22 Ocak 2010
Bu video cerrahi endolenfatik hidrops üretmek için kobay endolenfatik kanal nasıl engel gösterir.
Merhaba, benim adım Chris Edden. Case Western Reserve Üniversitesi Otolaringoloji, Baş ve Boyun Cerrahisi Bölümü'nde araştırmacıyım. Bugün, guinea piglerde endolenfatik kanalın cerrahi blokajını anlatacağım; bu işlem endolenfatik hidrops oluşturur ve birçok iç kulak hastalığına bağlı kulak patolojisinin modellenmesinde kullanılır.
Lenfatik hidros, kokleanın endolenfatik kompartımanının şişmesidir ve knee hastalığı için temel bir histolojik belirteçtir. Burada, iki perilenfatik kompartımanı olan normal bir kokleanın kesit görüntüsünü görüyorsunuz: scala vestibuli ve scala tympani; ayrıca endolenfatik kanal ile bağlantılı olan ve genişlememiş olan scala media. Cerrahi prosedürden sonraki haftalar içinde, burada belirtildiği gibi scala media genişler ve Reisner membranı gerilir. Hayvanlar ayrıca cerrahi işlem yapılan kulakta progresif, dalgalı işitme kaybı yaşarlar.
Pek çok iç kulak hastalığında olduğu gibi, guinea domuzlarında cerrahi olarak indüklenen hidros, 1965 yılında Robert Kor ve Harold Schneck tarafından ilk kez tanımlandığından beri insan Meniere hastalığı için altın standart hayvan modeli olmuştur. Prosedür başlangıçta daha invaziv bir intradural yaklaşım kullanılarak gerçekleştirilmiş olsa da, merkezimiz hayvanlar için daha düşük morbidite ve mortalite ile sonuçlandığı için ekstradural yaklaşımı tercih etmektedir. Aşağıda, bu oldukça karmaşık prosedürün başarılı ve insani bir şekilde uygulanması için gerekli olan malzemelerin, hayvan bakımının ve cerrahi yaklaşımın açıklaması yer almaktadır.
İlk olarak, gerekli cerrahi malzemeleri açıklayacağım. Hayvan, Charles River International Laboratories Incorporated'dan temin edilmiş yetişkin dişi, Duncan Hartley, albino bir kobay faredir. Oda hazırlığı ve steril kurulum için steril cerrahi kıyafetlere, steril örtülü bir operasyon mikroskobuna, Mars küçük pencereli örtüye, intraoperatif ısıtma pedine ve vakum cihazına ihtiyacınız olacaktır.
5 numara aspiratör, 40 numara aspiratör, steril salin, paslanmaz çelik kap ve bir baş tutucu. Anestezi için, preoperatif olarak kilogram başına 60 miligram ketamin ve kilogram başına 12 miligram ksilazin gereklidir. Preoperatif dönemde, petrol bazlı bir göz kayganlaştırıcısı, elektrikli tıraş makinesi, Betadine ve %70 etil alkol gereklidir; intraoperatif olarak ise 0,6 mililitre %0,25 işaretleme solüsyonu, 11 numara tek kullanımlık emniyetli bistüri, üç adet eğri hemostat, bir Luer periost elevatörü, WEX cell cerrahi pensler ve otolojik drill, 1,5 milimetrelik elmas frez ve 0,5 milimetrelik elmas frez gereklidir.
Düz bir kemik küreti, 10 cc şırınga, kemik mumu, jel köpük, P 13 kesici iğneli 4-0 emilebilir sütür, Adson pens, elmas uçlu iğne tutucu ve sütür makası. Ameliyat sonrası bakım için, ısıtıcı pedli temiz bir kafese ihtiyacınız olacak. 22,7 mg/mL konsantrasyonunda 0,2 mL interfloksasin.
0,05 mL buprenorfinin (0,3 mg/mL) enjekte edin. İlk olarak kobay hayvanı, 60 mg/kg ketamin ve 12 mg/kg ksilazin ile intramüsküler olarak anesteziye alın. Bu rejim, solunum depresyonu olmadan 60 ila 90 dakika süren bir anestezi sağlar; bu süre genellikle bu prosedürün gerçekleştirilmesi için yeterlidir.
Hayvan anestezi altına alındıktan sonra, gözlere petrol bazlı bir kaydırıcı uygulanır. Ardından, başın arka kısmı elektrikli tıraş makinesi ile üst toraks bölgesinden başın tepe kısmına kadar tıraş edilir. Daha sonra bölge Betadine ile, ardından alkol ile hazırlanır.
