Flow Sitometri Kullanarak Bir Test Alerjeni Varlığında Bazofil Aktivasyonunun Analiz Edilmesi

0 görüntüleme5:37 dk • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bir stimülasyon tamponunda süspanse edilmiş floresan etiketli monoklonal antikorları içeren bir boyama karışımı içeren sitometre tüplerini alın.

Test alerjeninin azalan konsantrasyonlarını birkaç tüpe ekleyin. IgE aracılı pozitif kontrol olarak hizmet etmek için bir tüpe anti-IgE antikorları ekleyin ve negatif kontrol için başka bir tüpe tampon ekleyin.

İnsan periferik kanını tüplere pipetleyin. Kuluçkaya yatmak.

Birey test alerjenine duyarlı hale gelirse, bu maruziyet alerjenin bazofil yüzeyindeki Fc reseptörlerine bağlı alerjene özgü IgE antikorlarına bağlanmasına neden olur.

Alerjenler, IgE'ye bağlı Fc reseptörlerini çapraz bağlayarak bazofil aktivasyonuna neden olur.

Bazofiller, CD63 ve CD203c moleküllerinin yukarı regülasyonu ile enflamatuar mediatörler içeren hücre içi granülleri serbest bırakarak degranülasyona uğrarlar.

Floresan etiketli monoklonal antikorlar, bazofiller üzerinde sırasıyla CD63, CD203c ve CCR3'e bağlanır.

Bazofil degranülasyonunu durdurmak için sıcaklığı düşürün.

Eritrositleri parçalamak için tampon ekleyin ve hücreleri sabitleyin.

Bir akış sitometresi kullanarak, lenfosit popülasyonundan bazofilleri tanımlayın.

CD63'ü bir aktivasyon belirteci olarak kullanarak, azalan alerjen konsantrasyonlarında bazofil aktivasyonunu analiz edin.

Periferik kanı 9 mililitrelik heparinize tüplerde toplayarak başlayın ve numuneleri, deney protokolü için gerekli olana kadar oda sıcaklığında tutmak için bir rotora yerleştirin.

Negatif kontrol ve pozitif kontrol için her biri 5 mililitrelik iki sitometre tüpünü etiketleyin. Ayrıca, test edilen farklı alerjen veya ilaç konsantrasyonları için her biri bir tüpü etiketleyin. Ardından, tüpleri kaymadan mükemmel şekilde oturacak şekilde bir rafa yerleştirin.

İlk pozitif kontrol için, bazofillerin kalitesini doğrulamak için% 0.05 PBST'de 4 mikromolar bir N-Formilmetiyonil-lösil-fenilalanin veya fMLP çözeltisi hazırlayın. İkinci pozitif kontrol için, PBST kullanarak mililitre başına 0.05 miligram anti-IgE çözeltisi hazırlayın. Stimülasyon tamponunun 20 mikrolitresi başına 1 mikrolitre CCR3-APC, CD203c-PE ve CD63-FITC antikorları ekleyerek boyama karışımını hazırlayın. Ardından, her tüpe bu boyama karışımından 23 mikrolitre ekleyin.

Negatif kontrol tüplerine 100 mikrolitre PBST ekleyin, pozitif kontrol tüplerinden birine 100 mikrolitre fMLP ekleyin ve diğerine 100 mikrolitre anti-IgE ekleyin. Tüplerin geri kalanına, farklı alerjen veya ilaç konsantrasyonlarından 100 mikrolitre ekleyin ve 10 dakika boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin. İnkübasyondan sonra, hemolizi önlemek için her tüpe yavaşça 100 mikrolitre kan ekleyin. Daha sonra, tüpleri nazikçe girdaplayın ve termostatik banyoda orta çalkalama ile 37 santigrat derecede 25 dakika inkübe edin.

Degranülasyonu durdurmak için tüpleri en az beş dakika boyunca 4 santigrat derecede tutun. Her tüpe, eritrositleri parçalamak için 2 mililitre lizing tamponu ekleyin. Her tüpü girdaplayın ve ardından tüpleri oda sıcaklığında 5 dakika inkübe edin. Tüpleri 300 x g'da 4 santigrat derecede 5 dakika santrifüjleyin. Ardından, hücreler tüplerin dibinde kalırken süpernatanı boşaltmak için rafı lavaboya ters çevirin. Hücreleri yıkamak için her tüpe 3 mililitre PBST ekleyin ve tüpleri girdaplayın. Aynı parametre setini kullanarak ikinci bir santrifüjleme turu gerçekleştirin ve rafı lavaboya ters çevirerek süpernatanı boşaltın. Ardından, numuneleri akış sitometrisine kadar ışıktan koruyarak 4 santigrat derecede tutun.

Akış sitometresini bilgisayar yazılımına bağlayın ve sitometre hazır olana kadar bekleyin. Şablonu ve cihaz ayarlarını metin el yazmasında açıklandığı gibi yükleyin. Numune alma sürecini başlatın.

Aktive edilmiş bazofilleri seçmek için önce Yan Dağılım - İleri Dağılım grafiğinden lenfositleri alın. Daha sonra bazofilleri lenfosit popülasyonundan CCR3 pozitif CD203c pozitif hücreler olarak alın ve tüp başına en az 500 bazofil elde edin. Negatif kontrol tüplerini kullanarak CD63 negatif eşiğini yaklaşık %2,5'e ayarlayın ve numuneleri analiz edin.

10:42

PM10 parçacık bağlı Bet v 1 Allergen Akışı Sitometrik Analizi

İlgili videolar

0 Görüntüler

06:34

Allerjik Rinit ve / veya Astımı olan Çinlilerin Çimen Poleni Allerjenleri Üzerine Bir Çalışma İçin Bileşen ile Çözümlenmiş Bir Teşhis Yaklaşımı

İlgili videolar

0 Görüntüler

07:10

Biochip mikrosıvısal teknolojisi uygulama algılamak Serum alerjen özgü immünglobulin e (sIgE)

İlgili videolar

0 Görüntüler

10:22

İlaç Aşırı duyarlılık IgE aracılığı ile Mekanizmalarının Araştırılması bazofil Etkinleştirme Test

İlgili videolar

0 Görüntüler

07:52

Alerjik Havayolu Enflamasyon sırasındaki solunum Dendritik Hücre olgunlaşması ve Göç Analizi

İlgili videolar

0 Görüntüler

05:39

İnsanlaştırılmış Mediatör Enzim Salınım Testi: İn Vitro Bazofil Degranülasyon Yanıtını İzleyerek Test Antijeninin Alerjik Potansiyelini Taramak İçin İmmünokimyasal Bir Yöntem

İlgili videolar

0 Görüntüler

03:03

Bronkoalveoler Lavaj Sıvısındaki İmmün Hücrelerin Flow Sitometri ile Tanımlanması ve Sayımı

İlgili videolar

0 Görüntüler

04:57

Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinde İmmün Hücre Alt Kümelerini Tanımlamak için Bir Akış Sitometrisi Testi

İlgili videolar

0 Görüntüler

06:13

Görüntü tabanlı Sitometrisi Tekniği Granülosit Fonksiyonu Değişiklikleri değerlendirin İn Vitro

İlgili videolar

0 Görüntüler

08:44

Eozinofilik Akciğer İltihabını Modüle Eden HDM Alerjenlerinde İmmünojenik RNA Türlerinin Tanımlanması ve Karakterizasyonu

İlgili videolar

0 Görüntüler

Son güncelleme: 1 Ağustos 2026