izin sindirim boyunca dalmış tutmak için jel partikülleri rehidrate edildi. </li><li> Beş ul% 5 (v / v) formik asit, tripsin ve tutuklama sindirim devre dışı bırakmak için eklenir. </li><li> Tüpler ~ 15 dk vortekslenmiş ve kısa bir süre sonra temiz ve etiketli 0.5 ml flakon nakledildi tüpün dibine sıvı getirmek için santrifüj edildi. </li><li> Sadece kısa santrifüj ile ayrılmış iki kez karıştırın, 10-15 dakika süreyle izledi kaplıydı böylece% 0.1% 50 asetonitril Sonraki 30 ul (v / v) formik asit jel parçaları eklendi. Bu adım, adımlar arasında asetonitril formik asit yerine, bir kez tekrarlandı. </li><li> Son sıvı tek bir flakon kaldırıldı ve tüm ekstraksiyon çözeltisi kombine edildi. Bu hacim speedvac ~ 30 uL azaldı. Örnek kütle spektrometresi ile ters faz nano-sıvı kromatografisi ve protein belirlenmesi için artık hazır olduğunu. Bu özel örnekte, bu adımı ThermoF bir Orbi-trap tandem kütle spektrometre yürütülmektedirisher (yüksek kütle doğruluğu, protein tayini için hızlı görev döngüsü ve genellikle sağlam bir işletim özellikleri için seçilen), diğer modeller ve üreticilerin araçların kolayca bu noktaya kadar açıklanan yaklaşım ile birleştiğinde olabilir rağmen. </li><li> Spektrometrik kitle analizleri için detayları ve kriterler kısaca sunulmuştur. Tüm peptidler ters faz nano-LC (Eksigent) ve peptidler, 3 ul / dk akış hızında C18 ters-faz sütun üzerine yüklenen ayrıldı. Mobil faz A% 0.1 formik asit ve su içinde% 2 ACN; mobil faz B,% 0.1 formik asit ve% 20 su ACN içinde oldu. Peptitler sütundan 220 nl / dk sonra 5 dakika boyunca% 95 B, 90 dakika boyunca% 50 B% 5 B doğrusal bir degrade kullanarak bir akış hızında yıkandı, ve nihayet 5 dakika boyunca sabit% 95 B tutmak . Spectra, MS tarar ve LTQ MS / MS taramaları için kullanılan Orbi-trap ile veri bağımlı modunda elde edildi. Peptitler Bioworks yazılım paketi entegre SEQUEST algoritmasını kullanarak sıçan IPI veritabanı v.3.53 karşı spektrumları arayarak tespit edildi. Her peptid aşağıdaki ölçütler karşılanmalıdır: XCorr ≥ 2 (+1), ≥ 3 (+2), ≥ 4 (3), ve DeltaCN&gt; 0.1. Protein tanımlanması için kullanılan tüm spektrumları elle denetlenir ve proteinler iki peptidler daha az olduğu tespit edilir. Sadece proteinler GST boş çekme çıkışlar sırasında her dört P2X2 çekme çıkışlar ve yok şu mevcut ileriki analizler için kabul edildi. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1178/1178fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1. P2X2 reseptör altbirim şematik. A. karikatür P2X2 reseptör alt biriminin topoloji göstermektedir. N ve C Termini sitozolik bir etki oluşur. P2X2 reseptör (kırmızı) C-terminalindeki aşağı çekin tahlil için yem olarak kullanılır. Bu çalışmada kullanılan P2X2 reseptör C-terminalindeki B. Amino asit dizisi. <img src="/files/ftp_upload/1178/1178fig2.jpg" alt="" /> Şekil 2. Akış şeması ve zaman çizgisi ifade için kullanılan protokol, arıtma, aşağı çekme ve proteinlerin belirlenmesi zaman çizgisi ile protokol anahat göstermektedir. Yetişkin sıçan beyin lizat aşağı çekme deneyleri için kullanılmak hemen önce taze olarak hazırlanır. <img src="/files/ftp_upload/1178/1178fig3.jpg" alt="" /> Şekil 3. Sıçan beyin P2X2 C-terminalindeki ağ ikili proteomik analiz şematik gösterimi. GST GST boncuk bağlı protein ile kaynaşmış P2X2 reseptörlerinin C-terminalindeki testleri aşağı çekme için kullanılmıştır. Beyin lizat hazırlanmış ve proteinler immobilize rekombinant proteinleri ile inkübe edildi. Bağlanmamış fraksiyonu lizis tamponu ile yıkandı. Proteinler kütle spektrometresi ile tespit edilmiştir. <img src="/files/ftp_upload/1178/Fig%204%20Singh%20et%20al.jpg" alt="" /> Şekil 4 P2X2 reseptörlerinin C-terminus bağlayıcı ortakların belirlenmesi. SYPRO boyanan jel C-terminalindeki GST (mavi kutu) ile kaynaşmış reseptörleri ile etkileşim varsayılan proteinlerin bir spektrum gösteren. Kontroller, yalnız GST tek başına (sarı kutu) ve glutatyon sepharose boncuk şeritleri de gösterilir. Oklar, daha fazla analiz için kütle spektrometresi ile eksize edildi benzersiz gruplarından örnekler göstermektedir.

