Name: Manuel Tutucu ve Fare ve Sıçanlarda Ortak Bileşik İdaresi Rotalar (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-26T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 10 s
Description: Öğrenin fare ve sıçanlarda manuel tutucu teknikleri ve bileşik idaresi yöntemlerini. Bu video, enjeksiyon ve oral gavaj gibi güvenli uygulamaları göstererek hem hayvan refahını hem de araştırma doğruluğunu artırır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Burada sunulan araştırma Charles River tarafından desteklenmiştir.

<ol><li>Turner, P. V., Brabb, T., Pekow, C., Vasbinder, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+routes+of+administration+and+factors+to+consider%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: routes of administration and factors to consider.</a> JAALAS. 50, 600-613 (2011).</li>
<li>Diehl, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood%2C+including+routes+and+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J. Appl. Toxicol. 21, 15-23 (2001).</li>
<li>Hurst, J. L., West, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taming+anxiety+in+laboratory+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Taming anxiety in laboratory mice.</a> Nat. Methods. 7, 825-826 (2010).</li>
<li>Maurer, B. M., Döring, D., Scheipl, F., Küchenhoff, H., Erhard, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+a+gentling+programme+on+the+behaviour+of+laboratory+rats+towards+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effects of a gentling programme on the behaviour of laboratory rats towards humans.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 111, 329-341 (2008).</li>
<li>Cloutier, S., Newberry, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+conditioning+technique+to+reduce+stress+associated+with+repeated+intra-peritoneal+injections+in+laboratory+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Use of a conditioning technique to reduce stress associated with repeated intra-peritoneal injections in laboratory rats.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 112, 158-173 (2008).</li>
<li>Romanovsky, A. A., Kulchitsky, V. A., Simons, C. T., Sugimoto, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methodology+of+fever+research%3A+why+are+polyphasic+fevers+often+thought+to+be+biphasic%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Methodology of fever research: why are polyphasic fevers often thought to be biphasic.</a> Am. J. Physiol. 275, 332-338 (1998).</li>
<li>Turner, P. V., Pekow, C., Vasbinder, M. A., Brabb, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+equipment+considerations%2C+vehicle+selection%2C+and+solute+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: equipment considerations, vehicle selection, and solute preparation.</a> JAALAS. 50, 614-627 (2011).</li>
<li>Lukas, G., Brindle, S. D., Greengard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+route+of+absorption+of+intraperitoneally+administered+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp.+Ther%22%5BJournal%5D)">The route of absorption of intraperitoneally administered compounds.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 178, 562-564 (1971).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Laboratory+Mouse+Handbook%22">Laboratory Mouse Handbook</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LAT+Training+Manual%22">LAT Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LATg+Training+Manual%22">LATg Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>Barnett, S. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBarnett%2C+SW+%22Manual+of+Animal+Technology%22">Manual of Animal Technology</a>. , Wiley-Blackwell. 440(2007).</li>
<li>Baumans, V., Pekow, C. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBaumans%2C+V+%22Handbook+of+Laboratory+Animal+Science%22">Handbook of Laboratory Animal Science</a>. Hau, J., Schapiro, S. J. 1, CRC Press. 401-446 (2010).</li>
<li>Bogdanske, J. J., Hubbard-Van Stelle, S., Riley, M. R., Schiffman, B. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBogdanske%2C+JJ+%22Laboratory+Mouse+Procedural+Techniques%22">Laboratory Mouse Procedural Techniques</a>. , CRC Press. (2011).</li>
<li>Danneman, P., Suckow, M. A., Brayton, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDanneman%2C+P+%22The+Laboratory+Mouse%22">The Laboratory Mouse</a>. , CRC Press. (2000).</li>
<li>Sharp, P. E., La Regina, M. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSharp%2C+PE+%22The+Laboratory+Rat%22">The Laboratory Rat</a>. , CRC Press. (1998).</li>
</ol>

Yazarlar Charles Nehri çalışanlarıdır.

