$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Konakçı bağışıklık sistemini baskılamak için daha önce ışınlanmış anestezi uygulanmış bir alıcı fare ile başlayın.
Allojenik kök hücre naklini taklit etmek için genetik olarak farklı bir donör fareden hematopoietik kök hücreler elde edin.
Manyetik boncuklar kullanarak donör T hücrelerini çıkarın.
Bu T hücresi tükenmiş süspansiyonu, alıcı farenin retrobulbar boşluğuna enjekte edin.
Nakledilen hücreler kan dolaşımına girer, kemik iliği damarlarına göç eder ve nişe girmek için yapışma molekülleri kullanarak hematopoezi başlatır.
İmmün çapraz reaktiviteyi indüklemek için allojenik bir donör fareden splenik T lenfositlerini alıcının retrobulbar boşluğuna enjekte edin.
Bu alloreaktif T hücreleri çeşitli dokulara göç eder.
T hücresi yüzey reseptörleri, alıcı hücre antijenlerine bağlanır ve onları yabancı olarak tanır.
Bu, T lenfositleri içinde bir dizi sinyal olayını tetikleyerek aktivasyonlarına yol açar.
Aktive edilmiş T hücreleri, konakçı dokulara toplu olarak zarar veren ve graft-versus-host-hastalığının gelişmesine yol açan ek bağışıklık hücrelerinin toplanması ile karakterize edilen inflamatuar bir kaskadı tetikler.
Alıcı BALB / c farelerinin toplam vücut ışınlamasından bir gün sonra, bir CD45.1 / Ly5.1 B6 yerleştirin. SJL donör faresi temiz bir çalışma kılıfı üzerinde yüzüstü pozisyonda ve kürkü bir Aşil topuğundan kaldırmak için bir Semken forsepsinin 13 santimetrelik kavisli ve tırtıklı bir ucunu kullanın.
Düz uçlu sertleştirilmiş 8,5 santimetre ince makas kullanarak, forseps ile bir topuk arasındaki cildi kesin, arka bacaklardan deri ve kürkün çıkarılmasını kolaylaştırmak için kesiği kraniyal olarak uzatın. Deri arka bacaklardan çıkarıldığında, her bir kalça, ayak bileği ve diz eklemini kesin.
Her arka uzuvun uyluğunu ve sapını buz üzerinde PBS ile doldurulmuş tek bir 92 milimetrelik Petri kabında saklayın ve her kemikten mümkün olduğunca fazla kası dikkatlice çıkarın, temizlenmiş her uyluk kemiğini ve kaval kemiğini ıslak buz üzerinde 50 mililitrelik steril RPMI 1640 medium tüpüne aktarın.
Kemik iliğini izole etmek için, her seferinde bir kemiği taze RPMI 1640 ortamı ile doldurulmuş 92 milimetrelik yeni bir Petri kabına aktarın ve her kemiğin uçlarını kesmek için bir neşter kullanın. Daha sonra, kemikleri bir seferde bir mililitre taze ortamla beş mililitre ortam içeren 50 mililitrelik bir toplama tüpüne yıkamak için 26 gauge iğne ile donatılmış 1 mililitrelik bir şırınga kullanın.
Tüm kemikler temizlendiğinde, tek hücreli bir süspansiyon oluşturmak için ufalanan kemik iliği parçalarını birkaç kez yukarı ve aşağı nazikçe pipetleyin. Hücreleri 40 mikrometrelik bir ağ elek hücresi süzgecinden yeni bir 50 mililitrelik toplama tüpüne filtrelemeden önce, hücreleri santrifüjleme ile peletleyin ve hücreleri oda sıcaklığında üç dakikalık bir inkübasyon için beş mililitre amonyum klorür potasyum lizis tamponunda yeniden süspanse edin. İnkübasyonun sonunda, 10 mililitre PBS ile reaksiyonu durdurun ve hücreleri tekrar santrifüjleyin.
Peleti saymak için iki mililitre taze PBS'de yeniden süspanse edin ve aşağı akış sitometrik analizi için 6 x 106 hücreli bir alikot ayırın. Daha sonra, üreticinin talimatlarına göre CD90.2 pozitif T hücrelerini kemik iliği tek hücreli süspansiyonundan manyetik olarak tüketmek için ticari olarak temin edilebilen bir hücre saflaştırma kiti kullanın ve T hücresi tükenmiş elüatın 1 x 106 hücreli bir alikotunu bir kenara koyun Ayırmadan önce ve sonra hücre saflığının ve bileşiminin aşağı akış sitometrik analizi için.
Daha sonra, 5 x 105 T hücresi tükenmiş kemik iliği hücrelerini ve 100 mikrolitre PBS'yi intravenöz olarak her ışınlanmış alıcı hayvanın venöz sinüsünün retrobulbar boşluğuna enjekte etmek için 30 gauge iğne ile donatılmış bir mililitrelik bir şırınga kullanın.
Ertesi gün, bir donör hayvandan alınan bir dalağı, 50 mililitrelik bir toplama tüpündeki 40 mikrometrelik bir süzgecin üzerine yerleştirin ve dalak dokusunu süzgeçten tüpe bastırmak için bir şırınga pistonu kullanın. Tüm splenositleri toplamak için süzgeci ve pistonu PBS ile yıkayın ve gösterildiği gibi kırmızı kan hücresi lizizinden sonra hücreleri santrifüjleme ile peletleyin. Sayım için beyaz kan hücrelerini yeniden askıya alın ve aşağı akış sitometrik analizi için 6 x 106 hücreli bir alikot ayırın.
Toplam splenositlerden toplam CD3 pozitif T hücresi izolasyonu için, üreticinin talimatlarına göre ticari olarak temin edilebilen bir hücre saflaştırma kiti kullanın ve hücre saflığının ve bileşiminin aşağı akış sitometrik analizi için pozitif hücre fraksiyonundan 1 x 106 CD3 pozitif T hücresi alikotunu bir kenara koyun, ayırmadan önce ve sonra. Daha sonra, GvHD'yi indüklemek için 7 x 105 alloreaktif CD3 pozitif T hücresi ve 100 mikrolitre PBS'yi intravenöz olarak her alıcı farenin retrobulbar boşluğuna enjekte edin.