$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Tek bir meme kanseri kök hücresi, birincil mamosfer adı verilen bir hücre kümesine yol açar. Bunları elde etmek için, hücrelerin büyüme aşamasında olduğundan emin olmak için önce %70 ila %80 birleşene kadar bir meme kanseri hücre hattı kültürleyin. Hücreleri şişeden ayırmak için Tripsin-EDTA ekleyin ve Tripsin'in etkisini durdurmak için serum içeren bir ortam ekleyin.
Şimdi, hücreleri bir tüpe alın ve hücre peletini elde etmek için santrifüjleyin. Peletleri serum olmadan mamosfer ortamında yeniden süspanse edin ve tek hücreli bir süspansiyon elde etmek için süspansiyonu bir hücre süzgeci kapağı filtresinden geçirin. Bu süspansiyon kök hücreler, progenitör hücreler ve farklı protein ekspresyonları gösteren farklılaşmış hücrelerden oluşur.
CD44 ve CD24, meme kanseri kök hücrelerinin karakteristik hücre yüzey proteinleridir. CD44 ekspresyonu için pozitif, CD24 için negatiftirler. Floresan veya manyetik aktive hücre sıralama kullanarak hücreleri hücre süspansiyonundan izole edin. Daha sonra, hücrelere bir alikot ve ad tripan mavisi lekesi alın ve tohumlama yoğunluğunu bulmak için bir hemositometre lamı kullanarak mililitre başına canlı hücre sayısını hesaplayın.
Son olarak, hücreleri altı kuyulu ultra düşük yapışkan bir plakaya tohumlayın, böylece hücreler askıda kalır. Kürelerin çapı 40 mikron olana kadar plakayı rahatsız etmeden plakayı 5 ila 10 gün inkübe edin. Aşağıdaki protokolde, bir meme kanseri hücre hattından birincil mamosferler üreteceğiz.
- Steril bir kültür başlığı altında çalışarak, bu işleme %70 ila %80 birleşik olan MCF7 veya MDA-MB-231 hücreleri ile başlayın. Ortamı şişeden aspire edin. Hücreleri PBS ile iki kez yıkayın, ardından Tripsin-EDTA ekleyin ve iki ila altı dakika inkübe edin. Ayırma işleminden sonra, %10 FBS içeren mamosfer ortamı ekleyerek söndürün.
Hücreler ayrıldıktan sonra, bunları 15 mililitrelik bir konik santrifüj tüpüne aktarın ve beş dakika boyunca oda sıcaklığında 200 kez g döndürün. Bu santrifüjlemeyi takiben süpernatanı boşaltın, ardından hücreleri bir ila beş mililitre mamosfer ortamında yeniden süspanse edin. Hücre peletini parçalamak için 10 kez yukarı ve aşağı pipetleyin.
Daha sonra, hücre süspansiyonunu 40 mikronluk bir hücre süzme başlığı filtresine aktarın ve tek hücreli bir süspansiyon elde etmek için akışı ekli tüpte toplayın. Yeniden süspanse edilmiş hücrelerin 20 mikrolitrelik bir kısmını bir hemositometreye pipetleyin ve incelemek için bir mikroskop kullanın. Burada görüldüğü gibi hücre kümeleri gözlenirse, süspansiyonu 25 gauge iğnenin içine veya dışına bir veya iki kez geçirmek için bir şırınga kullanın.
Hücreler burada gösterildiği gibi tek bir hücre süspansiyonuna dağıtıldıktan sonra, CD44 pozitif hücreleri pozitif olarak seçmek için floresan ile aktive edilmiş hücre sıralaması veya LS-sütunu kullanarak manyetik aktive edilmiş hücre sıralaması yoluyla CD44 pozitif, CD24 negatif hücresel alt kümelerini izole etmeye devam edin. İstenen hücreler LS kolonunun duvarlarına yapıştığından, akışı atın, ardından hücreleri kolondan çıkarın, beş mililitre tampon uygulayın ve istenen hücreleri temizlemek için kolonla birlikte verilen pistonu uygulayın ve bastırın.
Ardından, negatif seleksiyonla popülasyonu daha da saflaştırmak için bir LD sütunu kullanın. Burada, CD24 pozitif hücreler LD sütunlarına bağlanır. CD24 negatif hücrelerini içeren akışı toplayın. Daha sonra, akış sitometrisi kullanarak, izole edilen tüm hücrelerin fenotiplerini doğrulayın. Tripan mavisi dışlama yöntemini kullanarak, canlı hücrelerin yoğunluğunu hesaplayın.
Hücre süspansiyonunu uygun şekilde seyrelttikten sonra, 2 mililitre tam mamosfer ortamında santimetre kare başına 500 ila 4.000 hücre içeren altı kuyulu ultra düşük bir bağlantı plakasının her bir kuyucuğuna tohumlayın. Plakaları, küreler gözlenene kadar 5 ila 10 gün boyunca rahatsız etmemeye dikkat ederek inkübe edin. Küreler en az 40 mikron çapında olana kadar kültürlemeye devam edin, ancak henüz apoptotik hale gelmeye başlamadı.