Name: Plastik gömülmesi ve Xenopus laevis Embriyolar Kesit (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-04-29T00:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 39 s
Description: Öğrenin Xenopus laevis embriyolarından plastik kesit hazırlama yöntemini. Bu teknik, doku morfolojisini koruyarak immünofloresan boyama ve yüksek çözünürlüklü görüntüleme sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Tespit <ol><li> (Fisher kedi # 03-339-25b), küçük bir bardak sintilasyon flakon MEMFA ya da% 3.7 FA + PBS bütün embriyolar veya disseke eksplantlar aktarın. Bundan daha fazla değil, sadece 2 saat RT nutator flakon inkübe ve . FA embriyo 2 saatten fazla bırakmayın. FA uzun inkübasyon embriyonik doku zorlaştırır ve algılama süreci antikorlar fakir bir penetrasyon ile sonuçlanabilir. </li><li> FA aspire ve Dent fiksatif flakon (~ 4.5ml) üstüne ekleyin. Yavaşça başka bir 4.5ml ile taze Dent Dent döviz embriyoların yıkamak için flakon birkaç kez ters ve -20 º C en az 48 saat süreyle inkübe edin. Gecelik yeterli DEĞİLDİR. Bu adım, antikor embriyolar daha geçirgen hale getirir. Embriyolar bu durum birkaç hafta saklanabilir. </li></ol> İmmünofloresan <ol><li> Örnek rehidrate. Aşağıdaki gibi, metanol kademeli dizi inkübe: <table style="width: 171px; height: 119px;" border="0" cellpadding="3"><tbody><tr><td> % 75 MeOH / H 2 O </td><td> 10dk </td></tr><tr><td> % 50 MeOH / PBS </td><td> 10dk </td></tr><tr><td> % 25 MeOH / PBS </td><td> 10dk </td></tr><tr><td> PBS </td><td> 10dk </td></tr><tr><td> PBS </td><td> 10dk </td></tr></tbody></table> </li><li> 60mm plastik tabaklar ile% 1.5 agaroz / PBS plakaları olun. Agaroz üst katı haline geldikten sonra PBS dökün. </li><li> Embriyoların Hemi-kesit:% 1.5 agaroz / PBS plaka embriyolar koyun. Forseps bir çift ile bir embriyo kapın ve ince bir jilet kullanarak embriyonun merkezi aracılığıyla ikiye kesmek. Düz bir kesim uçağı başarıyla yarıya olduğunu olanları seçin. <img src="/files/ftp_upload/old/188_2008_7_10_3/188_figure-01.jpg" alt="Şekil 1" width="591" height="193" /> </li><li> Ikiye embriyolar, bir cam sintilasyon PBT şişenin içine aktarın. % 20 keçi serum + PBT 4.5ml ile değişimi. Nutator (Engelleme) 2 saat oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> PBT birincil antikor uygun bir seyreltme hazırlayın. Bu başına örneklerinin 0.5 ml gereklidir. Örneğin, ben C-cadherin 5mm plastik bölümlerde hücre içi lokalizasyonu çalışma tavşan anti-C-kaderin PAB 1 / 200 dilüsyon kullanılır. </li><li> Engelleme çözüm aspire ve seyreltilmiş primer antikor 0.5 ml ekleyin. Şişeleri, plastik bir tüp tutucu stand-up pozisyonda yerleştirin. Bir nutator 4 º C&#39;de bir gece inkübe edin. </li><li> Seyreltilmiş birincil antikor (Bu seyreltilmiş primer antikor kaydedilir ve sonraki 1-2 hafta içinde tekrar edilebilir) çıkarın. RT az 4 kez, her biri (40-60 dakika) için PBT 4.5ml ile yıkayın. </li><li> 1 / 100 dilüsyon PBT Biotin-konjuge sekonder antikor 0.5 ml ile değişimi. Bir nutator 4 º C&#39;de bir gece inkübe edin. Biotin ışıktan korumak için alüminyum folyo ile şişeleri örtün. </li><li> Bu noktadan itibaren, bakım, ışık, yani örnek korumak için bazı kapak veya alüminyum folyo altında şişeleri tutmak alınmalıdır . </li><li> Biotin ikincil antikor (bu da önümüzdeki 1-2 hafta içinde tekrar edilebilir) çıkarın. RT (her biri 40-60 dakika) ya da 4 kez PBT 4.5ml yıkayın. </li><li> PBT içinde Streptavidin (FITC, Texas-kırmızı, vb.) Floresan etiketli 1 / 200 dilüsyon ile Alım Satım 0.5 ml. Bir nutator 4 º C&#39;de bir gece inkübe edin. </li><li> Streptavidin (bu da, yeniden olabilir) çıkarın. RT (her biri 30 dakikalık 15), 3 kez için PBT 4.5ml ile yıkayınız. </li><li> RT 30 dakika süreyle% 3.7 FA + PBS 4.5ml Fix embriyoların. </li><li> Iki kez PBS 4.5ml ile yıkayın. </li><li> Örnek dehydrate. Aşağıdaki gibi, etanol kademeli dizi inkübe: <table style="width: 172px; height: 80px;" border="0"><tbody><tr><td> % 