Name: Kemirgen Sıtma Parazitler Genetik Haç üretimi için protokol (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-03T17:30:00.000+00:00
Duration: 13 min 39 s
Description: Öğrenin Plasmodium yoelii genetik haç üretimi yöntemini; fare ve sivrisinek kullanarak rekombinant progeni oluşturma tekniğini keşfedin. Bu yöntem sıtma araştırmalarında ilaç direnci ve bulaşıcılık genetik belirleyicilerini incelemeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dr Randy Elkins, Robin Kastenmayer, Ted Torrey Dan Pare ve Tovi Lehman el yazmaları eleştirel okuma için teşekkür ederiz. Bu çalışma ve 973 Çin Ulusal Temel Araştırma Programı, # 2007CB513103 İntramural İntramural Araştırma Bölümü Araştırma Programı, Ulusal Enstitüsü Alerji ve Bulaşıcı Hastalıklar, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından da desteklenmiştir. NIAID intramural editörü Brenda Rae Marshall yardım için teşekkür ederim.

Farelere deneysel sonuçların bulandırabilir eksojen enfeksiyöz ajanların yanlışlıkla giriş önlemek için hayvanlar içine yönetilmektedir olacak bütün malzemeleri aseptik teknikler uygulanmalıdır. 1. Kan sahne Sıtma Parazitler Laboratuvar Fare Enfeksiyon <ol><li> Oda sıcaklığında çözünme, dondurulmuş kan sahne sıtma parazitleri içeren iki şişeleri geçilebilir. Bu örnekte, iki kemirgen sıtma paraziti suşları Plasmodium yoelii yoelii ve Plasmodium yoelii nigeriensis. </li><li> Fit bir şırınga ve bir 22-30 gauge (G) iğne ile steril, ilaç sınıf PBS (pH 7.4) 400 mcL hazırlamak. </li><li> Içerik homojen olarak karıştırılmış kadar şırınga kadar ters ve aşağı aynı şırıngayı kullanarak, 100 mcL çözülmüş enfekte kan hazırlamak. (Opsiyonel: Bir pipet enjeksiyon için bir şırınga içine aktarılmadan önce bir toplama tüpüne PBS ve enfekte kan aktarmak için kullanılır olabilir). </li><li> Parazit doğrudan bir fare periton içine solüsyon içeren 200 mcL enjekte edilir. Bittiğinde, kavuz bin şırınga atın. (Laboratuar farelerine bakım için Ek Malzemeleri). Genel olarak, standart inokulum boyutu orijinal dondurulmuş malzeme parazit enfeksiyonları düzeyleri bağlı olarak, 100-500 mcL arasında. </li><li> Iki fareler her geçtiler iki parazit suşları enjekte edilir. Fareler enjeksiyondan sonra 3 ila 5 gün mikroskobik pozitif olacak. % 1-5 arasında parasitemias ulaştığınızda, bir sonraki adıma geçin. </li></ol> 2. Fare Karma Clone Enfeksiyon <ol><li> Karışık klon enfeksiyonu önce, mikroskobik inceleme Giemsa lekeli Kan frotilerinin (Şekil 3) farklı parazit suşları ile enfekte olan iki donör farelerden alınan kuyruk kan toplamak ve kırmızı kan hücre yoğunluğu ölçümü için (ayrıntılı yordamlar için Yardımcı Malzemeler) . </li><li> Daha önce elde edilen parasitemia ve kırmızı kan hücre yoğunluğu ölçümleri kullanarak, serum fizyolojik (% 1.5 w / v trisodyum sitrat dihidrat, 0.85% w / v sodyum klorür) ve inokulum karışımı üretmek için gerekli fare kan hacmi hesaplayın. </li><li> 100μl başına bir milyon bulaşmış kırmızı kan hücrelerinin bir final konsantrasyon parazit çözüm ayarlayın. </li><li> Karışık bir klonu inokulum elde etmek için iki vericilerden 1:1 oranında enfekte kan birleştirin. Iki ebeveyn klonların büyüme hızında farklılık, oranlarını ayarlamak 1:2 veya 1:5 yavaş büyüyen bir ebeveyn klonu ebeveyn hızlı büyüyen bir. </li><li> Enfekte olduğu için her fare periton içine karışık örnek 100 mcL enjekte edilir. (3.9 adım enjekte edilen farelerin sayısını belirlemek için ayrıca bkz.) </li><li> Bu yöntemi kullanarak, tek ebeveyn suşları ile her iki fareleri enfekte. Tek klonu enfeksiyonları iki ebeveyn suşlarının başarılı iletim belirlenmesine olanak sağlayacaktır. </li></ol> 3. Besleme Sivrisinekler <ol><li> 300-500 yetişkin (erkek ve kadın), pupa gelen Anofel stephensi sivrisinekler, her yaş sonrası 5-7 gün ortaya çıkması içeren üç kafesleri hazırlayın. Kapları, plastik ya da metal kapağı güvenli file ile kaplıdır. İki kafesleri ebeveyn klonlar beslemek için; üçüncü kafes genetik bir haç hazırlanması için. </li><li> Karma klonu enfeksiyon dört gün sonra başlayarak, enfekte olmuş fareler Giemsa lekeli ince kan kuyruk smear hazırlamak. </li><li> 1000x büyütme en az 50 mikroskobik alanları tarayarak, bir mikroskop altında smear incelemek ve erkek ve kadın gametocytes mevcut olup olmadığını belirlemek. </li><li> Erkek ve kadın gametocytes büyük vakuol ve büyük granüller (Şekil 3) varlığı nedeniyle dikkatleri üzerine çekiyor. Erkek ve kadın gametocytes sırasıyla, pembe ve mavi sitoplazma var. Gametocytes varsa, 3.6 adım izleyin. </li><li> Gametocytes yok ise, günlük izleme göründükleri kadar tutun. Gametocytes varsa, aşağıdaki adımla devam edin. </li><li> 50 mcL ketamin ve 3 mg / ksilizin ml her enfekte fare (20 gram fare vücut ağırlığı başına) uyutmak için bir fare periton içine 33 mg / ml içeren anestezik ilaç kokteyli enjekte edilir. Final doz ketamin ve ksilizin sırasıyla 82.5 ve 7.5 mg / Kg. </li><li> Fareler 24 