Name: Koloni Oluşturan İnsan Hematopoetik Hücreler Hücre (CFC) Testi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-18T17:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 30 s
Description: Öğrenin, insan CD34+ hücrelerinin CFC testi ile çoğalma ve farklılaşma potansiyelini değerlendirmeyi. Bu yöntem, hematopoetik kök hücre biyolojisi ve lösemogenez araştırmalarında mekanistik içgörü sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz flow sitometri cihazı ve sıralama hizmetleri sağlanan Yüksek Hızlı Hücre Sıralayıcısı Çekirdek, kullanmak için teşekkür Alvin J. Siteman Kanser Merkezi, Washington Üniversitesi Tıp ve St Louis, MO Barnes Yahudi Hastanesi. Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri Sağlık Grants R01 HL082549 ve K02 HL084179 (NRY) tarafından desteklenmiştir. Siteman Kanser Merkezi, NCI Kanser Merkezi Destek Hibe P30 CA91842 tarafından kısmen destekleniyor.

1. REAKTİFLERİN HAZIRLANMASI <ol><li> Fms ilgili tirozin kinaz 3 steril 1000x stok çözelti hazırlayın (FLT-3) ligand, makrofaj / granülosit koloni-interlökin (IL) -3 uyarıcı faktör (GM-CSF), kök hücre faktörü (SCF), trombopoetin (TPO), ve IL-6, üreticinin talimatlarına göre. Steril Retronectin stok solüsyonu (1mg/ml) da üreticinin talimatlarına göre hazırlayın. Küçük alikotları bu stok çözümleri Böl ve tekrarlanan donma-çözülme önlemek için -20 ° C'de tutmak. </li><li> IMDM içinde% 2 FBS hazırlayın. </li><li> % 20 FBS son konsantrasyonları, 2 mM Glutamin, 100 adet / ml Penisilin / Streptomisin (PS) ile tam IMDM orta hazırlayın. Kullanmadan önce aşağıdaki sitokinler: 100 ng / ml FLT-3 ligand, 20 ng / ml GM-CSF, 100 ng / ml SCF, 100 ng / ml TPO, 50 ng / ml, IL-3 ve 100 ng / ml IL-6. </li><li> HBSS% 1 BSA (fenol kırmızısı olmadan Ca ve Mg-) ve D-PBS (Ca ve Mg-serbest)% 2 BSA hazırlayın. 4 0.22 mikron şırınga filtreler ve mağaza ° C geçerek çözümler sterilize </li><li> 4 HBSS ve mağaza% 0.02 EDTA hazırlayın ° C. </li><li> Alikotları ilgi ve mağaza DNA -80 ° C kodlama galv pseudotyped retrovirüs hazırlayın Bu prosedür, bu makalenin kapsamı dışındadır, ancak başka yerlerde açıklandığı (1-3). </li></ol> Giemsa Boyama için <ol start="7"><li> Kullanmadan önce, temiz bir cam şişe 1 mikron filtre kağıdı ile iki kez Wright / Giemsa leke çözüm filtre. </li><li> Giordano formülü - Kullanımdan hemen önce, filtrelenmiş Wright / Giemsa leke çözüm ve fosfat tampon çözeltisi, pH 6.4 200 ml, 50 ml karıştırılarak, Wright, / Giemsa buffer pH 6.4 hazırlamak. </li><li> Fosfat tampon çözeltisi, pH 6.0, 3.5 LH 2 O. 27.3 g KH 2 PO 4 ve 4.62 g Na 2 HPO 4 eriterek hazırlayın </li><li> H 2 O.% 50 metanol hazırlayın </li></ol> 2. PROSEDÜRÜ Çözülme ve pre-harekete geçirmek CD34 + hücreler <ol><li> 37 CD34 + donmuş hücreleri hızla bir şişe çözülme ° C son küçük bir buz kristali kalana kadar hafifçe sallayarak hücre süspansiyonu (1 ml) ve 50 ml konik tüp transferi. Şişeden geri kalan hücreler yavaşça oda sıcaklığında 1 ml ile durulayın% 2 FBS / IMDM ve hafifçe dönen 50 ml tüp açılır akıllıca ekleyin. 3 dakika bekleyin. Sonra, yavaş yavaş hafifçe karıştırarak 2 ml% 2 FBS / IMDM ekleyin ve 3 dakika bekleyin. Son hacim 32 ml ulaşana kadar, FBS / IMDM seyreltilmiş hücre süspansiyonu olarak 3 dakika aralıklarla aynı hacimde% 2 ekleyerek eklemeler arasında yavaşça dönen aynı işlemi tekrarlayın. </li><li> Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 250 xg'de santrifüjleyin ve yaklaşık 0.5 ml geride bırakarak süpernatant kaldırmak. </li><li> 20 ml% 2 FBS / IMDM askıya alınması ve oda sıcaklığında 8 dakika boyunca 200 xg'de santrifüj pelet yıkayın. </li><li> Süpernatantı ve yaklaşık 0,5 x 10 6 hücre / ml tam bir IMDM ortamda hücrelerin askıya . Mikrotüp, karışımı içine hücre süspansiyonu aynı Tripan mavisi çözeltisinin hacmi (% 0.4) ile 10 ul alın ve bir hemasitometre kullanarak saymak. </li><li> (1.3) sitokinler ile desteklenmiş IMDM orta ekleyerek 0,1-0,15 X 10 6 hücre / ml hücreleri sulandırınız </li><li> Kültür, 2 gün boyunca% 5 CO 2 ile nemlendirilmiş bir 37 ° C inkübatör hücreler . </li></ol> Virüs ön yükleme retroviral transdüksiyon <ol start="7"><li> Iletimi gün, hazırlıklı olmak kuyuların sayısını belirlemek için ön yükleme virüs başlamadan önce hücreleri saymak. </li><li> Retronectin stok çözeltinin 25 mcg / ml ve 24-iyi arıtılmamış doku kültürü plakası her bir kuyunun 400 ul ekleyin. Ön kat laminer akış biyogüvenlik kaput 2 saat oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Retronectin çözüm çıkarın ve her bir kuyu için D-PBS içinde% 2 BSA 400 ul ekleyin. Oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edin. </li><li> Virüs stok solüsyonları çözülme ve buz üzerinde tutmak. BSA çözüm çıkarın, her iyi 0.5 ml virüs hazırlık ve 4 2200 xg'de santrifüj ° C de 15 dakika boyunca. </li><li> Kuyulardan virüs çözümü çıkarın ve 2.10 en fazla üç defa açıklanan virüs yükleme tekrarlayın. </li><li> Soğuk 0.5 ml HBSS (+ Ca, Mg) veya IMDM her iyice durulayın. </li><li> Oda sıcaklığında 8 dakika boyunca 200 xg'de santrifüj önceden aktive edilmiş CD34 + hücreler toplayın. </li><li> Sitokinler ile tam IMDM orta 1.5 ml başına 0,1-0,15 x 10 6 hücre hücrelerin tekrar </li><li> Her iyi 1.5 ml hücre süspansiyonu ekleyin ve 2 gün için% 5 CO 2 ile nemlendirilmiş bir 37 ° C inkübatör inkübe edin. </li></ol> Hücre sıralama ve toplama hücreleri transduced <ol start="16"><li> Yavaşça ama iyice yukarıda virüs yüklü plaka hücreleri askıyakonik bir tüp içine 50 mikron CellTrics hücre filtre ile filtre. Tripan mavisi çözeltisinin eşit hacmi olan bir mikrotüp, karışımı içine atın ve 10 ul hücre süspansiyonu bir hemasitometre kullanarak saymak. 