30 EtOH / H 2 O </td><td> 10 dakika </td></tr><tr><td> % 50 EtOH / H 2 O </td><td> 10 dakika </td></tr><tr><td> % 75 EtOH / H 2 O </td><td> 10 dakika </td></tr><tr><td> 100% EtOH </td><td> 10 dakika </td></tr></tbody></table> </li><li> Örnek ışıktan korumak için bir kapak ile 4 º C&#39;de% 100 EtOH saklanabilir. </li></ol> Sızma <ol><li> Technovit 7100 infiltrasyon karışımı olun. Ben genellikle, 50ml, konik tüp baz sıvı 15ml sertleştirici 150mg ekleyin ve 15 dakika boyunca nutator sallayarak karıştırın. Bu infiltrasyon karışımı bir ay kadar 4 ° C&#39;de muhafaza edilebilir. </li><li> Technovit infiltrasyon mix / EtOH açılan kademeli serisi ile alışverişi infiltrasyon karışımı ile örnek Infiltrate, aşağıdaki gibi: <ol><li> % 50 Technovit / EtOH - 1 saat </li><li> % 100 Technovit - 1 saat </li><li> % 100 Technovit - gecede </li></ol></li><li> Specimen 4 º C&#39;de% 100 infiltrasyon karışımı bir ay kadar saklanabilir. Numuneler üzerinde ışıktan korumak için bir kapak koyun. </li></ol> Gömülmesi <ol><li> Technovit 7100 gömme karışımı olun: 1.5ml bir tüp içinde infiltrasyon karışımı 0.75ml ve sertleştirici II 50ml ekleyin. Tersine tüp birkaç kez karıştırın. </li><li> , Plastik bir transfer pipet kullanarak, gece 0.5 ml ince duvarlı PCR tüp içine sızmış bir örnek alır. Süpernatantı çıkarın. </li><li> 0.25ml numune için bu bölümü adım # 1, &quot;Gömme&quot;, yapılan gömme karışımı ekleyin. Orient sıkıcı bir ucu diseksiyon iğne (diseksiyon iğnesi ahşap saplı) ile hafifçe dürtmek, tüp aşağıya doğru bakacak şekilde diseksiyon düzlemi ikiye embriyo. </li><li> Kapağını kapatın ve yaklaşık dört saat boyunca karanlık bir yerde tüp inkübe plastik polimerize izin verecek. </li><li> Technovit 3040 karışımı olun. Tozu 1 gram ağırlığında bir çanak alın ve 0.5 ml sıvı ekleyin. Hemen bir bluetip kullanarak toz ve sıvı karıştırın. Sertleştirilmiş spacimen üstüne dökün. Bu sarı Technovit 3040 tüpten çıkan tüm plastik blok önleyecektir. </li></ol> Kesit <ol><li> Ksilen Histoknife H Bezi (EtOH genellikle yeterince iyi değil) ve sizin mikrotom ayarlayın. Yaklaşık 45 ° &#39;de bıçak açısı. Bu alanın temizliği kesitli dilim kalitesi çok önemli, çünkü, çok, ksilen ile bıçağın önünde sahne alan silin. </li><li> Tüp tarafında kesin ve karton bir bıçak kullanarak kapalı ucu kabuğu. <img src="/files/ftp_upload/old/188_2008_7_10_5/188_figure-02.jpg" alt="Şekil 2" width="818" height="243" /> </li><li> Mikrotom mandren tutucu örnek ayarlayın. </li><li> Bölüm dilim için bir montaj odasına bir slayt camına &quot;basın-seal&quot; silikon izolatör takın. Temiz benchtop slayt sıkıca yalıtkan basın ve yalıtkan herhangi bir hava kabarcıkları olmadan tamamen takılı olduğundan emin olun diğer taraftan bakın. Pasteur pipeti kullanarak slayt havuz, su yüzeyi, düz, iç bükey değil ya da şekil olarak dışbükey hale olduğu görülebilir seviyeye kadar temiz ve sıcak dH 2 O (~ 40 ° C) dökün. </li><li> Bölüm dilim yapmaya başlayın. Immunofloresan çalışmalar için 5 mm bölüm dilim olun. - 8 mm sinyallerin amacı ve yoğunluklarına bağlı olarak, in situ hibridizasyon örnekleri için, dilimlerin kalınlığı ~ 3 aralığında ayarlanabilir olabilir . </li><li> Küçük bir fırça kullanarak, bölüm dilim bıçak önünde sahne su ile montaj odasına taşıyın. Su havuzunun üstüne bir dilim fırça tutun ve sıkıcı bir ucu diseksiyon iğne ile vurmak suretiyle su dilim aşağı açılır. Su yüzeyine vurur dilim en kısa sürede dairesel bir şekil genişletmek olacaktır. </li><li> Montaj odasına su yüzey alanının en kesit dilimleri ile dolduğunda, Pasteur pipeti kullanarak suyun neredeyse yarısı kadar emmek. Örnek tamamen kuru bir slayt sıcak gecede slayt inkübe edin. </li><li> Counter-beş dakika için DAPI (TE içinde 0.1mg/ml) 1ml leke. Aspire DAPI ve örnek kurulayın. </li><li> Slayt silikon kauçuk yalıtkan çıkarın. Şimdi resimler örnek alınabilir. 4 örnek Mağaza ° C, ışıktan korunmalıdır. </li></ol>