Artık hayvan cerrahi için hazır. Benim adım Dr. Cliff McGillion. Cleveland'daki Case Western Reserve University Hastaneleri'nde Kulak Burun Boğaz ve Baş Boyun Cerrahisi profesörü ve Otoloji ile Nörotoloji direktörüyüm.
Bugün sizlere, guinea piglerde endolenfatik hidros indüklemek için kullanılan cerrahi tekniği anlatmak istiyorum. Ekstraoral bir yaklaşım izleyerek sigmoid sinüsü açığa çıkarıyoruz; sigmoid sinüsün hemen önünde ve lateralinde yer alan endolenfatik sistemin açıklığını buluyor, kanal ve kese materyalini temizliyor ve kanalı doğrudan görüntüleme altında genişletiyoruz.
Prosedürün en önemli kısmının, sigmoid sinüsün iskeletleştirilmesi ve ardından mediale doğru ilerleyerek endolenfatik kanalın O curriculum bölgesinin doğrudan görselleştirilmesi olduğunu düşünüyorum. Cerrahi saha hazırlandıktan sonra hayvan ameliyathaneye transfer edilir ve bir baş tutucuya yerleştirilir. Oksipital kretin yeterince açığa çıkması için boyun fleksiyona getirilir ve hayvanın sağlık ve güvenliği için steril bir şekilde örtülür.
Prosedür sırasında yeterli vücut sıcaklığını korumak için insan hastalar için gereken steril tekniğin aynısını uygulayın; ilk insizyondan önce operasyon yüzeyinin altına bir ısıtma pedinin yerleştirildiğinden emin olun. Cerrahi alanın çevresine işaretleme maddesi enjekte edilir. Cerrahi prosedür, kafa derisindeki oksiput boyunca orta hat dorsal cilt insizyonu yapılarak başlatılır. Yeterli görünürlük sağlamak için insizyonun her iki yanına birer hemostat yerleştirerek cildi geri çekin; Guinea pig'in güçlü bir hemostatik mekanizması olduğu için elektrokoterizasyona gerek duyulmayacaktır.
Ardından, boyun kası boyunca yatay bir insizyon yapılır. Kemikli oksiput bölgesini açığa çıkarmak için, burada gösterildiği gibi iyi yerleştirilmiş bir insizyon, temporal oksipital sütür hattını hemen ortaya çıkarabilir. Kasın altında genellikle bulunan greater occipital nerve'ün kesilmesi, hayvanın seyirmesine neden olabilir.
Kas kesilirken yeterli anestezi uygulanmış olsa bile, bıçağın altındaki kemiği hissetmek önemlidir. Aksi takdirde insizyon çok aşağıda olabilir ve bu durum, boyun kası geçildikten sonra omurilik transeksiyonu riskine yol açabilir. İnsizyonun üst kısmını kavramak için üçüncü bir hemostatik pens kullanılır ve cerrahi asistan tarafından yerinde tutulur.
Oksipital kemiği açığa çıkarmak için küt diseksiyon kullanılır. Her zaman eksternal oksipital krestin sağ tarafında kalmayı ve sol kulağın kontrol grubu olarak hizmet ettiğini unutmayın. Bu modelde, kranyumu daha fazla açığa çıkarmak ve eksternal oksipital krest ile temporal oksipital sütür hattını görünür kılmak için bir periostal elevatör kullanılır. 1,5 milimetre elmas frez ile delme işlemine, sütür hattının hemen inferiorundan başlanır.
Amaç, posterior fossa ve sigmoid sinüsü açığa çıkarmaktır. Tüm drilling işlemleri her zaman temporal oksipital insizyon hattı üzerinde veya altında kalmalıdır. Kanı aspire etmek için beş numara bir aspiratör tüpü hazır bulundurun.
Ayrıca, bir asistanın alanı steril salin ile sulanmış halde tutmasını sağlayın. 10 cc'lik bir şırıngadan sürekli damlama yapılmalıdır. Delme işlemi iliğimden bir miktar kanamaya neden olacaktır, ancak kanayan bölgeleri yaklaşık bir milimetre derinlikte durdurmak için elmas frez kullanılabilir.
Hafif mavi bir çizgi görünür hale gelecektir. Burası sigmoid sinüstür. Sadece burada bekleyin.
Sigmoid sinüsün lateral kısmına doğru ilerleyin. Endolenfatik kanalın bir kısmı burada bulunabilir. Sigmoid sinüsü delmeden kenarlarının tanımlanması önemlidir.
