Name: Fare Embriyonik Akciğer Kültür, Dallanma Moleküler Mekanizmalar değerlendirin Bir Sistem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-30T17:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 32 s
Description: Öğrenin fare embriyonik akciğer izolasyonu ve organ kültürü yöntemini. Epitel-mezenkimal etkileşimleri ve dallanma morfolojisini incelemek için geliştirme biyolojisi ve rejeneratif tıpta kullanılan bu teknik, FGF9 gibi tedavilere yanıtları gözlemlemenizi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Şaban Araştırma Enstitüsü doktora öncesi Ödülü (PMDM) tarafından desteklenen ve NIH RO1 HL75773 (DW).

Organ kültür, gen ve protein ifade çalışmak için çok yararlı ve çok yönlü bir tekniktir. Bu ex vivo kültür yöntemleri, in vivo çalışmalar tamamlayıcı olarak veya ön kullanılabilir . 1. Embriyonik Akciğer izolasyonu <ol><li> Zamanlı gebe farelerin NIH ve OLAW kurallarına göre CO 2 narkoz postcoitum gün 11.5 veya 12.5 (E11.5-12.5) kurban. Hayvan bir odaya yerleştirilir ve% 100 CO 2 tanıtıldı. Hayvan bilinçsiz sonra CO 2 akışını artırmıştır. Klinik ölüm hayvan sağlanmalıdır. </li><li> Aşağıdaki adımların hepsi bir laminer akış kaputu steril koşullar altında tamamlanması gerekir. Hamile kadınlarda rahim kaldırılır. Hayvan rahim kaldırmak için, hamile kadınlarda sırt yerleştirilir ve% 70 etanol ile püskürtülür. Karında bir kesi yapılır ve deri hayvanın arka ayakları tutarak cildi yukarı çekerek kaldırılır. Periton boşluğuna açılır ve rahim hayvan kaldırılır. </li><li> Kan soğuk Hanks Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS) ile dolu bir 50 ml konik tüp içinde rahim koyarak durulanır ve tüp, 2 dakika boyunca hafifçe derinden sarsılır. </li><li> Rahim sonra bir Petri kabındaki Anatomi stereoskopik mikroskop altında yerleştirilir ve embriyoların rahim duvarına incising yaylı makas kullanılarak rahim serbest bırakıldı. Embriyolar delikli bir kaşık kullanarak hasat ve HBSS içeren yeni bir Petri kabındaki buz üzerinde yerleştirilir. </li><li> Anatomi stereoskopik mikroskop altında, embriyonik akciğerleri soğuk HBSS (Şekil 1) içeren bir Petri kabındaki tek tek disseke edilir. </li><li> Izole, steril bir transfer pipet kullanarak HBSS içeren bir Petri kabındaki embriyonik akciğer buz üzerinde yer almaktadır. </li></ol> 2. Embriyonik Akciğer Kültürü <ol><li> 1 mililitre başına iyi D-MEM/F-12 500 mikrolitre Penisilin-Streptomisin 50 ünite / ml ile desteklenmiş bir Nunclon Polistiren çanak eklenir. </li><li> Nuclepore Polikarbonat Parça-Etch Membran medyanın üstüne yerleştirilir. Nuclepore Polikarbonat Track-Etch Membran medyanın üstüne yerleştirildiğinde, parlak tarafı, medya, ve kaba yan yukarı bakacak karşı olduğundan emin olun. </li><li> Disseke embriyonik akciğer, steril bir transfer pipet kullanarak Nuclepore Polikarbonat Parça-Asitli Membran üstüne yerleştirilir. </li><li> Forseps kullanarak embriyonik akciğer pozisyonu ayarlanır. Embriyonik akciğer filtre üzerine yerleştirilmiş sağlam bir trakea olmalıdır ve düz bir konuma sahip trakea ile yerleştirilir, böylece tüm akciğerleri