0.8 ml soğuk% 0.02 EDTA / HBSS (fenol kırmızısı olmadan Ca ve Mg-free) her iyice durulayın ve 50 mikron CellTrics hücre filtre ile aynı toplama tüpüne ekleyin. </li><li> 8 dakika 4 ° C 200 xg'de hücreler santrifüj, ve 4, 8 dakika için 200 xg'de santrifüj tarafından soğuk HBSS ile pelet (fenol kırmızısı olmadan Ca ve Mg-free) yıkamak ° C </li><li> BSA / HBSS (fenol kırmızısı olmadan Ca ve Mg-) 15 X 10 6 / ml veya hücre sıralama için 0.250 ml minimum hacim konsantrasyonu% 1 pelletini tekrar. Hücreler karanlıkta buz üzerinde tutun. Soğuk% 20 FBS / IMDM / sıralanmış hücreleri toplamak için Glutamin / PS orta içeren bir tüp hazırlayın. Washington Üniversitesi Tıp MoFlo yüksek hızda sıralayıcı (Dako, Glostrup, Danimarka) kullanarak Fakültesi Alvin J. Siteman Kanser Merkezi Yüksek Hızlı Hücre Sıralayıcısı Çekirdeği sıralama yapılır. </li></ol> CFC testi <ol start="19"><li> CFC tahlil medya 3 ml alikotları gerekli sayıda çözülme. Vortex kuvvetlice karıştırın ve tüpler kabarcıkları eklemeden önce hücrelerin yüzeye çıkması için mevcut en az 5 dakika bekletin. </li><li> Sıralanmış her bir örnek için hücre konsantrasyonu elde etmek için, hücre sayısı yaklaşık hücre süspansiyonu hacmi sıralama tesisi tarafından sağlanan bölün. 3.000 atın virüs transduced, soğuk% 2 FBS / IMDM içeren steril bir mikrotüp ayrılır hücreleri. Ön ayarlamak son süspansiyon hacmi yaklaşık 0.3 ml olacak FBS / IMDM% 2 birim. </li><li> Hücreleri, askıya alma ve 2 mM L-glutamin% 1 metilselüloz oluşur Methocult GF + H4435,% 30 FBS,% 1 BSA, 10 -4 M 2-mercaptoethanol, 3 ml kısım için tüm 0.3 ml hücre süspansiyonu transfer 50 ng / ml SCF, 20 ng / ml, GM-CSF, 20 ng / ml, IL-3, 20 ng / ml, IL-6, 20 ng / ml G-CSF ve 3 adet / ml eritropoietin IMDM. % 1.3 metilselüloz oluşur İnsan Metilselüloz Zenginleştirilmiş Medya (Ar-Ge Sistemleri),% 25 FBS,% 1 BSA, 5 x 10 -5 M 2-mercaptoethanol, 2 mM L-glutamin, 50 ng / ml SCF, 20 ng / 20 ml GM-CSF, IL-3 ng / ml, 20 ng / ml, IL-6, 20 ng / ml G-CSF ve 3 adet / ml eritropoietin IMDM de kullanılıyor olabilir. </li><li> Vortex şiddetle karışımı tam olarak yükselişi ve 3-4 kez düşme. Tüp 3 dakika bekletin. </li><li> 3 ml şırınga göstergesi, 16 künt uç iğne takın ve 2.2 ml kadar çizin. Büyük kabarcıklar yukarı çekmek etmeyin; başında birkaç kez basarak onları kovmak. Her iki adet 30 mm arıtılmamış çanak içine 1.1 ml çevirerek dışarı itin ve karışımı eşit olarak yaymak. </li><li> 3 ml steril su içeren bir su çanağı ile birlikte 100 mm plakası yinelenen bir tabak koyun. 14 - 17 gün için Kültür. </li><li> Göre koloniler karakterize bir skor ızgara ile işaretlenmiş bir kültür çanak 40x büyütme ters bir mikroskop ile morfoloji ve skor. Saf eritroid, myelomonositik ve karışık: testin amaçları için, koloniler 3 kategoride sınıflandırılır. Daha fazla koloni subclassification için üreticinin talimatlarına bakın. </li><li> Tüm CFC tahlil plaka büyütme olmaksızın düzenli bir 600 dpi tarayıcı ve kolonilerin fotomikrografı renkli bir kamera ile donatılmış bir inverted mikroskop kullanılarak alınabilir düşük-güç (40x) ile taranabilir. </li><li> Tüm CFC tahlil plaka hücre farklılaşması ve proliferasyonu daha fazla analiz için, oda sıcaklığında% 2 FBS / IMDM birkaç cilt olarak askıya tarafından kurtarıldı. 10 dakika 4 ° C için 300 xg'de santrifüj sonra, hücrelerin% 2 FBS / IMDM, sayılır ve her iki akım sitometri için antikorlar ile boyanarak ya da Giemsa boyama için sitospin santrifüj kullanarak slayt transfer yeniden süspanse. </li></ol> Antikor boyama ve flow sitometri <ol start="28"><li> 4 8 dk boyunca 200 xg'de Santrifüj hücreler HBSS soğuk% 50 normal fare serumu ° C ve tekrar süspansiyon (fenol kırmızısı olmadan Ca ve Mg-ücretsiz). </li><li> Yaklaşık 5 x 10 5 hücre tüp başına 80 ul (12 x 75 mm yuvarlak alt tüpler) koyun ve buz üzerinde tutmak. Antikor karışımı (yaklaşık 20 ul-antikor kontrolleri için karışım veya negatif kontrol solüsyonu) ve tüpler hafifçe dokunarak karışımı ekleyin. Herhangi bir antikor ya da her florokrom için bir anti-CD45 antikoru ile kalibrasyon kontrolü tüpleri hazırlayın. Tüpler, 20 dakika boyunca karanlık ve inkübe buz koyun. İlk 10 dakika sonra tüpleri hafifçe dokunarak karıştırın. 20 dakika inkübasyondan sonra, soğuk HBSS tüpleri doldurmak ve 4, 8 dk boyunca 200 xg'de santrifüj ° C. Soğuk% 0.5 paraformaldehid / HBSS pelletini tekrar. Antikor aşağıdaki karışımlar genelde analizi için kullanılır. Miyeloid farklılaşma: CD11b (fikoeritrin-konjuge klon ICRF44) / CD33 (allophycocyanin konjuge klon WM53) / CD45 (fikoeritrin-Cy7-congjugated klon HI30). Eritroid farklılaşması için: CD71 (fikoeritrin-konjuge klon M-A712) / CD235a (allophycocyanin-konjuge klon GA-R2) / CD45 (fikoeritrin-Cy7-congjugated klon HI30). </li><li> Flow sitometri, Alvin J. Washington Üniversitesi Tıp Okulu'nda Siteman Kanser Merkezi, 5 renk ve iki lazerler (BD Biosciences) yükseltilmiş bir FACScan akış sitometresinde Yüksek Hız Hücre Sıralayıcısı Çekirdek ve CellQuest (BD Biosciences) veya kullanılarak analiz FlowJO v7.2.4 (Tree Star, Inc, Ashland, OR, ABD) yazılımı. </li></ol> Giemsa boyama <ol start="31"><li> CFC tahlil plakaları kurtarıldı yaklaşık 30.000 hücreleri 0.3 askıya yukarıda açıklanan ml% 2 FBS / IMDM ve oda sıcaklığında 10 dakika 1.000 rpm'de sitospin santrifüj kullanarak slayt aktarılır. </li><li> Aşağıdaki sırayla çözümler