August 3rd, 2011
Burada örnek sınırlı miktarda çalışma, özellikle microRNA (miRNA) ekspresyon düzeyleri için bir maliyet ve zaman etkili yüksek verimli bir tarama aracı olarak mikroakışkan platformu ile birlikte optimize edilmiş bir multiplex ters transkriptaz kantitatif PCR (QRT PCR) protokolü açıklamak.
Bu prosedürün genel amacı, multipleks kantitatif RTPCR'yi mikroakışkan bir platformla birleştirerek mikro RNA ekspresyonunu verimli, ucuz ve minimum başlangıç materyali ile profillemektir. Bu, ekstrakte edilen RNA'nın konsantre edilmesiyle başlar, ardından multipleks ters transkripsiyon ve multipleks ön amplifikasyon ile devam eder. Bir sonraki adım, aşırı astarları arındırmaktır.
Son olarak, singleplex mikro RNA ekspresyonu, mikroakışkan bir platform kullanılarak profillenir. Sonuç, ilgilenilen örnekler arasında doğru ve yüksek oranda tekrarlanabilir mikro RNA ekspresyon seviyeleridir. Mevcut yöntemlerin bu tekniğinin ana avantajı, ön EMP amplifikasyonundan sonraki ek saflaştırma adımının, multipleks Q-R-T-P-C-R yönteminin doğruluğunu ve tekrarlanabilirliğini geliştirmesidir.
Serumdan ekstrakte edilen RNA ile başlayın. Bir RNA saflaştırma kiti veya triol gibi homojenize edilmiş dokudan fenol kloroform bazlı RNA yöntemi kullanılarak, tüm ekstraksiyonlar bir yıkama aşaması ile takip edilmeli ve tüm depolama eksi 80 santigrat derecede yapılmalıdır. RNA çözeltisini konsantre edin.
Önce serumdan olduğu gibi sınırlı miktarda numuneyle başlıyorsanız, bir şişeye bir MicroCon numune haznesi yerleştirin, ardından pipet ucuyla zara dokunmamaya çok dikkat ederek RNA solüsyonunu hazneye pipetleyin. Şimdi şişeyi ve filtreyi, çatlak bandı rotora bakacak şekilde santrifüje yerleştirin ve santrifüjlemeyi yaklaşık üç saat çalıştırın. Üç saat sonra, RNA, RNA'yı elüte etmek için zar üzerinde tamamen konsantre olacaktır.
Membrana istenen miktarda RNA içermeyen su ekleyin, rezervuarı ters çevirin ve yeni bir şişeye yerleştirin. Daha sonra, konsantre RNA'yı ihtiyaç duyulana kadar eksi 80 santigrat derecede G.Store maksimum 3000 kez dört santigrat derecede üç dakika döndürün, xpl ters kök döngü primerleri kullanılarak RNA üzerinde bir RT reaksiyonu gerçekleştirdikten sonra, ardından 12 ila 18 tur PCR döngüsü. MikroRNA'lar, CD NA zincirleri ile temsil edilir.
Buna pre PCR ürünü denir. Yaklaşan QPCR'ye atıfta bulunarak. Ön PCR ürününün, 27,5 mikrolitre ön PCR ürünü ile birlikte 5,5 mikrolitre altı x turuncu G ile her şeritte 10 baz eşleştirilmiş DNA merdiven yükü ile birlikte %10'luk bir poli akrilamid jel üzerinde saflaştırılması gerekir.
Jeli 55 ila 60 dakika boyunca 150 voltta çalıştırın. Romo fenol mavisi, 20 baz çifti bölgesinde bu jel üzerinde çalışır. Jel çalıştıktan sonra, ışığa maruz kalmadan ve lekeli jelden bir çalkalayıcı üzerinde 25 dakika boyunca siber altınla boyayın.
Ön PCR ürün bandını 60 ila 80 baz çifti arasında kesin ve jel bloğunu etiketli tüplere aktarın. Ürün konsantrasyonu düşükse, görünmeyebilir, ancak yine de jelin içinde olacaktır. Şimdi tüp santrifüjlemede tüp kullanarak jel bandını ezin ve 300 mikrolitre TEN tamponu ekleyin.
Tampon jel karışımını çalkalama ile 37 santigrat derecede dört saat inkübe edin. Dört saat sonra, sıvıyı yeni bir tüpe aktarın ve 300 mikrolitre daha TEN tamponu ekleyin. Bu karışımı gece boyunca dört santigrat derecede çalkalama ile inkübe edin.
Ertesi gün, tüp içeriğini tekrar aktarın ve ön PCR ürününün etanol çökeltmesi ile devam edin. Bir çip paketinden açıldığında, 24 saat içinde astarlanmalı ve ardından astarlamadan sonraki 60 dakika içinde yüklenmelidir. Çip üzerindeki akümülatörlerin her birine 150 mikrolitre kontrol hattı sıvısı enjekte ederek diziyi hazırlamaya başlayın.