aynı iç basınç olanak sağlar. </li><li> Nunclon Polistiren çanak bir hücre inkübatör (Şekil 2) istenen kültür kez aktarılır. </li></ol> 3. Malzemeler 1. Embriyonik Tüm Akciğer İzolasyon <ol><li> Zamanlı gebe (C57BL6 vahşi tip veya transgenik) farelerde postcoitum gün 11.5 13.5 (E11.5-13.5) feda olsun. </li><li> Kalsiyum klorür, magnezyum klorür, magnezyum sülfat olmadan Hanks 'Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS) (1X), sıvı,. (Invitrogen, Carlsbad, CA), 50 ünite / ml Penisilin-Streptomisin (Invitrogen, Carlsbad, CA) ile desteklenmiştir. 4 ° C açıldıktan sonra oda sıcaklığında ve HBSS saklayın. Kısım ve mağaza -20 ° C'de Penisilin-Streptomisin </li><li> Anatomi stereoskopik mikroskop (Leica, Wetzlar, Almanya). </li><li> Dumont forseps, Güzel iris makası (düz), Noyes yaylı makas ve Moria ® kaşık (perfore) (Güzel Bilim Araçlar, Foster City, CA) de dahil olmak üzere Diseksiyon araçları. </li></ol> 2. Embriyonik Tüm Akciğer Kültür <ol><li> Orta Dulbecco'nun Modifiye Kartalı: Besin Mix F-12 (D-MEM/F-12) (1X), sıvı, 1:1 L-glutamin içerir, ancak hiçbir HEPES tamponu. (Invitrogen, Carlsbad, CA), 50 ünite / ml Penisilin-Streptomisin (Invitrogen, Carlsbad, CA) ile desteklenmiştir. 4 DMEM/F-12 ışık (örneğin, alüminyum folyo kaplı) uzak şişe ve mağaza ° C tutun Kısım ve mağaza -20 ° C'de Penisilin-Streptomisin </li><li> Nuclepore Polikarbonat Parça-Asitli Membran, 8.0 m, 13mm (whatman Nuclepore Parça-Etch membran (Whatman Florham Park, NJ). </li><li> Kapaklı Nunclon Polistiren çanak, 4 kuyu (Rochester, NY). </li><li> Tek kullanımlık transferi pipetler, steril (Fisher Scientific, Pittsburgh, PA). </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2035/2035fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1. E12 embriyonik akciğerler Diseksiyon. (A) E12.5 bütün embriyo sağ tarafında (B) Sağ ön ayakları embriyo çıkarıldı (C), sabit çanak embriyo tutan sol el tarafından tutulan Forseps . Oklar (D) Embriyonik akciğer, kalp (kaldırıldığında arka yatıyor diseksiyon planı ;Omurga) ve anterior. Bu rakam, cilt ve kalp kaldırılması sonra akciğerler gösterir. (E) Farinks kaldırılması embriyo sağlam akciğer ayrılmasına izin veren (F), fazladan faringeal doku ve yemek borusu koparılmış . E12.5 embriyonik akciğer sağlam trakea ve larinks ile disseke gösterilmiştir. (Cr) Kranial lob medial lob (Med), (Ca) Kaudal lob (Acc) Aksesuar lob (Le), Sol lob. <img src="/files/ftp_upload/2035/2035fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2 FGF9 mezenşimin genişleme ve in vitro olarak yetiştirilen akciğer epitel dilatasyon neden olur. E12.5 akciğer (AC) FGF9 yokluğunda 48 saat için yetiştirilir. Dallanma artışı Not (DF) E12.5 akciğer FGF9 varlığı 48 saat için yetiştirilir. Dilatasyon gibi erken 24 saat sonra kültür epitel ve mezenşimin (E) Not. 48 saat sonra (F), epitel üzerindeki etkisi daha belirgindir. Ölçek çubuğu: AF 400 mikron 4. Bu deneysel bir yaklaşım için tam metin protokolü mevcuttur <a href="http://springerprotocols.com/Abstract/doi/10.1007/978-1-59745-019-5_5">Springer Protokolleri</a> .