Bu protokol araştırmacı imkan sağlanan eğitim eller tamamlayacak yapısındaki hayvan işleme ve madde yönetimine bir giriş olarak görülmelidir. Kullanılacak ve maddenin uygulama yolları araştırma protokolü veya etik kurul protokolü yazılırken deney tasarımında dikkate alınması gereken kısıtlama anlamına gelir. Hayvan ilgili prosedürler Eğitim araştırma başarısı için hayati önem taşımaktadır. En deneyleri gerçekleştirmek için, hayvanlar araştırma personeli tarafından ele alınması gerekir ve daha iyi hayvan taşıma, daha az hayvansal 3 vurguladı. Nazik insan temas için hayvanların Accustoming stresi azaltmak ve hayvanların daha uysal araştırma konuları 4,5 yapabilirsiniz. Taşıma stres araştırmaları 6 bazı türleri etkilediği gösterilmiştir ve bu da diğerleri etkileyen mümkün olmuştur. Kemirgenler Restraint (geçici bir dikkatli ile gerçekleştirilebilir, ama hakimiyet olmalıdırkavrama kemirgen ve işleyicisi yaralanmasına neden muhtemeldir) ve pratik olan en kısa süre olmalıdır. Tutucu yöntemler genellikle hayvanın boyutuna bağlı olarak seçilir ya da erişim talep edilmektedir. Örneğin, mümkün olmasına rağmen, berduş tarafından erişkin sıçanlarda işleme, genellikle işleyicisi deneyimsiz, özellikle sıçan güçlü direnç ile karşılanır. Elle bir fare veya sıçan Holding kuyruk damarları erişimi zor ve bir emniyet cihazı sık hala mümkün olduğu kadar hayvan tutmak için seçilir yapabilirsiniz. Araştırmacılar hayvanların ele alındığında, genellikle daha fazla çalışma için bir bileşik veya biyolojik yönetmek için arıyorlar. Maddelerin Tatbikat yolu, belirli bir deney için emme, biyoyararlılık ve uygunluk etkileyebilir. Çeşitli yolları ile aşinalık araştırma için mümkün olan en iyi şekilde kendi madde yönetmek yeteneği ile araştırmacılar vermelidir. Bir maddenin hızlı emilim teşvik Örneğin, bir rotaAraştırmacı yavaş etkili şekilde madde yönetmek istiyorsa, böyle bir intravenöz veya intraperitoneal olarak kullanılmamalıdır. Hacim, ekipman, ve çözünen için bu teknikler ve bazı hususlar arasında Yeni incelemeler Turner ve diğerleri tarafından iki belge de bulunabilir. 1.7 Maddelerin laboratuar fareleri uygulanacaksa zaman, dikkate ekipman ve maddenin (Tablo 1&#39;de) hacmi uygun büyüklükte verilmelidir. Uygun büyüklükte olmayan ekipman ya da büyük hacimli rahatsızlık, yaralanma ya da hayvan ölümüne neden olabilir. Genellikle, parenteral madde araştırma hedefleri (yani, bakteriyel çalışmaları) bu imkansız kılacak durumlar dışında, sterildir. Bileşikler ve biyolojik hayvan üzerinde en az etkiye sahip olan bir çözünmüş madde ya da araç içinde olmalıdır. Bir fizyolojik pH (7.3 -7.4), özellikle deri altı, kas içi, ve intrape için, genellikle iyi kabul görmüş birritoneal yolları. Bu yoldan uygulanan maddeler Non-fizyolojik pH seviyeleri ağrı veya nekroz ve doku hasarına neden olabilir. PH daha geniş aralıkları intragastrik ve intravenöz yolları 7 ile tolere edilir. Küçük Kemirgenlerde başka bir önemli husus oda sıcaklığında sıvılarının büyük miktarlar verildiği takdirde soğuk olasılığıdır. Sıvıların, özellikle bir hasta destek hayvan, intravenöz veya intraperitonal edilmektedir, bunlar vücut sıcaklığında (37 ° C) kadar ısıtıldı olmalıdır. Bu protokol tartışılan uygulama yolları usta basit ve genel anestezi gerektirmeyen, genellikle birçok araştırma programlarında kullanılan olanlardır. Kullanım yolları neredeyse sonsuz bir çeşitlilik intrakranial, intratekal, epidural, intratrakeal, intraosseöz ve adına intraartiküler ama birkaç dahil olmak üzere, ancak mümkündür. İdarenin bu özel rotalar Eğitim insanların wh aranmalıdıro rota ve iyi sonuçlar ile geniş deneyime sahip. Intratrakeal damlatma göre yöntem; Kemirgenlerde, intranazal yol genellikle daha fazla &quot;doğal&quot; yoluyla akciğerlere ortaya maddeleri incelemek için kullanılır. Fare ve sıçanlar hatta bilinçli hayvanlarda, zor değil bu yüzden onları sıvı çok az miktarda nefes inducing, zorunlu burun solunumu vardır. Burun mukozası kan damarları, bazı maddelerin burun içi uygulama ile iyi beslenmesi nedeniyle intravenöz benzer olabilir. O emilimini tehlikeye atabilir gibi bu güzergah, ancak rinitli hayvanlarda tavsiye edilmez. Intranazal yoldan büyük miktarlarda yönetmek için girişimler nefes darlığı ya da hayvan boğulması neden olabilir. Kas içine enjeksiyon maddelerin hızlı emilim sağlar. İntramüsküler enjeksiyonlar fareler ve küçük boyutu ve buna bağlı küçük kaslar nedeniyle farelerde zor olabilir. Bunlar, arka bacak gerçekleştirilirs. Siyatik sinirin hasar potansiyeli nedeniyle, kuadriseps femoris seçim kastır. Subkütan, intradermal deri yollarının her ikisi de dahil olsa da, subkutan vs deri yerleştirilen maddelerin biyo-sağlanabilirlik arasındaki farklılıklar vardır. Subkutan uygulama genellikle intravenöz veya intraperitoneal gibi diğer rotaları, daha yavaş emilimini, bir &quot;biriktirme&quot; rota olarak kabul edilir. Intradermal uygulama maddeler tipik olarak, bu gibi adjuvant antijen karışımları gibi imüno-uyarıcı maddenin çok küçük miktarlarda kullanılmaktadır. Her iki durumda da, uygulanan maddenin fizyolojik pH ve tahriş edici olmayan olmalıdır. Bu kemirgen kısıtlayıcı için yaygın olarak kullanılan bir yer olduğu için, intradermal ya da deri altı enjeksiyonlar, ense da yapılmamalıdır. İntravenöz ve intraperitoneal genellikle kemirgenlerde eşdeğer olarak kabul edilir. Doz İntravenöz yolları daha r verinBileşiklerin apid alımı, ancak, periton içi uygulama oral uygulama için yaklaşık 8 eşdeğer olarak kabul edilmelidir ise. Yanlış tamponlu eğer ağrıya neden olabilir gibi Bakımı bileşikler uygulanan intraperitoneal ile alınmalıdır. Kemirgenlerde intravenöz bolus uygulama ortak yol kuyruk damarlar üzerinden gerçekleşir. Bir maddenin kronik intravenöz olarak arzu edilirse, venöz veya arteriyel kanül implantasyonu dikkate alınmalıdır. Intravenöz maddeler aseptik teslim edilmeli ve intravenöz yönetmek için güvenli olduğu gösterilmelidir. Örneğin, hemoliz, tromboz veya vaskülit indükleyebilir maddelerin intravenöz için uygun değildir. Mide içi ya da oral gavaj yol, genellikle insanlarda bir ortak yol dozaj taklit etmek için kullanılır. Yiyecek veya su ve oral uygulama ile karşılaştırıldığında, aynı zamanda maddelerin tam doz için izin verir. Bileşikleriningavaj yoluyla uygulanmıştır hayvanın beslenen / aç karnına yanı sıra, bileşik ya da biyolojik çözünen ya da araca göre değişir. Gavaj veya besleme iğneleri kullanılan hayvan için uygun büyüklükte olmalıdır, ve gavaj yoluyla tek kullanımlık iğneler pratik olmadığı takdirde, hayvanlar arasında temizlenmesi gerekir. Gavaj kaynaklanan yaralanmalar nadir değildir ve akciğer veya mide veya yemek borusu yırtılması halinde madde birikimi bulunmaktadır. Eğitim tecrübeli bir parti tarafından denetlenir ve uyanık hayvanlara gavaj önce anestezi altındaki hayvanlarda (ötenazi olacaktır), sonra ilk ötenazi hayvanlar üzerinde yapılmalıdır çalışılır. Uyanık hayvanlar üzerinde ilk gavaj girişimleri prosedürü ters giderse yaralanmasına neden olmaz gibi tuzlu gibi ortalama büyüklükte hayvan ve bir maddenin küçük miktarlarda, içermelidir. Hayvan yakından gavaj ve ötenazi gerekirse sonra, mavi, kanama veya aşırı salivasyon dönüm gibi nefes nefese gibi sıkıntı belirtileri, değerlendirilmesi gerekir. Eğer euthanasia hayvan gavaj prosedürün neden başarısız olduğunu belirlemek için necropsied olmalıdır, gereklidir.