<ol><li>Hille, B. Ion channels of excitable membranes. , 3rd edition, Sinauer Associates Inc. Sunderland Massachusetts, USA. (2001).</li>
<li>Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+physiology+of+P2X+receptors+and+ATP+signalling+at+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Molecular physiology of P2X receptors and ATP signalling at synapses.</a> Nat Rev Neurosci. 2, 165-174 (2001).</li>
<li>Egan, T. M., Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+calcium+ions+to+P2X+channel+responses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Contribution of calcium ions to P2X channel responses.</a> J Neurosci. 24, 3413-3420 (2004).</li>
<li>Burnashev, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+permeability+of+ligand-gated+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">Calcium permeability of ligand-gated channels.</a> Cell Calcium. 24, 325-332 (1998).</li>
<li>Clapham, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Calcium signaling.</a> Cell. 131, 1047-1058 (2007).</li>
<li>Levitan, I. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signaling+protein+complexes+associated+with+neuronal+ion+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Signaling protein complexes associated with neuronal ion channels.</a> Nat Neurosci. 9, 305-310 (2006).</li>
<li>Khakh, B. S., North, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P2X+receptors+as+cell-surface+ATP+sensors+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">P2X receptors as cell-surface ATP sensors in health and disease.</a> Nature. 442, 527-532 (2006).</li>
<li>Roger, S., Pelegrin, P., Surprenant, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Facilitation+of+P2X7+receptor+currents+and+membrane+blebbing+via+constitutive+and+dynamic+calmodulin+binding%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Facilitation of P2X7 receptor currents and membrane blebbing via constitutive and dynamic calmodulin binding.</a> J Neurosci. 28, 6393-6401 (2008).</li>
<li>North, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+physiology+of+P2X+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Molecular physiology of P2X receptors.</a> Physiol Rev. 82, 1013-1067 (2002).</li>
<li>Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+union+of+pharmacology.+XXIV.+Current+status+of+the+nomenclature+and+properties+of+P2X+receptors+and+their+subunits.%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Rev%22%5BJournal%5D)">International union of pharmacology. XXIV. Current status of the nomenclature and properties of P2X receptors and their subunits.</a> Pharmacol Rev. 53, 107-118 (2001).</li>
<li>Young, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+shape%2C+architecture+and+size+of+P2X4+receptors+determined+using+fluorescence+resonance+energy+transfer+and+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Molecular shape, architecture and size of P2X4 receptors determined using fluorescence resonance energy transfer and electron microscopy.</a> J Biol Chem. 283, 26241-26251 (2008).</li>
<li>Edmondson, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+kinase+C+epsilon+signaling+complexes+include+metabolism-+and+transcription%2Ftranslation-related+proteins%3A+complimentary+separation+techniques+with+LC%2FMS%2FMS%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Protein kinase C epsilon signaling complexes include metabolism- and transcription/translation-related proteins: complimentary separation techniques with LC/MS/MS.</a> Mol Cell Proteomics. 1, 421-433 (2002).</li>
<li>Evans, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthosteric+and+allosteric+binding+sites+of+P2X+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Orthosteric and allosteric binding sites of P2X receptors.</a> Eur Biophys J. 38, 319-327 (2009).</li>
</ol>

İyon kanalları büyük bir integral membran proteinleri sınıfı. Onlar kendi elektrokimyasal gradyanlar aşağı seçici plazma zarından iyonların hareketi izin su dolu gözeneklerin içerir. İyon kanalları kapısı açık ve kapalı devletler arasında. Yolluk adım p2x ligand kapılı iyon kanalları halinde vericileri (örneğin ATP) tarafından tetiklenir, ya da diğer proteinler ile etkileşimler tarafından düzenlenmiş olabilir. Son on p2x reseptörler ATP 13 bağlama nasıl anlayışımızı bir artışa tanık olmuştur, ama p2x fonksiyo...