<ol><li>Alescio, T., Cassini, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+in+vitro+of+tracheal+buds+by+pulmonary+mesenchyme+grafted+on+tracheal+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Zool%22%5BJournal%5D)">Induction in vitro of tracheal buds by pulmonary mesenchyme grafted on tracheal epithelium.</a> J Exp Zool. 150, 83-94 (1962).</li>
<li>Warburton, D., Schwarz, M., Tefft, D., Flores-Delgado, G., Anderson, K. D., Cardoso, W. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+molecular+basis+of+lung+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Dev%22%5BJournal%5D)">The molecular basis of lung morphogenesis.</a> Mech Dev. 92, 55-81 (2000).</li>
<li>Spooner, B. S., Hardman, P., Paulsen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gravity+in+mammalian+organ+development%3A+differentiation+of+cultured+lung+and+pancreas+rudiments+during+spaceflight%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Zool%22%5BJournal%5D)">Gravity in mammalian organ development: differentiation of cultured lung and pancreas rudiments during spaceflight.</a> J Exp Zool. 269, 212-222 (1994).</li>
<li>Moral, del, M, P., De Langhe, S. P., Sala, F. G., Veltmaat, J. M., Tefft, D., Wang, K., Warburton, D., Bellusci, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+role+of+FGF9+on+epithelium+and+mesenchyme+in+mouse+embryonic+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Differential role of FGF9 on epithelium and mesenchyme in mouse embryonic lung.</a> Dev Biol. 293, 77-89 (2006).</li>
<li>Moral, D. el, M, P., Sala, F. G., Tefft, D., Shi, W., Keshet, E., Bellusci, S., Warburton, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-A+signaling+through+Flk-1+is+a+critical+facilitator+of+early+embryonic+lung+epithelial+to+endothelial+crosstalk+and+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">VEGF-A signaling through Flk-1 is a critical facilitator of early embryonic lung epithelial to endothelial crosstalk and branching morphogenesis.</a> Dev Biol. 290, 177-188 (2006).</li>
<li>Jaskoll, T. F., Don-Wheeler, G., Johnson, R., Slavkin, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+mouse+lung+morphogenesis+and+type+II+cytodifferentiation+in+serumless%2C+chemically+defined+medium+using+prolonged+in+vitro+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Differ%22%5BJournal%5D)">Embryonic mouse lung morphogenesis and type II cytodifferentiation in serumless, chemically defined medium using prolonged in vitro cultures.</a> Cell Differ. 24, 105-117 (1988).</li>
<li>Seth, R., Shum, L., Wu, F., Wuenschell, C., Hall, F. L., Slavkin, H. C., Warburton, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+epidermal+growth+factor+expression+in+early+mouse+embryo+lung+branching+morphogenesis+in+culture%3A+antisense+oligodeoxynucleotide+inhibitory+strategy%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Role of epidermal growth factor expression in early mouse embryo lung branching morphogenesis in culture: antisense oligodeoxynucleotide inhibitory strategy.</a> Dev Biol. 158, 555-559 (1993).</li>
</ol>

fare embriyonik akciğer kültür, dallanma moleküler mekanizmalar değerlendirin bir sistem

Mouse Embryonic Lung Culture, A System to Evaluate the Molecular Mechanisms of Branching

Akciğer ilkel şartnamesi dallanma morfolojilerinden yanı sıra, çeşitli akciğer hücre soylarının oluşumu çevresindeki mezenşimin ve Mesothelium akciğer endoderm belirli bir etkileşim gerektirir. Akciğer mezenşimin akciğer dallanma morfolojilerinden için endüktif sinyallerin kaynağı olarak gösterilmiştir. Epitel-mezenkimal mezotel etkileşimleri de embriyonik akciğer morfolojilerinden için kritik öneme sahiptir. Erken embriyonik akciğer organ kültürü epitelyal-mezenkimal etkileşimleri çalışmak için çok yararlı bir sistem. (Anne etki ve kan akışını yokluğunda) bu sistemde kolayca manipüle edilebilir belirli koşullar altında epitelyal ve mezenkimal morfolojilerinden ilerler. Daha da önemlisi bu teknik bir serumless, kimyasal olarak tanımlanmış bir kültür ortamı kolaylıkla yapılabilir. Kazanç ve fonksiyon kaybı ifade proteinler, Rekombinant viral vektörlerin ve / veya transgenik fare suşlarının, antisens RNA, RNA girişim yanı sıra gen demonte analizi kullanılarak elde edilebilir.