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> Iğneler </td><td> Çeşitli </td><td> Çeşitli </td><td> İğneler kalınlığı ve uzunluğu hem de satılmaktadır. Sipariş vermeden önce iki kontrol edin. </td></tr><tr><td> Şırınga </td><td> Çeşitli </td><td> Çeşitli </td><td> Her zaman tatbik edilecek hacmi için uygun boyutu seçin. </td></tr><tr><td> DecapiCones </td><td> Braintree Bilimsel </td><td> DC-200, DCL-120, MDC-200 </td><td> Fare ve sıçan boyutlarda mevcuttur. </td></tr><tr><td> Kemirgen süzgeç </td><td> Harvard Apparatus, Braintree Bilimsel, Plas-Labs, diğerleri </td><td></td><td> Net pleksiglas, ayarlanabilir plastik, ve fareler ve sıçanlar için ölçekli mevcuttur. </td></tr><tr><td> 50 ml konik bir tüp </td><td> Çeşitli </td><td> &amp; Nbsp; </td><td></td></tr><tr><td> Besleme iğneleri </td><td> VWR, Popper ve Oğullar </td><td> Çeşitli </td><td> Iğne ve yukarıda tarif edildiği gibi hayvanlar için uzunluk sığdır. Her ikisi de tek ve yeniden besleme iğneler vardır. </td></tr></tbody></table>

