$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Bir akış odasına yapışık sitokin ile uyarılmış endotelyal tek tabakalı bir cam slayt yerleştirerek başlayın.
Bu endotel hücreleri, selektinler gibi yüzey yapışma moleküllerini ve kemokinler gibi endotelyuma bağlı göç sinyallerini ifade eder.
Floresan etiketli lökositleri akış odasına yerleştirin.
Lökositler endotel tek tabakası üzerinden akarken, aktive edilmiş endotel hücreleri ile etkileşime girerler.
Endotel hücreleri üzerindeki selektinler, lökositler üzerindeki karşılık gelen ligandlarına bağlanır.
Selektin-ligand etkileşimleri zayıf ve geçicidir, bu da lökositlerin akan bir ortamın kuvveti altında endotelyal tek tabaka boyunca yuvarlanmasını sağlar.
Haddeleme, lökositlerin kemokinlerle etkileşime girmesine, integrinleri aktive etmesine ve sert lökosit tutuklamasını teşvik etmesine izin verir.
Daha sonra, lökositler endotelyal tek tabaka boyunca yayılır ve bu da bağışıklık tepkisinde çok önemli bir adım olan transmigrasyon potansiyellerini gösterir.
Bu tahlil, lökositleri endotel hücreleri üzerinde perfüze ederken yapışma, yapışma ve transmigrasyon mekanizmasını incelemeye yardımcı olur.
Lökositleri floresan olarak etiketlemek için hücre başına geçen yeşil floresan nükleik asit boyasının bir mikromolar unu kullanın. Etiketlemeden sonra, lökositleri 37 santigrat derecede 30 dakika inkübe edin. Daha sonra, hücreleri pelet yapmak için hücreleri 5 dakika boyunca 300 kez g'de santrifüjleyin.
Hücreleri yıkamak için fosfat tamponlu tuzlu su içinde yeniden süspanse edin. Daha sonra hücreleri 5 dakika boyunca 300 kez g'de santrifüjleyin. Akış hızına bağlı olarak, tahlil tamponundaki hücrelerin 5 mililitresini askıya alın. Ardından, 37 santigrat dereceyi korumak için bir su banyosunu ısıtın.
Ardından, 50 mililitrelik bir perfüzyon şırıngasını bir kenara koyun ve şırınga tutucusuna takın. Ardından, pompa hacmi 0 mililitre ve çapı 26,70 milimetre olacak şekilde pompayı çekme moduna ayarlayın. Ardından, şırıngaya bir Luer kilitli kuplör takın ve dirsek luer konektörlü boruyu Luer-lock kuplörüne bağlayın. Ardından, borunun serbest ucunu akış odasına takın. Lökositleri hareketsiz hale getirilmiş trombositlere yapıştırmak için, slaytı şırınga ile bağlayın.
Lökositleri perfüze etmek ve daha sonra bir vasküler veya trombosit tek tabaka yatağına yapıştırmak için, tahlil tamponunu içeren 50 mililitrelik konik bir tüpe ikinci bir boru takın ve ardından boruyu 1 mililitrelik bir pipet kullanarak doldurun. Boru doldurulduktan sonra sıkın ve akış odasına bağlayın. Lökositleri perfüze etmeden önce, hücre süspansiyonuna 3 milimolar kalsiyum klorür ve 2 milimolar magnezyum klorür ekleyin. Ardından, hücreleri 37 santigrat derecede 5 dakika inkübe edin.
Haznede ve boruda sıkışmış olası havayı çıkarmak için, hücreleri perfüze etmeden önce tahlil tamponu ile perfüze edin. Daha sonra, ucu kapatmak için tüpleri sıkın ve boruyu tahlil tamponundan hücre süspansiyonuna geçirin, böylece içinde sıkışmış hava kabarcıklarını önleyin.
İlk hücrelerin gelmesi için, hücreleri uygun akış hızında perfüze edin ve kesme gerilimi elde edin. Hücreleri perfüze etmeye devam edin, akış hızını ve kesme gerilimini iki dakika boyunca koruyun. Ardından, bir dijital kameraya bağlı 10 kat büyütmeli bir floresan mikroskobu kullanarak 2 ila 6 dakika arasında yuvarlanan ve caydırıcı hücrelerin altı görüntüsünü yakalayın.