içeren dokuz boyama damarları ayarlayın. <ol><li> Mutlak Metanol </li><li> Wright / Giemsa stok solüsyonu </li><li> Wright / Giemsa tamponu, pH 6.4 </li><li> % 50 H 2 O Metanol </li><li> H 2 O </li><li> H 2 O </li><li> Fosfat tamponu, pH 6.0 </li><li> H 2 O </li><li> H 2 O </li></ol></li><li> Slaytları slayt taşıyıcı içine yerleştirin ve 2 dakika için mutlak metanol daldırma (# 1) ve fazla metanol kurulayın. </li><li> Hemen 5 dakika Wright / Giemsa stok solüsyonu slayt taşıyıcı (# 2) batırın. </li><li> Wright / Giemsa tamponu, pH 6.4 (# 3) taşıyıcı aktarın ve 10 dakika inkübe edin. </li><li> (# 4) iki kez% 50 metanol taşıyıcı Daldırma, H 2 O (# 5), H 2 O (# 6) başka bir 10 kat, 10 kat ve daha sonra 5 kez Fosfat tamponu, pH 6.0 (# 7) . </li><li> H 2 O (# 8) taşıyıcı transferi ve 2 dakika boyunca inkübe edin. H 2 O (# 9) yıkama işlemi tekrarlayın. </li><li> Slaytlar taşıyıcı tamamen kurumaya bırakın. Her bir slayt çıkarın ve lekeleri çıkarmak için, metanol-batırılmış Kimwipes slayt geri silin. Cytoseal 60 bir damla ve mühür cam bir kapakla yerleştirin. </li><li> Olympus BX51 mikroskop kullanılarak her Giemsa lekeli slayt için 500 hücre diferansiyel sayımı yapılır. Hücreler beş kategoriye ayrılır: ilkel hücrelerden patlamalar ve promyelocytes; ara miyeloid hücrelerin myelocytes ve metamyelocytes; olgun miyeloid hücrelerin bantları, segmente nötrofiller, monositler ve makrofajlar; ara eritroid hücreler ara hemoglobinization sahip hücreler içerir; ve olgun eritroid hücreler içerir tam hemoglobinization sahip hücreler. Fotomikrografı 60x petrol hedefi ile Olympus DP71 kamera ile alınır. </li></ol> 3.0) TEMSİLCİSİ SONUÇLAR: <ol><li> CFC tahlil: Bazı giriş hücre popülasyonu, prolifere farklılaştırmak ve 14-17 günlük kuluçka döneminde yarı-katı orta form koloniler. Bu deneyde, NUP98 HOXA9 onkogen ekspresyonu belirgin kırmızı (eritroid koloni) (Şekil 1) (3) oluşumuna neden olduğu açıktır. </li><li> Antikor Boyama ve Akış Sitometri: Akış sitometrik işaretleyicidir CFC tahlil plakaları toplanan hücreler, hücre nüfusun farklılaşması durumu hakkında bilgi sağlar . Belirli bir farklılaşma işaretleri karşı antikor kombine kullanımı, hücrelerin olgunlaşma soy ve derecesi tespit edilebilir. Bu durumda CD235a eritroid hücreleri tanımlamak için kullanılır oldu. Şekil 2A gösterildiği gibi, NUP98-HOXA9 CD235a + eritroid hücrelerin yüzdesi bir artışa neden olmuştur, ancak bu hücreler tarafından CD235a ifade parlaklık eritroid olgunlaşma inhibisyonu gösteren, kontrollere göre azaldığı gözlendi. Şekil 2B, miyeloid hücrelerin, CD33 pozitifliği sayesinde tespit edilir. NUP98 HOXA9 CD11b ifade parlaklık miyeloid olgunlaşma inhibisyonu (3) ile tutarlı bir azalma ile CD33 + hücrelerin sayısında bir azalmaya neden oldu. Böylece akış sitometri sonuçları NUP98-HOXA9 miyeloid ve eritroid hem olgunlaşma inhibisyonu ile eritroid hiperplazi neden olduğunu göstermektedir. </li><li> Giemsa Boyama: CFC tahlil plakaları toplanan hücreler morfolojik incelemesinde hücre popülasyonunun olgunlaşma soy ve derecesi hakkında bilgi sağlar. Morfolojik olarak elde edilen sonuçlar, akım sitometrik çalışmaları ile elde edilen farklı olabilir ve bu nedenle bu yöntemleri (3) birbirini tamamlayıcı niteliktedir. Deney en az 3 kez tekrarlanır ve her seferinde 500 hücre diferansiyel sayısı, yukarıda açıklandığı gibi hücre 5 kategoriye ayırmak için yapılır. Şekil 3'te bu hücrelerin örnekleri dikkat çekti. Sonuçları arasında istatistiksel olarak anlamlı farklılıklar onkogen transduced örnek ve kontrolü olup olmadığını belirlemek amacıyla tablo ve analiz edilir. Bu durumda, sonuçlar NUP98-HOXA9 sayısında genel bir artışa neden olduğunu gösterdieritroid hiperplazi ve eritroid ve myeloid olgunlaşma (3) (gösterilmemiştir) inhibisyonu ile hücre. </li></ol> Şekil açıklamaları <img src="/files/ftp_upload/2195/2195fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1: insan CFC morfolojisi NUP98-HOXA9 etkiler. İlköğretim insan CD34 + hücre retrovirally kontrolü MSCV IRES-GFP vektör veya vektör NUP98-HOXA9 ifade transduced, ve hücreler, GFP pozitifliği için sıralanır. CFC tayini için iki yinelenen plakaların her birine bin hücre numaralı seribaşı ve deney 3 4 bağımsız kez tekrarlandı. Büyütme (solda) ve düşük güç temsilcisi eritroid kolonilerin (sağda) fotomikrografı olmadan Temsilcisi levhalar (3) gösterilmiştir. <img src="/files/ftp_upload/2195/2195fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2: Flow sitometri NUP98-HOXA9 tarafından bozulması insan birincil CD34 + hücre farklılaşması gösterir. (A) CD45 ve CD235a eritroid farklılaşması için akış sitometri: CFC plakalardan Hücreler (bkz. Şekil 1) antikorları ile hasat ve boyandı. (B) CD235a + kapı kontrol hücrelerine göre CD235a ifade göstermek için histogram (sağ panel) çizilen oldu miyeloid farklılaşma Flow sitometri: CFC plakalardan hücreler CD45 ve CD33 ile hasat ve boyandı. CD33 + kapı kontrole göre (sağ panel) CD11b ifade göstermek için bir histogram üzerinde çizilen oldu. Her bir geçidin giren hücrelerinin yüzdeleri gösterilmiştir (3). <img src="/files/ftp_upload/2195/2195fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3: Hücre morfolojisi HOXA9 NUP98-farklılaşma bozulması vektör kontrol ile karşılaştırıldığında gösterir. Sitospin smear CFC plakalardan hazırlanan ve Giemsa ile boyandı. Fotomikrografı 60x petrol hedefi ile temsili alanlar alınmıştır. B: patlama; MM: olgun miyeloid, IM: orta miyeloid, ME: olgun eritroid, IE: Ara eritroid (3).