<table><tbody><tr><td>Asetonitril</td><td>Reaktif</td><td>JT Baker</td><td>9829-02</td><td></td></tr><tr><td>Akrilamid</td><td>Reaktif</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0156</td><td></td></tr><tr><td>Ampisilin</td><td>Reaktif</td><td>VWR international</td><td>VW1507-01</td><td></td></tr><tr><td>Amonyum bikarbonat</td><td>Reaktif</td><td>Fluka</td><td>09830</td><td></td></tr><tr><td>Amonyum persülfat (APS)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3678</td><td></td></tr><tr><td>Adenozin trifosfat (ATP)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7699</td><td></td></tr><tr><td>Bradford reaktifi</td><td>Reaktif</td><td>Bio-Rad</td><td>500-0006</td><td></td></tr><tr><td>Bromofenol mavisi</td><td>Reaktif</td><td>Fisher Scientific</td><td>B-392</td><td></td></tr><tr><td>Coomassie blue R-250</td><td>Reaktif</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>Sc-24972</td><td></td></tr><tr><td>Ditiyotritol (DTT)</td><td>Reaktif</td><td>EMD Millipore</td><td>3860</td><td></td></tr><tr><td>Etilendiamintetraasetik asit (EDTA)</td><td>Reaktif</td><td>VWR international</td><td>VW1474-01</td><td></td></tr><tr><td>Etilenglikol tetraasetik asit (EGTA)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E8145</td><td></td></tr><tr><td>Formik asit</td><td>Reaktif</td><td>EMD Millipore</td><td>11670-1</td><td></td></tr><tr><td>Glutatyon Sepharose 4B boncukları</td><td>Reaktif</td><td>GE Healthcare</td><td>17-5132-01</td><td></td></tr><tr><td>Hidroklorik asit (HCl)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H1758</td><td></td></tr><tr><td>İzopropil-beta-D-tiyogalaktopiranozid (IPTG)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>15502</td><td></td></tr><tr><td>İyodoasetamid</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I1149</td><td></td></tr><tr><td>Luria-Bertani (LB) Besiyeri</td><td>Reaktif</td><td>EMD Millipore</td><td>1.00547.5007</td><td></td></tr><tr><td>Leupeptin</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L8511</td><td></td></tr><tr><td>Lizozim</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>62971</td><td></td></tr><tr><td>Magnezyum sülfat (MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum klorür (NaCl)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3014</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum florür (NaF)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7920</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum ortovanadat (Na&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;VO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S6508</td><td></td></tr><tr><td>Nonidet P40</td><td>Reaktif</td><td>Fluka</td><td>74385</td><td></td></tr><tr><td>Fenilmetansülfonilflorür (PMSF)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7626</td><td></td></tr><tr><td>Proteaz inhibitör tableti</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8820</td><td></td></tr><tr><td>Protein standardı</td><td>Reaktif</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0305</td><td></td></tr><tr><td>Sarkozil</td><td>Reaktif</td><td>Acros Organics</td><td>61207</td><td></td></tr><tr><td>Vidalı kapaklı flakon</td><td>Ekipman</td><td>Agilent Technologies</td><td>5182-0866</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum dodesil sülfat</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L4509</td><td></td></tr><tr><td>SYPRO&amp;#174; Ruby protein jel boyası</td><td>Reaktif</td><td>Bio-Rad</td><td>170-3125</td><td></td></tr><tr><td>N,N,N&amp;rsquo;,N&amp;rsquo;-Tetrametiletilendiamin (TEMED)</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T9281</td><td></td></tr><tr><td>Tris baz</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1503</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin</td><td>Reaktif</td><td>Promega Corp.</td><td>V5111</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5927</td><td></td></tr><tr><td>Su</td><td>Reaktif</td><td>Burdick &amp;amp; Jackson</td><td>365-4</td><td></td></tr><tr><td>LTQ-Orbitrap tandem kütle spektrometri cihazı</td><td>Ekipman</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nano Sıvı Kromatografi Sistemi</td><td>Ekipman</td><td>Eksigent</td><td></td><td></td></tr><tr><td>B-Merkapto&amp;#8211;etanol</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6250</td><td></td></tr><tr><td>Gliserol</td><td></td><td>EMD Millipore</td><td>GX0185-6</td><td></td></tr></tbody></table>

p2x2 ligandla gated katyon kanalları ile etkileşimde proteinler tanımlamak için proteomik

Proteomics to Identify Proteins Interacting with P2X2 Ligand-Gated Cation Channels

