Name: Floresan üzerinden F-aktin Dynamics Canlı Hücre Görüntüleme speckle Mikroskopi (FSM) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-08-05T19:00:00.000+00:00
Duration: 19 min 16 s
Description: Öğrenin, canlı hücrelerde sitoskeletal protein dinamiklerini floresan speckle mikroskopi ile incelemeyi. Mikroenjeksiyon ve görüntüleme odası kurulumu, fotobölmeyi azaltarak nicel ölçümler sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

QFSM gelişimi, Ulusal Sağlık Enstitüsü, hibe u01 GM06230 tarafından finanse edilmektedir.

Bölüm 1: FSM için floresan etiketli aktin Alınması Gerekli malzemeler: aktin, fluorofor (Alexa, X-rodamin önerilir) saflaştırılmış. G-tampon, ultrasantrifüjdeki <ol><li> , Iyi FSM filmleri satın bir temel bileşeni seçtiğiniz fluorofor aktin uygun etiketleme (ya da diğer hücre iskeleti proteinleri) gerektirir. Biz Alexa fluorophores (488, 568 dalga boylarında) ve aktin yüzeyinde lizin kalıntılarının maruz hedef X-rodamin succinimidyl ester türevleri kullanmanızı öneririz. </li><li> Fluorofor ve uygun dalga boyu seçerken, floresan etiketi yerleştirmek için (cıva ark lambası ve / veya lazerler) mikroskop kurulum uygun filtreler (eksitasyon ve emisyon) ve aydınlatıcı olduğundan emin olun. Biz oto-floresans ve foto-hasarı etkilerini en aza indirmek ve GFP-konjugatları ile uyumluluğu sağlamak için turuncu, kırmızı dalga boyları (560-630 nm) dalga boylarında seçilmesi tavsiye ederiz. </li><li> Saf aktin Sıçan veya Tavuk ait kas dokusu çıkarılan, ancak kas aseton tozu uzun bir ekstraksiyon prosedürü gerektirir. Kas aseton tozu Invitrogen satın alınabilir. Bu protokol etiketleme prosedürü tartışılan, ama burada [1] bulunabilir </li><li> Alternatif olarak, etiketli aktin proteinler Sitoiskelet Inc ve Invitrogen dahil olmak üzere çeşitli satıcılardan satın alabilirsiniz. Özel etiketleme hizmetleri Invitrogen üzerinden de mevcuttur. Saflaştırılmış, non-etiketli aktin (kas ve kasa invaze olmamış aktin) Sitoiskelet Inc satın alınabilir </li><li> Kendi etiketli aktin satın alma ya da hazırlanmak için karar olsun, etiketleme oranı aktinin monomer başına 0,3 ila 0,7 boyalar etrafında bir yerde olduğundan emin olmak istiyorum. Etiketleme oranı çok yüksek, çok düşük bir etiketleme oranı yoksul görünümlü benekler (gürültü düşük sinyal) yol ise, aktin filament ciro kinetiği (ve ilişkili proteinler bağlanarak) etkileyebilir ve mikroenjeksiyon sorunları (aşağıya bakın) neden olabilir. Bu iyi görüntü speckle almak için kritik bir faktör. </li><li> Uzun süreli depolama önce, etiketli aktin çözüm 75.000 az iplik tarafından açıklığa kavuşturulmalıdır - 4 santigrat derece 20 dakika 80.000 xg. Etiketli aktin G-tampon çözelti depolanır ve -80 santigrat derece tutulmalıdır. 2 uL alikotları hazırlanması çok tekrarlanan (çözünmez agregatların yol açar) donma-çözülme zararlı etkilerini azaltmak için tavsiye edilir. (Fluorophores, photobleaching olacak), doğrudan ışığa etiketli aktin çözüm maruz kaçının. Biz uzun süreli depolama için opak mikrosantrifüj tüpleri kullanmanızı öneririz. </li></ol> Bölüm 2: Hücreler ve Mikroenjeksiyon etiketli aktin hazırlanması Gerekli malzemeler: mikroenjeksiyon iğneler, mikroenjektör, microloaders, prewarmed hücre medya, enjeksiyon tampon, buz kovası, mikroskobu (faz halka, 40X faz kontrast hedefi, transjector, iğne çektirmesi, mikromanipülatör) <ol><li> Birçok hücre tipleri için uygun FSM, ancak iyi görüntü speckle almak mikroenjeksiyon işlemi başarısını doğrudan bağlıdır. FSM hücreleri seçerken, hücreler (&gt; 50 um çapında büyük olmalı), yaymak gerekir, kaplama, ve yüzeylerde (veya plastik doku kültürü yemekleri) doğal yapışık. Aynı zamanda hücrenin sitoplazmada çekirdeğinde daha büyük bir alanı kaplar yardımcı olur. Söz konusu kriterlere hücreler mikroenjeksiyon için uygun olduğundan emin olun. Başarılı aday hücre hatları (ancak bunlarla sınırlı değildir) PtK1 [2,3], newt akciğer hücreleri [4] ve Aplysia nöronlar [3]. </li><li> Asitle yıkanmış; Hücreler kare cam lamelleri (hayır 1-1/2 22 x 22 mm) kaplama olmalıdır. Standart substrat kaplama lamel uygulanabilir ve mikroenjeksiyon etkilemez. </li><li> Mikroenjeksiyon iğneler doğru seçimi ucu açılış büyüklüğüne bağlıdır. Genellikle, delik boyutları boyutu çok büyük 3 0.5 um um. Ancak, biz bu aktin enjeksiyon 0,5 ila 1 um arasında optimal bir açılış boyutu gerektirir tavsiye ederiz. Tıkanma sorunları sürekli karşılaşılan, büyük delik boyutları monomerik teslim yanı sıra istenmeyen polimerize aktin filamentler barındırabilir. Mikroenjeksiyon iğneler femtotip mikroenjeksiyon iğne yapmak Eppendorf sistemleri de dahil olmak üzere çeşitli satıcılar aracılığıyla satın alınabilir. Alternatif olarak eğer ticari bir iğne çektirmenin, cam mikroenjeksiyon tüplerin Sutter satın alınan ve şartnameye çekilir. Yeni başlayanlar için, biz 10-20 çekti iğne enjeksiyon işlemine başlamadan önce taraftan olmasını öneriyoruz. </li><li> Aktin ideal enjeksiyon konsantrasyon &#39;(iğne yüklü aktin final konsantrasyon) ug / ul 1,0 - 0,5 arasında aktin monomeri boya,% 40 etiketleme oranı dayalı. Aktinin Alt etiketleme oranı daha yüksek konsantrasyonlarda (1-3 ug / ul) enjekte edilerek telafi edilebilir. Ancak, iğne tıkanma frekansarttırılabilir. Bu, kısmen daha büyük delikleri olan iğneler kullanılarak hafifletilebilir olabilir. Aktin stok konsantrasyonu buz enjeksiyon tampon ekleyerek sulandırılmış olabilir. Buz gibi soğuk ddH2O da hızlı enjeksiyon için sulandırmak