<ol><li>Takeda, A., Goolsby, C., Yaseen, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NUP98-HOXA9+induces+long-term+proliferation+and+blocks+differentiation+of+primary+human+CD34%2B+hematopoietic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">NUP98-HOXA9 induces long-term proliferation and blocks differentiation of primary human CD34+ hematopoietic cells.</a> Cancer Res. , 66-6628 (2006).</li>
<li>Yassin, E. R., Abdul-Nabi, A. M., Takeda, A., Yaseen, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+the+NUP98-DDX10+oncogene+on+primary+human+CD34%2B+cells%3A+role+of+a+conserved+helicase+motif%5BTitle%5D)+AND+%22Leukemia%22%5BJournal%5D)">Effects of the NUP98-DDX10 oncogene on primary human CD34+ cells: role of a conserved helicase motif.</a> Leukemia. , Forthcoming (2010).</li>
<li>Yassin, E. R., Sarma, N. J., Abdul-Nabi, A. M., Dombrowski, J., Han, Y., Takeda, A., Yaseen, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+the+transformation+of+primary+human+hematopoietic+cells+by+the+oncogene+NUP98-HOXA9%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Dissection of the transformation of primary human hematopoietic cells by the oncogene NUP98-HOXA9.</a> PLoS One. 4, e6719-e6719 (2009).</li>
<li>Nissen-Druey, C., Tichelli, A., Meyer-Monard, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+hematopoietic+colonies+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Haematol%22%5BJournal%5D)">Human hematopoietic colonies in health and disease.</a> Acta Haematol. 113, 5-96 (2005).</li>
<li>Pereira, C., Clarke, E., Damen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+colony-forming+cell+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic colony-forming cell assays.</a> Methods Mol Biol. 407, 177-208 (2007).</li>
<li>Coulombel, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+hematopoietic+stem%2Fprogenitor+cells%3A+strength+and+drawbacks+of+functional+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Identification of hematopoietic stem/progenitor cells: strength and drawbacks of functional assays.</a> Oncogene. 23, 7210-7222 (2004).</li>
<li>Hogge, D. E., Lansdorp, P. M., Reid, D., Gerhard, B., Eaves, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+detection%2C+maintenance%2C+and+differentiation+of+primitive+human+hematopoietic+cells+in+cultures+containing+murine+fibroblasts+engineered+to+produce+human+steel+factor%2C+interleukin-3%2C+and+granulocyte+colony-stimulating+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Enhanced detection, maintenance, and differentiation of primitive human hematopoietic cells in cultures containing murine fibroblasts engineered to produce human steel factor, interleukin-3, and granulocyte colony-stimulating factor.</a> Blood. 88, 3765-3773 (1996).</li>
</ol>