Ligand kapılı iyon kanalları sinir sistemi 1 sinaptik iletişim yatar. Memelilerde ligand kapılı kanallar üç aile vardır: CYS döngü, glutamat-kapılı ve p2x reseptör kanal 2. Her iki durumda da verici bağlayıcı ionlar elektrokimyasal gradyanlar aşağı akan bir gözenek açılması yol açar. Birçok ligand kapılı kanallar da downstream kanal açma süresini aşamaz rolleri sinyalizasyon 5 (örneğin gen regülasyonu) kalsiyum iyonları 3, 4, geçirgen. Böylece ligand kapılı kanallar gün birkaç milisaniye arasında değişen geniş bir zaman ölçekleri üzerinde sinyal. Ligand kapılı iyon kanalları kendilerini proteinler tarafından düzenlenir anlamak için gerekli olduğunu ve bu proteinlerin nasıl bu önemli rolleri dikkate alındığında sinyal ayar olabilir. Son çalışmalar, pek çok, hepsi değilse de, kanal protein sinyalizasyon kompleksleri 6 parçası olabilir ki öneririz . Bu yazıda, P2X2 reseptör sitozolik etki C-terminal yönlerine bağlayan proteinleri tespit etmek için nasıl. P2x reseptörler ATP açılıp kapanan katyon kanalları ve yedi alt birimden (P2X1-P2X7) oluşur. P2x reseptörler eksitatör sinaptik iletim ve nörotransmiter sürüm 7 presinaptik kolaylaştırma arabuluculuk beyin, yaygın olarak ifade edilir. P2x reseptörleri heyecanlanır ve non-Uyarılabilir hücrelerinde bulundu ve nöronal sinyalizasyon, inflamasyon ve kardiyovasküler fonksiyon 8 kilit roller arabuluculuk. P2X2 reseptörler, sinir sistemi 9 bol ve bu çalışmanın odak vardır . Her p2x altbirim ekstraselüler bölge 7 ve hücre içi N ve C Termini (Şekil 1a) 7 ile ayrılmış iki membran kapsayan kesimleri (TM1 ve TM2) sahip olduğu düşünülmektedir. P2x alt birimden 10 (P2X1-P2X7), amino asit düzeyi 11% 30-50 dizisi homoloji göstermektedir . P2x reseptörleri iyonotropik reseptörler arasında basit stokiyometri sadece üç alt birimden içerir. P2X2 C-terminalindeki 120 amino asitler oluşur (Şekil 1b) ve P2X2 reseptör sinyal komplekslerinin parçası olabileceği hipotezini destekleyen birkaç protein yerleştirme konsensüs siteleri içerir. Ancak, çeşitli işlevleri P2X2 reseptörleri 9 C-terminalindeki atfedilmiş olmasına rağmen hiçbir çalışma moleküler ortakları açıklanan bu proteinin hücre içi tarafında tam uzunlukta C-terminalindeki üzerinden çift. Bu yöntem kağıt tam uzunlukta C-terminalindeki P2X2 reseptörleri ile etkileşen proteinleri tespit etmek için bir proteomik yaklaşım açıklar.

Biz, ATP-kapılı P2X2 reseptörlerinin tam uzunlukta C terminus bağlamak beyin proteinleri tespit etmek için basit bir protokol açıklar. Bu yaklaşımın uzantısı ve sistematik bir uygulama tüm p2x reseptörlerine p2x reseptör sinyal daha iyi anlaşılmasına yol açması bekleniyor.

P2X2 Ligandla Gated Katyon Kanalları ile etkileşimde Proteinler tanımlamak için Proteomik

Ligand kapılı iyon kanalları, sinir sistemindeki sinaptik iletişimin temelini oluşturur1. Memelilerde üç ligand kapılı kanal ailesi bulunur: cys ...