için kullanılabilir. Bu noktada tüm çalışma çözümleri buz üzerinde tutulmalıdır. </li><li> Yük 0.5 - 1.0 uL mikroenjektör (dar göstergesi - Hamilton) kullanarak aktin çözüm, ya da alternatif bir Microloader pipet kullanarak. </li><li> Dikkatli bir şekilde, yavaşça çözüm serbest bırakarak, aktin çözüm dağıtmak. Kabarcıklar kaçınılmalıdır, ancak kabarcık çevresindeki aşırı sıvı alarak kolayca silinebilir. </li><li> Aktin çözüm iğne ucu tamamen dinlenme olduğundan emin olun. Her yerde iğne kılcal birlikte aşırı çözüm enjeksiyon akışını bozabilir. </li><li> Şimdi dikkatli bir şekilde enjektör sahibine, iğne ucu ile temas kaçınarak, iğne takmak. Iğne mikroskop sahne tabanına 35-50 derecelik bir açı yapar, böylece tutucu yerleştirin. Alt açıları tercih edilmektedir. </li><li> Ancak yüzey hücreleri banyo medya tatili kadar iğne ucu indirin. </li><li> Şimdi iğne ucu (düşürmeden) doğrudan hedefi merkezi üzerinde duracak şekilde yerleştirin. Iğne ucu hedefi ile uyumlu ise, göz merceği ile parlak bir hale göreceksiniz. Bu iğne ucu sonu. Yavaş yavaş (manipülatör kullanarak) iğne yan tarafında hareketli hale bulmak daha iyi yardımcı olabilir. </li><li> Mikroskop z odak hücreleri net görüntü kadar ayarlayın. Şimdi, nihayet içine yakınsak iğne ucu kadar hale yavaş yavaş daraltır kadar yavaş yavaş ucu alt odaklama (z konum) aynı anda kontrol etmek gerekecektir. Aramak için bir ek özellik iğne mili, doğrusal gölge. Iğne düşürülmesi yavaş yavaş iğne mili tanımlayabilirsiniz. İğne ve hücrelerin sonuna doğru yapıldığı zaman hem de net bir görüntü olmalıdır. Faz halka hafif ayarı, kontrastı artırmak için gerekli olabilir. </li><li> Gezinirken, iğne ucu ve iğne ucunun kırılmasını önleyen hücreleri yukarıda olduğundan emin olun. </li><li> Enjekte hücreleri seçerken, hücreleri serbest kenarları iğne ucu dönük olmalıdır. Bu paralel çalışan daha iğne ucu yerine, bir araya gelecek (çekirdeğin en ince noktasına öncü bulunduğu kalın noktası) hücre azalan eğim sağlayacaktır. </li><li> Iğne basıncı 0,3 ila 0,8 psi ayarlanmış olmalıdır. Aktin çözüm sürekli bir akış içinde sabit bir basınç uygulanan neden olacaktır. </li><li> Ucu çekirdeği (perinükleer bölge, hücre çekirdeği doğrudan aşağıda kalın bir kısmı) bu yüzden bir hücre enjekte etmeye karar verdikten sonra, iğne pozisyonu. </li><li> Yavaş yavaş daha düşük, ve iğne ucu, iğne ucu zarı delinir kadar, aşamalı olarak daha düşük membran karartıcı kadar pozisyonunu yeniden ayarlamak. Iğne tam zarı delinir varsa, bu fark, artık hücre dokunuyor kadar iğne yükseltmek gördüğünüz gibi, hücrenin en kısa sürede, daha parlak görünecektir. Gerçek piercing ve enjekte süreci 0,5-2 saniye sürecektir. </li><li> Doğru yapıldığı zaman çok enjeksiyon hücre kenar hızlı retraksiyonu sonucu ise, hücre şekli değişmeden görünecektir ve bazı durumlarda aslında hücre patlayabilir göreceksiniz. </li><li> (Parlak olmaz) microinjecting zaman hücre değişiklikleri göremiyorsanız, iğne ucu kapalı olabilir. &#39;Temiz&#39; düğmesine transjector üzerinde varsa basarak test edebilirsiniz. Açarsanız, bu göz mercekleri ile görülebilir sabit basınç akış önemli ölçüde artacak - dalgalanmalar ve yakındaki enkaz dispersiyon görülebileceği gibi görünecektir. </li><li> Eğer iğne ucu kapalı, böylece ucunun sonuna neden, yeni bir mikroenjeksiyon iğne veya iğne ucu, iğne presler cam lamel karşı ucu kadar iğne hafifçe düşürerek kırmaya teşebbüs eklemek için seçebilirsiniz kırılmasına neden olabilir. Kırılması alan iğne ucu (iğne bir noktaya yakınsama başlar bölümü) alanında 1 / 5 inci daha fazla olmalıdır. </li><li> Her mikroenjeksiyon oturumu (hücre tipine göre değişir) 45 dakika - 20 daha fazla harcama, enjeksiyon ile devam edin. Genel bir kural olarak, kısa oturumları hücreleri üzerindeki stresi en aza indirmek için tavsiye edilir. </li><li> Mikroenjeksiyon bitirdikten sonra, taze prewarmed medya ekleyerek çanak hücre ortamı değiştirmek. Daha sonra hücreler 30 dakika önce bir kuluçka görüntüleme kurtarmak için izin verir. Bu aktin mevcut hücre iskeletinin ağ içine entegre etmek için ayrıca izin verecektir. </li></ol> Bölüm 3: Görüntüleme Odası Montajı Gerekli Malzeme: coverglass, çift taraflı bant, q-ipuçları, forseps, valap, kim, oxyrase, görüntüleme medya, jilet, P200 pi silin.pette, saf etanol <ol><li> Görüntüleme medya prewarming ve Oxyrase 15 uL kısım çözülme başlar. Işıktan ışığa oxyrase korumak için emin olun. Ayrıca, oxyrase photobleaching, etkileri büyük ölçüde azaltacaktır. </li><li> Sıcak plaka düşük sıcaklık ayarı, valap Prewarm. Bir dolgu olarak etkinliğini kaybedecektir valap ısınmasına / yanık bırakmayın. </li><li> Bir coverglass aşağı, temiz ve küçük bir enkaz kaldırmak için saf etanol ile doused bir kimwipe silin. </li><li> Temiz, düz bir yüzey bir platform olarak kullanarak, birbirlerinin üstüne çift taraflı bant iki eşit büyüklükte uzunlukları (2.5 cm uzunluğunda), Stack. Tamamen düz bir düzlem oluşturmak için herhangi bir hava kabarcığı basın. </li><li> Bir jilet kullanarak, her bir şerit genişliği 0.5 cm, böylece uzun ekseni boyunca iki düz şeritler kesti. </li><li> Forseps kullanarak, iki bant şeritler sizin coverglass merkezinde bir boşluk oluşturur, böylece sizin coverglass uzun kenarına her şerit yerleştirin. Cam ile güzel bir mühür bandı üzerine hafifçe bastırın. Bant şeritler coverglass ve lamel arasında yer tutucular olarak hareket edecektir. </li><li> Bir sonraki adıma başlamadan önce valap tamamen