CFC tahlil hematopoetik atalarıdır çoğalmasını ve farklılaşmasını modellerini belirlemek ve onkogenler (4, 5) etkilerini incelemek için yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu koloniler tek bir progenitör soyu temsil eden ve ileri analiz için ayrı ayrı kaldırılabilir klonal bir tahlil, sıvı kültürler üzerinde bir avantaja sahiptir. Bu tür hücreler kullanılarak tespit edilir, uzun vadeli bir kültür başlatan hücre (LTC-IC) assay (6, 7). CFC testinin sınırlama, daha olgunlaşmamış atalarıdır veya hematopoietik kök hücrelerin tes...

<table><tbody><tr><td>IMDM</td><td>Life Technologies</td><td>12440</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>06150</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamin</td><td>Life Technologies</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin/Streptomisin (PS)</td><td>Life Technologies</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>FLT-3 ligandı</td><td>PeproTech Inc</td><td>300-19</td><td></td></tr><tr><td>GM-CSF</td><td>PeproTech Inc</td><td>300-03</td><td></td></tr><tr><td>SCF</td><td>PeproTech Inc</td><td>300-07</td><td></td></tr><tr><td>TPO</td><td>PeproTech Inc</td><td>300-18</td><td></td></tr><tr><td>IL3</td><td>PeproTech Inc</td><td>200-03</td><td></td></tr><tr><td>IL6</td><td>PeproTech Inc</td><td>200-06</td><td></td></tr><tr><td>Sığır Serum Albümini</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7030</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP118</td><td></td></tr><tr><td>Retronectin</td><td>Takara Bio Inc</td><td>T100A</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Life Technologies</td><td>14175</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Technologies</td><td>14200</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Mavi çözeltisi (0.4%)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>Methocult GF+ H4435</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>04445</td><td></td></tr><tr><td>İnsan Metilselüloz Zenginleştirilmiş Medyum</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>HSC005</td><td></td></tr><tr><td>Wright/ Giemsa boyası</td><td>Harleco</td><td>64571</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat Tampon Çözeltisi, pH 6.4 - Giordano formülü</td><td>Ricca Chemical Company</td><td>1450</td><td></td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A412-4</td><td></td></tr><tr><td>Cytoseal 60</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>8310</td><td></td></tr><tr><td>Normal Fare Serumu </td><td>Rockland Immunochemicals</td><td>D208</td><td></td></tr><tr><td>Anti-İnsan CD11b fik&amp;#8211;eritrin konjuge</td><td>BD Biosciences</td><td>555388</td><td></td></tr><tr><td>Anti-İnsan CD33 allofikosiyanin konjuge</td><td>BD Biosciences</td><td>551378</td><td></td></tr><tr><td>Anti-İnsan CD45 fik&amp;#8211;eritrin-Cy7 konjuge</td><td>BD Biosciences</td><td>557748</td><td></td></tr><tr><td>Anti-İnsan CD71 fik&amp;#8211;eritrin konjuge</td><td>BD Biosciences</td><td>555537</td><td></td></tr><tr><td>Anti-İnsan CD235a allofikosiyanin konjuge</td><td>BD Biosciences</td><td>551336</td><td></td></tr><tr><td>Anti-İnsan CD45 fik&amp;#8211;eritrin-Cy7 konjuge</td><td>BD Biosciences</td><td>557748</td><td></td></tr><tr><td>24 kuyucuklu işlem görmemiş doku kültürü plakaları</td><td>BD Biosciences</td><td>35-1147</td><td></td></tr><tr><td>30 mm işlem görmemiş kap</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>27150</td><td></td></tr><tr><td>100 mm doku kültürü kabı </td><td>Fisher Scientific</td><td>08-757-12</td><td></td></tr><tr><td>Izgaralı skorlama kapları</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>27500</td><td></td></tr><tr><td>15 ml santrifüj tüpleri</td><td>BD Biosciences</td><td>35-2097</td><td></td></tr><tr><td>50 ml santrifüj tüpleri</td><td>BD Biosciences</td><td>35-2070</td><td></td></tr><tr><td>Şırıngalar 3 ml </td><td>Stem Cell Technologies</td><td>28240</td><td></td></tr><tr><td>16 gauge küt uçlu, 1&amp;frac12; inç iğne </td><td>Stem Cell Technologies</td><td>28110</td><td></td></tr><tr><td>50 &amp;mu;m CellTrics hücre filtresi</td><td>Partec</td><td>04-004-2327</td><td></td></tr><tr><td>Hemositometre</td><td>Fisher Scientific</td><td>0267110</td><td></td></tr><tr><td>TPX numune odacıkları</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>A78710018</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand Superfrost/Plus Mikroskop Lamları, Ön Temizlenmiş</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>Shandon filtre kartları</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>5991022</td><td></td></tr><tr><td>Shandon sitospin lam tutucu</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>59920063</td><td></td></tr><tr><td>Shandon Komple Boyama Düzenek 100</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>100</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark Corporation</td><td>34155</td><td></td></tr><tr><td>1 &amp;mu;m filtre kağıdı</td><td>VWR international</td><td>28307-134</td><td></td></tr><tr><td>İnverted mikroskop</td><td>Nikon Instruments</td><td>Diaphot</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop kamerası</td><td>Nikon Instruments</td><td>DS-F11</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td>Olympus Corporation</td><td>BX51</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop kamerası</td><td>Olympus Corporation</td><td>DP71</td><td></td></tr><tr><td>Tarayıcı</td><td>Microtek</td><td>Scanmaker 4</td><td></td></tr><tr><td>Vorteks karıştırıcı</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-812</td><td></td></tr><tr><td>Doku kültürü inkübatörü</td><td>Sanyo</td><td>MCO-18AIC</td><td></td></tr><tr><td>Sitospin</td><td>Shandon, Inc.</td><td>Cytospin 2</td><td></td></tr><tr><td>Masaüstü santrifüj</td><td>Eppendorf</td><td>5810-R</td><td></td></tr><tr><td>Su saflaştırma sistemi</td><td>Barnstead</td><td>Nanopure-Diamond</td><td></td></tr></tbody></table>