saat açlık ve şeker kaynağı sivrisinek kesinti olmadan 30 dakika boyunca beslemek için izin yetişkin Anofel stephensi sivrisinek içeren bir kafesin üstünde yüz aşağı yerleştirin. </li><li> Standart koşullar (laboratuvar sivrisinek bakım için Ek yöntemleri sıcaklığı 24-26 arasında tutulur ° C) altında bir insectary sivrisinek koruyun. </li><li> Her 50-100 dişi sivrisinekler için bir enfekte fare kullanın. Fareler anestezi altında iken, beslenme sonrasında servikal dislokasyon farelerin hemen Euthanize. </li></ol> 4. Diseksiyon Sivrisinek Midguts ve Sayma ookistleri <ol><li> Besleme dokuz gün sonra, sivrisinek, böcek midgut ookistleri için ele alınacaktır. Tek klonu enfekte fareler üzerinde beslenen iki ebeveyn suşlarının bu gametocytes gösterir sivrisinek ookistleri varlığı bulaşıcıdır. </li><li> Bir sivrisinek midgut incelemek için, 5-10 enfekte sivrisinek kafes toplamak için küçük bir kapta bağlı bir aspiratör kullanın. </li><li> CO 2 gazı kullanılarak, sivrisinek uyutmak ve buz üzerinde bir cam petri kabı içine aktarabilirsiniz. Ayrı ve erkek sivrisineklerin atın. Antenler erkeklerde kadınlara oranla belirgin şekilde bushier vardır. </li><li> PBS ile iki şırınga doldurun ve 26 göstergesi yarım inç (G ½) iğne ile bunlara uyan. Mevduat bir cam slayt üzerine bir şırınga PBS yaklaşık 100 mcL. </li><li> PBS damla üzerine aktarın ve 5 ila 10 anestezi dişi sivrisineklerin diseksiyon mikroskobu slayt yerleştirin. </li><li> Aynı iğneler kullanarak, toraks ve arka karın böcek tutan, daha sonra, her bir sivrisinek kanatlarını ve bacaklarını kaldırmak dışında vücudun midgut, beyaz bir kese gibi vücut yayınlandı kadar çekin. Midgut ayırın ve vücudun geri kalanı atın. </li><li> Slaytlar kuru midgut hakkında daha fazla PBS ekleyin. Kurutulmuş izin verirseniz midgut dejenere olacaktır. Midguts üzerinde bir kapak kayma yerleştirin. </li><li> 100x büyütmede ışık mikroskobunda midguts inceleyin. (Şekil 3) her midgut ookistleri sayıları sayma. Ookistleri midguts dış yüzeyinde yer alan kalın duvarlı yuvarlak yapılar olarak dikkatleri üzerine çekiyor. </li><li> Tamamlandığında, şırıngalar, iğneler, ve bir dikiş iğnesi bin slayt atmayın. </li><li> Ookistleri midguts yok ise, yüksek sayıda gametocytes ile enfekte fare ile sivrisinek beslemek ve daha uzun bir beslenme zaman vermek. Sıcaklık bu adım için kritik öneme sahiptir. Sıcaklık 24 - 26 ° C'de ayarlanmış olduğundan emin olun. </li></ol> 5. Santrifüj tarafından Sivrisinekler Sporozoites toplanıyor <ol><li> Aşağıdaki gibi sporozoite toplama tüpleri hazırlayın: 0.5 mL temiz bir santrifüj tüpüne kapağı kesme ve Alevli 19 G iğne kullanılarak tüp dibinde (0.1-0.2 mm çapında) bir delik yumruk. </li><li> 1 / 3 'tüp cam yünü ile doldurun. (~ 100 sivrisinek hasat sporozoites için yeterli bir tüp), 1.5 ml toplama tüpünün içine filtre tüp takın </li><li> Gün 17 Mesaj beslenme, küçük bir kap içine bir aspiratör kullanarak kafesleri sivrisinek (Adım 4) toplamak. </li><li> CO 2 gaz, sivrisinekler uyutmak için kullanın . </li><li> Erkek sivrisineklerin dişileri ayırın. Buz üzerinde bir cam petri kabı konteyner anestezi dişi sivrisinekler aktarın. </li><li> PBS ile dolu, 26 G ½ iğne ile iki şırınga hazırlayın . Mevduat bir cam slayt üzerine bir şırınga PBS yaklaşık 100 mcL. </li><li> Sivrisinekler bir mikroskop lamı üzerine aktarın. Diseksiyon mikroskobu altında sivrisinek 'kafa, kanatlar, bacaklar ve karın çıkarın. </li><li> Ince uçlu forseps kullanma, 1.5 ml homojenizatör (havanda) 0.5 ml PBS thoraxes transfer. (Sporozoite 2-3 saat için infektif kalır) thoraxes buz üzerinde saklayın. </li><li> (Bkz. Şekil 3), tükürük bezlerinin sporozoites serbest bırakmak için buz üzerinde thoraxes homojenize ve cam yünü (Adım 5,1-5,2) bir cam pipet kullanarak dolu tüpe ilginçtir (homojenatlarında) aktarmak. </li><li> Oda sıcaklığında 1000 rpm'de 10 ila 20 saniye boyunca santrifüjleyin. </li><li> Toplayın akış yoluyla 22-30 G iğne ile (saflaştırılmış sporozoite süspansiyon) bir şırınga kullanarak. (Opsiyonel: damla 10-50 mcL akış ile mikroskopik bir slayt, bir kapak, 400X büyütme standart bir ışık mikroskobu altında canlı sporozoites kayma ve görselleştirmek yer, ayrıca bkz Şekil 3) </li><li> Fareler (bkz. ref 12 kadar 200.000 parazitler tek bir sivrisinek hasat edilebilir) içine sporozoite süspansiyon ip 0.1-0.5 ml enjekte edilir. Başarılı bir durumda, hayvanın bir enjeksiyondan sonra 72 saat enfekte olacak. </li></ol> 6. Sınırlı Seyreltme kullanarak Klonlama Döl <ol><li> Sporozoite enjeksiyondan sonra yetmiş iki saat, Kan frotilerinin Giemsa boyama sonrası ve kırmızı kan hücre yoğunluğu ölçümü için mikroskobik inceleme için farklı parazit suşları (ayrıntılı yordamlar için Yardımcı Malzemeler) ile enfekte iki donör farelerin kuyruk kan toplamak. </li><li> % 0.1 ila 1 parasitemia gösteren bir fare seçin ve enfekte kırmızı kan hücreleri, klonlama işlemi için bir bağış olarak çoğunlukla