sıvılaştırılmış emin olun. </li><li> Medya her 500 uL oxyrase 15 ul ekleyerek, prewarmed görüntüleme medya al. </li><li> Katlama Kimwipes üçgen içine 3 sert kenarları oluşturmak için. Bu sopa bandı için kuru bir yüzey oluşturmak için kullanılır. </li><li> Inkübatör hücreler al. Kullanarak, forseps lamel bir köşe kapmak. Hızla bir kimwipe lamel (hücre yan dokuya dokunmadan, yukarı bakacak şekilde) yerleştirin ve yarı kuru bir yüzey oluşturmak için lamel iki karşıt taraf silmek için katlanmış kimwipe kullanmak (yüzey hücreleri geri kalanı). </li><li> Forseps kullanarak, kuru yüzeylerde iki bant şeritler hizalanmış olduğunu bu nedenle bir köşeye lamel kapmak ve coverglass üzerine yerleştirin. Kapalı iki taraf ve iki açık yarıklar var şimdi dikkat edin. Yakın bir açılış görüntüleme-medya-oxyrase çözüm Yavaşça pipet 200 uL. Önemlisi, herhangi bir hava kabarcıkları getirilmelidir. Böylece tam çözüm hücreleri çeker, çözüm kılcal güçleri tarafından yeni oluşturulan odasına kadar emdi olmalıdır. </li><li> Q-tip dab hızlı yapıştırmayın erimiş valap ile lamel dört köşe kullanma ve lamel stabilize. Farkedeceğiniz anında valap kurur (oda sıcaklığında saniye içinde). </li><li> Şimdi açık taraf (non-teyp tarafı) ile başlayan, bir Q-tip ve fırçalama inme taklit valap ince bir şerit yatıyordu. Kapalı taraf için de tekrarlayın. Böylece kaplama adımları tekrarlayarak mühür takviye valap ceket, yavaş yavaş oluşturmak. Valap lamel merkezinde açık bırakarak, kenarları kapalı olmalıdır. </li><li> Hücrelerin ezmek için değil, dikkatli olmak, herhangi bir kalıntı ortamı çıkarmak için ddH2O Q-ucu kullanarak lamel merkez kısmına hafifçe temizleyin. Saf etanol ile temizlik adımı tekrarlayın. </li><li> Artık tamamen kapalı görüntüleme odası, görüntüleme speckle için optimize olacaktır. Tamamen kapalı bir muhafaza hızlı photobleaching fluorophores önleyecektir. </li></ol> Bölüm 4: Görüntüleme hücreleri Gerekli malzemeler: 6.7 mikron piksel, Yüksek sayısal diyafram, yağ daldırma planı Apochromatic hedefleri (60X 100X, faz ya da DIC) ile ters widefield mikroskop, mecury lamba, uygun filtreler, soğutmalı CCD kamera. Titreşim tablosu. Görüntüleme yazılımı. <ol><li> 37 derece için mikroskop sahne Prewarm. Yeni tamamlanan görüntüleme odasına yerleştirin ve görüntüleme önce stabilize etmek için sıcaklık 10-15 dakika bekleyin. </li><li> Parlak alan hücrelerin odaklanarak başlatın ve sonra doğru floresan ayarlarını değiştirir enjekte hücreleri bulmak. Photobleaching azaltmak için floresan maruz kalma süresini en aza indirmek için deneyin. </li><li> Enjekte edilen hücrelerin sağlıklı önde gelen kıvrımlı kenarları bakın. Aşırı enjekte edilen hücrelerin (patladı hücreleri) geri çekilir ve pürüzlü kenarlar ile karakterize, çok sayıda filopodia benzer olacak - bu hücrelerin görüntüleme önlemek. </li><li> Toplama ayarları etiketli aktin hücre tipi, kalitesi ve mikroskop bileşenleri bağlıdır. Ancak, pozlama ayarları 2 saniye daha fazla olması gerektiğini ve kareler arasındaki zaman aralığı 5 ile 10 saniye arasında ayarlanabilir olmalıdır. Tipik bir zaman serisi için boyları (görüntülü hücre başına) herhangi bir yerde 10 ila 30 dakika arasında değişebilir ve photobleaching etkileri sınırlıdır. Kamera ayarları Kazanç gürültü sinyali artırmak için açılabilir. </li><li> Ideal özellikleri bir sonraki komşu speckle çapları speckle her ~ 2 aralıklı speckle olmalıdır speckle. Bu aktin yapısının optimal mekansal ve zamansal örnekleme garanti. Epitel hücreleri için, benekli aktin ağ benek eşit dışında yayılmış, homojen görünecektir. Yoğun stres lifleri veya lamellipodia özelliği hücre hatlarıayırt edilebilir, ancak bir noktalı / benekli görünüme sahip. Pozlama ayarları benekli en iyi görüntü almak için ayarlanabilir olmalıdır. </li><li> Aşırı microinjected hücrelerin ayrık olarak görünmüyor sık ​​donatılı benekler var. Stres elyaf ve lamellipodia noktalı görünümünü kaybedersiniz. </li><li> Altı microinjected hücreleri uzak (&gt; 10 benekler dışında) ve dağınık rastgele görünen benekler içeren, mercek ile çok loş görünecektir. Stres elyaf ve lamellipodia bu hücrelerin ayırt edilemez. </li><li> &#39;Iyi&#39; elde etmek için Anahtar filmleri odaklanmayı sürdürürken speckle. Bu akışı ve ciro ölçümleri speckle içeren sonrası analizi için özellikle önemlidir. Bu nedenle kantitatif analiz kalitesini geçen zaman süresi için odak kilitleme bağlıdır. Görüntü düzlemi oldukça ince ise özellikle zor olabilir. Diğer faktörler mikroskop sistemi istikrar, özellikle sahne konut ve görüntüleme odası bağlıdır. Kontrast-tabanlı odaklama, görüntü aralığı uzunlukları bu özelliği karşılamak için yeterli olup olmadığı kullanılabilir. Diğer seçenekler, güvenilir ve gerçek zamanlı odak ayarlamaları sağlar bir yakın-kızılötesi tabanlı odaklama sistemi satın içerir. Nikon, Olympus ve ASI bu teklifleri bulabilirsiniz. </li></ol> Bölüm 5: qFSM analizi Bu bölümde ayrıntılı olarak ele değil, ancak analiz yazılımı bilgi burada [5] bulunabilir. Yazılım yükleme isteklerini web sitemizi (lccb.scripps.edu) yapılabilir. Konu Başlıkları: <ul><li> Gürültü kalibrasyon </li><li> Algılama speckle </li><li> Kaba hareket görüntü korelasyonu tabanlı izleme melez bir yaklaşım kullanarak Takip, bireysel benekler ayrıntılı hareket alanları ve tek bir parçacık izleme speckle. </li><li> Hesaplama sırasında yoğunluk dalgalanmaları polimer montaj ve demontaj oranları görünüm ve ortadan kaybolma olayları speckle. </li></ul>

