$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Enfeksiyon sırasında, alveolar makrofajlar, patojenleri ortadan kaldırmak için makrofaj hücre dışı tuzaklar veya MET'ler salgılar.
MET'ler, peptidil arginin deiminazlar, PAD'ler, matris metalloproteinazlar ve sitrülinli histonlar ile komplekslenmiş kromatin liflerinden oluşur.
Bronkoalveoler lavaj sıvısından makrofajlardaki MET'leri görselleştirmek için önce sıvıyı santrifüjleyin.
Yeniden askıya alınan hücreleri, çok kuyulu plaka kuyucukları içindeki lameller üzerine yerleştirin.
Makrofajlar lamellere yapışırken, diğer hücreler askıda kalır ve atılır.
Hücresel yapıyı koruyarak makrofajları düzeltin. Hücresel hedeflere erişmek için onları geçirgen hale getirin.
Spesifik olmayan antikor bağlanmasını önleyen bloke edici proteinler ekleyin.
Sırasıyla sitrüline histonları, PAD'leri ve matris metalloproteinazları hedef alan bir birincil antikor kokteyli ile takviye edin.
Hedef MET proteinine bağlı birincil antikorlara bağlanan farklı florofor etiketli ikincil antikorlar ekleyin.
Hücreleri DAPI içeren montaj ortamı ile monte edin. Floresan bir boya olan DAPI, kromatin liflerini lekeler.
Konfokal bir mikroskop kullanarak, sitrüline histonlar, PAD'ler ve metalloproteinazlar içeren floresan hücre dışı kromatin lifleri ile karakterize edilen MET'leri görselleştirin.
Metin protokolüne göre bronkoalveoler lavaj veya BAL ile insanlardan ve farelerden akciğer makrofajları elde ettikten sonra, BAL çözeltisi üzerinde canlı bir hücre sayımı yapmak için tripan mavisi ve bir hemositometre kullanın. 500 mikrolitre kültür ortamında 1 ila 4 x 105 makrofajı 24 oyuklu plakaların kuyucuklarındaki lamellere pipetleyin. Ardından, hücrelerin yapışması için hücreleri gece boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin.
Kültür ortamını çıkarın ve hücreleri bir kez yıkamak için PBS'yi kullanın. Ardından, %2 paraformaldehit/periyodahit/lizin veya PLP fiksatif ekleyin ve numuneleri 10 dakika inkübe edin. Hücreleri kısaca yıkamak için PBS'yi kullandıktan sonra, PBS'ye% 0.2 Tween-20 ekleyin ve hücreleri 20 dakika inkübe edin.
Daha sonra, hücreleri bloke etmek için, PBS'de seyreltilmiş% 5 BSA içinde% 10 tavuk serumu ekleyin ve örnekleri oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edin. Daha sonra, blok çözeltisini 1 ila 100 konsantrasyonda birincil ve izotop kontrol antikorları ile değiştirin ve hücreleri oda sıcaklığında bir saat inkübe edin. İnkübasyonun ardından, karşılık gelen ikincil antikorları eklemeden önce hücreleri yıkamak için PBS kullanın. Daha sonra numuneleri oda sıcaklığında 40 dakika inkübe edin.
Hücreleri PBS'de yıkadıktan sonra, numuneleri DAPI bazlı montaj ortamı ile monte edin. Ardından, konfokal bir mikroskop kullanarak örnekleri görselleştirin.