Mycobacterium tuberculosis ile Enfekte Makrofaj Alt Popülasyonlarının Akış Sitometrisi Boyaması

0 görüntüleme3:18 dk • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Spesifik yüzey belirteçleri ile ayırt edilen yapışık M1 ve M2 makrofaj alt popülasyonları ile başlayın. Bu hücreler floresan işaretli Mycobacterium tuberculosis ile enfekte olur.

Kültür kuyucuklarına FACS tamponu ekleyin.

Tampondaki EDTA, hücrenin kültür kuyucuklarından ayrılmasını sağlar.

Hücre süspansiyonunu mikrosantrifüj tüplerine aktarın.

Tüpleri santrifüjleyin. Süpernatanı atın. Hücreleri, florokrom konjuge bir anti-makrofaj antikor kokteyli ve canlılık boyası olan Zombie-UV'de yeniden süspanse edin.

Zombi-UV floresan boyası, hasarlı zarlardan ölü hücrelere girer ve sitoplazmik proteinlere bağlanarak, canlı boyanmamış hücrelerden net bir farklılaşma sağlar.

Ayrıca, floresan konjuge anti-makrofaj antikorları, makrofajlar üzerindeki hedef antijenlere bağlanarak alt popülasyonların diferansiyel tespitini sağlar.

Bağlanmamış antikorları çıkarmak için hücreleri yıkayın. Merkezkaç. Süpernatanı çıkarın.

Proteinleri çapraz bağlamak, hücre morfolojisini korumak ve analiz sırasında güvenli kullanım için Mikobakterileri etkisiz hale getirmek için hücreleri fiksatif bir tamponda yeniden süspanse edin.

Son olarak, akış sitometrisi için numuneleri santrifüjleyin ve işleyin.

Mycobacterium ile enfekte olmuş alt popülasyonların yüzdesini belirlemek için uygun bir geçit stratejisi kullanın.

Hücreleri akış sitometrisi için boyamak için, enfekte olmuş hücreleri en az 30 dakika boyunca oyuk başına 0.5 milimolar EDTA ile desteklenmiş 1 mililitre FACS tamponu ile inkübe edin. İnkübasyonun sonunda, ayrılan hücreleri nazik pipetleme ile toplayın ve hücreleri santrifüjleme için ayrı ayrı vidalı kapaklı mikrosantrifüj tüplerine aktarın.

Hücreleri yaklaşık 50 mikrolitre florokrom konjuge anti-insan antikor kokteyli ve ilgilenilen canlılık boyası içinde yeniden süspanse edin ve hücreleri ışıktan korunarak 4 santigrat derecede 30 dakika inkübe edin.

Yıkadıktan sonra, hücreleri 200 mikrolitre taze hazırlanmış fiksasyon tamponu ile oda sıcaklığında 30 dakika boyunca ışıktan korunarak sabitleyin. Fiksasyon ve yıkamadan sonra, hücreleri 400 mikrolitre FACS tamponunda yeniden süspanse edin ve hücreleri 1 mililitrelik mikrosantrifüj tüplerine aktarın.

Hücreleri analiz etmek için, kokteyldeki her florokrom konjuge antikor için floresan sinyalini telafi etmek için kompanzasyon boncukları kullanın ve negatif hücre popülasyonu için kapıyı ayarlamak için boyanmamış hücreler kullanın. Ardından, örnek başına en az 50.000 hücre elde edin.

08:24

Yalıtım ve kalp Extravascular bağışıklık hücreleri tanımlaması

İlgili videolar

0 Görüntüler

08:32

Hücre şartına ortamdan hücre dışı veziküller sitometrik analizinde akışı

İlgili videolar

0 Görüntüler

12:46

Akış Sitometrisine Dayalı Miyokard B Hücrelerinin Nicelleştirilmesi ve Analizi

İlgili videolar

0 Görüntüler

02:48

Makrofaj Reseptörü Etkileşimlerinin Bakteriyel Antijenlerle Araştırılması için Flüoresans Tabanlı Analiz

İlgili videolar

0 Görüntüler

02:26

Analysis of Macrophage Receptor Interactions with Pathogenic Bacteria Using Flow Cytometry

İlgili videolar

0 Görüntüler

02:36

Mycobacterium tuberculosis ile Monosit Kaynaklı Hücrelerin Tam Farklılaşmış Makrofaj Enfeksiyon Modeli

İlgili videolar

0 Görüntüler

07:58

Ana Hücreler ile Derneği Patojen Mantarlar miktarının Image for Sitometrinin kullanın

İlgili videolar

0 Görüntüler

15:28

Yüksek Verimli/Yüksek İçerikli Taramaya Uyarlanmış Hücre İçi Mikobakterilerin Nicelleştirilmesi için Mikroskobik Fenotipik Bir Tahlil

İlgili videolar

0 Görüntüler

10:43

Akış Sitometresi ile Merkezi Sinir Sisteminden Mikroglia ve Monosit Türevi Makrofajların Analizi

İlgili videolar

0 Görüntüler

10:43

M1 ve M2 İnsan Monosit Türevi Hücrelerin Polarizasyonu ve Mikobakteri Tüberküloz Enfeksiyonu Üzerine Akış Sitometrisi ile Analiz

İlgili videolar

0 Görüntüler

Son güncelleme: 15 Ağustos 2026