<ol><li>Waterman-Storer, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+speckle+microscopy+%28FSM%29+of+microtubules+and+actin+in+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Fluorescent speckle microscopy (FSM) of microtubules and actin in living cells.</a> Curr Protoc Cell Biol. Chapter 4, Unit 4.10-Unit 4.10 (2002).</li>
<li>Ponti, A., Machacek, M., Gupton, S. L., Waterman-Storer, C. M., Danuser, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+distinct+actin+networks+drive+the+protrusion+of+migrating+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Two distinct actin networks drive the protrusion of migrating cells.</a> Science. 305, 1782-1786 (2004).</li>
<li>Zhang, X. F., Schaefer, A. W., Burnette, D. T., Schoonderwoert, V. T., Forscher, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rho-dependent+contractile+responses+in+the+neuronal+growth+cone+are+independent+of+classical+peripheral+retrograde+actin+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Rho-dependent contractile responses in the neuronal growth cone are independent of classical peripheral retrograde actin flow.</a> Neuron. 40, 931-944 (2003).</li>
<li>Salmon, W. C., Adams, M. C., Waterman-Storer, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual-wavelength+fluorescent+speckle+microscopy+reveals+coupling+of+microtubule+and+actin+movements+in+migrating+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Dual-wavelength fluorescent speckle microscopy reveals coupling of microtubule and actin movements in migrating cells.</a> J Cell Biol. 158, 31-37 (2002).</li>
<li>Danuser, G., Waterman-Storer, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+fluorescent+speckle+microscopy+of+cytoskeleton+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Biophys+Biomol+Struct%22%5BJournal%5D)">Quantitative fluorescent speckle microscopy of cytoskeleton dynamics.</a> Annu Rev Biophys Biomol Struct. 35, 361-387 (2006).</li>
</ol>