Çipin veya girişlerin üzerine herhangi bir sıvı dökmemeye dikkat edin, aksi takdirde çip kullanılamaz hale gelir. Ardından çipi entegre akışkan devresine veya IFC kontrol cihazına yerleştirin ve kontrolörün hazırlama komut dosyasını çalıştırın. Program başlar başlamaz numuneleri hazırlamaya başlayın.
Pres örneğini hazırlayarak başlayın Tack man, universal master mix ve yükleme reaktiflerinin bir kombinasyonunu karıştırın. Daha sonra 96 kuyu yükleme formatını kullanarak, yüklenen sıvıyı toplamak için her numunenin 2,25 mikrolitresini 2,75 mikrolitre pres numune karışımı ile birleştirin. Plakayı kısaca girdap haline getirin ve hızlı bir şekilde dört santigrat derecede santrifüjleyin.
Numune plakası şimdi hazırlanmıştır. Şimdi tahlil karışımının 13 x konsantrasyonunu hazırlamak için yeni bir 96 kuyulu plaka kullanın. Bu, kuyu başına bir evrensel primer, ileri primer ve gene özgü tac man probunun karıştırılmasıyla yapılır.
Bir X konsantrasyonları, üniversal ve ileri primer için bir mikromolar ve tac man probu için 0.2 mikromolardır. Ardından, beş mikrolitrelik son kuyu hacminde %0,25'lik bir son konsantrasyon için yeterli miktarda ara ekleyin. Kabarcıklardan kaçınarak iyice karıştırın ve sıvıyı toplamak için plakayı kısaca döndürün.
Bu tahlil plakasıdır. Çipi yükleyerek 96.96 Q-R-T-P-C-R'ye başlayın. Önce numuneleri ve ardından tahlilleri, giriş başına beş mikrolitrelik son hacimle IFC'ye yükleyin.
İkinci olarak, örnekleri ve tahlilleri çipe yüklemek için yük karışımı komut dosyasını çalıştırın. Komut dosyası bittiğinde, yüklenen çipten koruyucu filmi soyun ve yapışkan bant kullanarak çip yüzeyindeki toz parçacıklarını veya kalıntıları temizleyin. Şimdi biyo sistem amplifikasyon programını kurun.
Çipi sisteme yükleyin ve programı çalıştırın. Sonuçlar, her biri için amplifikasyon eğrileri, tüm çip ısı haritaları ve CT değerleri sağlamak için fluid dime yazılımı ile analiz edilebilir. Doğal poli akrilamid jeller, vahşi tip DG CR sekiz ve ER boş mutant üzerinde boyut ayrımı ile saflaştırılan pre PCR ürünleri kullanılarak.
RNA, önceki protokollere göre hazırlandı. Saflaştırma adımı sayesinde hem DGCR sekiz boş hem de ER boş arka planında daha fazla mikroRNA ve yanlış pozitif sinyal kaybı meydana gelir. Ek olarak, modifiye edilmiş QR TPCR R yaklaşımı, nadir D gcr sekiz bağımsız dicer bağımlı küçük RNA'ların uygun şekilde kategorize edilmesine izin verir.
Burada, hastalardan ve kontrollerden alınan 48 cera, 384 farklı mikroRNA'nın ekspresyon değişikliği açısından tarandı. Veriler, her bir örnek için, karşılık gelen medyan çıkarılarak ve kontrollerde bir artış kullanılmadan normalleştirildi. Bu videoyu izledikten sonra, bir grip hattı platformundaki multipleks Q-R-T-P-C-R'nin, çok sınırlı girdi olan RNA ile başlarken bile, birçok örnekte yüzlerce mikronazı aynı anda profillemek için nasıl kullanılabileceğini iyi anlamış olmalısınız.
Bu makale, bir mikroakışkan platform ile entegre, mikroRNA (miRNA) ekspresyon seviyelerinin verimli profillenmesi için tasarlanmış optimize edilmiş bir multipleks ters transkriptaz nicel PCR (qRT-PCR) protokolü sunar. Yöntem, özellikle sınırlı örnek miktarları içeren çalışmalar için avantajlıdır.
Accurate microRNA profiling is critical for target validation and biomarker discovery in early drug development, particularly when working with limited clinical samples. This optimized multiplex qRT-PCR method on microfluidic platforms enhances data reliability while reducing reagent consumption, supporting cost-effective high-throughput screening. The purification step addresses a key limitation in existing methods, improving confidence in downstream mechanistic and translational decisions.
The method fits within the discovery continuum from early target hypothesis testing through lead optimization, where reliable miRNA expression data informs target prioritization and mechanism of action studies.