Erken embriyonik akciğer organ kültürü epitelyal-mezenkimal etkileşimleri çalışmak için çok yararlı bir sistem. , Bu sistem içinde kolaylıkla manipüle edilebilir belirli koşullar altında epitelyal ve mezenkimal morfolojilerinden ilerler.

Fare Embriyonik Akciğer Kültür, Dallanma Moleküler Mekanizmalar değerlendirin Bir Sistem

Akciğer primordial spesifikasyonu ile dallanma morfojenizi ve çeşitli pulmoner hücre soylarının oluşumu, ...'nın spesifik bir etkileşimini gerektirir.

Bu videoda, fare embriyonik akciğerlerinin diseksiyonu ve kültürü için bir yöntem gösterilmektedir. Prosedür, E 11.5 veya E 12.5 aşamasındaki embriyoların toplanmasıyla başlar. Ardından, embriyolar açılır ve akciğerler çıkarılır.Ardından akciğerler, sıvı-hava arayüzüne ekilir ve kültürleme işleminin ardından inkübe edilir. Spesifik uygulamalara yanıt olarak embriyonik akciğerin mezenşimi ve epitelyumunun büyüme ve dallanmasındaki değişiklikler, bir stereo mikroskop kullanılarak gözlemlenebilir. Merhaba, ben David War Burton.Los Angeles'taki Ban Araştırma Enstitüsü Çocuk Hastanesi'nde gelişimsel biyoloji ve rejeneratif tıp programını yönetiyorum. Ben de Dr. War Burton Laboratuvarı'nda kıdemli doktora sonrası araştırmacı Jan Carro. Bugün size embriyonik fare akciğerlerini izole etme ve bunları organ kültürüne yerleştirme tekniğini göstereceğiz.Bu teknik, yaklaşık 20 yıl önce USC Diş Hekimliği Fakültesi'nden Tina Jaco Halkin ve Pablo'nun yaptığı orijinal tanımlamadan geliştirilmiştir. Laboratuvarımızda bu prosedürü limb branching morfolojisini incelemek için kullanıyoruz. Öyleyse başlayalım.Gebeliğin 11,5 veya 12,5. gününde, karbondioksit ile sakrifiye edilmiş zamanlanmış gebe bir fareyi laminar akışlı kabin içerisinde sırtüstü yerleştirin. %70 etanol ile püskürtün. Karın bölgesinde bir insizyon yapın.Ardından, hayvanın arka bacaklarını tutarken deriyi yukarı doğru çekerek çıkarın. Periton boşluğunu açın ve uterusu çıkarın. Uterusu, soğuk hanks dengeli tuz çözeltisi veya HBSS ile doldurulmuş 50 millilitre konik tüpün içine yerleştirin ve kanı durulamak için iki dakika boyunca nazikçe sallayın.Ardından, uterusu stereoskopik bir diseksiyon mikroskobu altında Petri kabına aktarın. Embriyoları serbest bırakmak için yaylı makas kullanarak uterus duvarını kesin. Daha sonra delikli bir kaşık yardımıyla embriyoları toplayıp HBSS içeren bir Petri kabına yerleştirin ve buz üzerine koyun.Stereoskopik diseksiyon mikroskobu altında çalışmaya devam edin ve embriyonik akciğerlerin diseksiyonuna başlayın. Embriyoyu sol yanına yatırarak işleme başlayın. Penset sol eldeyken, penset yardımıyla sağ ön ekstremiteyi çıkarın.Embriyoyu ekstremite açıklığından başlayarak kesin ve deriyi çıkarın. Bu adım, iç organları görmenizi sağlayacak ve bir sonraki adım için kalp ile akciğerlerin yerini belirlemenize yardımcı olacaktır. Kalbi çıkarın.Embriyonik akciğerler, kalbin posteriorunda ve omurganın anteriorunda yer alır. Ardından, sağlam akciğeri embriyodan ayırın. Daha sonra, yabancı dokuları ve özofagusu kesin.Akciğerler çıkarıldıktan sonra, bunları buz üzerinde soğuk HBSS içeren bir Petri kabına aktarmak için steril bir transfer pipeti kullanın. Klon olmayan delta polistiren bir kabın her kuyucuğuna, mililitre başına 50 ünite penisilin streptomisin ile desteklenmiş 0,5 ila 1 mL D-M-E-M-F 12 ekleyin. Ardından, parlak tarafı aşağıya ve pürüzlü tarafı yukarıya gelecek şekilde, besiyerinin üzerine bir nükleo polikarbonat iz oyma membranı yerleştirin.Steril bir transfer pipeti kullanarak, diseke edilmiş embriyonik akciğeri nükleo polikarbonat iz oyma membranın üzerine yerleştirin. Stereo mikroskop yardımıyla embriyonik akciğerin konumunu ayarlayın. Embriyonik akciğer, burada gösterildiği gibi düz bir konumda yerleştirilmiş, sağlam bir trakeaya sahip olmalıdır.Tüm akciğerlerin aynı iç basınca sahip olduğundan emin olduktan sonra, kabı bir hücre inkübatörüne aktarın ve istenen süre boyunca kültüre edin. Burada, E 12.5 akciğerleri FGF nine varlığında veya yokluğunda büyütülmüştür. FGF nine, in vitro büyütülen akciğerlerde 48 saat sonra mezenşimin genişlemesini ve epitelyumun dilatasyonunu indükleyen fibroblast büyüme faktörü ailesinin bir üyesidir.FGF nine yokluğunda, artmış dallanma görülür. Bu görüntüler, stereo mikroskop altında çekilmiş embriyonik akciğer fotoğraflarıdır. Buna karşın, FGF nine varlığında 48 saat boyunca büyütülen akciğerlerde genişlemiş epitel ve ağsı bir yapı mevcuttur.24 saatlik kültürden sonra. 48 saat sonra, epitel üzerindeki etki daha da belirginleşir. Böylece size embriyonik fare akciğerinden organ kültürlerinin nasıl hazırlanacağını göstermiş olduk.Bu prosedür uygulanırken, doku bozulmasını azaltmak için akciğerin embriyodan mümkün olan en kısa sürede çıkarılması gerektiğini hatırlamak önemlidir. İzlediğiniz için teşekkürler. Umarız bu tekniği faydalı bulursunuz.Deneylerinizde başarılar dileriz.