Yazarların beyan edeceği herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Başarıyla speckle görüntüler elde etmek için birkaç anahtar faktör çok önemlidir, ancak iyi benekler floresan etiketli aktin kalitesi ile başlar ve biter. Etiketli protein kendisi çözünür ve agrega ücretsiz olmalıdır 0,7 0,4 çevresinde aktin monomeri, boya, yüksek bir etiketleme oranı, benekler ve ayrık parlak görünmesini sağlayacaktır. Aynı derecede önemli olan mikroenjeksiyon işlemi. Normal hücre homeostazının sağlamak için (ve hayatta kalma), hücreler tanıtan etiketli protein konsantrasyonu düşük, düşük akış basıncı ...

Enjeksiyon tampon (IB) 50 mM potasyum glutamat 0.5 M MgCl2 (EK 2A) -20 ° C&#39;de 2 yıla kadar saklama kapasitesi &nbsp; G-buffer 2 mM Tris ⋅ Cl, pH 8.0 (EK-2A) 0.2 mM CaCl2 (EK 2A) Kullanmadan hemen önce ekleyin: 0.2 mM ATP (100 mM tarifi görmek) 2-mercaptoethanol 0.5 mM 1 gün öncesine kadar 4 Mağaza ° C

floresan üzerinden f-aktin dynamics canlı hücre görüntüleme speckle mikroskopi (fsm)

Live Cell Imaging of F-actin Dynamics via Fluorescent Speckle Microscopy (FSM)

Bu protokolde Floresan kullanımı PtK1 hücreleri aktin dinamiklerinin yüksek çözünürlüklü görüntü yakalamak için Mikroskopi (FSM) speckle açıklar. FSM eşsiz bir avantajı canlı hücrelerin içinde F-aktin ağ hareketini ve ciro kinetiği (montaj / demontaj) yakalamak için yeteneğidir. Bu teknik, bilgisayar vizyonu yazılım (qFSM) ile eşleştirilmiş, F-aktin dinamiklerinin kantitatif ölçümler çıkarmada yararlıdır. Biz seçimi, mikroenjeksiyon ve canlı hücrelerin floresan aktin probları görselleştirme açıklar. Daha da önemlisi, benzer işlemler, diğer macomolecular meclisleri görselleştirmek için geçerli. FSM mikrotübül, ara filamentler, ve yapışma kompleksleri için kanıtlanmıştır.

Seçimi, mikroenjeksiyon ve görüntüleme floresan ile F-aktin floresan etiketli (FSM) mikroskopi speckle.