tek parazitleri içerir. Farelerin mikroskobik negatif ise 6.1 önümüzdeki günlerde adımı yineleyin. Hayvanlar 14 gün içinde enfekte değilse) 5 Adım 2 tekrarlayın ve adım 5.11 sporozoites varlığını belirlemek. </li><li> Buzağı serum ve memeli Ringer solüsyonu (2.7 mM potasyum klorür, 1.8 mM kalsiyum klorür, 154 mM sodyum klorür) soğuk bir çözüm 01:01 hasat kuyruk kan sulandırınız kadar, con ulaşmak1 bulaşmış kırmızı kan 100 mcL başına hücre ve buz üzerinde inokulum saklamak için 0,6 santrasyondan. Bu şekilde, bireysel fare çoğu ya bir veya sıfır parazitler almalıdır. </li><li> Intravenously, her 50 ila 100 farelerin seyreltilmiş enfekte kan 100 mcL enjekte. </li><li> Beş ila yedi gün sonra fareler, Giemsa lekeli Kan frotilerinin inceleyerek kan sahne parazitlerin varlığı için ekran. Başarılı bir deneyde, farelerin% 20-50 enfekte olmakta ve% 0,1-5,0 gün 8 yazılan enfeksiyon parasitemia gösterecektir. </li></ol> 7. Genetik Markers kullanarak Döl Karakterizasyonu <ol><li> 0.2 mL soğutulmuş fizyolojik sitrat salin solüsyonu, vorteks kısaca ve pelet kan hücreleri için oda sıcaklığında 3000 rpm'de 3 dakika santrifüj içeren 1.5 ml mikrosantrifüj tüp içinde 20 ila 40 mcL fare kuyruğu kan toplayın. Hemen DNA özü veya -80 ° C pelet tutmak </li><li> Parazit DNA herhangi bir standart DNA ekstraksiyonu yöntemleri kullanarak hazırlayın. Hızlı DNA izolasyonu için, bir Yüksek Saf PCR şablon hazırlık seti (Roche Uygulamalı Bioscience) kullanın. </li><li> Rekombinant döl mikrosatellit (MS) veya farklı kromozomlar üzerinde genetik çapraz iki ebeveyn suşları ayırt tek nükleotid polimorfizmi (SNP) kullanarak genotipleme sonra tespit edilir. P. MS genotipleme için tek floresan etiketli primerler kullanılarak basitleştirilmiş bir yöntem yoelii (bkz. ref 8,9) kullanılmalıdır. </li></ol> 8. Kan aşamalı Sıtma Parazitler, Kriyoprezervasyon <ol><li> 5-10 ml% 5-20 parasitemia ile bir anestezi fare kalp ponksiyonu ile enfekte kan toplayın 0.5-1 ml serum fizyolojik solüsyonu soğutulmuş. </li><li> Oda sıcaklığında 2000 rpm'de 5 dakika boyunca santrifüjleyin. Süpernatant atın. </li><li> Glycerolyte 57 çözüm açılan bilge 2x hacmi (Fenwal Laboratories) kan pelet üzerine ekleyin ve iyice karıştırın. </li><li> Süspansiyon (tüp başına 0.2-0.5 ml) cryotubes aktarın. </li><li> -80 ° C'ye kadar (1 ay) sıvı nitrojen ya da Kriyoprezerve kan saklayın. </li></ol> 9 - Temsilcisi Sonuçlar: Başarılı bir deneyde, klonlanmış hatların% 5-10, bağımsız rekombinant döl olacaktır. <img src="/files/ftp_upload/2365/2365fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1, genetik çapraz sırasında yaşam döngüsü ve genetik rekombinasyon olayları şematik . Genetik rekombinasyon olayları sivrisinek gelişiminin erken aşamasında yer alır. Sivrisinek midgut farklı genetik kökenden "haploid" erkek ve dişi eşey hücrelerinin döllenme sonrasında, "diploid" zigot oluşur. Zigot, parazitin yaşam döngüsünün sadece diploid aşamasını teşkil etmektedir, mayoz bölünme, döllenme 12 saat içinde izler ve sivrisinek ve memeliler sonraki tüm aşamalarında haploid kalır. Ortaya çıkan zigot ookinetes ve ookistleri dönüşebilir. Büyüme ve mitoz bölünme her ookist sivrisinek 'hemoceal salınan sporozoites binlerce üretir. Tükürük bezlerinin göç olanlar sporozoites, karaciğer ve kırmızı kan hücre aşamalarında gelişme gerçekleşir bir konak memeli, iletilebilir konumda bulunmaktadır. Kırmızı kan hücre siklusu seyri sırasında, bazı parazitler, olgun erkek ve kadın gametocytes ayırt edebilirsiniz. Bu gametocytes başka bir sivrisinek, sürdürmekte iletim tarafından alındığında, parazitin yaşam döngüsü tamamlanmış olur. <img src="/files/ftp_upload/2365/2365fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2, sıtma parazitleri ve rekombinant döl üretiminde nükleer genlerin Devralma . Genetik rekombinasyon kromozomal reassortment yoluyla veya çapraz olaylar oluşturulabilir. Homozigot döl aynı ebeveyn klon 1 veya 2 (A ve D), sırasıyla gamet arasında selfing tarafından üretilen. B) İki farklı ebeveyn klonlar, sadece kromozom reassortment tarafından oluşturulan rekombinant çekirdekleri (mavi oval) gamet arasındaki çapraz döllenme tarafından üretilen heterozigot döl. C) homolog kromozomların kardeş olmayan kromatidler arasındaki geçitler tarafından oluşturulan iki farklı ana klonlar, rekombinant çekirdekleri (kırmızı oval) gamet arasındaki çapraz döllenme üretilen heterozigot döl. <img src="/files/ftp_upload/2365/2365fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3 kemirgen sıtma paraziti Plasmodium yoelii morfolojisi. 10 gün sonrası ookistleri A) halka aşaması, B) trophozoite, C) schizont, D) merozoites, E) olgunlaşmamış erkek gametocyte, F) olgun erkek gametocyte G) olgunlaşmamış dişi gametocyte, H) olgun kadın gametocyte, I) midgut besleme (oklarla gösterilen olgun ookistleri, 200x büyütme), J) sivrisinek tükürük bezleri (100x büyütme), K) sporozoites (400x büyütme).

