Name: Omurilik Elektrofizyoloji (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-18T16:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: Keşfedin, yeni doğan fare omuriliğinin ventral laminotomi ile izolasyonunu ve elektrotlara bağlanarak sinir aktivitesinin kaydedilmesini. Bu yöntem, sinirbilim araştırmalarında sinirsel mekanizmaları incelemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Samuel L. Pfaff Salk Biyolojik Araştırmalar Enstitüsü Gen İfadesi Laboratuvarlarında Profesör ve Howard Hughes Tıp Enstitüsü bir Araştırmacı. Bu çalışma, Christopher ve Dana Reeve Vakfı tarafından desteklenmiştir. Joe Belcovson, Kent Schnoeker Multimedya Kaynakları ve Salk Enstitüsü&#39;nden Mike Sullivan, fotoğraf ve düzenleme ile ilgili yardım sağladı.

1. Yapay beyin omurilik sıvısı (aCSF) 1 hazırlayın. Biz ilk magnezyum veya kalsiyum olmadan aCSF 10X stok 2L hazırlamak. Reaktifler millimolar listelenir. Katalog numaraları Sigma / Aldrich bakın. <table border="1" cellpadding="0"><tbody><tr><td colspan="4"> 2 Litre 10X aCSF (Mg veya Ca olmadan) </td></tr><tr><td> Reaktif </td><td> mM </td><td> g/2L </td><td> Katalog </td></tr><tr><td> KCl </td><td> 40 </td><td> 5,96 </td><td> P-9333 </td></tr><tr><td> NaCl </td><td> 1280 </td><td> 149,61 </td><td> S-7653 </td></tr><tr><td> NaHCO 3 </td><td> 210 </td><td> 35,28 </td><td> S-6297 </td></tr><tr><td> NaH 2 PO 4 </td><td> 5 </td><td> 1,38 </td><td> S-9638 </td></tr><tr><td> Glikoz </td><td> 300 </td><td> 108,12 </td><td> D-9434 </td></tr><tr><td colspan="4"> 2L distile su ekleyin </td></tr></tbody></table> Ayrıca, deney deney yapmak molarite ayarlamalar için izin 50ml su MgSO 4 ve CaCl 2 1M çözümler hazırlamak ve kalsiyum çözelti içinde kalmasını sağlamak için . <table border="1" cellpadding="0"><tbody><tr><td colspan="4"> 1M Kalsiyum ve Magnezyum Stoklar </td></tr><tr><td> Reaktif </td><td> M </td><td> g/50mL </td><td> Katalog </td></tr><tr><td> CaCl 2 </td><td> 1 </td><td> 7,35 </td><td> C-5080 </td></tr><tr><td> MgSO 4 </td><td> 1 </td><td> 12,33 </td><td> M-5921 </td></tr></tbody></table> ACSF çözüm çökelek kalsiyum veya kalsiyum eklemeden önce pH düşük carbogen (% 95 O2 /% 5 CO2) ile gaz verilerek olmalıdır. <table border="1" cellpadding="0"><tbody><tr><td colspan="2"> 1 Litre aCSF </td></tr><tr><td> Reaktif </td><td> Hacim </td></tr><tr><td> 10X aCSF </td><td> 100 mL </td></tr><tr><td> 1M CaCl 2 </td><td> 1 ml (diseksiyon) 2mL (kayıt) </td></tr><tr><td> 1M MgSO 4 </td><td> 1 ml </td></tr><tr><td colspan="2"> Kalsiyum eklemeden önce ~ 800 mL distile su, 2 dakika süreyle carbogen gaz ekle </td></tr><tr><td colspan="2"> 1L distile su ekleyin. </td></tr></tbody></table> Pompaları ve tüp ve diseksiyon yemekleri kullanımdan önce ve sonra durulanmalıdır. Diseksiyon Diseksiyon iken, 1mm kalsiyum aCSF sürekli carbogen ile gaz verilerek olmalıdır. ACSF bir şişe diseksiyon çanak hortumlandığını ve şişe diseksiyon çanak pompalanır veya atık gönderilen olabilir. Biz bir elastomer (Sylgard Dow Corning) diseksiyon kaplı çanak kullanın. Yenidoğan fare hızla, keskin bir makas ve makas ile ventral göğüs kafesi ve karın yoluyla yapılan bir kesi ile dekapite. Hayvan sonra boşaltılmış. Parçalanmış fare aCSF ile durulanır. Hayvan daha sonra, ön ayakları ile kuyruk dibinde eklenen böcek iğneli diseksiyon çanak tutturulmuş. Omurga ventral laminektomi gerçekleştirerek kaldırılır. Omurga küçük forseps ile düzenlenen ve küçük bir makas, bir bıçak, kemikli omuriliğe hemen sırt eklenir. Lamina kemik spinal sütun hafifçe kaldırırken bir tarafında ve diğer kesilir. Bu omurganın uzunluğu için yapılmaktadır. Omurilik, spinal sinir köklerini koparmaya ve omuriliği saran meninksler kesmek için, omuriliğin her iki tarafında boyunca kesim tarafından kaldırılır. Biz, sağ ve sol tarafta kesim, daha sonra serbest omuriliğin dorsal tarafına bağlı meninksler kesti. Izole kablosu, daha sonra iyi oksijenasyon sağlamak için ek hayvanlar disseke aCSF giriş yakınındaki çanak tutturulmuş. Izole spinal kord sonra küçük bir kaşık veya spatula kullanarak kayıt çanak aktarılır. Burada oksijenli 2mm kalsiyum aCSF hazırlık serpmek. Omurilik elastomer kaplı çanak ve köklere yakın ekstrasellüler, bütün kök emme elektrotlar taşımak için kullanılan mikromanipülatörler tutturulmuş. Elektrot ucu serbest kök sonuna yakın, nazik emiş emme elektrot içine kök çekmek için uygulanır. Bu süreç, aynı anda birden fazla kökleri kaydetmek için tekrar edilebilir. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1. Decapitation ve eviserasyon A. Hızla keskin bir makas ile fare başını kesmek. Beyin sapı az ya da çok katkıları kesme düzeyine bağlı olarak elde edilebilir. Dekapitasyon tarafından oluşturulan göğüs boşluğunun açılması makas B. Place bir bıçak. Ventral toraks ve karın, kuyruk tabanına açın. Organlar çıkarın ve aCSF ile durulayın. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2. Omurilik A. kaldırılması Makas, spinal kord ve kord ventral döşeme kemikler yoluyla kesilen sağ spinal kolon ve spinal kord arasındaki boşluğa sol bıçak yerleştirin. Sonra, belkemiği ve omurilik, omurilik ve kesme sol arasındaki boşluğa makas sağ bıçak yerleştirin. B. omuriliğe nazik çekiş uygularken bu işlemi tekrarlayın. Makas düşük bir açıyla tutarak ponksiyon spinal kord dikkat edin. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3. Omurilik kaldırılması A.. Makas omurilik ve kablosunu yan döşeme spinal kökleri ve meninks ile omurilik ve kesme hakkı kemikleri arasındaki boşluğa sol bıçak yerleştirin. Sonra, omurilik ve kemikleri arasındaki boşluk içine makas omurilik sol sağ bıçağının ve kablosunu yanal döşeme spinal kökleri ve meninks kesti. B. Ve son olarak rostral kord yavaşça kaldırın ve lamina dorsal kablonun meninksler kesmek. Yine, düşük bir açıyla makas tutarak ponksiyon spinal kord umurumda değil. Omuriliğe çok yakın kökleri kesmeyin.