Floresan üzerinden F-aktin Dynamics Canlı Hücre Görüntüleme speckle Mikroskopi (FSM)

Bu protokolde, PtK1 hücrelerindeki aktin dinamiklerinin yüksek çözünürlüklü görüntülerini yakalamak için Floresan Benek Mikroskopisi'nin (FSM) kullanımını açıklıyoruz. Benzersiz bir ...

Floresan benek mikroskopisi, canlı hücrelerdeki çeşitli hücre iskeleti proteinlerinin dinamiklerini incelemek için kullanılır. Doğru şekilde uygulandığında, hücre iskeleti proteinlerinin hızının ve devir kinetiğinin kantitatif ölçümleri yapılabilir. Bu prosedüre, canlı hücrelere küçük bir hacimde floresan işaretli aktin mikroenjeksiyonu yaparak başlıyoruz.Ardından, fotobezme etkilerini azaltmak için görüntüleme haznesini kurarız. İlk olarak, hücre lameline destek olacak mikro lamelin her iki yanına iki parça çift taraflı bant yerleştirilir. Sonra, görüntüleme besiyeri, açık yarıklardan birinin yakınına damlatılarak hazneye pipetlenir.Son olarak, tüm dört kenar parafilm ile mühürlenir. Merhaba, ben James Lim; Scripps Research Institute Hücre Biyolojisi Bölümü'nde Galden'ın Deucer laboratuvarındayım. Bugün size floresan benek mikroskopisi üzerine bir prosedür göstereceğiz.Bu prosedürü, göç eden epitelyal hücrelerdeki Aktin Dinamiklerini incelemek için kullanıyoruz. Öyleyse başlayalım. İyi floresan benekli mikroskopi videoları elde etmenin temel bileşeni, aktinin seçtiğiniz bir florofor ile uygun şekilde etiketlenmesidir; aktin yüzeyindeki açık lizin kalıntılarını hedefleyen Alexa ve X rodine cin, bir middle Esther türevleri olan floroforların kullanılmasını öneriyoruz.Beneklerin uzun süreli saklama öncesinde parlak ve belirgin görünmesini sağlamak için, işaretleme oranının aktin monomeri başına 0,3 ile 0,7 boya arasında yüksek olması önemlidir. İşaretlenmiş Aktin çözeltisini, 4 °C'de 20 dakika boyunca 75.000 ile 80.000 ×g'de santrifüj ederek berraklaştırın. İşaretlenmiş Aktin, G tampon çözeltisi içerisinde -80 °C'de saklanmalıdır.Çözünmeyen agregatlara yol açabilen tekrarlı dondurma-çözme döngülerinden kaçınmak için iki mikrolitrelik alikotlar hazırlayın. Floroforların fotobeyazlamasını önlemek için, işaretli aktin çözeltisini uzun süre doğrudan ışığa maruz bırakmayın ve uzun süreli saklama için opak mikrosantrifüj tüpleri kullanın. Mikroenjeksiyon için hücreleri asitle yıkanmış kare cam lameller üzerine yerleştirin.Lamel üzerine standart substrat kaplaması uygulanabilir ve bu işlem mikroenjeksiyonu etkilemeyecektir. Mikroenjeksiyona uygun hücreleri seçmek için, aktin hazırlanırken hücreleri 37 °C'de muhafaza edin. FSM için bu kriterleri göz önünde bulundurun.Hücreler büyük olmalı, çapları 50 µm'den fazla olmalı, plakalara ekildiğinde düz bir şekilde yayılmalı ve substratlara doğal olarak yapışmalıdır. Ayrıca, hücre sitoplazmasının kapladığı alanın çekirdeğinden daha geniş olması da faydalıdır. Uygun bazı hücre hatları arasında PTK1, semender akciğer hücreleri ve AIA nöronları yer almaktadır.Bu gösterimde, PTK 1 epitel hücrelerine enjeksiyon yapacağız. Mikroenjeksiyon iğnelerinin doğru seçimi, uç açıklığının boyutuna bağlıdır. Genellikle delik boyutları 0,5 mikrometreden üç mikrometreye kadar değişebilir.0,5 ile 1 mikrometre arasında optimal bir açıklık boyutu öneriyoruz. Aktin enjeksiyonu için mikroenjeksiyon iğneleri satın alınabilir veya hazırlanabilir. Yeni başlayanlar için ticari bir iğne çekici mevcutsa, enjeksiyon prosedürüne başlamadan önce elinizde 10 ila 20 adet çekilmiş iğne bulundurmanızı öneririz.Bir sonraki adım, işaretlenmiş acton'u buz gibi soğuk enjeksiyon tamponu ile seyreltmektir. Tüm çalışma çözeltilerini buz üzerinde tutun. İğneye yüklenen acton'un final konsantrasyonu olan ideal enjeksiyon konsantrasyonu, µL başına 0.5 ile 1 µg arasındadır.D'nin aktin monomer yüküne oranının %40'lık etiketleme oranına dayandığı varsayılarak, 0,5 ila 1 µL seyreltilmiş aktin çözeltisi yükleyin. Aktin çözeltisini bir mikro şırınga iğnesi kullanarak dikkatlice dağıtın. Kabarcık oluşmamasına özen gösterin.Hava kabarcıkları varsa, kabarcığın etrafındaki fazla sıvılar çekilerek kolayca giderilebilir. Acton solüsyonunun tamamen iğne ucunda olduğundan emin olun. İğnenin kapiler kısmı boyunca hiçbir yerde fazla solüsyon bulunmamalıdır, çünkü bu durum enjeksiyon akışını bozabilir.Doldurulmuş iğne, mikroenjeksiyon için enjeksiyon tutucusuna takılmaya hazırdır. Hücrelerinizi inkübatörden çıkarın ve lameli mikroskop tablasına yerleştirin. Mikroenjeksiyon prosedürüne başlamak için doldurulmuş iğneyi mikroskoba götürün.İğnenin ucuna temas etmemeye dikkat ederek iğneyi enjektör tutucusuna dikkatlice takın. Tutucuyu, iğnenin mikroskop tablasının tabanıyla 35 ila 50 derecelik bir açı yapacak şekilde konumlandırın. İğnenin ucunu, besiyeri yüzeyini hafifçe geçene kadar indirin.Hücreleriniz şimdi iğne ucunu, objektifin merkezinin tam üzerine gelecek şekilde konumlandırır. İğne ucu objektifle hizalandığında, okülerden parlak bir hale görmelisiniz. Bu, iğne ucunun bittiği yerdir.İğneyi yavaşça yanlara doğru hareket ettirmek, halenin yerini daha iyi belirlemeye yardımcı olabilir. Gezinme sırasında iğne ucunun hücrelerinizin oldukça üzerinde olduğundan emin olun. İğne ucunun kırılmasını önlemek için, hücreleriniz net bir şekilde görünene kadar mikroskobun Z.Focus ayarını yapın.Ardından, hale kademeli olarak daralıp sonunda iğne ucunda birleşene kadar odağı kontrol ederek iğne ucunu yavaşça indirin. Ayrıca, doğrusal gölgeler oluşturacak olan iğne şaftını da arayabilirsiniz. İğnenin indirilmesi, iğne şaftını kademeli olarak belirginleştirecektir.Kontrastı artırmak için faz halkasında küçük ayarlamalar yapılması gerekebilir; iğnenin ucu ve hücreleriniz artık net bir şekilde görünür olmalıdır. Enjeksiyon yapılacak hücreler seçilirken, serbest kenarları iğne ucuna bakacak şekilde konumlandırılmalıdır. Bu, çekirdeğin bulunduğu en kalın noktadan ön kenarın en ince noktasına kadar olan hücre eğiminin, iğne ucuna paralel seyretmek yerine doğrudan iğne ucuyla karşılaşmasını sağlayacaktır.İğne basıncını 0.3 ile 0.8 PSI arasına ayarlayın. Uygulanan sabit basınç, aktin solüsyonunun düzenli bir akışla ilerlemesini sağlayacaktır. Enjekte edilecek hücreye karar verdiğinizde, iğneyi uç kısmı hücrenin çekirdeğinin yanına gelecek şekilde konumlandırın; iğnenin ucuna baskı uygulanana kadar iğneyi yavaşça indirin ve konumunu yeniden ayarlayın.İğne ucu membranı delene kadar membranı kademeli olarak aşağı indirin. İğne membranı tamamen delmişse, hücre daha parlak görünecektir. Bu değişikliği görür görmez, iğne artık hücreye temas etmeyene kadar iğneyi kaldırın.Gerçek delme ve enjekte etme işlemi 0,5 ile iki saniye sürecektir. Doğru yapıldığında, hücre şekli değişmemiş görünecektir. Hücreler üzerindeki stresi en aza indirmek için, her mikroenjeksiyon oturumu için 20 ila 45 dakikadan fazla zaman ayırmayın.Enjeksiyon sırasında hücrede herhangi bir değişiklik görmeyebilir ve hücrenin parlaklığının artmadığını fark edebilirsiniz. Bu durum, iğne ucunun tıkanmış olabileceğini gösterir. Eğer trans enjektörünüzde mevcutsa, temizleme (clean) düğmesine basarak bunu test edebilirsiniz.