<ol><li>Hayton, K., Ranford-Cartwright, L. C., Walliker, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sulfadoxine-pyrimethamine+resistance+in+the+rodent+malaria+parasite+Plasmodium+chabaudi%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Sulfadoxine-pyrimethamine resistance in the rodent malaria parasite Plasmodium chabaudi.</a> Antimicrob Agents Chemother. 46, 2482-2489 (2002).</li>
<li>Cravo, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+of+mefloquine+resistance+in+the+rodent+malaria+parasite+Plasmodium+chabaudi%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Genetics of mefloquine resistance in the rodent malaria parasite Plasmodium chabaudi.</a> Antimicrob Agents Chemother. 47, 709-718 (2003).</li>
<li>Hunt, P., Cravo, P. V., Donleavy, P., Carlton, J. M., Walliker, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloroquine+resistance+in+Plasmodium+chabaudi%3A+are+chloroquine-resistance+transporter+%28crt%29+and+multi-drug+resistance+%28mdr1%29+orthologues+involved%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Chloroquine resistance in Plasmodium chabaudi: are chloroquine-resistance transporter (crt) and multi-drug resistance (mdr1) orthologues involved?</a> Mol Biochem Parasitol. 133, 27-35 (2004).</li>
<li>Yuan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+mapping+of+targets+mediating+differential+chemical+phenotypes+in+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic mapping of targets mediating differential chemical phenotypes in Plasmodium falciparum.</a> Nat Chem Biol. 5, 765-771 (2009).</li>
<li>Su, X., Kirkman, L. A., Fujioka, H., Wellems, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex+polymorphisms+in+an+approximately+330+kDa+protein+are+linked+to+chloroquine-resistant+P.+falciparum+in+Southeast+Asia+and+Africa%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Complex polymorphisms in an approximately 330 kDa protein are linked to chloroquine-resistant P. falciparum in Southeast Asia and Africa.</a> Cell. 91, 593-603 (1997).</li>
<li>Hayton, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erythrocyte+binding+protein+PfRH5+polymorphisms+determine+species-specific+pathways+of+Plasmodium+falciparum+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Erythrocyte binding protein PfRH5 polymorphisms determine species-specific pathways of Plasmodium falciparum invasion.</a> Cell Host Microbe. 4, 40-51 (2008).</li>
<li>Pattaradilokrat, S., Cheesman, S. J., Carter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Congenicity+and+genetic+polymorphism+in+cloned+lines+derived+from+a+single+isolate+of+a+rodent+malaria+parasite%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Congenicity and genetic polymorphism in cloned lines derived from a single isolate of a rodent malaria parasite.</a> Mol Biochem Parasitol. 157, 244-247 (2008).</li>
<li>Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hundreds+of+microsatellites+for+genotyping+Plasmodium+yoelii+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Hundreds of microsatellites for genotyping Plasmodium yoelii parasites.</a> Mol Biochem Parasitol. 166, 153-158 (2009).</li>
<li>Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Typing+Plasmodium+yoelii+microsatellites+using+a+simple+and+affordable+fluorescent+labeling+method%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Typing Plasmodium yoelii microsatellites using a simple and affordable fluorescent labeling method.</a> Mol Biochem Parasitol. 155, 94-102 (2007).</li>
<li>Walliker, D., Carter, R., Morgan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+recombination+in+malaria+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genetic recombination in malaria parasites.</a> Nature. 232, 561-562 (1971).</li>
<li>Sinden, R. E., Hartley, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+meiotic+division+of+malarial+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22J+Protozool%22%5BJournal%5D)">Identification of the meiotic division of malarial parasites.</a> J Protozool. 32, 742-744 (1985).</li>
<li>Ozaki, L. S., Gwadz, R. W., Godson, G. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+centrifugation+method+for+rapid+separation+of+sporozoites+from+mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Simple centrifugation method for rapid separation of sporozoites from mosquitoes.</a> J Parasitol. 70, 831-833 (1984).</li>
<li>Yoeli, M., Most, H., Bone, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmodium+berghei%3A+cyclical+transmission+by+experimentally+infected+Anopheles+quadrimachulatus%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Plasmodium berghei: cyclical transmission by experimentally infected Anopheles quadrimachulatus.</a> Science. 144, 1580-1581 (1964).</li>
<li>Landau, I., Boulard, Y. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLandau%2C+I+%22Life+cycles+and+Morphology%22">Life cycles and Morphology</a>. , Academic Press. London/New York/San Franciso. (1978).</li>
<li>Vanderbergh, J. P. Y., M, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+temperature+on+sporogonic+development+of+Plasmodium+berghei%5BTitle%5D)+AND+%22J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Effects of temperature on sporogonic development of Plasmodium berghei.</a> J Parasitol. 52, 559-564 (1966).</li>
<li>Gadsby, N., Lawrence, R., Carter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+study+on+pathogenicity+and+mosquito+transmission+success+in+the+rodent+malaria+parasite+Plasmodium+chabaudi+adami%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">A study on pathogenicity and mosquito transmission success in the rodent malaria parasite Plasmodium chabaudi adami.</a> Int J Parasitol. 39, 347-354 (2009).</li>
<li>Pattaradilokrat, S., Culleton, R. L., Cheesman, S. J., Carter, R. G. ene <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((encoding+erythrocyte+binding+ligand+linked+to+blood+stage+multiplication+rate+phenotype+in+Plasmodium+yoelii+yoelii%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">encoding erythrocyte binding ligand linked to blood stage multiplication rate phenotype in Plasmodium yoelii yoelii.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 7161-7166 (2009).</li>
<li>Pattaradilokrat, S., Cheesman, S. J., Carter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linkage+group+selection%3A+towards+identifying+genes+controlling+strain+specific+protective+immunity+in+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Linkage group selection: towards identifying genes controlling strain specific protective immunity in malaria.</a> PLoS One. 2, e857-e857 (2007).</li>
<li>Mackinnon, M. J., Read, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+Relationships+between+Parasite+Virulence+and+Transmission+in+the+Rodent+Malaria+Plasmodium+chabaudi%5BTitle%5D)+AND+%22Evolution%22%5BJournal%5D)">Genetic Relationships between Parasite Virulence and Transmission in the Rodent Malaria Plasmodium chabaudi.</a> Evolution. 53, 689-703 (1999).</li>
</ol>

