$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Delikli yama kelepçesi tekniği, idrar kesesinin detrusor düz kas veya DSM hücreleri gibi hücreler üzerindeki iyon kanallarının aktivitesi ile ilişkili iyonik akımların gerçek zamanlı ölçümlerine izin verir.
Başlamak için, DSM hücre süspansiyonunu bir cam hazneye yükleyin ve hücre yapışmasını sağlamak için inkübe edin. Daha sonra, yapışan hücrelere tetraetilamonyum ve sezyum iyonları içeren hücre dışı bir çözelti ekleyin. Bu katyonlar, hücre zarındaki potasyum kanallarını bloke eder ve enterferans yapan potasyum akımlarını engeller.
Daha sonra, bir amplifikatöre bağlı bir kayıt elektrodu içeren ince içi boş bir cam tüp olan cilalı bir yama kelepçesi pipeti alın. Pipeti önden hücre içi bir solüsyonla doldurun ve aynı solüsyonla doldurun, ancak zar delici bir antibiyotik olan amfoterisin-B içerir.
Şimdi, pipet ucunu DSM hücreleri içeren hücre dışı çözeltiye daldırın. Potansiyeli ve akımı uygun seviyelere ayarladıktan sonra, pipet ucunu hücre zarına doğru ilerletin ve aynı anda elektrot direncini izleyin.
Direnç değerindeki hızlı bir artış, pipet ucunun hücre zarına ulaştığını gösterir. Şimdi, pipet ucu ile plazma zarı arasında giga-seal adı verilen sıkı bir sızdırmazlık oluşturmak için elektroda hafif bir emme uygulayın.
Conta oluşumunu takiben, amfoterisin yavaşça uca yayılır ve zarı delerek iyon gözenekleri oluşturur. Optimum perforasyon elde edildiğinde, iyonlar hücreler ve elektrot arasında hareket eder ve iyon kanalı işleviyle orantılı akımlar üretir.
0.25 ila 1 mililitre hücre süspansiyonunu, ters çevrilmiş bir mikroskop sahnesinde oturan cam tabanlı bir odaya pipetleyin ve hücrelerin yapışmasını sağlamak için en az 45 dakika inkübe edin. Daha sonra, DS'yi banyodan çıkarın ve süperfüzyon yoluyla E çözeltisi ile değiştirin.
Birden fazla yama elektrodu çekin, elektrot uçlarını ateşle parlatın ve gerekirse uçları diş mumu ile kaplayın. Elektrodu solüsyona kısa bir süre batırarak bir yama elektrodunun ucunu amfoterisin-B içermeyen pipet solüsyonu ile doldurun. Yama-klemp elektrofizyolojisinin başarısı DSM hücre kalitesine ve amfoterisin-B çözünmesine bağlıdır.
Elektrodu amfoterisin-B içeren aynı pipet çözeltisiyle doldurun ve elektrodu bir yama kelepçesi amplifikatör kafası aşamasına bağlı bir tutucuya monte edin. Elektrotu hücre dışı çözeltinin yüzeyinin hemen altına yerleştirmek için bir mikromanipülatör kullanın, böylece elektrotun ucu sadece suya batırılır.
Ardından, ticari satın alma yazılımının Membran Testi penceresi işlevini kullanarak elektrot direncini belirleyin ve elektrodu ilgilenilen hücreye doğru ilerletin. Hücre yüzeyine elektrotla dokunurken, boru aracılığıyla elektroda hafif hızlı negatif basınç uygulayarak bir giga-conta oluşturun. Bu, elektrotun ucunda negatif basınçla sonuçlanır ve Membran Testi tarafından onaylandığı gibi başarılı bir giga-conta ile sonuçlanır.
Amfoterisin-B'nin pipetten aşağı yayılması ve plazma zarına yerleştirilmesi için 30 ila 60 dakika bekleyin, bu da esas olarak monovalent katyonlara seçici gözenekler oluşturur. Membran Testi fonksiyonu ile giga contayı izlemeye devam edin.
Yama perforasyonu optimal olduğunda, kadranları hücre kapasitansı ve amplifikatör üzerindeki seri direnç için ayarlayarak kapasitans geçişlerini iptal edin. Kararlı voltaj kademesi katyon akımları gözlendikten sonra, el yazmasında açıklandığı gibi yönlendirme gerilimi adımı protokolü ile akımları kaydedin.