İğne ucu açıksa, bu durum sabit basınçlı akışı önemli ölçüde artıracaktır; bu durum, dalgalanmalar ve yakınlardaki kalıntıların dağılması şeklinde görülebilir. İğne ucu kapalıysa, ya yeni bir mikroenjeksiyon iğnesi takabilir ya da iğnenin ucunu, iğne ucu cam lam üzerine bastırana kadar iğneyi nazikçe indirerek kırmayı deneyebilirsiniz. Böylece ucun en uç kısmı kırılmış olur.Kırılma alanı, mikroenjeksiyon tamamlandığında iğnenin bir uca doğru daralmaya başladığı kısım olan iğne ucunun alanının beşte birinden fazla olmamalıdır. Herhangi bir floresan kalıntısını gidermek için kaptaki hücre besiyerini taze, önceden ısıtılmış besiyeri ile değiştirin. Besiyerini değiştirdikten sonra, görüntüleme yapmadan önce hücrelerin 37 °C'lik bir inkübatörde 30 dakika boyunca toparlanmasına izin verin.Bu durum, hücreler inkübatörde iyileşirken aktinin mevcut hücre iskeleti ağına entegre olmasını sağlayacaktır; bu sırada görüntüleme haznesini kurmaya başlayın. Öncelikle görüntüleme medyumunu 37 °C'lik bir su banyosunda ön ısıtmaya tabi tutun. Ardından, 15 µL'lik bir oxa erase alikotunu oda sıcaklığında çözdürün.Besiyerine daha sonra RA eklenmesi, fotobezme etkilerini büyük ölçüde azaltacaktır. Oxa erase'in alüminyum folyoya sarılı tutulması, fotohassas bileşiğin ışıktan korunduğundan emin olmanızı sağlayacaktır. VAP sızdırmazlık malzemesini düşük sıcaklığa ayarlanmış bir ısıtıcı üzerinde önceden ısıtın; VAP'ı aşırı ısıtmayın veya yakmayın, aksi takdirde sızdırmazlık malzemesi olarak etkinliğini kaybedecektir.Temizlemek ve küçük kalıntıları gidermek için bir mikroskop lamını saf etanol ile ıslatılmış bir Kim wipe ile silin. Başka bir mikroskop lamı gibi temiz ve düz bir yüzey kullanarak, her biri 2,5 santimetre uzunluğunda iki eşit parça çift taraflı bandı üst üste yapıştırın. Bir platform olarak, tamamen düz bir düzlem oluşturmak için hapsolmuş tüm hava kabarcıklarını bastırarak çıkarın.Ardından, bandın uzun ekseni boyunca her bir şeridin genişliği 0.5 santimetre olacak şekilde jiletle iki düz şerit kesin. Pens kullanarak, her bir şeridi mikroskobik lamın uzun kenarları boyunca, iki bant şeridi lamın merkezinde bir boşluk oluşturacak şekilde yerleştirin. Camla iyi bir sızdırmazlık sağlamak için bandın üzerine hafifçe bastırın.Bu bant şeritleri, mikro lam ile lamel arasında ara parçalar görevi görecektir. Valfin tamamen sıvılaştığından emin olmak için kontrol edin. Bir sonraki adıma başlamadan önce, önceden ısıtılmış görüntüleme medyumunuzu alın.Her 500 µL besiyerine 15 µL oxy rays ekleyin. Bir chem wipe'ı, üç sert kenar oluşturacak şekilde üçgen şeklinde katlayın. Bu, daha sonra lamelin silinmesi için kullanılacaktır.Hücreleri pens yardımıyla inkübatörden çıkarın. Lamine camın bir köşesini hızlıca kaldırın. Lamine camı, hücrelerin bulunduğu yüzey yukarı bakacak ve dokuya temas etmeyecek şekilde bir kim wipe üzerine yerleştirin ve lamine camın karşılıklı iki kenarını yarı kuru bir yüzey oluşturmak için katlanmış kim wipe ile silin.Ardından, lamellenin bir köşesini pensle tutun ve kuru yüzeyler iki bant şeridiyle hizalanacak şekilde lamelini mikroskop lamı üzerine yerleştirin. Şu anda iki kenarın kapalı ve iki kenarın açık yarıklar şeklinde olduğunu fark edeceksiniz. Görüntüleme ortamı RA solüsyonundan 200 µL'yi yavaşça açıklıklardan birinin yakınına pipetleyin.Herhangi bir hava kabarcığı oluşmamasına dikkat edilmelidir. Çözelti, yeni monte edilen hazneye kılcal kuvvetlerle çekilmeli ve böylece hücreleriniz tamamen çözeltiye daldırılmalıdır. Bir pamuklu çubuk kullanarak, lamellenin dört köşesine eritilmiş vap uygulayın; böylece lameli hızlıca sabitleyip stabilize edebilirsiniz.VAP'ın oda sıcaklığında saniyeler içinde kuruduğunu göreceksiniz. Ardından, kapalı kenarlardan başlayarak, pamuklu çubukla fırça darbesi yapar gibi ince bir VAP şeridi sürün. Aynı işlemi açık kenarlar için tekrarlayın.Kaplama adımlarını tekrarlayarak sızdırmazlığı güçlendirin ve vap tabakasını yavaşça oluşturun. VAP, lamelin merkezini temiz bırakacak şekilde yalnızca kenarlarla sınırlandırılmalıdır. Lamelin kenarları mühürlendikten sonra, kalıntı ortamı temizlemek için DD H2O emdirilmiş bir kulak çöpü kullanarak lamelin orta kısmını nazikçe temizleyin.Hücreleri ezmemeye dikkat edin. Bu temizleme adımını saf etanol ile tekrarlayın. Artık floresan benek görüntüleme için optimize edilmiş, tamamen kapalı bir görüntüleme haznesine sahipsiniz.Tamamen sızdırmaz bir muhafaza kullanmak, floral fours örneklerinizin hızla fotobeyazlamasını önleyecektir. Tamamen kapalı bölmedeki hücreler artık görüntüleme için hazırdır. Cıva lambalı, epi aydınlatıcılı, uygun filtreli ve yağ daldırma objektifli bir ters geniş alan mikroskobu kullanıyoruz.Apokromatik objektif görüntüleri, 6,7 mikron pikselli soğutmalı bir CCD kamera ve bir görüntüleme yazılımı ile yakalanır. Mikroskop tablasını 37 °C'ye kadar önceden ısıtın. Görüntüleme haznesini yerleştirin ve görüntülemeye başlamadan önce sıcaklığın stabilize olması için 10 ila 15 dakika bekleyin.Sıcaklık stabilize olduğunda, hücrelerinize parlak alan (brightfield) modunda odaklanın ve ardından uygun floresan ayarlarını değiştirerek enjekte edilmiş hücrelerinizi bulun. Fotobezmeyi (photobleaching) azaltmak için floresan maruziyet süresini minimumda tutmaya çalışın. Sağlıklı ve kavisli ön kenarlara sahip enjekte edilmiş hücreleri arayın.Aşırı enjekte edilmiş hücreler, çok sayıda filopoduyla benzerlik gösteren geri çekilmiş ve tırtıklı kenarlarla karakterize edilecektir. Bu hücrelerin görüntüsünü almayın. Görüntüleme ayarları; hücre tipine, işaretlenmiş aktinin kalitesine ve mikroskop bileşenlerine bağlı olarak değişecektir.Bununla birlikte, pozlama ayarları iki saniyeden fazla olmamalı ve kareler arasındaki zaman aralığı beş ile 10 saniye arasında ayarlanmalıdır. Sinyal-gürültü oranını artırmak için kameradaki kazanç (gain) ayarları yükseltilebilir. İdeal benekleme (speckle) karakteristiklerinde, her bir beneğin komşu beneğe olan uzaklığı yaklaşık iki benek çapı kadar olmalıdır.Epitel hücreler için benekli aktin ağı homojen görünecektir ve benekler eşit şekilde dağılmış olacaktır. En iyi benekli görüntüleri elde etmek için pozlama ayarları düzenlenmelidir.Kaliteli benekleme (speckle) videoları elde etmenin anahtarı, odağın korunmasıdır. Bu durum, özellikle benek akışı ve devir daim ölçümlerini içeren analiz sonrası işlemler için büyük önem taşır. Dolayısıyla, kantitatif analizin kalitesi, zaman atlamalı çekim süresince odağın sabitlenmesine bağlı olacaktır.Odaklamayı korumak için çeşitli stratejiler metinde ayrıntılı olarak açıklanmıştır; bu gösterimde Nikon Perfect focus sistemi kullanılacaktır. Burada mikroenjeksiyon uygulanmış hücrelerin çeşitli örnekleri yer almaktadır. Sol panel, düşük konsantrasyonlu benekli bir görüntüye sahip, mikroenjeksiyon uygulanmış bir hücreyi göstermektedir.Orta panel, çok yüksek konsantrasyonla mikroenjeksiyon yapılmış bir hücrenin speckle (benekli) görüntüsünü, sağ panel ise optimal şekilde enjekte edilmiş bir hücreyi göstermektedir. İyi bir speckle görüntüsüne sahip FSM için; floresan işaretli aktini, floresan speckle mikroskobisi amacıyla epitelyal hücrelere nasıl mikroenjekte edeceğinizi göstermiş olduk.Bu prosedürü uygularken, işaretlenmiş aktinin kalitesinin ve mikroenjeksiyon tekniğinin, benekli görüntülerin genel kalitesini belirleyeceğini hatırlamak son derece önemlidir. Hepsi bu kadar, deneylerinizde başarılar dileriz.