<ol><li>Myers, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic+input+is+required+during+embryonic+development+to+mediate+proper+assembly+of+spinal+locomotor+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Cholinergic input is required during embryonic development to mediate proper assembly of spinal locomotor circuits.</a> Neuron. 46, 37-49 (2005).</li>
<li>Goulding, M., Pfaff, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+circuits+that+generate+simple+rhythmic+behaviors+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Development of circuits that generate simple rhythmic behaviors in vertebrates.</a> Curr Opin Neurobiol. 15 (1), 14-20 (2005).</li>
<li>Gallarda, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+axial+motor+and+sensory+pathways+via+heterotypic+trans-axonal+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Segregation of axial motor and sensory pathways via heterotypic trans-axonal signaling.</a> Science. 320, (2008).</li>
<li>Gosgnach, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((V1+spinal+neurons+regulate+the+speed+of+vertebrate+locomotor+outputs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">V1 spinal neurons regulate the speed of vertebrate locomotor outputs.</a> Nature. 440 (7081), 215-219 (2006).</li>
<li>Lanuza, G. M., Gosgnach, S., Pierani, A., Jessell, T. M., Goulding, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+identification+of+spinal+interneurons+that+coordinate+left-right+locomotor+activity+necessary+for+walking+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic identification of spinal interneurons that coordinate left-right locomotor activity necessary for walking movements.</a> Neuron. 42 (3), 375-386 (2004).</li>
<li>Jiang, Z., Carlin, K. P., Brownstone, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+functionally+mature+mouse+spinal+cord+preparation+for+the+study+of+spinal+motor+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">An in vitro functionally mature mouse spinal cord preparation for the study of spinal motor networks.</a> Brain Res. 816 (2), 493-499 (1999).</li>
<li>Ziskind-Conhaim, L., Gao, B. X., Hinckley, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+dual+modulatory+actions+on+spontaneous+postsynaptic+currents+in+spinal+motoneurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Ethanol dual modulatory actions on spontaneous postsynaptic currents in spinal motoneurons.</a> J Neurophysiol. 89 (2), 806-813 (2003).</li>
<li>Tabak, J., Rinzel, J., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+activity-dependent+network+depression+in+the+expression+and+self-regulation+of+spontaneous+activity+in+the+developing+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The role of activity-dependent network depression in the expression and self-regulation of spontaneous activity in the developing spinal cord.</a> J Neurosci. 21 (22), 8966-8978 (2001).</li>
<li>Chub, N., Mentis, G. Z., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloride-sensitive+MEQ+fluorescence+in+chick+embryo+motoneurons+following+manipulations+of+chloride+and+during+spontaneous+network+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Chloride-sensitive MEQ fluorescence in chick embryo motoneurons following manipulations of chloride and during spontaneous network activity.</a> J Neurophysiol. 95 (1), 323-330 (2006).</li>
</ol>