manuel tutucu ve fare ve sıçanlarda ortak bileşik İdaresi rotalar

Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats

Güvenli ve etkili fare ve sıçanlarda dizginlemek için güçlü olmak araştırma yapmanın önemli bir parçasıdır. Fareler ve sıçanlar ile güvenle ve insanca çalışma taşıma ve bağlama yöntemleri temel bir yetkinlik gerektirir. Bu makalede, güvenli hayvanların işlemek için gerekli temel ilkeleri sunacak. Özel olarak tasarlanmış emniyet nesneleri Tek elle, iki elle, ve kısıtlama izah edilecektir. Genellikle, hayvanlar araştırma ya da kullanım içindir bir başka kısmı farelerde ve sıçanlarda için bileşiklerin etkili uygulanmasıdır. Muhtemel uygulama yollarının çok sayıda (sadece hayvanın boyutu ve organlar ile sınırlandırılmıştır) olmasına rağmen, pek çok araştırma içinde düzenli olarak kullanılmaz. Bu video, damar içi, kas içi, deri altından, ağızdan sonda ile dahil olmak üzere, daha çok yaygın yolları, çeşitli gösterecektir. Bu makalenin amacı, temel emniyet ve madde uygulama yolları için bu teknikleri ile yabancı bir izleyicinin ortaya koymaktır. Bu videoSizin tesiste eğitim-eller gerekli yerine gelmez, ama bu eğitimi güçlendirmek ve desteklemek içindir.

Araştırma kemirgenler ile güvenli ve insanca çalışma taşıma ve bağlama yöntemleri bir temel yetkinlik gerektirir. Bu makalede, güvenli işlemek ve etkili fare ve sıçanlara bileşikler yönetmek için gerekli temel ilkeleri sunacak.

Manuel Tutucu ve Fare ve Sıçanlarda Ortak Bileşik İdaresi Rotalar

Farelerin ve sıçanların güvenli ve etkili bir şekilde zapt edilebilmesi, araştırma yürütmenin önemli bir parçasıdır. Fareler ve ... ile güvenli ve insani bir şekilde çalışmak...