Yazarlar, kamu çalışanları ve bu bir hükümet çalışması olduğundan, Amerika Birleşik Devletleri&#39;nde kamu malı. Başka herhangi bir anlaşma ile bağlı kalınmaksızın, NIH görüntülemek için PubMedCentral çalışmalarını sağlamak ve kamu tarafından kullanılması hakkını saklı tutar ve töreleri ile PubMedCentral tutarlı çalışma etiket veya değiştirebilir. ABD konunun dışında bir hükümet kullanım lisans hakları kurabilir.

Biz, aynı zamanda diğer kemirgen malarias genetik haçlar üretimi için geçerli kemirgen sıtma Plasmodium yoelii, genetik bir haç üretim teknikleri göstermektedir. Tek ebeveyn klonları ile farelerin enfeksiyonları genellikle ebeveynlerin çapraz yapmadan önce fonksiyonel gamet üretiminde yetkin olmalarını sağlamak için ebeveyn parazitlerin başarılı iletim belirlemek için yapılmaktadır. Başarılı bir sivrisinek yoluyla aktarımı insectary sıcaklığı, kullanılan kemirgen sıtma parazitleri t...

Yardımcı Malzemeler: <ul><li> Laboratuar farelerine Bakım </li><li> Laboratuvar sivrisinek Bakım </li><li> Giemsa ile boyanmış Kan frotilerinin mikroskobik muayene leke </li><li> Kırmızı kan hücre yoğunluğu ölçümü </li></ul> Laboratuar farelerine Bakım Kendilenmiş laboratuar faresi zorlanma 5 ila 8 hafta yaşlı BALB / c, Kadınlar çalışmaya kullanılır. Fare, besleyici ve bir su şişesi ile donatılmış tel bar kapaklı bir standart alt katı polikarbonat kafes, ev sahipliği yapmaktadır. Fare sabit bir sıcaklıkta korunur (25 ± 1 ° C) 00:12 saat ışık karanlık döngüsü. (Sterilize; Harlan-Teklad) Fare 2018S Harlan Teklad Küresel% 19 protein ekstrüde kemirgen diyet beslemek için izin verilir ve asitlendirilmiş içme suyu ad libitum ile birlikte. Hayvanlar üzerinde deney protokolü LMVR11E (Sağlık, Bethesda, Maryland Ulusal Sağlık Enstitüleri) altında Ulusal Alerji ve Enfeksiyon Hastalıkları Enstitüsü Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından belirlenen kurallara ve yönetmeliklere uygun olarak yapılmaktadır. Laboratuvar sivrisinek Bakım Sivrisinek Anofel stephensi bir laboratuarda yetiştirilmiş koloni. Yetişkinler, bir sıcaklık ve nem kontrollü odası (25 ila 23 saklanır naylon kafeslerde korunur ° C ve Plasmodium yoelii ve Plasmodium chabaudi için 21 ila 19 ° C Plasmodium berghei; 80 -% 95 nem ; 12:12 saat ışık: karanlık döngüsü). Yetişkin sivrisinek% 10 glikoz ve% 2.00 &#39;para-aminobenzoik asit (PABA) takviye su solüsyonu ile beslenir. Yüksek kaliteli yetişkin elde etmek için yaklaşık 1 mg sodyum bikarbonat ile birlikte 1000 cm 3 açık çanak, distile su ile 1 L düşük yoğunluklu bir durumda, 500 larva yetiştirilmektedir. Yumurtadan çıkan larvalar pupa aşaması haline kadar Tetramarin tozu (Petco) verilmiştir ve gelişmekte olan erişkin sivrisinek kafeslerine aktarılır. Giemsa ile boyanmış Kan frotilerinin mikroskobik muayene leke Temiz bir makas kullanarak enfekte fare kuyruğunun ucu (1.0 mm) snip. Yeri bir damla temiz bir örnek slayt üzerine kuyruk kan (0.5-1.0 mcL). Fare 1-2 dakika içinde kanama durur. Numune slayt 45 ° açıyla bakımı, kan damlası üstüne temiz bir dağıtıcı slayt yerleştirin ve kan serpme tüm genişliği tutunmasını sağlar. Örnek slayt tutun ve ince yayma üretmek için hızlı ve sorunsuz bir dağıtıcı slayt ileri itin. Kan filmi kurumasını bekleyin ve daha sonra mutlak metanol slaytlar batırmayın. Giemsa boyama (% 10 distile su Giemsa boyası) ile kaplayıp önce bir kez daha kuru hava slayt izin verin. Ince kan filmler 10-15 dakika oda sıcaklığında inkübe sonra, musluk suyu ile dikkatlice slaytlar yıkayın ve kuru, hava sağlar. 1000x büyütme (100x objektif lens ile birlikte) ve hesaplamak parasitemia (RBC sayılır 100 iRBC ortalama sayısı) immersiyon yağı ile hafif bir mikroskop altında; bulaşmış kırmızı kan hücreleri (enfekte eritrosit morfolojisi bkz. Şekil 3 iRBC) sayısı inceleyin. Sıtma parazitlerinin farklı türlerin büyüme oranı ve patojenite değişir. Kan aşamasında sıtma parazitleri doza bağlı olarak kan aşamada parasitaemias izlenmesi, enjeksiyondan sonra 24 saat gerçekleştirilen olabilir. Örneğin, 10 7 enfekte RBC intraperitoneal veya intravenöz 10 6 enfekte RBC ile enjekte edildiğinde farelerin mikroskobik olarak pozitif 24 saat olacak. Kırmızı kan hücre yoğunluğu ölçümü Parasitaemias, enfekte farelerde kırmızı kan hücre (RBC) yoğunluk seviyeleri gibi enfeksiyon seyri boyunca değişir. RBC yoğunluğu tek ve karma klonu enfeksiyonunun başlangıç ​​ve klonlama deneyleri önce 1-2 saat içinde ölçülmelidir. RBC yoğunluğu ölçümü için iki yöntem vardır: Cellometer kullanarak Neubauer hemasitometre ve otomatik sayma (Nexcelom Bioscience) kullanarak bir manuel sayım. Her iki yöntemde de, fare kuyruğu kan kılcal bir cam (VWR) kullanarak 1 mcL çekilme ve 10 ml PBS içinde sulandırmak ve iyice karıştırın. Neubauer hemasitometre kullanmak için, süspansiyon 20 mcL hemasitometre üzerine yerleştirin. 10x objektif lens ile ışık mikroskobu hemasitometre yerleştirin. Hemasitometre 16 küçük kareler daha ayrılır, 9, büyük meydanlar, ve 4 büyük köşesinde kareler ayrılmıştır bir tablo içerir. 16 küçük kareler her dört köşe kareler hücrelerinin toplam sayısını sayın. Önyargı sayma ya da bir grid çizgisi üst üste hücreleri sayma önlemek için, &quot;&quot; olarak hücre sayımı örtüşür, üst veya sağ çizgiler ve &quot;out&quot;, alt ya da sol hatları örtüşür. Küçük bir kare başına hücrelerinin sayısını tahmin etmek ve 0.00625 (küçük bir kare hacmi 6.25 nL) bölün. Bu mikrolitrelik başına hücreleri (&amp; numarasını verir.mu; L). Bu verilere göre, 10.000 (seyreltme faktörü) ile çarpılarak son kırmızı kan hücre yoğunluğu hesaplar. Kuru hava, saf su ve% 70 etanol ile kapak kayma ve sayma odasına durulayın. Alternatif olarak, bir Cellometer sayma odası slayt üzerine süspansiyon 20 mcL yükleyin. Slayt Cellometer slayt odası (okuyucu) içine yerleştirin. Cellometer yazılımını başlatın &quot;kırmızı kan hücresi&quot; seçeneğini seçin ve 10.000 seyreltme faktörü girin. RBC yoğunluğu kaydedin.

kemirgen sıtma parazitler genetik haç üretimi için protokol

Protocol for Production of a Genetic Cross of the Rodent Malaria Parasites

Antimalaryal yanıt ve sıtma parazitleri, patojenite Varyasyon, biyolojik ve tıbbi önemi. Bağlantı haritalama 1-3 kemirgenler ve insanlarda 4-6 sıtma parazitleri çeşitli özelliklerin altında yatan gen veya lokusların başarılı tanımlanmasına yol açmıştır. Sıtma paraziti Plasmodium yoelii vahşi Afrika kemirgenler izole birçok sıtma türlerinin biridir ve laboratuvarlarda büyümeye adapte edilmiştir. Bu tür birçok insan sıtma parazitlerinin biyolojik özellikleri yeniden üretmesidir; parazit 7-9 mikrosatellit ve amplifiye parça uzunluk polimorfizmi (AFLP) işaretleyicileri gibi genetik belirteçleri için geliştirilmiştir. Böylece, kemirgen sıtma parazitleri Plasmodium falciparum araştırma tamamlamak için genetik çalışmalar yapılabilir. Burada, P. genetik bir çapraz üretmek için teknikler göstermektedir yoelii ilk kez Dr tarafından öncülük edilmiştir . David Walliker Richard Carter ve arkadaşları 10, Edinburgh Üniversitesi. P. de Genetik haçlar yoelii ve diğer kemirgen sıtma parazitleri ilgi fenotipleri ve sivrisinek, 4 gün sonra enfeksiyon enfekte fareler üzerinde beslemek için izin vererek farklı genetik olarak farklı iki klonların gametocytes içeren bir inokulum ile enfekte fareler Mus musculus tarafından yapılmaktadır . Erkek ve dişi fare kan gametocytes varlığı mikroskobik beslemeden önce teyit edilir. Beslenmeden sonra 48 saat içinde, sivrisinek midgut, haploit gametocytes, erkek ve dişi eşey hücrelerinin içine ayırt döller ve diploid zigot formu (Şekil 1). Bir ookinete bir zigot gelişimi sırasında, mayoz 11. meydana görünür. Zigot genetik olarak farklı iki parazitler, genetik değişim (homolog kromozom çiftinin olmayan kardeş kromatidler arasında kromozomal reassortment ve cross-over; Şekil 2) gamet arasındaki çapraz döllenme yoluyla elde edilen ise, rekombinasyon sonuçlanan oluşabilir homolog lokusların genetik materyal. Her zigot dört haploit çekirdeklerin önde gelen, birbirini izleyen iki nükleer bölünmeler uğrar. Bir ookinete daha bir ookist içine geliştirir. Ookist olgunlaştıkça sonra, sporozoites (çapraz döl) binlerce oluşan ve sivrisinek hemoceal salınır. Sporozoites tükürük bezleri hasat öncesi eritrosit ve eritrosit aşama bir gelişme gerçekleşir yeni bir fare ev sahibi, içine enjekte edilir. Eritrosit formları klonlanmış ve genetik bağlantı haritalama önce ebeveyn hatları ayırt edici karakter bakımından sınıflandırılır. Bireysel ebeveyn klonların Kontrol enfeksiyonlar, genetik çapraz üretim olarak aynı şekilde yapılmaktadır.