koloni oluşturan İnsan hematopoetik hücreler hücre (cfc) testi

Colony Forming Cell (CFC) Assay for Human Hematopoietic Cells

İnsan hematopoietik kök / progenitör hücreleri genellikle kemik iliği, kordon kanı veya periferik kandan elde edilen ve hemopoeziste ve leukemogenesis incelemek için kullanılır. Bunlar lenfoid ve myeloid soyları ayırt etmek için kapasite var. Koloni oluşturan hücre (CFC) tayini, yarı katı bir ortamda koloniler oluşturmak için yeteneklerini proliferasyon ve farklılaşma desen hematopoetik atalarıdır çalışma kullanılır. Sabit bir sayıda giriş hücrelerinin oluşturduğu kolonilerin sayısı ve morfolojisi ayırt etmek atalarıdır yeteneği hakkında ön bilgi vermek ve çoğalırlar. Hücreler bireysel koloniler veya bütün plaka numaraları ve akım sitometri ve Giemsa lekeli dia morfolojik değerlendirme kullanarak farklılaşma devletler daha da değerlendirmek için hasat edilebilir. Bu testte, ama lenfoid değil miyeloid farklılaşma değerlendirmek için yararlıdır. Bu bağlamda vadeli miyeloid granülositik, monositik, eritroid ve megakaryocytic soy kapsayacak şekilde daha geniş anlamda kullanılır. Biz periferik kandan elde edilen birincil insan CD34 + hücre farklılaşması onkogenler etkilerini değerlendirmek için bu testte kullandık. Bu amaçla hücreler için NUP98-HOXA9 Bu durumda, kontrol retroviral inşa veya ilgi onkogen ifade bir yapı ile transduced. Biz, ilgi ve GFP işaretleyici gen üreten bir bicistronic mRNA ifade yaygın olarak kullanılan bir retroviral vektör, MSCV IRES-GFP, istihdam etmektedir. Hücreler sitokinlerin varlığında retroviral transdüksiyon öncesinde iki gün boyunca büyüyerek önceden aktive edilir. Bir iki gün sonra, floresan ile aktive olan hücre sıralama (FACS) GFP + hücreler izole edilir ve sitokinler ile desteklenmiş ve koloniler genellikle yüzey, 14 gün kadar inkübe metilselüloz içeren yarı katı orta ile karışık. Kolonilerin sayısı ve morfolojisi belgelenmiştir. Hücreler daha sonra plakalar kaldırılır yıkanmış sayılır ve akım sitometri ve morfolojik inceleme tabi. Flow sitometri hematopoez sırasında ifade edilen hücre yüzey belirteçleri için özel antikorlar ile soy ve olgunlaşma aşamasında hakkında bilgi sağlar. Wright-Giemsa boyama sonrası mikroskop altında tek tek hücrelerin morfolojik çalışmalar, soy ve olgunlaşma ile ilgili daha fazla bilgi sağlar. Hücrelerin karşılaştırılması bir onkogen hematopoetik farklılaşma onkogen etkileri açığa transduced bu boş vektör kontrolü ile transduced.

Koloni oluşturan hücre (CFC) tayini hematopoetik atalarıdır yarı-katı ortamda koloniler oluşturur in vitro testtir. Koloni morfolojisi, hücre morfolojisi ve akış sitometri bir arada, farklı hematopoetik soy boyunca çoğalırlar ve ayırt atalarıdır yeteneklerini değerlendirmek için kullanılır.

Koloni Oluşturan İnsan Hematopoetik Hücreler Hücre (CFC) Testi

İnsan hematopoetik kök/progenitör hücreleri genellikle kemik iliğinden, kordon kanından veya periferik kandan elde edilir; hematopoezi ve ... çalışmak için kullanılırlar.