live-cell-imaging-f-actin-dynamics-via-fluorescent-speckle-microscopy

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bu kağıt kültürü canlı hücreleri mekanik uyarılması için entegre bir atom operasyon okuyucu kuvvet optik görüntüleme mikroskop öğretmeyi hedefliyor. Bir adım-adım protokol sunulmuştur. Mekanik stimülasyonu canlı hücre yanıtı gösteren bir temsilci veri seti sunulmaktadır.

Tümleşik Optik ve Atomik Kuvvet Mikroskobu eğitimi Mekanik Uyarım Canlı Hücre Tepki

GFP-aktin ifade canlı endotel hücreleri mikroskobik görüntüleme iskelet yapıları dinamik değişimlere karakterizasyonu sağlar. Sabit örneklerinde kullanan teknolojilerden farklı olarak, bu yöntem önce aynı hücrelerde aktin hücre iskeletinin temporal değişikliklerin ayrıntılı bir değerlendirme sırasında, çeşitli fiziksel, farmakolojik veya inflamatuvar uyaranlara sonra sağlar.

GFP-Aktin ifade Canlı Endotel Hücreleri Aktin Sitoiskelet Çalışması

Canlı hücrelerin içindeki dinamik proteinler hakkındaki uzay-zamansal bilgi, biyolojiyi anlamak için çok önemlidir. Hızlı 3D yapılı aydınlatma mikroskobu (f3D-SIM) adı verilen bir tür süper çözünürlüklü mikroskopi, bakterilerdeki sitokinetik Z halkası hakkında benzersiz bilgiler ortaya çıkarır: hem boncuk benzeri görünümü hem de halka içindeki FtsZ'nin hızlı dinamikleri.

Hızlı 3D-Yapılandırılmış Aydınlatma mikroskopi ile Canlı Bakteri Cytokinetic Z Yüzük Süper çözünürlük Görüntüleme (F3D-SIM)

Plazma zarı proteinlerinin ve lipitlerinin mekansal dağılımı ve zamansal dinamikleri biyolojide sıcak bir konudur. Burada bu sorun, kavramsal olarak tek parçacık izlemenin aynı fiziksel miktarlarını sağlayan bir uzaysal-zamansal görüntü dalgalanma analizi ile ele alınmaktadır, ancak küçük moleküler etiketler ve standart mikroskopi kurulumları kullanır.

Ticari Mikroskop Canlı Hücre Zarları Moleküler Difüzyon Kanunu Hızlı Floresans Görüntüleme Gönderen

T hücresi immünolojik sinapsında filamentli aktinin akış hızlarını ve yönlülüğünü araştırmak için, canlı hücre süper çözünürlüklü görüntüleme, toplam iç yansıma floresansı ile birleştirilir ve uzaysal-zamansal görüntü korelasyon spektroskopisi ile ölçülür.

Yapılandırılmış Aydınlatma Mikroskopi Verilerinin uzay-zamansal Görüntü Korelasyon Spektroskopisi nicel T Hücreleri kortikal Aktin Akışı

Biz yapışık memeli hücrelerinde aktin hücre iskeletinin görüntüleme, interferometrik photoactivated Yerelleştirme Mikroskopi (iPALM), 3-boyutlu tek-molekül yerelleştirme süper çözünürlük mikroskopi yöntemi uygulaması için bir protokol mevcut. Bu yaklaşım, aksi takdirde geleneksel kırınım sınırlı optik mikroskopi ile çözülmemiş kalacağını nano yapısal özellikleri ışık tabanlı görselleştirme sağlar.

Üç boyutlu Süper İnterferometrik photoactivated Yerelleştirme Mikroskopi F-aktin Filament Çözünürlük Mikroskobu (iPALM)

Bu protokol bırakmak Förster rezonans enerji transferi ve floresan mikroskopi Imaging ömür boyu göre SNARE proteinlerin karmaşık oluşumu nicel görselleştirme için yeni bir yöntem açıklanır.

Hücre içi SNARE mikroskobu Imaging Floresans ömür tarafından kaçakçılığı görüntülenmesi

Biz nasıl sıkı BAĞLAMAK ve photoactivation gibi mikro - ve photomanipulation teknikleri hareketliliği parametreleri belirlenmesi etkinleştirmek ve proteinler geçiş içinde kronolojik zamanmekansal dinamikleri hücreleri tanımlamak. Deneysel veriler hücre altı dinamikleri ve ciro hareketliliği düzenleyiciler veya temel aktin sitoiskeleti içerir.

Morfogenetik dinamiklerini analiz ve hücre iskeleti düzenleyiciler ciro sağlayan Embriyolardan teknikleri

İlerlemek için, büyüme konileri dış ortama karşı çekiş kuvvetleri uygulamalıdır. Çekiş kuvvetlerinin üretimi akin dinamiklerine ve debriyaj kavramasına bağlıdır. Bu çalışmada büyüme konisi ilerlemesi için akin dinamiklerini, debriyaj kavramasını ve çekiş kuvvetlerini analiz etme yöntemleri açıklanmaktadır.

Büyüme Konisi İlerlemesi için Actin Dynamics, Debriyaj Kavrama ve Çekiş Kuvveti Analizleri

Basit aktin filament mikroakışkan tahlilleri için, floresan mikroskobu ile birlikte, bireysel aktin filamentlerini gerçek zamanlı olarak doğru bir şekilde izlemeyi ve sırayla farklı protein çözeltilerine maruz bırakmayı sağlayan protokoller sunuyoruz.

Tek Aktin Filamentlerin ve Demetlerin Montaj Dinamiğini İncelemek için Mikroakışkanlar ve Floresan Mikroskobu Kullanma

Burada, saflaştırılmış proteinlerden yarı iki boyutlu (2D) dolaşık, çapraz bağlı ve sıvı kristal aktin düzeneklerinin hazırlanması için yöntemler sunuyoruz.

Aktif Aktin Bazlı Montajların Kasılma ve Deformasyon Modlarının In Vitro Olarak Ayarlanması: İki Boyutlu Aktif Ağlardan Sıvı Kristal Damlalara

Öğrenin, canlı hücrelerde sitoskeletal protein dinamiklerini floresan speckle mikroskopi ile incelemeyi. Mikroenjeksiyon ve görüntüleme odası kurulumu, fotobölmeyi azaltarak nicel ölçümler sağlar.

Floresan üzerinden F-aktin Dynamics Canlı Hücre Görüntüleme speckle Mikroskopi (FSM)

Daha fazla video keşfet