HAYVAN BAKIMI<br /&gt;<br /&gt; Hayvanlar üzerinde deneyler Salk Biyolojik Araştırmalar AIACUC Enstitüsü tarafından belirlenen kurallara ve yönetmeliklere uygun olarak yapıldı.

Izole yenidoğan omurilik, sinir sistemi development1, 2 eğitim uysal bir yöntem sağlar. Neonatal kemirgenler lomber spinal kord içinde, merkezi desen üreten devre nörotransmitterlerin varlığı kurgusal lokomosyon üretebilir. Bu kurgusal lokomosyon 0,2 - 0,5 Hz üretilmektedir ritmik artar, aktivite patlamaları, oluşur. Bu patlamaları kablosu ve fleksör-ekstansör münavebe (L5 ipsilateral L2 akrabası) uzunluğu boyunca sol-sağ arda üretmek için organize edilir. Anormal davranış 3-5 farelerde bazı genetik mutasyonlar gösteril...

<table><tbody><tr><td>KCl</td><td></td><td>P-9333</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td></td><td>S-7653</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-6297</td><td></td></tr><tr><td>NaH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-9638</td><td></td></tr><tr><td>Glikoz</td><td></td><td>D-9434</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>C-5080</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>M-5921</td><td></td></tr><tr><td>Büyük Makas</td><td>Fine Science Tools</td><td>14070-12</td><td></td></tr><tr><td>Pens</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>İnce Makas</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-10</td><td></td></tr><tr><td>Entomoloji iğneleri</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 (Dow-Corning)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1L balon joje</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>100mL balon joje</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

omurilik elektrofizyoloji

Spinal Cord Electrophysiology

Yenidoğan fare omurilik sinir circuitries ve lokomotor hareketin gelişimi eğitimi için bir modeldir. Biz spinal kord diseksiyon ve lokomotor çalışmaları için kullanılan kayıt banyo yapay beyin omurilik sıvısı hazırlanması göstermektedir. Disseke, omurilik ventral sinir kökleri lomber kord içinde merkezi desen üreten devre elektrofizyolojik sinyaller kaydetmek için bir kayıt elektrot bağlı olabilir.

Elektrofizyolojik çalışmalar için yenidoğan fare omurilik izolasyonu bir gösteri.

Omurilik Elektrofizyoloji

Yenidoğan fare spinal kordu, nöral devrelerin gelişimini ve lokomotor hareketi incelemek için kullanılan bir modeldir. Spinal kordun ... olduğunu gösteriyoruz.