Bu prosedür, hematopoetik progenitörlerin farklı hematopoetik soylar boyunca proliferasyon ve diferansiyasyon yeteneklerini yarı katı bir ortamda değerlendirerek kültürü başlatır. Taze çözülmüş CD 34 pozitif hücreler, aktivasyonu teşvik etmek amacıyla iki gün boyunca sitokinlerin varlığında tutulur. Aktive edilmiş CD 34 pozitif hücrelerin virüsle önceden yüklenmiş bir plakaya eklenmesiyle, GFP eksprese eden bir test konstrüktünün retroviral transduksiyonu gerçekleştirilir.48 saat sonra GFP pozitif hücreleri FACS ile izole edin, ardından bu hücreleri büyüme faktörleri ile desteklenmiş yarı katı metilselüloz besiyerine ekerek yüzeyde koloniler oluşana kadar yaklaşık iki hafta boyunca inkübe edin. Son olarak, kolonileri hasat edin, hücreleri sitosin kullanarak lamlar üzerine immobilize edin ve hematopoetik soyun ve maturasyon aşamasının mikroskobik tayini için Wright-Giemsa ile boyayın. Bu yöntem, lökemogenez çalışmalarında, özellikle onkogenlerin hematopoetik diferansiyasyon üzerindeki etkileri hakkında mekanistik bilgiler sağlayabilir.Bir kültürü görebilmek için, donmuş CD 34 pozitif hücrelerin bulunduğu bir viyali, son küçük buz kristali kalana kadar nazikçe çalkalayarak 37 °C'de hızlıca çözdürün ve hücre süspansiyonunu 50 mL'lik konik bir tüpe aktarın. Viyalde kalan hücreleri 1 mL oda sıcaklığındaki %2 F-B-S-I-M-D-M medyumu ile nazikçe durulayın ve tüpü hafifçe döndürerek bu çözeltiyi 50 mL'lik tüpe damla damla ekleyin. Ardından üç dakika bekleyin.Yavaşça karıştırırken iki mililitre besiyeri ekleyerek devam edin ve tekrar üç dakika boyunca dengeleyin. Nihai hacim 32 mililitreye ulaşana kadar, her ekleme arasında hafifçe çalkalayarak, üç dakikalık aralıklarla seyreltilmiş hücre süspansiyonuna eşit hacimde besiyeri ekleme prosedürünü tekrarlayın. Hücreleri toplamak için oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 250 G'de santrifüjleyin ve peletin üzerinde yaklaşık 0,5 mililitre besiyeri bırakacak şekilde süpernatantı uzaklaştırın. Peleti 20 mililitre besiyeri içinde süspanse ederek ve oda sıcaklığında sekiz dakika boyunca 200 G'de santrifüjleyerek hücreleri bir kez yıkama işlemine geçin, süpernatantı uzaklaştırın ve hücreleri mililitre başına yaklaşık yarım milyon hücre olacak şekilde tam IMDM besiyerinde süspanse edin.Son olarak, hücre konsantrasyonunu belirlemek için, süspansiyondan 10 µL alarak aynı hacimdeki %0,4 tripan mavisi çözeltisi ile bir mikrotüpte karıştırın ve sayım yapın. Bir hemositometre kullanarak, aktive edici sitokin karışımı ile desteklenmiş komple IMDM medyumu ekleyerek hücreleri mililitre başına 10⁵ hücre olacak şekilde dilüe edin; hücreleri %5 CO2 içeren, nemlendirilmiş 37 °C'lik bir inkübatörde iki gün boyunca kültüre edin. Transdüksiyon gününde, işlem görmemiş 24 kuyucuklu bir doku kültürü plağındaki kuyucuk sayısını belirlemek için virüs ön yüklemesine başlamadan önce hücreleri sayın. Her kuyucuğa 25 µg/mL retro-aktin çözeltisinden 400 µL ekleyin ve laminer akışlı biyogüvenlik kabininde, oda sıcaklığında iki saat boyunca inkübe edin.Retro aktin çözeltisini uzaklaştırın ve her bir kuyucuğu oda sıcaklığında 30 dakika inkübe ederek %2 BSA ile kaplayın. Bu sırada, virüs stok çözeltilerini çözdürün ve buz üzerinde saklayın. Ardından BSA çözeltisini aspire edin ve her bir kuyucuğa 0,5 mL virüs preparatı ekleyerek virüs yüklemesi yapın ve 4 °C'de 15 dakika boyunca 2.200 G'de santrifüjleyin.Virüs solüsyonunu kuyucuklardan uzaklaştırın ve virüs yükleme işlemini üç kez daha tekrarlayın. Son olarak, her bir kuyucuğu soğuk IMDM medyumu ile durulayın. Şimdi, önceden aktive edilmiş CD 34 pozitif hücreleri santrifüjleme yoluyla toplayın ve hücreleri sitokinlerle desteklenmiş taze komple IMDM medyumu içinde yeniden süspande edin; virüs kaplı kuyucukların her birine 0,15 milyon CD 34 pozitif hücre ekleyin ve transdükte hücreleri nazikçe ancak eksiksiz bir şekilde hasat etmek için hücreleri %5 karbon dioksit içeren, nemlendirilmiş 37 °C'lik bir inkübatörde iki gün boyunca inkübe edin.Virüs yüklü plaklardaki hücreleri süspande edin ve süspansiyonu 50 mikronluk bir hücre filtresi aracılığıyla konik bir tüpe filtreleyin. Hücre süspansiyonundan 10 µL alarak bir mikrotüpe aktarın. Eşit hacimde tripan mavisi çözeltisi ile karıştırın ve hücreleri bir hemositometre kullanarak sayın.Her bir kuyucuğu 0.8 mililitre %0.02 EDTA içeren soğuk HBSS ile durulayın ve 50 mikronluk bir CEL Trix hücre filtresi aracılığıyla aynı toplama tüpüne ekleyin. Hücreleri santrifügasyon ile çöktürün ve soğuk HBSS ile bir kez yıkayın. Son hücre peletini %1 BA içeren HBSS içinde yeniden süspande edin ve hücreleri, deneysel tasarıma bağlı olarak genellikle yüksek hızlı bir hücre ayıklama merkez tesisinde gerçekleştirilen sonraki hücre ayıklama işlemi için buz üzerinde ve karanlıkta tutun.Gereken miktardaki CFC analiz medyası alikotlarını çözdürün, karıştırmak için kuvvetlice vorteksleyin ve hücreleri eklemeden önce kabarcıkların yüzeye çıkması için tüpü en az beş dakika bekletin. Şimdi, soğuk %2 F-B-S-I-M-D-M medyası içeren steril bir mikro tüpe virüs transduksiyonu yapılmış 3000 sıralanmış hücre alın ve final süspansiyon hacmini 0,3 mililitreye ayarlayın. Hücreleri süspande edin ve tüm hücre süspansiyonunu üç mililitrelik bir metil kült büyüme medyası alikotuna aktarın.Şiddetli bir şekilde vorteksleyerek homojen bir hücre süspansiyonu oluşturun. Tüpü üç dakika boyunca hareketsiz bırakın. Hücreleri ekmek için, üç mililitrelik bir şırıngaya 16 gauge küt uçlu iğne takın ve 2.2 mililitre çekin.Büyük hava kabarcıklarının alınmamasına dikkat ederek, iki adet 30 mm'lik işlem görmemiş doku kültürü kabının her birine 1,1 mL aktarın ve karışımı döndürerek eşit şekilde yayın; ardından bu çift plakaları, yanında bir su kabı ile birlikte 100 mm'lik bir plağın içerisine yerleştirin. Steril su kültürü ortamında iki hafta boyunca bekletmeye devam edin. Kolonileri, üzerinde skorlama ızgarası bulunan bir kültür kabında, ters mikroskop altında 40x büyütmede morfolojilerine göre karakterize edin ve puanlayın.Kültür sonuçlarını belgelemek için, tüm CFC analiz plağını standart bir tarayıcı kullanarak 600 DPI çözünürlükte tarayın ve diferansiyasyon ile proliferasyon hücrelerinin daha ayrıntılı analizi için renkli kamerayla donatılmış ters bir mikroskop kullanarak temsili kolonilerin düşük büyütmeli foto-mikrograflarını çekin; tüm CFC analiz plağındaki hücreler, oda sıcaklığındaki 2%F-B-S-I-M-D-M'nin birkaç hacminde süspanse edilerek geri kazanılır, yıkanır ve morfolojik analizler için sayılır. CFC analiz plaklarından geri kazanılan 30, 000 hücreyi bir lama aktarın. Lamları etkin bir şekilde boyayabilmek için STOs spin santrifüj kullanarak lamları gece boyunca havada kurutun.Aşağıdaki sırayla çözeltiler içeren dokuz boyama kabından oluşan bir işlem hattı kurun: Mutlak metanol, Giemsa stok çözeltisi, Giemsa tamponu (%50 metanol ve su), iki adet su kabı, pH 6 fosfat tamponu ve son olarak iki adet su kabı. Lamları bir lam taşıyıcıya yerleştirin, iki dakika boyunca mutlak metanole daldırın ve fazla metanolü süzün.Lam taşıyıcıyı hemen daldırın ve beş dakika boyunca hazır Giemsa stok çözeltisinde bekletin. Taşıyıcıyı pH 6.4 Giemsa tamponuna aktarın ve 10 dakika inkübe edin. Taşıyıcıyı iki kez %50 methanol içinde, 10 kez suda, ardından sonraki su kabında tekrar 10 kez ve son olarak beş kez fosfat tamponu içinde daldırın.pH 6.0. Taşıyıcıyı suya aktarın ve iki dakika boyunca inkübe edin. Yıkama işlemini son su kabında tekrarlayın.Şimdi lamların taşıyıcı içinde tamamen havada kurumasına izin verin. Her bir lamı çıkarın ve lekeleri temizlemek için lamın arka kısmını metanolle ıslatılmış Kim wipe ile silin. Kapatmak için bir damla cyto seal 60 damlatın ve bir lamel yerleştirin.Bir mikroskop kullanarak her GM sürdürülebilir lamı için 500 hücrelik bir diferansiyel sayım gerçekleştirin. Bu deneyin amaçları doğrultusunda hücreler beş kategoriye ayrılır: primitif hücreler, ara miyeloid hücreler, olgun miyeloid hücreler, ara eritroid hücreler ve olgun eritroid hücreler. Örneğin, yeni 98 hawks'ın kontrol ekspresyonu ile karşılaştırıldığında, bir onkogen kırmızı eritroid kolonilerinin oluşumunu artırmıştır.Onkogenin piyasa etkisi, koloniler düşük büyütme altında gözlemlendiğinde açıkça görülmektedir. GEM sürdürülebilirliği ile yapılan ileri morfolojik inceleme, hücre popülasyonunun soyu ve olgunlaşma derecesi hakkında bilgi sağlar. Bu örnekte, yeni 98 Hawks'ınle, dokuzun girişi, eritroid hiperplazili hücre sayısında genel bir artışa neden olmuş ve hem eritroid hem de miyeloid olgunlaşmayı inhibe etmiştir.Bu SA, bir giriş hücre preparatının yarı katı bir ortamda çoğalma, farklılaşma ve koloni oluşturma kapasitesini ölçerek hematopoetik hücre farklılaşmasına dair içgörü sağlar.