mouse-embryonic-lung-culture-system-to-evaluate-molecular-mechanisms

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Burada, fare pulmoner endotel hücrelerin izolasyonu ve kültürü için bir protokol açıklar. Bu yöntem, mekanik ve enzimatik akciğer dokusunda ayrılma yanı sıra anti-PECAM-1 ve çoğunlukla mikrovasküler kökenli saf bir endotel hücre popülasyonu üreten manyetik boncuk, konjuge anti-ICAM-2 antikorları kullanarak 2-aşamalı bir arınma süreci kapsar.

Yenidoğan Fareler Pulmoner Endotel Hücreleri İzolasyon ve Kültür

Mekanik kuvvetler akciğer gelişimi ve akciğer hasarı önemli bir rol oynamaktadır. Burada, kemirgen fetal akciğer tip II epitel hücreleri ve fibroblastlar izole etmek ve bir kullanarak mekanik stimülasyonu almaları için bir yöntem...

Fetal Akciğer Hücrelerinde Mechanotransduction Okumak Deneysel Bir Sistem

Biz terminali eritropoezin erken ve geç aşamaları masaya bir in vitro fare fetal karaciğer erythroblast kültür sistemi sunuyoruz. Bu sistem, farklı gelişim aşamasındaki özel genlerin işlevsel analiz kolaylaştırır.