Aşağıdaki videonun genel amacı, izleyiciyi fare ve sıçanlarda manuel zapt etme ve bileşik uygulama için kullanılan çeşitli tekniklerle tanıştırmaktır. Fareler ve sıçanlar, bir veya iki elle uygulanan bir dizi teknikle veya plastik sabitleyiciler kullanılarak zapt edilebilir; intraperitoneal, subkutan, intravasküler ve intradermal gibi bileşik uygulama teknikleri mevcuttur. Bu videoda, enjeksiyon yöntemlerinin yanı sıra oral gavage ve intranazal uygulama da gösterilmektedir.Hayvanların güvenli, nazik ve kendinden emin bir şekilde nasıl tutulacağını öğrenmek, in vivo araştırmaların önemli bir parçasıdır. Hayvanlar her zaman hem hayvan hem de araştırmacı için güvenli olacak bir şekilde tutulmalıdır. Genel olarak, kemirgenlerle çalışmaya alışmak zaman aldığı için bu yöntemlerde yeni olan kişiler başlangıçta zorluk çekebilirler.Kemirgenler, kendileriyle çalışmaya yeni başlayan kişileri korkutabilir veya yıldırabilir. Doz uygulama ve zapt etme tekniklerinin görsel olarak gösterilmesi, hem bileşiğin başarılı bir şekilde uygulanması hem de hayvanın ve zapt eden kişinin stres yaşamasının veya yaralanmasının önlenmesi açısından kilit öneme sahiptir. Fareler, tek elli veya iki elli teknik kullanılarak manuel olarak zapt edilebilir.Her iki yöntemin ilk adımı, fareyi kuyruk tabanından tutarak nazikçe kafes kapağı tel çubuğuna veya benzeri pürüzlü bir yüzeye kaldırmaktır. Tek el tekniği için, kuyruğu nazikçe geriye doğru çekerken kuyruk tabanını üçüncü ve dördüncü parmağınız arasına sıkıştırın. Bu işlem, farenin yüzeye tutunmasını ve öne doğru çekilmesini sağlayacaktır.Ardından sıkıca tutun. Kuyruğu tutan aynı elle farenin ensesinden kavrayın. Başın tabanına yakın bölgeyi işaret parmağı ve başparmakla kavrayın ve orta ile yüzük parmaklarını da dahil ederek kavrayışınızı sırt boyunca aşağıya doğru genişletin.Farelerin dönmesini veya kıvranmasını önlemek için boyun çevresindeki deriye yeterli basınç uyguladığınızdan emin olun, ancak hayvanın nefes alamayacağı kadar fazla basınç uygulamayın. İki elli teknik benzerdir; ancak bir el kuyruğu nazikçe geriye çekerken, diğer el fareyi ensesinden hızlı ve sıkı bir şekilde kavrar, böylece kuyruk bir elde, ense ise diğer elde tutulmuş olur. Fareyi kaldırın ve kuyruğun tabanını, ense tutan elin avuç içi ile üçüncü veya dördüncü parmağı arasına sıkıştırın.Daha önce olduğu gibi, tutuşun güvenli olduğundan ancak hayvanın nefes almasına izin verdiğinden emin olun. Sıçan enseden tutma işlemi genellikle iki elle gerçekleştirilir. Öncelikle, sıçanı kafesinden çıkarın ve pürüzlü bir yüzeye yerleştirin.Ardından, baskın olmayan elinizle sıçanı kuyruğundan kavrayın ve çekin. Kuyruğu bir elle sıkıca tutarak nazikçe geriye doğru çekin ve diğer elinizle sıçanın ensesine arkadan yaklaşın. Kürek kemiklerine doğru ilerlerken sıçanın sırtına hafifçe baskı uygulayın.Ve son olarak, enseden parmaklar ve el ayası ile kavrama. Sıçanlar bu şekilde zaptedildiklerinde ses çıkarabilirler. Omuz üzerinden tutuş yöntemini kullanırken, baskın el ile sıçanı kuyruğundan tutun ve nazikçe geriye doğru çekin.Ardından, baskın olmayan eli arkadan yaklaşarak sıçanın sırtına yerleştirin. Sıçanı yüzük parmağı, serçe parmağı ve başparmak ile göğüs bölgesinden kavrayın. Sıçanın başı, işaret ve orta parmak arasında olmalıdır.Bir diğer sabitleme yöntemi ise omuz altı tutuştur. Kuyruğu daha önce görüldüğü gibi dominant el ile kavrayın ve dominant olmayan eli arkadan yaklaşarak sıçanın sırtının üzerine yerleştirin. Ardından, sıçanı göğüs bölgesinden, kürek kemiklerinin hemen altından kavrayın.Sıçanın ön kolları, başparmak ve işaret parmağı ile nazikçe yukarı doğru itilmelidir. Sıçanın ısırmasını önlemek için ön kollar, çenesinin altından çaprazlanmalıdır. Eğer vücut tutucuya karşı sabitlenirse, sıçan bu şekilde tek elle tutulabilir.Kısıtlama amacıyla "de capic