Kemirgen sıtma parazitleri Genetik haçlar sivrisineklerin genetik olarak iki farklı parazitler besleyerek yapılmaktadır. Rekombinant döl sivrisinek enfekte farelerde ısırık izin sonra fare kandan klonlanmış. Bu video genetik haçlar üretmek nasıl gösterir<em&gt; Plasmodium yoelii</em&gt; Ve diğer kemirgen sıtma parazitleri için geçerlidir.

Kemirgen Sıtma Parazitler Genetik Haç üretimi için protokol

Antimalaryal ilaçlara verilen yanıttaki ve sıtma parazitlerinin patojenitesindeki varyasyonlar, biyolojik ve tıbbi açıdan önem taşımaktadır. Bağlantı haritalama (linkage mapping) ... yol açmıştır.

Bu prosedürün genel amacı, rekombinant döl elde etmek için kemirgen sıtma paraziti plasmodium yoi'nin genetik çaprazlamasını gerçekleştirmektir. Bu işlem, öncelikle bir grup fareye, çaprazlanacak parazitlerin iki ebeveyn klonunu içeren karma bir inokulum enjekte edilerek sağlanır. Enfekte fareler daha sonra sivrisinekleri beslemek için kullanılır; burada her bir ebeveyn suşun gametleri birleşerek diploid bir zigot oluşturur. Bu aşamadaki mayotik bölünme genetik rekombinasyona yol açarak rekombinant döl üretilmesini sağlar.Elde edilen sporozoitler daha sonra sivrisineklerin tükürük bezlerinden toplanır ve sınırlı dilüsyon ile izole edilebilen bireysel rekombinant klonları içeren kan evresi parazitlerini elde etmek amacıyla naif alıcı farelere yeniden enjekte edilir. Başarılı bir deneyde, klonlanan hatların %5 ila 10'u rekombinant olacaktır ve bunlar uygun genetik markörler için genotipleme yapılarak karakterize edilebilir. Bu yöntem, sıtma araştırmaları alanındaki, ilaç dirençli suşların genetik belirleyicileri nelerdir ve sıtmada bulaşabilirlik nedir gibi temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Dondurulmuş kan evresi içeren iki şişedeki malaria parazitlerinin çaprazlanması için oda sıcaklığında bekletilmesi gerekir. Bu örnekte kullanılan iki kemirgen malaria paraziti suşu plasmodium yoi, oi ve plasmodiumdur. Yoi Nigerianlar, 22 ila 30 gauge iğne takılmış bir şırınga kullanarak 400 µL PBS pH 7.4 çekiniz; aynı şırıngayı kullanmaya devam ediniz.Thor enfekte kanından 100 µL çekin, içerik homojen bir şekilde karışana kadar şırıngayı aşağı yukarı ters çevirin. Bu demonstrasyon sırasında, ağrı ve stresi en aza indirmek için anestezi uygulanmış hayvanlar kullanılacaktır. Anestezileme işlemi, bir farenin peritona 82.5 mg/kg ketamin ve 7.5 mg/kg ksilazin içeren 50 µL anestezik ilaç kokteyli enjekte edilerek gerçekleştirilir.Anestezi derinliğini izlemek ve mortaliteyi önlemek için fareleri gözlemleyin. Bu prosedür kullanıldığında, fareler 20 ila 30 dakika boyunca anestezi altında kalacaktır. Derlenme öncesinde, 200 microliters parazit içeren çözeltiyi doğrudan bir farenin peritonuna enjekte edin.İşlem tamamlandığında, şırıngayı tıbbi atık kesici-delici alet kutusuna atın. Bu yöntemi kullanarak, enjeksiyonlardan üç ila beş gün sonra, çaprazlanacak iki parazit suşunun her biriyle iki fareyi enfekte edin. Enfekte edilen farelerde kan aşaması parazitleri gelişecektir.Farklı parazit suşları ile enfekte edilmiş donör farelerin kuyruk uçlarını steril makasla kesin. Bir mikroskop lamı üzerine bir damla fare kuyruk kanı alın ve ince yayma preparatlar hazırlayın. İnce kan yaymasını guillem boyası ile boyayın.Guillem SA boyası, çekirdek eksikliği nedeniyle enfekte olmamış kırmızı kan hücrelerini boyamaz; SAI ise enfekte kırmızı kan hücrelerindeki parazit çekirdeklerini boyayacaktır. Kırmızı kan hücreleri; ring evreleri, trofozoitler, şizontlar ve yırtılan merozoitler şeklinde görülür. Her iki farede de parazitemi %1 ile 5'e ulaştığında, karışık klon enfeksiyonu için kan evresi parazitleri toplanabilir.Farklı parazitlerle enfekte edilmiş donör farelerin kuyruk uçlarını, daha önce açıklandığı şekilde steril makaslarla kesin. Cam bir kılcal tüp kullanarak bir mililitre steril PBS içinde bir mikrolitre fare kuyruk kanı toplayın. Alyuvar yoğunluğunu cell ome ile analiz etmek için kan süspansiyonunun 20 mikrolitresini kullanın.Alyuvar yoğunluğu ve parazit ölçümlerini kullanarak, enfekte alyuvar konsantrasyonu 100 mikrolitrede 1 milyon olacak şekilde kan örneklerini fizyolojik sitratlı salin çözeltisi ile seyreltin. Karışık klon inokülumu elde etmek için iki donörden alınan enfekte kan örneklerini bire bir oranda birleştirin. Ardından, enfekte edilecek her farenin peritonuna karışık örnekten 100 mikrolitre enjekte edin.Her ebeveyn suşun başarılı iletimini doğrulamak için tek klonlu enfeksiyonlarda iki fare kullanın. Parazitin erkek ve dişi gametosit olarak adlandırılan seksüel evreleri, enfeksiyondan yaklaşık dört gün sonra farelerin kanında görülmeye başlamalıdır. Daha önce açıklanan şekilde kuyruk kanı toplayıp ince kan yaymaları hazırlayarak, gametositlerin ortaya çıkışını izlemek için fareleri günlük olarak gözlemlemeye başlayın.Erkek ve dişi sitler, büyük granüllerin veya pigmentlerin varlığı sayesinde ayırt edilebilir. Erkek gato sitlerinin sitoplazması pembe iken, dişi TER sitlerinin sitoplazması mavidir. Yalnızca olgun gato sitleri büyük bir vakuole sahiptir.Her iki cinsiyetten olgun sitler tespit edildikten sonra, fareler sivrisinekleri beslemek için kullanılabilir. Her enfekte farenin peritona 50 microliters ketamin, ksilazin ve anestezik solüsyon enjekte edin. Fareler anestezi altına alındıktan sonra, bir tanesini 24 saat boyunca şeker kaynağıyla beslenmemiş 