Bu prosedür, bakteriyel lizisin ardından GST füzyon proteini olarak tasarlanan Purinik P2X reseptörünün veya P2X2'nin rekombinant C terminusinin aşırı ekspresyonu ile başlar. Saflaştırılmış protein, glutatyon sefaroz 4B boncukları ile inkübe edilir ve konsantrasyon Bradford yöntemi kullanılarak belirlenir. Ardından, saflaştırılmış sıçan beyin lizatındaki proteinler, glutatyon sefaroz boncuklarına bağlanmış P2X2 reseptörlerinin C terminali ile inkübe edilir; P2X2 reseptörlerinin C terminaline bağlanan protein kompleksleri SDS-PAGE jel elektroforezi ve eksizyon yoluyla izole edilir ve kütle spektrometrisi ile tanımlanır.Merhaba, ben University of California Los Angeles Fizyoloji Bölümü JIT K laboratuvarından Harpring. Merhaba, ben University of California Los Angeles Anesteziyoloji Bölümü Tom Vka laboratuvarından Sarah Walburn. Bugün size P2X2 reseptörlerinin CTS'sini izole etme ve saflaştırma prosedürünü göstereceğiz.Kırmızı beyindeki girdileri tanımlamak için bu proteinleri kullanıyoruz ve laboratuvarımızda, P2X2 reseptörleri üzerindeki fonksiyonel sonuçları incelemek için bu proteinlerden yararlanıyoruz. Öyleyse başlayalım. P2X2 reseptörünün sitozolik alanı N ve C terminallerinden oluşur.P2X2 reseptörünün C termini, pull-down deneyi için yem olarak kullanılacaktır; bu etkileşim çalışmasında kullanılan P2X2 reseptörünün C terminus dizisi de gösterilmiştir. P2X2 reseptörlerinin tam uzunluktaki C terminusini eksprese etmek için, reseptörün C terminusine ait 353 ile 472 arasındaki kalıntıların kaplama dizisini bir pGEX-4 NT1 plazmidine entegre etmek amacıyla konvansiyonel moleküler biyoloji tekniklerini kullanın.Ardından, rekombinant plazmit ekspresyon için E. coli BBL 21 suşuna transforme edilir. Rekombinant plazmit içeren bakteriler, 37 °C'de LB besiyerinde kültüre edilir. Kültürün 600 nm'deki optik yoğunluğu 0,6 ile 0,8 arasına geldiğinde.Kültürü bir milimolar IPTG ile indükleyin ve 37 °C'de üç saat boyunca inkübe edin. Üç saatlik inkübasyon sona erdiğinde, kültürden bir mililitrelik bir alikot alın ve daha sonraki analizler için saklayın. Kültürün geri kalanını 4 °C'de 15 dakika boyunca 5.000 ×g'de santrifüj edin; santrifüj sonrası süpernatantı uzaklaştırın ve peleti 20 mililitre salin tris EDTA tamponunda yeniden süspande edin, ardından yeniden süspande edilen peleti 50 mililitrelik bir falcon tüpüne aktarın.Süspansiyon, yarı kuru peleti toplamak için şimdi 5,000 Gs'de 15 dakika boyunca santrifüj edilmeli ve elde edilen pelet gece boyunca -70 °C'de dondurulmalıdır. Ertesi gün, dondurulmuş pelet 40 mL buz gibi soğuk lizis tamponu içinde yeniden süspande edilmeli ve yeniden süspande edilen pelet buz üzerinde beklerken 30 dakika boyunca buzda tutulmalıdır. Üç mL glutatyon sefaroz 4B boncuğu hazırlayın.Önce boncukları 20 milliliters PBS ve 20 milliliters TPBS ile yıkayın. Ardından, boncukları saf PBS ile yıkayın ve 1 milliliter PBS içinde yeniden süspande edin. Lizis tamponundaki bakteri süspansiyonuna şimdi sıvı azot ile dondurma-çözme işlemi uygulayın.Dondurulmuş örnek, çözülmesi için buz üzerinde inkübe edildi ve tekrar sıvı azota aktarıldı. Bu adım üç kez tekrarlandı. Ardından, dondur-çöz süspansiyonuna buz üzerinde sonikasyon uygulayın.Sonikasyondan sonra, bakteriyel süspansiyonu %4 tritton X 110, millimolar magnezyum sülfat ve iki millimolar ATP içeren bir çözelti ile buz üzerinde 30 dakika inkübe edin. Ardından, lizatı 4 °C'de 15 dakika boyunca 20,000 G'de santrifüjleyerek çöktürün ve süpernatantı saklayın. Peleti atmadan önce, sitozol ve membranlardaki proteinleri analiz etmek için süpernatant ile birlikte peletten küçük bir örnek alın.Süpernatantı boncuklarla bir saat boyunca veya gece boyunca 4 °C'de inkübe edin. İnkübasyonun ardından, boncukları 500 G'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Süpernatantın çoğunu atın, ancak bağlanmamış protein fraksiyonunu temsil etmesi için küçük bir örneği saklayın. Peletlenmiş boncukları, her yıkamanın bir kısmını yıkama kontrolleri için saklayarak 25 mL TPBS ile beş kez yıkayın.Son olarak, boncukları ve PBS'yi %50 ağırlık/hacim oranında bir bulamaç haline gelecek şekilde yeniden süspande edin ve dört derece Celsius'ta saklayın. Protein konsantrasyonu, üretici talimatlarına uygun olarak Bradford testi kullanılarak tahmin edilebilir ve 500 micrograms per milliliter olması beklenir. Tüm beyin lizatlarından P two X two CT GST'nin bağlanma ortaklarını belirlemek için, kontrol olarak glutatyon kaplı boncuklar üzerine immobilize edilmiş CT GST yem olarak kullanılarak bir pull down deneyi gerçekleştirilir.Burada bundan sonra GST Knoll Rat Brainin lizatı olarak adlandırılacak olan, boncuklara bağlanmış tek başına GST'yi yem olarak kullanın. GST Füzyon Proteini Bağlanma analizi, standart bir protokol ve lizis tamponu kullanılarak hazırlanmış ve protein konsantrasyonu Bradford analizi ile 15 mg/mL olarak tahmin edilmiştir. Analize başlamadan önce.Lizat GST boncuklarıyla inkübe edildikten sonra, 30 µL GST boncuklarıyla dört °C'de bir saat boyunca inkübe ederek çözülmüş beyin lizatını ön temizleme işleminden geçirin. Boncukları dört °C'de 10 dakika boyunca 1000 ×g'de çöktürün. Süpernatantı saklayın ve bunun küçük bir hacmini kontrol olarak ayırın.