$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Bileşimi fizyolojik hücre dışı ortam veya sitoplazma ile eşleşen bir banyo çözeltisinde bir numune içeren bir kayıt odasını bir mikroskop aşamasına yerleştirerek başlayın. Hücre içi koşulları taklit eden bir elektrolit çözeltisi içinde yıkanmış gümüş elektrot içeren bir pipet olan kayıt mikropipetini, pozitif basınç uygulayarak nörona doğru ilerletin ve hücre zarı ile temas edin.
Membran ile pipet arasında sıkı bir sızdırmazlık sağlamak için pozitif basınçtan negatif basınca yavaşça geçiş yapın. Hücreyi sabit bir voltajda tutmak için amplifikatörde bir tutma potansiyeli ayarlayın. Daha sonra emme uygulayarak mikropipet içindeki hücre zarını yırtın.
Hücre zarı yırtıldığında, tutma potansiyeli, iyonların voltaj kapılı iyon kanallarından akışına neden olur ve kayıt elektrodu tarafından kaydedilen bir zar potansiyeli oluşturur. Membran potansiyelini hemen kaydedin. Kayıt elektrodu, sinyali, membran potansiyelini tutma potansiyelinden çıkaran geri besleme amplifikatörüne iletir - membran potansiyelinin görsel bir görüntüsünü sunan bir osiloskop ve bir bilgisayar. Aşağıdaki protokolde, bir zebra balığı embriyosunda Mauthner hücresi üzerinde bir yama kelepçesi ölçümü yapacağız.
- Yama sıkıştırmaya hazırlanmak için, yatay bir çektirme içinde ince duvarlı borosilikat camlı bazı yama kelepçesi pipetlerini çekerek başlayın. Pipet ucu çapları, yangınla parlatmadan sonra pürüzsüz bir kenara kadar yaklaşık 0,2 ila 0,4 mikrometredir ve sap konikliği yaklaşık 4 milimetre uzunluğundadır.
Pipet ucunu hücre içi sıvıya batırarak hücre içi solüsyonla doldurun. Ardından pipete bir şırınga iğnesi yerleştirin ve pipeti doldurmayı bitirmek için hücre içi solüsyonu şırıngadan nazikçe boşaltın. Pipeti amplifikatör kafasına takın stagElektrofizyoloji kurulumunda. Kafa aşamasını yatay eksene yaklaşık 45 derecelik bir açıda tutmak önemlidir, çünkü bu, pipet için Mauthner hücresi ile yüksek dirençli contaların oluşturulması için uygun bir giriş açısı sağlar.
Pipet banyo solüsyonuna inmeden hemen önce, ucun tıkanma olasılığını azaltmak için pipete az miktarda pozitif basınç uygulayın. Pipette az miktarda pozitif basınç uygulayarak M hücresine yaklaşmaya devam edin. Pozitif basınç, hücreyi nazikçe bir yandan diğer yana iter ve hemen hücrenin üzerine yerleştirildiğinde, hücre zarı üzerinde küçük bir çukur oluşturur.
Şimdi, pipet ile zar arasında güçlü bir sızdırmazlık oluşabilmesi için hücre yüzeyini nazikçe temizlemek için pipeti birkaç saniye yerinde bırakın. Ardından, sızdırmazlığı başlatmak için pipetteki pozitif basıncı boşaltın. Negatif pipet potansiyeli ile birleşen az miktarda negatif basınç, birkaç saniye içinde giga-ohm contaların oluşmasına neden olur.
Daha sonra, amplifikatördeki tutma potansiyelini eksi 60 milivolt olarak değiştirin. Hücre zarını bir dizi kısa emme darbesi ile yırtın. Ardından hemen membran potansiyellerini kaydedin ve kapasitans artefaktlarını en aza indirin. Hücre kapasitansını ve erişim direncini %70 ila %85 oranında telafi edin.
Erişim direnci her 30 saniyede bir ila bir dakika arasında izlenmelidir ve %20 veya daha fazla bir değişiklik varsa deneyi iptal edin. Deney sona erdikten ve yeterli veri elde edildikten sonra, arka beyni bir çift forseps ile çıkararak embriyoyu feda edin.