Üstteki kemik yeterince inceltildiğinde, delme işlemi durdurulur ve aspiratör 40 numara ile değiştirilir. Ayrıca daha yüksek büyütme kullanılır. Üstteki kemiği nazikçe kaldırmak için düz bir sond (pick) kullanılır.
Sigmoid sinüs nazikçe ekarte edilerek medialde, genellikle kanla örtülü olduğu için belirgin şekilde görülmeyebilen operkulum açığa çıkarılır. Şimdi, iskeletleştirilmiş sigmoid sinüs nazikçe mediale doğru ekarte edilerek operkulum açığa çıkarılır. Oluk, endolenfatik keseyi yok ederek nihayetinde endolenfatik duktusa ulaşan daha küçük 0.5 kesici uçla delinir.
Kanal, çevredeki kemiğin beyazlığı içerisinde koyu renkli bir oval olarak görünür. Kanal, kemik mumu ile doldurulmadan önce yaklaşık bir Milimetre derinliğinde delinir. Kemik mumu, jel sünger kullanılarak kanalın içine itilir.
Endolenfatik kanalın bu şekilde tıkanması, endolenfatik hidrops oluşumunu tetikleyecektir. Kasları birleştirmek için 4.0 poly shorb sütür kullanılır. Ardından, cilt insizyonu için cilt altı sütür tekniğine sorunsuz bir geçiş yapılır. Bu kapatma yöntemiyle, sonrasında sütürleri alma ihtiyacı kalmaz ve hayvanın bölgeyi tırmalama veya bir sütür ya da zımbayı çekip çıkarma riski ortadan kalkar.
Ameliyat sonrası Gine domuzu, uyandıkları ana kadar 30 dakikada bir kontrol edilmek üzere vücut sıcaklığını korumak amacıyla bir inkübatöre yerleştirilir. Hayvanın solunum hızı ve vücut rengi incelenir. Bu merkezde, geniş spektrumlu antibiyotik inin ve ağrı komplikasyonları için buprenorphine kullanılır.
Her cerrahi işlemde olduğu gibi, denek için de riskler bulunmaktadır. Bu nedenle, şimdi olası intraoperatif komplikasyonları ve bunlardan nasıl kaçınılabileceğini gözden geçireceğim. Solunum depresyonu söz konusu olduğunda, cerrah, solunum durursa veya yavaşlarsa hayvanın solunum durumunun her zaman farkında olmalıdır.
Cerrahiyi durdurun ve torasik hareketi görsel olarak inceleyin. Hayvan apneik ise, ağzın ve hava yolunun tıkanmadığını kontrol edin. Sigmoid sinüs penetrasyonu durumunda, kanama durana kadar aspirasyon ucuyla birlikte jel köpük ve kompresyon uygulayın.
Dura penetrasyon bölgesini jel köpükle kapatın; vestibüler hasarı önlemek için sigmoid sinüsün lateralinden bir milimetreden fazla derinlikte delme işlemi yapmayın, aksi takdirde posterior semisirküler kanal zarar görebilir ve bu durum ilgili Guinea pig için tüm verileri geçersiz kılar. Guinea piglarda endolenfatik kanalın cerrahi olarak tıkanması teknik olarak zorlu bir operasyondur, ancak uygun aletler, talimatlar ve ilgili anatomi bilgisiyle, hem hayvana insani davranan hem de insan Meniere hastalığı için model olarak yararlı bir şekilde gerçekleştirilebilir.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu video, guinea piginin endolenfatik kanalının cerrahi olarak tıkanmasını ve bunun sonucunda endolenfatik hidrops oluşumunu göstermektedir. Bu model, Meniere hastalığı ile ilişkili kulak patolojilerinin incelenmesi açısından önem taşımaktadır.
Bu cerrahi model, guinea piglerde endolenfatik hidrops oluşturmak için tekrarlanabilir bir yöntem sunarak, Meniere hastalığı patofizyolojisi ile ilgili iç kulak sıvı disregülasyonunun mekanistik çalışmalarına olanak sağlar. Ekstradural yaklaşım, model sadakatini korurken cerrahi morbiditeyi azaltır; böylece otik terapötikler için preklinik hedef doğrulamayı ve assay geliştirmeyi destekler. Endolenfatik homeostaz ve işitme fonksiyonu üzerindeki bileşik etkilerini değerlendirmek için hastalığa özgü bir sistem görevi görür.
Model; hedef doğrulama aşamasından öncü bileşik belirlemeye ve ardından preklinik etkinlik testlerine kadar olan keşif sürekliliğine, özellikle sıvı dengesi disregülasyonunu içeren otik bozukluklar için entegre olmaktadır.