Şimdi, ön temizliği yapılmış çözünür proteinden 100 mikrogram içermesi gereken lizat hacmini hesaplayın ve bu hacimdeki lizatı 10 mikrogram GST bağlı boncuklar ve 10 mikrogram P iki X iki CT GST bağlı boncuklar ile birleştirin. Lizis tamponu kullanarak hacmi 200 mikrolitreye tamamlayın. Lizatı boncuklarla birlikte bir rotatörde, dört derece santigrat sıcaklıkta gece boyunca inkübe edin.Ertesi gün, boncukları 1000 Gs'de beş dakika boyunca santrifüjleyerek çöktürün ve süpernatanı atın. Boncukları bir mililitre lizis tamponu ile üç kez yıkayın. Ardından boncuklara modifiye edilmiş 50 mikrolitre lizis tamponu ekleyin ve boncukları bu tampon içinde beş dakika boyunca kaynatın.Kaynatılmış örnekleri 5.000 GS'de beş dakika boyunca santrifüjleyin ve şüpheli olan örneği %10 SDS-PAGE jelinde yürütün. P iki X iki CT ilişkili proteinleri, GST Nola yemi kullanılarak geri kazanılanlarla karşılaştırın. Analizin son kritik adımı, ayrıştırılmış proteinlerin bu noktadan itibaren kütle spektrometrisi ile tanımlanması için jelden çıkarılmasıdır.Keratin kontaminasyonunu azaltmak için süreç boyunca toz bulunmaması kritik öneme sahiptir. İşleme, bantları temiz bir jiletle jelden keserek başlayın. Ardından bantları üç daha küçük bölüme ayırın ve her bir bandı, GST'deki jel bölgelerine karşılık gelen etiketli bir mikrosantrifüj tüpüne yerleştirin.Bant boyanmasına bakılmaksızın, pull-down yapılmayan şerit de aynı şekilde kesilmelidir. Boyama hassasiyet seviyesinin altındaki proteinlerin gözden kaçmadığından emin olmak için jel parçalarını 200 µL 50 mM amonyum bikarbonat ve %50 v/v asetonitril ile karıştırın ve ardından tüpleri oda sıcaklığında 15 dakika boyunca vorteksleyin.Vorteksleme işleminden sonra yıkama solüsyonunu uzaklaştırın ve işlemi tekrarlayın. Son yıkama solüsyonunu uzaklaştırın ve 200 µL asetonitril ekleyerek jel parçalarınıye dehidre edin. Jel parçaları büzülmeli ve rengi opak hale gelmelidir.İki dakika içinde asetonitril'i uzaklaştırın ve jel parçalarını kurutun. 10 dakika boyunca speed vac kullanıldıktan sonra, kuru jel parçaları taze hazırlanmış 10 millimolar DTT 10 milli molar TEP çözeltisinde inkübe edilir. Genellikle yaklaşık 30 microliters olan çözelti hacmi, jel parçalarını tamamen kapatacak kadar yeterli olmalıdır.Jel parçalarının 56 °C'lik bir ısı bloğunda, çözelti içerisinde 30 dakika boyunca indirgenmesine izin verin. Ardından, DTT TEP çözeltisini uzaklaştırın ve yerine 100 µL 500 mM amonyum bikarbonat içeren %50 Asetonitril yıkama çözeltisi ekleyin; 10 dakika boyunca vortekslenmesini sağlayın. Vorteksleme işleminden sonra amonyum bikarbonat yıkama çözeltisini aspire ederek çekin ve jel parçalarınıyelehidrate etmek için yerine 200 µL Asetonitril ekleyin. Jel parçaları iki dakika içinde küçülmeli ve rengi opaklaşmalıdır.Alkilasyondan sonra, herhangi bir serbest sülfhidraziti gidermek için asetonitrilin yerine taze hazırlanmış 100 µL 100 mM iodoacetamide çözeltisi ekleyin. Bu karışımı oda sıcaklığında, karanlıkta 25 dakika boyunca inkübe edin. İnkübasyonun ardından, iodoacetamide çözeltisini uzaklaştırın ve jel parçalarını 200 µL 50 mM amonyum bikarbonat ve %50 asetonitril ile beş dakika boyunca vorteksleyerek yıkayın.Bu yıkama adımı bir kez daha tekrarlanır. Son yıkama solüsyonu uzaklaştırılır ve jel parçaları 200 µL asetonitril içinde 10 dakika inkübe edilir. Asetonitril uzaklaştırılır ve örnekler speed vac ile kurutulur.Bu adımda, jel parçaları tripsin sindirimi için hazırdır. Yaklaşık 20 nanograms per microliter çalışma konsantrasyonundaki tripsin çözeltisinden 30 microliters uygulayın ve 10 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin.Jel parçaları iyice şişmelidir. Fazla tripsin solüsyonu uzaklaştırılır ve rehidrate edilmiş jel partikülleri 30 µL 50 mM amonyum bikarbonat içerisine daldırılır. Sindirimin 37 °C'de 12 ila 16 saat boyunca gerçekleşmesine izin verilir; ardından tripsini devre dışı bırakmak ve sindirimi durdurmak için 5 µL %5 formik asit kullanılarak uzun süreli sindirim işlemi tamamlanır.Ardından tüpleri 15 dakika boyunca vorteksleyin; vorteksleme işleminden sonra, sıvıyı tüpün dibine indirmek için tüpleri kısa süreliğine santrifüjleyin ve sindirilmiş peptidleri içeren bu çözeltiyi temiz, etiketlenmiş bir yarım mililitrelik tüpe aktarın. Sonrasında, jel parçalarını %50 asetonitril içerisinde %0,1 formik asit içeren yaklaşık 30 µL ekstraksiyon çözeltisi ile kaplayın ve 10 ila 15 dakika boyunca vorteksleyin. Bu ekstraksiyon çözeltisini yeni yarım mililitrelik tüpe ekleyin.Bu adımı tekrarlayın. Ekstraksiyon çözeltisini yeni bir yarım mililitrelik tüpe aktarın; gece boyu süren sindirim çözeltisini ve iki ekstraksiyon çözeltisini içeren yarım mililitrelik tüp, speed vac cihazında yaklaşık 30 µL'ye indirgenir. Bu peptit çözeltisi artık L-C-M-S-M-S ile analiz için hazırdır.Proteinleri C 18 ters faz kolonu kullanılarak ters faz nano LC ile ayırın; spektrumları, MS taramaları için orbitrap ve MS'den MS'ye taramalar için LTQ kullanılan veri bağımlı modda edinin. Verileri, Bioworks yazılım paketine entegre edilmiş sequester algoritmasını kullanarak sıçan IPI veritabanına karşı tarayarak proteinleri tanımlayın ve ardından yalnızca dört örnek tekrarının her birinde mevcut olan ve GST sırasında bulunmayan proteinlerin spektrumlarını manuel olarak inceleyin. Herhangi bir çöktürme işlemi ileri analizler için dikkate alınmamalıdır.Burada, P2X2 reseptörlerinin C terminusu ile etkileşime girdiği varsayılan proteinlerin spektrumunu gösteren Cipro boyama jeli yer almaktadır. Mavi kutu ile belirtilenler GST ile füze edilmiş proteinlerdir; sarı kutu ile belirtilenler ise sadece GST ve glutatyon S-transferaz kontrol şeritleridir. Sadece sferopsinler de gösterilmiştir.Oklar, kütle spektrometresi ile daha fazla analiz edilmek üzere kesilen benzersiz bant örneklerini göstermektedir. Size P2X2 reseptörlerinin CTO'larının nasıl eksprese edileceğini ve saflaştırılacağını göstermiş olduk. Ayrıca, pull-down testinin nasıl gerçekleştirileceğini ve protein etkileşimcilerinin nasıl tanımlanacağını da göstermiş olduk.Bu prosedürü uygularken, örneklerinizdeki keratin kontaminasyonunu azaltmak için eldiven ve bone takmanız gerektiğini unutmamak önemlidir. Hepsi bu kadar. İzlediğiniz için teşekkürler, deneylerinizde başarılar dileriz.