50 ila 100 dişi Anis defense enzyme sivrisineği içeren bir kafesin üzerine yüzüstü yerleştirin ve sivrisineklerin 30 dakika boyunca kesintisiz olarak beslenmesine izin verin.Besleme döneminin hemen ardından fareleri insancıl yöntemlerle ötanize edin. Eğer transmisyon başarılıysa, beslemeden dokuz gün sonra, sivrisinekler tarafından alınan gametositler diploid zigotlara dönüşmüş ve bunlar da böceklerin orta bağırsağında görülebilen ookistlere olgunlaşmış olacaktır. Ne kadar çok ookist tespit edilirse, rekombinant parazitlerin üretilmiş olma ihtimali o kadar yüksektir.Bir aspiratör kullanarak kafesten beş ila 10 enfekte sivrisinek toplayın ve sivrisinekleri küçük bir kaba aktarın. Sivrisinekleri karbondioksit gazı kullanarak anestezi edin ve buz üzerindeki cam bir Petri kabına aktarın. Antenleri dişilere göre belirgin şekilde daha tüylü olan erkek sivrisinekler ayıklanmalıdır.İki şırıngayı PBS ile doldurun ve uçlarına 26 gauge yarım inçlik iğneler takın. Bir şırıngadan lam üzerine yaklaşık 100 µL PBS damlatın. Beş ila 10 adet anestezi uygulanmış dişi sivrisineği iğneleri kullanarak PBS damlasının üzerine aktarın ve lamı bir diseksiyon mikroskobuna yerleştirin.Her bir sivrisineğin kanatlarını ve bacaklarını çıkarın, ardından böceği toraks ve posterior abdomenden tutun. Orta bağırsak (beyaz, kese benzeri bir yapı) serbest kalana kadar gövdeyi çekerek ayırın. Diseksiyon işlemi sırasında orta bağırsağı ayırın ve gövdenin geri kalanını atın.Diseksiyon iğnelerindeki PBS'yi kullanarak orta bağırsakların nemli tutulduğundan emin olun. Diseksiyon tamamlandıktan sonra orta bağırsakların üzerine bir lamel yerleştirin. Orta bağırsakları bir ışık mikroskobu altında 100 kat büyütmede inceleyin.OOS, orta bağırsakların dış yüzeyinde bulunan kalın duvarlı dairesel yapılar olarak tanınacaktır. Her bir orta bağırsaktaki OOS sayılarını sayın. Beslemeden 17 gün sonra, sistemden salınan sporozoitlerin sivrisineklerin SIV bezlerine göç etmiş olması gerekir, malaria parazitlerinin sporozoitleri.Sporozoitleri toplamak için ince iğ şekilli hücreler kullanılır. İlk olarak, temiz bir makas kullanarak bir toplama tüpü hazırlayın. Küçük 500 µL'lik bir einor tüpün kapağını kesin.Steril 19 gauge bir iğnenin ucunu ısıtın ve tüpün altına delik açın. Bir filtre oluşturmak için tüpün üçte birini cam duvarla doldurun. Filtre tüpünü daha büyük bir 1,5 mililitre einor tüpün içine yerleştirin.Filtre aparatı hazır olduğunda, sivrisinekleri daha önce açıklandığı şekilde toplayın ve anestezi uygulayın. Böcekleri diseksiyon için daha önce yapıldığı gibi hava ile sabitleyin ve sivrisineklerin başlarını, kanatlarını, bacaklarını ve abdomenlerini çıkarın. Enfekte salivarya bezlerini sadece toraks içermektedir.İnce uçlu pensler kullanarak toraksı, 500 µL PBS içeren 1,5 mL'lik bir homogenizatöre aktarın. Sporozoitlerin tükürük bezlerinden salınması için toraksı buz üzerinde homogenize edin ve bir cam pipet kullanarak homogenatları filtrasyon düzeneğine aktarın. Filtre tüpünü dakikada 1000 devirde 10 ila 20 saniye boyunca santrifüjleyin.Homojenatlar santrifüjle çöktürüldükten sonra, 22 ila 30 gauge iğne takılı bir şırınga kullanarak süpernatantı toplayın. Sporozoit süspansiyonundan 100 ila 500 µL'yi bir farenin peritona enjekte edin. Enfeksiyondan üç gün sonra farelerin parazit ve alyuvar yoğunluğunu izlemeye başlayın.Klonlama prosedürü için donör olarak, %0,1 ile %1 arasında parasitemi gösteren ve enfekte alyuvarlarının çoğunlukla tekli parazitler içerdiği bir fare seçin. Fareyle kuyruktan alınan kanı, 100 µL başına 0,6 ile 1 enfekte alyuvar konsantrasyonuna ulaşacak şekilde; soğuk, bire bir oranda buzağı serumu ve memeli Ringer çözeltisinden oluşan PBS dilüent ile seyreltip uygun miktarda kan çekin ve inokülumu buz üzerinde saklayın. Kuyruktaki enjeksiyon bölgesini etanolle temizleyerek intravenöz uygulama yapın.100 fareye, her birine 100 µL seyreltilmiş enfekte kan enjekte edin. Bu şekilde, her bir fareye ya bir tane ya da hiç parazit bulaşmış olmalıdır. Başarılı bir deneyde, farelerin %20 ila %50'si sekizinci günde %0,1 ila %0,5 oranında parazitemi gösterecektir.Beş ila yedi gün sonra, hazırlanmış ince kan yaymalarını inceleyerek farelerde kan evresi parazitlerin varlığını tarayın. Melezlemeden elde edilen yavru parazitler daha sonra, mikrosatellitler ve tek nükleotit polimorfizmleri gibi farklı kromozomlar üzerindeki genetik belirteçler kullanılarak, kuyruk kanı örneklerinden ekstrakte edilen DNA'nın PCR analizi ile genotiplenebilir. Bağımsız genetik lokusları iki ebeveyn klondan türemiş olan parazitler rekombinant klonlardır.Rekombinant parazitlerle enfekte edilmiş hayvanlardan alınan kan, gelecekteki kullanımlar için kriyoprezerve edilebilir. Başarılı bir deneyde, toplam farelerin %5 ila %10'u bağımsız rekombinant progenyye sahip olacaktır. Bu videoyu izledikten sonra, sıtmadaki genetik sürecin nasıl üretileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.Parazit artı ortam yoi. Bu yöntem, diğer parazit türleri için de aynı şekilde uygulanabilir.

protocol-for-production-genetic-cross-rodent-malaria

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Bu video, laboratuarda arka Anofel gambiae kullanılan genel teknikler gösterilmektedir. Kan besleme yetişkin için pupa larva organizmanın yaşam döngüsünün tüm aşamalarında laboratuar sivrisinek bakımı için yöntemleri gösterilmektedir.

