JoVE Encyclopedia of Experiments
İmmünoloji
0 görüntüleme • 3:03 dk • July 8th, 2025
Yeşil floresan canlılık boyası ile boyanmış bir bağışıklık hücresi popülasyonu içeren fare bronkoalveoler lavaj sıvısı içeren çok kuyulu bir plaka ile başlayın.
Bağışıklık hücrelerinin Fc reseptörlerini bloke etmek için Fc antikorlarını tanıtın.
Spesifik hücre belirteçlerini hedefleyen farklı florofor etiketli antikorlardan oluşan bir kokteyl ekleyin. Bağlanmamış antikorları çıkarın ve hücreleri bir tamponda yeniden süspanse edin.
Akış sitometrisini kullanarak, canlı hücreleri gösteren loş floresan singletlerini tanımlayın.
Hücreleri 488 nanometrede aydınlatın, hücrelerin CD11c eksprese eden hücrelerle ilişkili kırmızı floresan yaymasına neden olur.
Yüksek CD11c popülasyonu içinde, uygun dalga boyu filtreleri ile, dendritik hücreler üzerindeki hücre işaretleyici proteinleri MHC-II'yi ve makrofajlar üzerindeki SiglecF'yi tanımlayın.
CD11c düşük popülasyonunda, CD3'ün T hücreleri üzerinde ve CD19'un B hücreleri üzerinde ekspresyonu, bunların tanımlanmasını sağlar.
CD11b eksprese eden nötrofilleri gösteren mavi floresan yayan 405 nanometrede hücreleri aydınlatın.
633 nanometredeki aydınlatıcı hücreler, Ly-6G eksprese eden eozinofiller üzerindeki uzak kırmızı floroforları uyarır.
Akış sitometrisi verilerini kullanarak, bronkoalveoler lavaj sıvısındaki her bir bağışıklık hücresi tipinin bolluğunu numaralandırın.
Üçüncü bronkoalveoler lavaj toplama işleminden sonra, havuzlanmış aspiratı santrifüjleyin ve süpernatanı eksi 80 santigrat derecede saklayın. Peleti 200 mikrolitre ACK lizis tamponunda yeniden süspanse edin. Oda sıcaklığında en fazla iki dakika sonra, lizis tamponunu bir mililitre soğuk PBS ile seyreltin ve hücreleri santrifüjleme ile toplayın.
Analiz edilecek numune sayısı için peleti uygun PBS hacminde yeniden süspanse edin ve hücreleri analiz için 96 oyuklu bir plakanın uygun sayıda oyuğuna ayırın. Hücreleri başka bir santrifüjleme ile toplayın ve peletleri PBS'de 50 mikrolitre FC bloğunda yeniden süspanse edin.
Oda sıcaklığında 10 dakika sonra, her bir oyuğa 50 mikrolitre uygun antikor kokteyli ekleyin ve hücreleri ışıktan korunarak dört santigrat derecede 30 dakika inkübe edin. İnkübasyonun sonunda, plakayı santrifüjleyin ve süpernatanı atın, peletleri akış sitometrik analizi için kuyu başına 200 mikrolitre FACS tamponunun nihai hacmine yeniden süspanse edin.
Bu makale, fare bronkoalveoler lavaj sıvısındaki immün hücre popülasyonlarının akış sitometrisi kullanılarak analiz edilmesi yöntemini ayrıntılı olarak açıklamaktadır. Protokol, spesifik immün hücre belirteçlerini tanımlamak amacıyla hücrelerin floresan antikorlarla boyanmasını içermektedir.
Bronkoalveoler lavaj sıvısında akış sitometrisi tabanlı immün hücre profillemesi, inflamatuar infiltratların hassas bir şekilde miktarının belirlenmesine olanak tanıyarak solunum yolu hastalığı modellerinde hedef validasyonunu destekler. Bu yaklaşım, immün fenotipleri patofizyolojik süreçlerle ilişkilendirerek mekanistik risk azaltmayı geliştiren kantitatif, markere özgü veriler sağlar. Yöntem, immünoloji ve inflamasyon araştırmalarında portföy önceliklendirmesi için kritik olan tekrarlanabilir, yüksek içerikli immün profilleme verileri sunarak erken keşif kararlarını destekler.
Bu yöntem, hipotez testinden aday optimizasyonuna ve solunum yolu inflamasyon modellerindeki preklinik doğrulamaya kadar olan immün profilleme sürecini destekleyerek, keşiften preklinik aşamaya kadar olan sürekliliğe uyum sağlar.
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
Son güncelleme: 29 Ağustos 2026