proteomics-to-identify-proteins-interacting-with-p2x2-ligand-gated

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Hücre geçirgen çapraz bağlayıcı DSP [dithiobis-(succinimidyl propiyonat)] stabilize geçici ve labil...

Dayanıksız Multi-protein Kompleksleri izolasyonu In vivo Kontrollü Hücresel Çapraz Bağlama ve immuno-manyetik Afinite Kromatografisi

Bir yaklaşım, biyokimyasal zar proteinlerinin in vivo protein-protein etkileşimleri (PPI) tanımlamak için tarif edilmektedir. Yöntem, protein çapraz-bağlama, afinite arıtma ve kütle spektrometrisi birleştirir, ve hemen hemen herhangi bir hücre tipi ya da organizma için uyarlanabilir. Bu yaklaşımla, geçici PPI bile tespiti mümkün olur.

Membran-OMURGA: Membran Proteinleri protein-protein etkileşimleri belirlemek için bir Biyokimyasal Aracı In Vivo

Optik biosensor teknikleri canlı hücrelerin içindeki plazma zarının hemen yakınındaki kütlesinde değişiklikleri algılar ve bir tek hücre ve hücre popülasyonları hem de hücresel yanıtları takip izin verebilir. Bu protokol, bu yaklaşımı kullanarak sağlam hücrelerdeki G-protein bağlı reseptörler ile potasyum kanallarının modülasyonu algılanmasını anlatacağız.