Tamam. Merhaba, benim adım Alan Meyer ve Salk Enstitüsü'ndeki faf Laboratuvarı'nda araştırma asistanıyım. Bugün size, bir farenin omuriliğini izole etmek için ventral laminektomi işleminin nasıl gerçekleştirileceğini ve ayrıca, nöral aktivitesini kaydetmek için omuriliğin bir elektroda nasıl bağlanacağını göstereceğim. Omurilik için iki solüsyon hazırlamanız gerekecektir; biri diseksiyon için, diğeri ise kayıt banyosu içindir.İki çözelti arasındaki tek fark kalsiyum klorür konsantrasyonu olacaktır. Öncelikle 10 X-A-C-S-F çözeltisi hazırlamanız gerekecektir. Bu işlem için aşağıda listelenen reaktifler gereklidir.İşleme, bir litrelik balon jojeye 100 mililitre 10 X-A-C-S-F ekleyerek başlayın. Ardından, taşma olmayacak şekilde boşluk bırakarak balon jojeyi su ile doldurun. Gazlandığında, çözeltiler %5CO2 ve %95O2 gaz konsantrasyonuna sahip olur.pH değerini düşürmek ve çözeltiyi oksijenlendirmek için bir mililitre bir molar magnezyum sülfat ekleyin. Ardından, diseksiyon çözeltisine bir mililitre bir molar kalsiyum klorür çözeltisi ekleyin ve kayıt çözeltisine iki mililitre bir molar kalsiyum klorür ekleyin. Bu deneylerde E 16.5 ile P 4 yaşları arasındaki fareler kullanılabilir.Fareyi önce keskin bir makasla hızlıca başını kopararak diseke etmeye başlayın. Ardından, kuyruğa ulaşana kadar ventral orta hat boyunca kesin. Daha sonra pens yardımıyla farenin iç organlarını çıkarın ve A CSF solüsyonu ile durulayın.Diseksiyonu gerçekleştirmek için bir milimolar kalsiyum klorür A CSF kullanın. Fareyi diseksiyon kabına yerleştirin ve dört patisine ve kuyruk tabanına birer iğne saplayarak sabitleyin. Bu bölümdeki amacımız, kırmızı noktalı çizgi boyunca keserek omuriliği izole etmek ve omurga kolonunu omuriliği çevreleyen laminadan ayırmak olacaktır.Bu işlem, omuriliğin açığa çıkarılmasını sağlayacaktır. Ardından, meningeleri ve spinal kökleri kesip çıkararak omuriliği serbest bırakmak için hat boyunca ilerleyin. Omurga kolonunu bulun; bir elinizdeki pensle omurga kolonunu sıkıca tutarken diğer elinizle küçük makas kullanın.Omuriliği çıkarmak için makasları düşük bir açıda tutun. Omuriliğin makas uçlarıyla delinmesini önlemek için şimdi omuriliği diseke edeceğiz. Kırmızı hat boyunca ilerleyerek meningeleri ve spinal kökleri kesin.Omuriliği çıkarmak için, kordun her iki yanından kesim yapabilir ve ardından ventral orta hat boyunca kesebilirsiniz. Omuriliği delmemek için makasın düşük bir açıda tutulması önemlidir. Kökleri omuriliğe çok yakın yerden kesmekten kaçınmak önemlidir.Ardından, omuriliği kayıt banyosuna aktarın ve elektrotları spinal köklere bağlayın. Elektrodu kökün yakınına yerleştirin. Daha sonra vakum yardımıyla siniri nazikçe elektrodun içine çekin.İzlediğiniz için teşekkür ederiz; bu videonun gelecekteki deneylerinizde faydalı olacağını umuyoruz.

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Yenidoğan kemirgen omurilik elektrofizyolojik kayıtlar ölçmek için kullanılan ekstraselüler emme elektrot üretimi ve kullanımı bir...

Omurilik Elektrofizyoloji II: Ekstrasellüler Emiş Elektrot İmalatı

Video, çok elektrotlu dizi (MEA) tabanlı bir test kullanılarak propriospinal bağlantıların fonksiyonel rejenerasyonunu göstermektedir. Omurilik dilimleri MEA üzerine yerleştirilir ve kaynaşmasına izin verilir. Kaynaşmış dilimler, bir lezyon oluşturularak mekanik olarak ayrılır, propriospinal nöronların lezyon üzerinde büyümesine ve dilimleri birleştirmesine neden olur. Dilimlerin elektriksel aktivitesi, fonksiyonel bağlantıların yenilenmesini tanımlamak için değerlendirilir.

Omurilik Dilimleri Arasındaki Fonksiyonel Bağlantıların Çoklu Elektrot Dizisi Kullanılarak Yeniden Üretilmesinin İncelenmesi

Bu video, çok elektrotlu bir dizi veya MEA cihazı kullanılarak yakalanan, omurilik dilimlerinin organotipik ko-kültürlerinden alınan elektrofizyolojik kayıtları sunar. Bu kayıtlar, dilimler arasındaki nöronal rejenerasyonu değerlendirir. Gözlenen senkronize elektriksel aktivite, başarılı nöral rejenerasyonu doğrular.

