$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Patolojik koşullar altında, aktive edilmiş mikroglia - özel beyin makrofajları - patojenleri ve hücre kalıntılarını ortadan kaldırmaya yardımcı olur. Bu mikroglialar, onları diğer makrofajlardan ayıran benzersiz reseptörleri eksprese eder.
Mikroglia'yı izole etmek için, farklı hücre tiplerinde spesifik floresan molekülleri ifade eden transgenik zebra balığından türetilen bir beyin hücre kültürü ile başlayın.
Kültür, kırmızı floresan ifade eden nöronların, yeşil floresan ifade eden makrofajların ve floresan olmayan mikrogliaların bir karışımını içerir.
Şimdi, bir bloke edici reaktif ekleyin ve kültürü aralıklı ajitasyon ile inkübe edin. Bloke edici reaktif, hücreler üzerindeki spesifik olmayan bölgelere bağlanır ve arka plan sinyalini azaltır.
Ardından, birincil antikorları ekleyin ve inkübe edin. Bu antikorlar, mikroglia yüzeyinde eksprese edilen spesifik reseptörlere bağlanır.
Kültürü santrifüjleyin ve bağlanmamış antikorlar içeren süpernatanı çıkarın. Hücre peletini taze bir ortamda yeniden süspanse edin.
Daha sonra, floresan boya konjuge ikincil antikorları ekleyin ve inkübe edin. Bu antikorlar birincil antikorlara bağlanır ve mikroglia-antikor kompleksine kırmızı bir renk verir.
Kültürü santrifüjleyin ve bağlanmamış antikorları çıkarın. Peleti taze bir ortamda yeniden süspanse edin.
Herhangi bir kalıntıyı temizlemek için hücreleri filtreleyin.
Floresanla aktive edilmiş bir hücre sıralayıcı veya FACS kullanarak, mikroglia hücrelerinin popülasyonunu hücre boyutlarına ve floresanslarına göre sıralayın.
İzole edilmiş mikroglia, daha ileri uygulamalar için kullanılabilir.
Mikroglia'yı immün boyamak için, hücre peletini yeniden süspanse etmek için 0,3 mililitre Media A artı %2 NGS kullanın. Daha sonra, hücreleri üç adet 1.5 mililitrelik tüp arasında bölün: biri otofloresanı ölçmek için boyanmamış hücreler için, biri ikincil bir antikorun mikrogliaya spesifik olmayan bağlanmasını ölçmek için ve üçüncüsü bir test olarak.
Tüm tüplere, immünoglobulinlerin Fc alanı ile CD16 / CD32 etkileşimlerini bloke etmek için% 1 Düşük Endotoksin, Azid İçermeyen (LEAF) ekleyin. Ardından, hücreleri her 5 dakikada bir hafif çalkalama ile 10 dakika inkübe edin.
Daha sonra, üçüncü tüpe 4C4 antikorunu ekleyin ve her 10 dakikada bir hafif çalkalama ile 30 dakika inkübe edin. Ardından, tüpleri 10 dakika boyunca 300 x g ve 4 santigrat derecede döndürün.
Süpernatanı attıktan sonra, tüpleri tekrar döndürmeden önce peleti 0,5 mililitre Media A artı %2 NGS ile bir kez yıkayın. Hücre peletini 0,5 mililitre Media A artı %2 NGS ile yeniden süspanse edin, ardından %1 LEAF ekleyin ve hücreleri her 5 dakikada bir hafif çalkalama ile 10 dakika inkübe edin.
Tüp 2 ve 3'e ikincil antikorlar ekleyin ve tüpleri karanlıkta yerleştirin. Tüpleri döndürdükten ve süpernatanı attıktan sonra, numuneleri iki kez yıkamak için 0,5 mililitre Media A artı %2 NGS kullanın, ardından hücre peletlerini 1 mililitre Media A artı %2 NGS ile yeniden süspanse edin.
Hücre süspansiyonunu 35 mikronluk bir hücre süzgeci kapağından geçirin ve ışıktan korunan buz üzerindeki soğuk 5 milimetrelik FACS tüplerine aktarın. Son olarak, metin protokolüne göre FACS sıralaması ve RNA ekstraksiyonu gerçekleştirin.