konisi" olarak adlandırılan ince plastikten yapılmış esnek, koni şeklinde bir parça da kullanılabilir. Hayvanı, burnu koninin ucundaki delikten çıkana kadar ileri doğru itin; ardından torbayı kuyruk etrafında kapalı tutun veya hayvanı sabit tutmak için bir lastik bant veya bükme bağ kullanın. Kısıtlama sağlandıktan sonra enjeksiyonlar plastik malzeme üzerinden uygulanabilir; kuyruğa erişim gerektiğinde ise sert plastik bir kap kullanışlıdır.Sıçanı, cihaz üreticisinin belirttiği şekilde yerleştirin. Bu tip sabitleyicilerde sıçan, kuyruğundan tutularak nazikçe sabitleyicinin içine doğru çekilir. Cihazın ön kısmındaki kapatma mekanizmasını yerleştirin ve hayvanın hareketlerini kısıtlayacak şekilde ayarlayın.Hayvanlar huzursuz görünüyorsa, hayvanın üzerine yerleştirildiğinde havlu ile sabitleme yöntemine başvurulabilir; havlunun sağladığı karanlık ve nazik sabitleme, hırçın bir sıçanı sakinleştirebilir. Havluyu nazikçe sıçanın üzerine yerleştirin ve ardından sıçanı gövdesinden dikkatlice kavrayın. Havluyu sıçanın burnunu kapatmadığınızdan emin olarak etrafına sarın.Enjeksiyon yapılacak vücut bölümü açığa çıkacak şekilde havluyu kenara çekin. Aşağıdaki uygulama tekniklerinden herhangi birini gerçekleştirmeden önce, şırınga kullanımıyla ilgili pratik yapmak faydalıdır. İdeal olarak, bir el şırıngayı kontrol ederken diğer el hayvanı sabit tutmalıdır; iğneler, özellikle intravenöz enjeksiyonlar için, eğik ucu yukarı bakacak şekilde hayvana yerleştirilmelidir.İnce ayar iğneler, flakon tıpalarına yerleştirildiğinde kolayca hasar görür. Materyalleri çekmek için daha geniş ayarlı bir iğne kullanın ve ardından enjeksiyon için bunu daha ince ayarlı bir iğneyle değiştirin. İntranazal uygulama, alerji ve astım çalışmalarındaki bazı enfeksiyöz ajan türleri için ve akciğerleri içeren bazı çalışmalarda kullanılır.İntranazal uygulama, intratrakeal instillasyonun aksine anestezi ve cerrahi müdahale gerektirmez. İntranazal uygulama için hayvanı daha önce açıklandığı şekilde sabitleyin; bir şırınga veya pipet kullanarak solunacak materyalin küçük bir miktarını hayvanın burun deliklerine yerleştirin. Materyalin burun deliklerinden içeri girdiğinden emin olun ve gerekirse işlemi tekrarlayın.Bileşikler, hızlı emilim gerektirdiklerinde ve çok küçük hacimlerde uygulanabildiklerinde intramüsküler olarak uygulanır. İntramüsküler enjeksiyonlar için zapt etme işlemi iki kişi gerektirebilir, çünkü bir arka bacağın enjeksiyon için serbest ve sabitlenmiş olması gerekir. İğneyi, hayvanın quadriceps veya lateral uyluk kas kütlesi üzerindeki deriye dik olarak yerleştirin.Siyatik sinire zarar verme olasılığı nedeniyle posterior kas kütlesine enjeksiyon yapmamaya dikkat edin. Uygulanacak bileşik hacmi yüksekse ve emilim hızı kabul edilebilirse, oral uygulamaya yakın sonuçlar elde etmek için intraperitoneal uygulama tercih edilir.İntraperitonal enjeksiyon yapmak için hayvanı sabitleyin ve burnunun ucunu yere doğru yönlendirin. Karın bölgesini açığa çıkarmak için hayvanın orta hattını belirleyin ve zihinsel olarak karnı kadranlara ayırın.Alt kadranlarda, özellikle hayvanın sağ alt kadranında bir enjeksiyon bölgesi seçin; materyali hayvana enjekte etmek için uygun boyutlarda bir şırınga ve iğne kullanın. Bir maddenin deri altına uygulanması, yavaş emilim istendiği durumlarda tercih edilir.Farelerin ve sıçanların geniş miktarda gevşek derisi olduğu için, insanlarla karşılaştırıldığında deri altına nispeten daha büyük hacimler enjekte edilebilir. Deri altı enjeksiyonlar için, hayvanı daha önce gösterildiği gibi hafifçe sabitleyin. Deriyi kavrayın ve nazikçe yukarı doğru çekin.Uygun boyutlarda bir şırınga ve iğne kullanarak deri üzerinde bir çadır oluşturun, iğneyi 30 ila 45 derecelik bir açıyla çadır yapılan deriye yerleştirin ve materyali enjekte edin. Deri altında oluşan küçük bir şişlik, enjeksiyonun başarılı olduğunun göstergesidir. Subkutan enjeksiyondan sonra hayvanlarla rutin olarak çalışılacaksa, enseden tutma yöntemi kullanmayın.Bunun yerine, sırt kalça bölgesindeki deriyi kullanın. Hayvanlara birden fazla deri altı enjeksiyon yapılacaksa, enjeksiyon bölgelerini değiştirin; hayvanların intradermal uygulama sırasında zapt edilmesi zor olabilir ve kimyasal sedasyon kullanımını gerektirebilir. Eğer bir anestezik kullanılırsa, bunun herhangi bir araştırma hedefiyle çelişmediğinden emin olun.