Birlikte Kültürlenmiş Omurilik Dilimlerinde Nöronal Rejenerasyonları Değerlendirmek İçin Elektrofizyolojik Kayıtlar

GABAerjik presinaptik inhibisyonu motor ve omurilik ağlarında duyusal sinyal entegrasyon için önemli omurilikteki güçlü bir önleyici mekanizmadır. Altta yatan primer afferent depolarizasyon dorsal kök potansiyelleri (DRP) kaydı ile ölçülebilir. Burada farelerde DRP in vivo kayıt için bir yöntem ortaya koymaktadır.

Dorsal Kök Potansiyel Kayıt By Farelerde Spinal Presinaptik Engellenme Ölçme<em&gt; In Vivo</em

Merkezi solunum dürtüsü beyin sapında bulunur. İzole edilmiş bir beyin sapı-omurilikten spontan solunum motor çıkışı, dördüncü ventral kök üzerine bir elektrot yerleştirilerek kaydedilir. Bu deneysel yaklaşım, farmakolojik araştırmalar veya solunum zorluklarının ve ritmik motor davranış üzerindeki genetik manipülasyonların değerlendirilmesi için değerlidir.

Yenidoğan Kemirgenler İzole Beyin Sapı-spinal Kordon Müstahzarlar Elektrofizyoloji Sinir Solunum Ağı Çıktı Kayıt verir

Burada in vitro propriyospinal bağlantıları işlevsel rejenerasyonu çalışma çoklu elektrot dizileri üzerinde kültürlü omurilik dilimleri dayanan bir protokol mevcut.

Çok elektrot Dizileri Yetiştirilen Organotipik Omurilik Co-kültürler Fonksiyonel Rejenerasyon incelenmesi

Biz genç farelerde omurilik eğik dilim nasıl hazırlanacağını göstermektedir. Bu preparat, ventral köklerin uyarılması için izin verir.

Ventral Kök Stimulation için eğik Omurilik Dilimleri hazırlanması

Bu yazıda zebra balığı embriyolarının ve larva spinal nöronların elektrofizyolojik kayıtları için yöntemleri tarif eder. Hazırlık yerinde nöronları korur ve genellikle asgari diseksiyonu kapsar. Bu yöntemler, erken larva aşamalarında ilk elektrik uyarılma alımından spinal nöronların çeşitli elektrofizyolojik çalışmaları için izin verir.

Zebra balığı<em&gt; Situ</em&gt; Omurilik Omurilik duyusal ve motor nöronlar gelen Elektrofizyolojik Recordings Hazırlık

Omurilik dorsal boynuzunda ağ düzeyinde nosiseptif aktiviteyi araştırmak için mikroelektrot dizisi teknolojisinin ve 4-aminopiridin kaynaklı kimyasal stimülasyonun kombine kullanımı özetlenmiştir.

Spinal Nosiseptif Devrelerde Ağ Aktivitesini Mikroelektrot Dizileri Kullanarak Kaydetme

Bu protokol, motor nöronların omurilik stimülasyonuna (SCS) elektriksel tepkilerini yüksek uzay-zamansal çözünürlükle incelemek için bir yama kelepçesi kullanan bir yöntemi açıklar ve bu da araştırmacıların omuriliği ayırma ve aynı anda hücre canlılığını sürdürme becerilerini geliştirmelerine yardımcı olabilir.

Spinal Kord Stimülasyonu Sırasında Motor Nöronlarda Tüm Hücre Yama-Klemp Kaydı için Omurilik Diliminin Ex vivo Hazırlanması

Kardiyak kilitli spinal dorsal boynuz nöronlarının kardiyak fonksiyon kaydı ve analizinin yanı sıra spinal çok kanallı hücre dışı kayıt için bir protokol tanımladık. Bu yöntem, akupunkturun neden olduğu torasik viseral fonksiyonel değişikliklerin altında yatan omurga mekanizmalarını incelemek için zamansal olarak senkronize bir çerçeve sunar.

Sıçan Spinal Dorsal Boynuzunda Kardiyak Kilitli Nöronal Yanıtlar Üzerine Somatik Stimülasyonun Kodlama Profillerinin İncelenmesi

Keşfedin, yeni doğan fare omuriliğinin ventral laminotomi ile izolasyonunu ve elektrotlara bağlanarak sinir aktivitesinin kaydedilmesini. Bu yöntem, sinirbilim araştırmalarında sinirsel mekanizmaları incelemek için kullanılır.

Omurilik Elektrofizyoloji

Daha fazla video keşfet