colony-forming-cell-cfc-assay-for-human-hematopoietic-cells

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Endotel progenitör hücrelerin koloni oluşturan (ECFCs) vasküler homeostazı ve onarım çalışması için bir gelecek vaat eden bir araçtır.

İzolasyon ve Büyük Ölçekli Genişleme Yetişkin İnsan Endotel Koloni Oluşturan Progenitör Hücreler

Endotel koloni oluşturan hücreleri (ECFCs) intrensek göstermeyen sağlam klonal bir proliferatif potansiyeli olan endotel hücreleri...

Endotel Colony Forming Hücrelerinin Fenotipik ve Fonksiyonel Karakterizasyonu İnsan Göbek Kordonu Kanı türetilen

Bu video, antikanser bileşiklerle tedaviye yanıt olarak lösemik hücreler tarafından oluşturulan kolonilerin sayısını tanımlamaya ve saymaya yardımcı olan metil selüloz bazlı koloni oluşum birimi veya CFU testi protokolünü açıklar.

Metil Selüloz Bazlı CFU Testi: Lösemik Hücrelerde Anti-kanser Bileşiklerinin Koloni Oluşumu Üzerindeki Etkisini Belirlemeye Yönelik Bir Yöntem

Bu protokol, transkripsiyon faktörlerinin zorlanmış ekspresyonu yoluyla insan pluripotent kök hücrelerinden hemojenik endotel ve multipotansiyel hematopoietik progenitörlerin verimli indüksiyonunu açıklar.

İnsan Pluripotent Kök Hücreleri Transkripsiyon Faktörleri aşırı ifadesinin doğrudan Hemogenic Endotelyumunun uyarılması ve Kan

Burada, insan pluripotent kök hücre (hPSC) kültür hPSCs CD34 ayırt etmek için kullanılan iletişim kuralları, mevcut+ hematopoetik ataları. Bu yöntem kurallı WNT ya kesin veya ilkel hematopoetik program sadece hücrelere belirtmek sinyal manipülasyon sahne özgü kullanır.

İlkel ve kesin hematopoetik ataları insan Pluripotent kök hücrelerden farklılaşma yönetmen

Burada, c-Fos ve Dusp1 genetik ve kimyasal doğrulama uyuşturucu hedef olarak tüp bebek ve içinde vivo genetik ve insanlaşmış fare modelleri kullanarak lösemi için iletişim kuralları açıklar. Bu yöntem, herhangi bir hedef için genetik doğrulama ve terapötik geliştirme için uygulanabilir.

C-Fos rolü ve Dusp1 onkogen bağımlılığı değerlendirme yöntemleri

Burada, bir besleyici ve Xeno-ücretsiz durumda insan pluripotent kök hücrelerinden hemogenik endotelyum tam olarak oluşturmak için bir protokol sunuyoruz. Bu yöntem hastalık modelleme ve terapötik bileşikler için tarama geniş uygulamalara sahip olacaktır.

Bir besleyici içinde ınsan pluripotent kök hücrelerinden hemogenik endotelyum farklılaşma-ve Xeno-ücretsiz tanımlı koşul

Burada ex vivo kültürlü hematopoetik kök hücreler ve T hücrelerinde mitokondriyal kitle ve membran potansiyelini ölçmek için güvenilir bir yöntem açıklanmaktadır.

Hematopoetik Kök Hücrelerde ve T-Hücrelerinde Mitokondriyal Kitle ve Membran Potansiyelinin Akış Sitometrisi ile Ölçülmesi

Burada, erken patlama oluşturan birim eritroid (BFU-e) ve koloni oluşturan birim eritroid (CFU-e) progenitörlerinin doğrudan taze fare kemik iliği ve dalağından prospektif izolasyonu için yeni bir akış sitometrik yöntemi tanımladık. Tek hücreli transkriptomik verilere dayanarak geliştirilen bu protokol, dokunun tüm eritroid progenitörlerini yüksek saflıkta izole eden ilk protokoldür.

Patlama Oluşturan Birim ve Koloni Oluşturan Birim Eritroid Progenitörlerinin Fare Dokusundan Akım Sitometrisi ile Tanımlanması ve İzolasyonu

Burada sunulan, hücre bölünmelerinin sayısını, yüzey hücresi fenotipini ve hücresel akrabalığı aynı anda ölçmeye izin veren akış sitometrisine dayalı bir tekniktir. Bu özellikler, permütasyon tabanlı bir çerçeve kullanılarak istatistiksel olarak test edilebilir.

Hematopoetik Kök ve Progenitör Hücreler için Akış Sitometrisi ile Akrabalık, Bölünme Sayısı ve Fenotipin Eşzamanlı Değerlendirilmesi

Öğrenin, insan CD34+ hücrelerinin CFC testi ile çoğalma ve farklılaşma potansiyelini değerlendirmeyi. Bu yöntem, hematopoetik kök hücre biyolojisi ve lösemogenez araştırmalarında mekanistik içgörü sağlar.

Koloni Oluşturan İnsan Hematopoetik Hücreler Hücre (CFC) Testi

Daha fazla video keşfet