$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Yüksüz Raji hücreleri ve Staphylococcus aureus enterotoksin B veya SEB yüklü Raji hücreleri içeren akış sitometri tüplerini alın.
Bu SEB yüklü Raji hücreleri, sınıf II MHC moleküllerine komplekslenmiş süperantijen SEB içeren vekil antijen sunan B hücreleri olarak işlev görür.
Pan-lökositlerle inkübe edin.
T hücresi reseptörleri, T hücreleri üzerindeki TCR'ler, Raji hücreleri üzerindeki SEB'lere bağlanır ve bu, ko-uyarıcı sinyallerle birlikte, T hücresi aktivasyonuna yol açan kararlı bir hücre-hücre bağlantısı, bir bağışıklık sinapsı oluşturur.
Bu, hücre içi sinyal yollarını tetikleyerek, sinaps içindeki sinyal moleküllerinin ve yüzey reseptörlerinin kümelenmesiyle aktin hücre iskeletinin yeniden düzenlenmesine neden olur.
Kuluçka sonrası, hücresel yapılarını korumak için hücreleri sabitleyin. Hücre içi hedeflere erişmek için hücreleri geçirgen hale getirin.
Sırasıyla TCR kompleksinde, aktin filamentlerinde ve DNA'da CD3'e bağlanan florofor etiketli anti-CD3 antikorları, falloidin ve DAPI ekleyin.
Bir görüntüleme akış sitometresi kullanarak, SEB varlığında sinapstaki zenginleşmelerini belirlemek için CD3 ve aktinden gelen floresan sinyalleri görselleştirin.
Bir mililitre taze çekilmiş insan periferik kanını 50 mililitrelik konik bir tüpte 30 mililitre ACK lizis tamponu ile karıştırarak başlayın. Oda sıcaklığında sekiz dakika sonra, santrifüjleme yıkaması için tüpü PBS ile doldurun ve peleti 37 santigrat derecede 60 dakikalık bir inkübasyon için iki mililitre kültür ortamında yeniden süspanse edin.
İnkübasyonun sonunda, 5 mikrolitre kültür ortamında 5 x 105 Staphylococcus aureus enterotoksin B veya SEB yüklü veya boşaltılmış Raji hücrelerini ayrı FACS tüplerine ekleyin, ardından 650 mikrolitre pan-lökosit ekleyin. Ko-kültürleri döndürün ve peletleri 37 santigrat derecede 45 dakikalık bir inkübasyon için 150 mikrolitre taze kültür ortamında yeniden süspanse edin.
Ardından, 1,5 mililitre %1,5 paraformaldehit eklerken hücreleri 100 RPM'de 10 saniye boyunca nazikçe girdaplayın. Oda sıcaklığında 10 dakika sonra,% 1 BSA ile takviye edilmiş bir mililitre PBS ile fiksasyonu durdurun ve hücreleri santrifüjleme ile toplayın. Peletleri 100 mikrolitre PBS artı BSA ve% 0.1 saponin içinde yeniden süspanse edin ve hücre örneklerini 96 oyuklu bir U-alt plakanın iki ayrı kuyucuğuna ekleyin.
Oda sıcaklığında 15 dakika sonra, plakayı santrifüjleyin ve peletleri, oda sıcaklığında karanlıkta 30 dakikalık bir inkübasyon için florofor konjuge antikorlar veya ilgilenilen bileşikleri içeren 50 mikrolitre PBS artı BSA ve saponin içinde yeniden süspanse edin. İnkübasyonun sonunda, hücreleri 150 mikrolitre PBS artı BSA ve saponin içinde üç kez yıkayın ve peletleri 60 mikrolitre PBS'de yeniden süspanse edin.
Hücreleri akış sitometrisi ile görüntülemek için analiz yazılımını açın, sıvı seviyesini kontrol edin ve cihaz menüsünde Başlat'a tıklayın. Ardından, Yükle'ye tıklayın ve istendiğinde örnekleri bağlantı noktasına yükleyin.
Aydınlatma sekmesi altında, uyarma lazer gücünü uygun nanometre uzunluklarına değiştirin. Ardından, kanal 4 ve 11 için kapıları ayarlayın ve kanal 1 için alanı ayarlayın.
Geçit ve lazer gücü ayarlarını değerlendirmek için, Görünüm menüsünü ilgili kapıya getirin ve hücreler ve hücre çiftleri görünene kadar kapıları ve lazer güçlerini ayarlayın. Ardından, Dosya Alma sekmesinde, örnek adını, alınacak görüntü sayısını ve CD3 boyama için uygun geçidi tanımlayın ve alma işlemini başlatmak için Al'a tıklayın.