G-protein bağlı reseptörler ile Potasyum kanallarının modülasyonunu Algılama Label içermeyen optik Biyosensör kullanımı

Proteinler birbirleri ile etkileşim halindedir ve bu etkileşimler fonksiyonlarını büyük ölçüde belirler. Protein etkileşim ortakları, dihidrofolat redüktaz protein fragmanı tamamlama testine (DHFR-PCA) dayalı bir maya uygunluk testi kullanılarak in vivo olarak yüksek verimli olarak tanımlanabilir.

Yaşayan Hücrelerde Protein-fragmanı tamamlama Assay (PCA) ile genom Protein-protein etkileşimi Eleme

Açıklanan hücresel tahlil CXC Kemokin reseptör 4 (CXCR4) tanımlanması için tasarlanmıştır-inhibe veya teşvik, rekabetçi veya allosterically, CXCR4 etkinleştirme tarafından başlatılan intrasellüler Ca2 + serbest etkileşen aracıları.

Bir Kinetik Floresans tabanlı Ca2 + seferberlik tahlil G Protein birleştiğinde reseptör agonistleri, antagonistleri ve Allosteric modülatörler tanımlamak için

Burada, içinde yüksek üretilen iş ekran ekstraselüler protein microarrays kimliği roman reseptör-ligand etkileşimleri için bir iletişim kuralına mevcut. Ayrıca protein-microbead kompleksleri kullanarak geçici protein-protein etkileşimlerinin algılama geliştirmek için bir yöntem açıklar.

Hücre dışı Protein Mikroarray teknoloji yüksek işlem hacmi düşük benzeşme reseptör-Ligand etkileşimleri algılanması için

Tek hücreli duyarlılığı sağlayarak, gerçek zamanlı Akış Sitometresi multimodal reseptör işlevleri canlı kültürlerin ölçmek için benzersiz olarak uygundur. Yetişkin nöral progenitör hücreler kullanarak, P2X7 reseptör işlevi tarafından elde kalsiyum göstergesi boya, transmembran gözenek oluşumu etidyum bromür alımı ve floresan lateks boncuk kullanarak fagositoz ile kalsiyum akını ile değerlendirildi.

Kalsiyum akını, gözenek oluşumu ve P2X7 reseptörleri yetişkin nöral progenitör hücreler tarafından fagositoz araştırmak için gerçek zamanlı canlı hücre Akış Sitometresi

Bu protokol, hücresel bir ortamda reseptörlere gerçek zamanlı olarak adenin nükleotid bağlanmasını ölçmek için bir yöntem sunar. Bağlanma, trinitrofenil nükleotid türevleri ile kanonik olmayan, floresan amino asit ile etiketlenmiş protein arasındaki Förster rezonans enerji transferi (FRET) olarak ölçülür.

Sağlam, fonksiyonel membran proteinlerine bağlanan nükleotidin gerçek zamanlı olarak ölçülmesi

MRGPRX2 reseptörü ile mast hücrelerini aktive edebilecek kısa peptitlerden oluşan bir kütüphane oluşturma teknikleri açıklanmıştır. İlişkili teknikler kolay, ucuzdur ve diğer hücre reseptörlerine genişletilebilir.

Tasarlanmış HEK Hücrelerini Kullanarak MRGPRX2'i Etkinleştiren Peptitlerin Taranır

Burada, kimyasal problar ve kütle spektrometrisi kullanarak doğal hücrelerden ve dokulardan hastalığa özgü protein-protein etkileşimlerinin yakalanmasını ve tanımlanmasını sağlamak için bir protokol sunuyoruz. Ortaya çıkan etkileşim veri kümeleri, dinamik ağ işlev bozukluklarını ve hastalıkla bağlantılı yol değişikliklerini ortaya çıkarmak için özel bir web tabanlı platform aracılığıyla analiz edilir.

Hastalıkta İşlevsel Olmayan Protein-Protein Etkileşimlerinin Haritalanması

Doğrudan LNCRNA-protein etkileşimlerini tanımlamak için UV tabanlı bir ChIRP yöntemi.

Kültürlenmiş Hücrelerden Fare Testisine Doğrudan Etkileşime Giren Proteinlerin Doğrulanabilir Tanımlanması İçin UV Tabanlı ChIRP Yöntemi

Öğrenin P2X2 reseptörlerinin C terminaliyle etkileşen beyin proteinlerini izole etmek için GST çekme deneyi ve kütle spektrometrisi yöntemlerini. Bu protokol nörolojik sinyal yollarını anlamaya katkı sağlar.

P2X2 Ligandla Gated Katyon Kanalları ile etkileşimde Proteinler tanımlamak için Proteomik

Daha fazla video keşfet