Fare Fetal Karaciğer Kültür Sistemi Terminali Eritropoiesis Erken ve Geç Dönemlerinde Hedef Gene İşlevleri teşrih etmek

Bütün montaj bağlanmış raportör fareler ve bölüm boyama, mikroskopi ve in vivo deneylerde kullanımı solunum yolu normal model oluşturmanın altında yatan mekanizmaların analizi kolaylaştırır. İşte bu teknikler trakeal gelişimi sırasında Wnt sinyal analizine katkıda açıklar.

İletken Airways Desenlendirme sırasında Wnt Sinyalizasyonu incelenmesi

Bu protokol verimli hava yolu epitel hücreleri olgun fare embriyonik kök hücre kaynaklı kesin endoderm yönlendirir. Bu farklılaşma tekniği tanımlanmış bir serum içermeyen kültür ortamında, akciğer soy özellikleri doğrudan 3 boyutlu hücresizleştirilmiş akciğer iskeleleri kullanır.

Decellularized Akciğer Yapı iskeleleri kullanarak ESC türetilmiş Fare Havayolu Epitel Hücreleri Üretimi

Makalede, indüklenen pluripotent kök hücrelerin mezenkim ile birlikte hem proksimal hem de distal epitel akciğer hücrelerini içeren üç boyutlu tüm akciğer organoidlerine yönlendirilmiş adım bilgeliği açıklanmaktadır.

Akciğer Gelişim Biyolojisi ve Hastalığının Modellenerek İndüklenen Pluripotent Kök Hücrelerden 3D Bütün Akciğer Organoidlerinin Üretimi

Protokol, endojen epitelin sıçan trakeasından seçici olarak çıkarılmasına ve lümen yüzeyindeki eksojen hücrelerin homojen dağılımına izin veren, ardından hücre dokusu yapısının uzun süreli in vitro kültürüne izin veren görüntüleme özellikli bir biyoreaktörü tanımlar.

Biyomühendislik hava yolu dokusu üretmek için görüntüleme kılavuzlu biyoreaktör

Protokol, insan akciğer organoidlerini birincil akciğer dokularından türetmek, akciğer organoidlerini genişletmek ve insan hava yolu epitelini sadık bir şekilde fenotoskopik eden 3D ve 2D hava yolu organoidleri üretmek için proksimal farklılaşmayı indüklemek için bir yöntem sunar.

Olgun Hava Yolu Organoidleri Üretmek için İnsan Akciğer Organoidlerinin ve Proksimal Farklılaşmasının Kurulması

Burada, İzolektin B4'ün tek boyamasını kullanarak tüm farelerin akciğer dokusu için pulmoner mikrovasküler yoğunluğun tarafsız bir şekilde ölçülmesini sağlamak için basit ve ekonomik bir protokol açıklıyoruz.

Lobüller Boyunca Farelerde Pulmoner Mikrovasküler Yoğunluğun Ölçülmesi

Bu yazıda, gelişmekte olan böbrek kök / progenitör hücreleri düzenleyen sinyalizasyon yolaklar çalışma için kullanılabilir embriyonik fare böbrek progenitör hücre niş izolasyonu ve kültürü için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu kültür hücreleri küçük molekül ve rekombinant protein tedavisi için son derece erişilebilir ve önemlisi de aday yollarının etkin bir şekilde müdahale etmenizi sağlar viral iletimi,.

Embriyonik Fare Böbrek Nefrojenik Zone Hücreleri İzolasyon ve Kültür

Öğrenin fare embriyonik akciğer izolasyonu ve organ kültürü yöntemini. Epitel-mezenkimal etkileşimleri ve dallanma morfolojisini incelemek için geliştirme biyolojisi ve rejeneratif tıpta kullanılan bu teknik, FGF9 gibi tedavilere yanıtları gözlemlemenizi sağlar.

Fare Embriyonik Akciğer Kültür, Dallanma Moleküler Mekanizmalar değerlendirin Bir Sistem

Daha fazla video keşfet