Antijen veya epitopu etiketleri karşı primer antikor: PBT uygun bir seyreltme olun. Biotin-konjuge sekonder antikor çeşitli satıcılardan biotin-konjuge antikorların satmak.

plastik gömülmesi ve xenopus laevis embriyolar kesit

Plastic Embedding and Sectioning of Xenopus laevis Embryos

Plastik bölümleri, parafine gömülü ya da dondurulmuş bölümleri daha birçok doku türleri için bu yöntem daha kullanışlı hale getirmek, floresan sekonder antikor ile boyanmış doku ince bölümlerde gerçek doku morfolojisi korumak. Bu video boyama, plastik gömme ve kesit yöntemi gösterilmiştir.

Plastik gömülmesi ve Xenopus laevis Embriyolar Kesit

Merhaba, benim adım Sochi ota. California Üniversitesi'ndeki Gelişimsel ve Hücre Biyolojisi Bölümü'nde, Dr. Ken Cho'nun laboratuvarında doktora sonrası araştırmacıyım. Bugün sizlere xenopus embriyosunun basit kesit hazırlama işlemini göstereceğim.Bu prosedür, geç gaz evresindeki kurbağa embriyosunun ikiye bölünmesini, ilgili moleküle karşı antikorla boyanmasını, plastiğe sızdırılmasını ve beş mikron kalınlığında aynı plastik kesitlerin alınmasını içerir. Bu prosedür, çok yüksek çözünürlüklü görüntülerle immunofloresan immünohistokimya veya in situ hibridizasyon çalışmalarında kullanılabilir. Tamam, bunlar 10'dan fazla embriyonun plastik kesitlenmesi için kullandığım küçük, kullanışlı araçlardır.Bu, delta uçlu bir metal penset olup birincisi, embriyoyu plastikte yönlendirmek için kullanılabilir. İkincisi ise, embriyoyu mikrotomdan montaj yüzeyine aktarmak için bu boya fırçasıyla birlikte kullanılabilir. Bu, lam yüzeyine yerleştirdiğim ve plastik kesitli embriyo dilimlerini monte edebileceğim bir su havuzu oluşturan silikon kauçuk bir izolatördür.Şimdi, in situ hibridizasyon veya immünofloresan saptama gibi analizler için fikse edilmiş embriyonun nasıl ikiye bölündüğünü gösteriyorum.

plastic-embedding-and-sectioning-of-xenopus-laevis-embryos

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

İşte biz sitoplazmik mikroenjeksiyon...