İntradermal enjeksiyon yaparken, öncelikle enjeksiyon bölgesindeki deri net bir şekilde görülebilecek şekilde tüyleri temizleyin. Uygun boyuttaki bir iğneyi 15 ila 30 derecelik bir açıyla deriye yerleştirin. İğneyi çok derine yerleştirmeyin.Doğru şekilde yerleştirildiyse, enjeksiyon sırasında bir dirençle karşılaşılmalıdır. Enjeksiyon başarılı olduysa, çevreleyen deriden daha soluk olan küçük bir kabarcık görülecektir. Materyalin geri akışını önlemek için hafifçe bastırın.İntravasküler uygulama çok çeşitli bileşikler için kullanılır ve bileşiğin uygun şekilde formüle edilebildiği ve çok hızlı bir etkinin istendiği durumlar için en iyi yoldur. Kuyruk yan venine yapılacak bir intravasküler enjeksiyon için, hayvanı bir dekapi konisinde veya plastik kemirgen sabitleyicide tutun. Daha önce gösterildiği gibi, hayvanın kuyruğunu düzeltmek ve döndürmek için baskın olmayan elinizle uç kısmından tutun. Kuyruk venlerini dorsal konuma getirmek için çeyrek tur döndürün.Ventral kuyruk arterinden kaçınarak, enjeksiyon için iki lateral kuyruk veninden birini belirleyin. İğneyi 15 ila 20 derecelik bir açıyla kuyruğun distal kısmına yaklaştırın ve materyali enjekte edin. Başarılı bir enjeksiyonda materyal vene herhangi bir dirençle karşılaşmadan girecek ve enjeksiyon süresince kuyruk veninde beyazlaşma meydana gelecektir.Enjeksiyonun daha distal bir noktaya yapılması, ilk denemenin başarısız olması durumunda kullanılabilecek damarın hasarsız bir kısmının korunmasını sağlar. İntragastrik uygulama veya oral gavaj, yalnızca sabitlenmiş uyanık hayvanlara uygulanır; çünkü anestezi veya sedasyon, aspirasyon riskini artırır. İnsan oral uygulaması için güvenlik testleri yapılan bileşikler sıklıkla bu yöntemle uygulanır. Uygun boyutta bir oral besleme iğnesi seçerek başlayın.Uzunluk, sabitlenmiş hayvan yukarı tutularak ağız köşesinden ölçülerek belirlenir. Besleme iğnesinin top uçlu kısmı hayvanın son kaburgasına ulaşmalıdır; hayvanın başı ve vücudu düz bir dikey hat oluşturacak şekilde sabitleyin.Bu işlem özofagusun düzleşmesini sağlayarak besleme iğnesinin daha kolay ilerlemesine olanak tanır. İğnenin küresel ucunu hayvanın ağzından, dilin üzerinden içeri yerleştirin. İğne yerleştiğinde, hayvanın burnu tavana doğru bakacak şekilde iğneyi ve şırıngayı damağa hafifçe bastırarak yukarı kaldırın.İğne boğazın arka kısmından geçerken hafifçe yönlendirilmesi gerekebilir. İğne üzerindeki herhangi bir gerginlik, konumun ayarlanması gerektiğini gösterir; önceden belirlenen mesafeye ulaşana kadar iğneyi ilerletmeye devam edin. İğne kolayca geçmelidir ve hayvan nefesi kesilmiş gibi tepki vermemeli veya boğulmamalıdır, ardından maddeyi uygulayın.Direnç görülürse veya hayvan nefes darlığı çekerse, boğulursa veya morarırsa işlemi derhal durdurun ve iğneyi çıkarın. Bu teknikler ustalıkla uygulandığında, hem sıçanlara hem de farelere güvenli bir şekilde doz uygulama ve onları etkili bir şekilde zapt etme imkanı sağlayacaktır. Bu prosedürleri uygularken, doğru şekilde zapt edilmiş bir hayvanın işlemi hem hayvan hem de uygulamacı için güvenli hale getirdiğini hatırlamak önemlidir.Bilimde hayvanlarla çalışmanın bir ayrıcalık ve sorumluluk olduğunu unutmayın. Doğru zapt etme yönteminin ve uygun uygulama yollarının seçilmesi, hem bilimsel kalite hem de hayvan refahı açısından önemlidir.