Sivrisinek Yetiştirme Protokolü (A. gambiae)

Sıtma için potansiyel bir gen refrakter olarak tespit edildikten sonra, bu sivrisinek içinde Plasmodium enfeksiyonları önlemede rolü için değerlendirilmesi gerekmektedir. Bu protokol, sivrisinek Plasmodium enfeksiyonların ölçüde test nasıl göstermektedir. Gametocyte kültür, membran beslenmesi sivrisinek insan kanı hazırlamak ve sivrisinek midgut viral titreleri assaying teknikler gösterilmiştir.

Sivrisinekler ve Enfeksiyon Fenotip belirlenmesi Plasmodium falciparum Enfeksiyonlar Protokol

Bu video, serebral sıtmanın deneysel bir fare modelinin oluşturulmasını göstermektedir. Plasmodium berghei ile enfekte dişi sivrisineklerden izole edilen sporozoitler, kısıtlanmış bir farenin kuyruk damarlarına enjekte edilir, bu da kan-beyin bariyerinin bozulmasına ve beyin iltihabına yol açarak serebral sıtmaya neden olur. Bu enfekte fare modeli, serebral sıtma ile ilişkili in vivo mikrovasküler patolojiyi incelemek için değerli bir araç sunar.

Konakçı sivrisinek türevli sporozoitler kullanılarak deneysel serebral sıtmanın bir fare modelinin oluşturulması

Tüberküloz ve sıtma insan ve tropik yoksul toplumlarda morbidite ve mortalitenin önemli nedenlerinden en yaygın enfeksiyonlardan ikisidir. Bu enfeksiyon, doğal yoldan hem patojenler ile yüklemeden sonra farelerde sıtmaya tüberküloz koenfeksiyonu sonucunu çalışma deneysel bir model sistemi kurulmuştur.

Doğal İletim üzerine Tüberküloz-Sıtma Koenfeksiyonu Çalışması için Deneysel Bir Model Mycobacterium tuberculosis Ve Plasmodium berghei</i

Sıtma bulaştıran sivrisinekler, yalnızca moleküler teknikler kullanılarak tespit edilebilen epidemiyolojik olarak önemli bir dizi özelliğe sahiptir. MALDI-TOF tabanlı bir SNP genotipleme platformu kullanarak, sıtma vektörlerinin birden fazla temel özelliğini (tür, böcek ilacı direnci, parazit enfeksiyonu ve konakçı seçimi) aynı anda tespit etmek için bir test geliştirdik.

Sıtma verici Sivrisinekler için bir çok algılama Deneyi

İnsan sıtma parazitlerine kemirgen sıtma parazitlerinin yaşam döngüsü ve biyolojisinin çarpıcı benzerlikleri nedeniyle, kemirgen sıtma modelleri sıtma araştırmaları için vazgeçilmez hale gelmiştir. Burada, vahşi tip ve transgenik kemirgen sıtma türlerinin fenotipeksi analizinde kullanılan en önemli tekniklerden bazılarını standardize ettik.

Kemirgen Sıtma paraziti Asexual ve cinsel kan aşamaları ve sivrisinek aşamaları phenotypic Analizi

Biz glmSoluşturmak için bir yöntem tarif- Plasmodium falciparum CRISPR/Cas9 genom düzenleme kullanarak koşullu devirme mutantlar dayalı.

CRISPR/Cas9 gen düzenleme yapmak koşullu mutantlar, insan sıtma parazit P. falciparum için

bipartit GAL4-UAS sistemi, Anopheles gambiae'de fonksiyonel genetik analize izin veren kontrollü bir mekansal şekilde gen ekspresyonunun değiştirilmesi için çok yönlü bir araçtır. Bu sistemi kullanmak için açıklanan prosedürler yarı standart bir klonlama stratejisi, floresan protein belirteçleri ve embriyo fiksasyonu için pupaların cinsiyetlenmesi ve taranmasıdır.

Anopheles gambiae'de Fonksiyonel Genetik için GAL4-UAS Sistemini Kullanma

Protokol, φC31 sistemini kullanarak Anopheles sıtma sivrisineklerinin genomunda bölgeye yönelik değişikliklerin nasıl eldeılacağını açıklar. Açıklanan değişiklikler, attP taşıyan yerleştirme hatlarının genomunda transgenik kasetlerin hem entegrasyonunu hem de değişimini içerir.

Sıtma Anopheles Vektörlerinde SiteYe Yönelik φC31 Aracılı Entegrasyon ve Kaset Değişimi

Sıtma, enfekte sivrisinekler tarafından Plasmodium'un sporozoit aşamasının aşılanması yoluyla bulaşır. Transgenik Plazmodyum , sıtmanın biyolojisini daha iyi anlamamızı sağladı ve sıtma aşısı geliştirme çabalarına doğrudan katkıda bulundu. Burada, transgenik Plasmodium berghei sporozoitleri üretmek için aerodinamik bir metodolojiyi açıklıyoruz.

Genetiği Değiştirilmiş Plasmodium berghei Sporozoitlerinin Üretilmesi

Kimyasal genetik, bir kapı bekçisi kalıntısının, hedef lokusta farklı bir yan zincir içeren bir amino asit ile değiştirilmesini içerir. Burada, cdpk1'in hipomorfik bir alelini içeren mutant bir parazit oluşturduk ve mutant arka planda parazit tarafından benimsenen telafi edici yolları belirledik.

Bitki Benzeri Kinazların Hipomorfik Alelini Barındıran Mutant Bir Sıtma Parazitinde Telafi Edici Yolların Gelişimini Anlamak

Öğrenin Plasmodium yoelii genetik haç üretimi yöntemini; fare ve sivrisinek kullanarak rekombinant progeni oluşturma tekniğini keşfedin. Bu yöntem sıtma araştırmalarında ilaç direnci ve bulaşıcılık genetik belirleyicilerini incelemeye yardımcı olur.

Kemirgen Sıtma Parazitler Genetik Haç üretimi için protokol

Daha fazla video keşfet