Xenopus laevis Oosit, Mikroenjeksiyon

Xenopus embriyonik ektoderm hücre polarite çalışmaları için cazip bir model haline gelmiştir. Bir tahlil floresan proteinlerin hücre içi dağıtım ektoderm hücreler değerlendirilir olduğu açıklanmıştır. Bu protokol adresi sorular sinyal mekansal kontrolü ile ilgili yardımcı olacaktır.

Floresan Proteinleri Polarize Translokasyon Xenopus Wnt Sinyalizasyonu Cevabı Ektoderm

Dan Sinir Eksplantasyon Kültürleri<em&gt; Xenopus laevis</em

Xenopus arasında yüz doku "Extreme Anterior Etki" nakli için bir tekniktir embriyolar geliştirilmiştir laevis'den. Doku kraniofasial gelişimi için ve yüz bölgeleri arasındaki etkileşimleri sinyalizasyon için yerel gereksinimleri çalışma izin, başka içine bir gen ekspresyon kökenli taşınmış olabilir.

Yüz Nakli<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Embriyolar

Bu protokol Xenopus laevis neurulas gelen premigratory kranial sinir kret (NC) teşrih nasıl açıklanır. Bu eksplantlar, fibronektin ve in vitro kültürlenmiş üzerine kaplanır, ya da arka ana embriyolara aşılanabilirler. Bu teknik NC epitel-to-mezenşimin geçiş, göç, ve farklılaşma mekanizmaları eğitim veriyor.

Diseksiyonu<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Sinir Crest için<em&gt; In vitro</em&gt; Eksplantasyon Kültür veya<em&gt; In vivo</em&gt; Transplantasyon

El yazması burada Xenopus floresan levhası 'ligandların salgılanmasını ve difüzyon analiz yöntemleri basit bir kümesi sağlar. Bu ligand dağılımını değiştirmek için başka proteinlerin yeteneğini test ve morfojen degradeler düzenleyen mekanizmalar içgörü verebilir deneyleri izin verdiği için bir ortam sağlar.

Konfokal Analizi Kullanımı<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Wnt ve Shh morfogen Gradyanların modülyatorlar Soruşturma

Xenopus embriyolarında, blastocoel'in çatısından alınan hücreler pluripotenttir ve çeşitli dokular oluşturmak üzere programlanabilir. Burada, erken nöral gelişimin temel in vivo ve in vitro özelliklerini araştırmak için bir test sistemi olarak amfibi blastocoel çatı eksplantlarını kullanma protokollerini açıklıyoruz.

Kök hücre benzeri<em&gt; Xenopus</em&gt; Embriyonik Eksplantlarındaki Erken Nöral Gelişim Özellikleri Okuyacak<em&gt; İn Vitro</em&gt; Ve<em&gt; İn Vivo</em

Bu makalede, kesitleri üzerinde imüno-floresansı ile Xenopus embriyo, merkezi sinir sisteminde, farklı nöronal hücre popülasyonları görselleştirmek için uygun ve hızlı bir yöntem sunulur.

İlköğretim nöron değerlendirilmesi<em&gt; Xenopus</em&gt; Embriyolar kullanarak immün

Floresan kalsiyum görüntülemeile in situ hibridizasyonunu birleştiren ve deneycinin kalsiyum aktivitesi modellerini tek hücreli düzeyde gen ekspresyonu profilleriyle ilişkilendirmesine olanak tanıyan iki parçalı bir protokol salıyoruz.

Xenopus laevis'te Nöronal Öncül Karakterizasyonu için Floresan Kalsiyum Görüntüleme ve Daha Sonra Yerinde Hibridizasyon

Xenopus laevis 1-hücreli embriyolardan mini embriyolar yapmak için fiziksel bir daraltma yöntemini açıklıyoruz.

Xenopus Mini Embriyoları Üretmek İçin Fiziksel Manipülasyon

Öğrenin Xenopus laevis embriyolarından plastik kesit hazırlama yöntemini. Bu teknik, doku morfolojisini koruyarak immünofloresan boyama ve yüksek çözünürlüklü görüntüleme sağlar.

Plastik gömülmesi ve Xenopus laevis Embriyolar Kesit

Daha fazla video keşfet