manual-restraint-common-compound-administration-routes-mice

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Kapsamlı preklinik test merkezi sinir sistemine etkili ilaçların genellikle belirli uygulama yolları ile bağlantılı olarak değerlendirilmesi ve ilaç biodistribution karşılaştıran içerir. Burada, yaygın olarak kullanılan üç sistemik teslimat yöntemleri (intravenöz, intraperitoneal ve sözlü) yanı sıra yerel teslimatı için bir yöntem (konveksiyon gelişmiş teslimat) farelerde gösterilmiştir.

Kemirgen Modeller Merkezi Sinir Sistemi Hastalıkları Tedavisinde Sistemik ve Yerel İlaç Taşıyıcı

Burada, mikropipet kılavuzluğunda ilaç uygulamasını (MDA), araştırma hayvanını minimum stres ve rahatsızlıkla tedavileri kolayca yutmaya teşvik eden oral gavaja alternatif bir yöntem olarak tanımlıyoruz.

Kemirgen Modellerinde Oral Gavaja Alternatif Bir Yöntem Olarak Mikropipet Kılavuzluğunda İlaç Uygulamasının Kullanımı

Gecikmiş tip aşırı duyarlılık (DTH) CCR7-efektör bellek T (TEM) lenfositlerin aracılık ettiği inflamatuar bir reaksiyon. Burada, antijen spesifik TEM hücreleri aktive Lewis sıçanlarda evlatlık DTH neden ve inflamatuar yanıt izlemek nasıl göstermektedir.

Sıçanlarda Kabul edilmiş Gecikmeli-Tipi aşırı duyarlılık indüksiyonu ve İzleme

Bizim protokol sıçan karın meme bezi nasıl incelemek ve meme bezi bütün bağlar hazırlamak için nasıl açıklamaktadır. Aynı zamanda üç uç noktaları (terminal sonuna tomurcukları sayısı, epitel uzama ve farklılaşma) kullanılarak meme bezi morfolojisi analiz etmek ve bu sonuçlar, diyet değişiklikleri maruz kalan farelerde meme kanseri riskini tahmin etmek için kullanmak nasıl...

Sıçanlarda Meme Bezi Morfolojisi ve Meme Kanseri Riski değişiklikler

Bu makale, bir fare veya sıçan bir temel postmortem muayene yapılması için usul ve toplama temel organlarının yanı sıra, histolojik, mikrobiyolojik ve PCR değerlendirilmesi için daha zorlu örnek türleri açıklanmaktadır.

Tanı Otopsi ve Sıçanlar ve Fareler Seçilmiş Doku ve Örnek Toplama

Silastik kapsüller ve peroral Nutella vasıtası ile overlerin alınması ve 17β-estradiol müteakip değiştirilmesi sıçan ve farelerin gösterilmiştir.

Sıçan ve Farelerde Ovariektomi ve 17β-östradiol Değiştirme: Görsel Gösteri

2001 yılında, UCLA araştırmacılar erişkin kök hücrelerin bir nüfus izolasyon, adipoz dokudan, Yağ elde edilen kök hücreler veya TSK adlandırılan nitelendirdi. Bu makale kolajenazı kullanarak manuel, enzimatik sindirim protokolü kullanılarak lipoaspirates gelen TSK izolasyonunu özetliyor.

İnsan Lipoaspirates den Yağ-türetilen Kök Hücre Manuel İzolasyon

H7 benzersiz bir genetik işaretleyici, Z3276 hedefleme: A QPCR tahlil Escherichia coli O157 tespiti için geliştirilmiştir. QPCR canlı hücre algılaması için propidyum monoazide (PMA), tedavi ile kombine edilmiştir. Bu protokol, çok sayıda numune, kolay ve uygun kullanım için bir 96 oyuklu plaka formatı değiştirilmiş ve uyarlanmıştır...

Live Algılama<em&gt; Escherichia coli</em&gt; O157: PMA-qPCR H7 Hücreler

Üreme ve in vivo araştırmalara uygun bir Zebra balığı tesisi kolay ve ekonomik bir şekilde inşa edilmiştir. Bakım minimumdur. Bu tesis, öğrenci katılımı ve bağımsız araştırma için idealdir.

Bir Ekonomik ve Kolay oluşturun Zebra balığı Tesisi İnşaatı

Organizatörü ifade analizleri gen düzenlemesi anlayış ve hedef genlerin kronolojik zamanmekansal ifade geliştirmek için büyük önem taşımaktadır. Burada biz tanımlamak, ayırma ve bir bitki organizatörü klon için bir protokol mevcut. Ayrıca, ortak fasulye kıllı kökleri nodül özgü organizatörü karakterizasyonu açıklar.

Bitki organizatörü analizleri: Kimlik ve kök nodül belirli organizatörü ortak fasulye içinde karakterizasyonu

Öğrenin fare ve sıçanlarda manuel tutucu teknikleri ve bileşik idaresi yöntemlerini. Bu video, enjeksiyon ve oral gavaj gibi güvenli uygulamaları göstererek hem hayvan refahını hem de araştırma doğruluğunu artırır.

Manuel Tutucu ve Fare ve Sıçanlarda Ortak Bileşik İdaresi Rotalar

Daha fazla video keşfet