Murin Akciğerlerinde Bulunan Doğuştan Gelen ve Adaptif Bağışıklık Hücrelerini Tanımlamak için İn Vitro Bir Yöntem

0 görüntüleme5:54 dk • July 8th, 2025

Kıyılmış murin akciğer dokusunu bir sindirim tamponunda alın ve fizyolojik bir sıcaklıkta inkübe edin.

Tampon enzimler doku matrisini parçalayarak hücreleri gevşetir.

Hücresel kütleyi ayırmak için tritüre edin ve tek hücreleri izole etmek için bir süzgeç kullanarak süspansiyonu süzün.

Süpernatanı doku kalıntıları ile çıkarmak için santrifüjleyin. Kırmızı kan hücrelerini parçalamak için hücreleri bir lizis tamponu ile inkübe edin.

Hücresel kalıntı içeren süpernatanı atmak için santrifüjleyin. Hücreleri yeniden askıya alın ve bir mikroplakaya aktarın.

Fc reseptörlerini bloke etmek için antikorlar ekleyin, arka plan lekelenmesini önleyin.

Doğuştan gelen bağışıklık hücreleri - monositler, makrofajlar, dendritik hücreler, doğal öldürücü hücreler, nötrofiller, eozinofiller ve adaptif bağışıklık hücreleri - B ve T lenfositleri üzerindeki spesifik yüzey belirteçlerini hedefleyen florofor etiketli bir antikor kokteyli tanıtın.

Hücreleri sabitleyin ve geçirgenleştirin. Monositler, makrofajlar, dendritik hücreler ve eozinofiller üzerinde hücre içi bir belirteç için spesifik florofor etiketli antikorlar ekleyin.

Akış sitometrisini kullanarak, etiketli bağışıklık hücrelerini sınıflandırın.

Akciğeri bir Petri kabına aktarın. İki ince neşter kullanarak kıyın ve ardından 50 mililitrelik konik bir tüpe yerleştirin. Plakayı yıkamak için 5 mililitre sindirim tamponu ekleyin. Tüpün kapağını sabitleyin ve akciğeri 37 santigrat derecede dakikada 150 dönüş hızında bir orbital çalkalayıcı üzerinde 30 dakika boyunca sindirin. 10 mililitre soğuk BSA tamponu ekleyerek reaksiyonu durdurun.

Sindirimden sonra, 18 gauge bir iğne kullanarak akciğer parçalarını karıştırın ve çözün. Yeni bir 50 mililitrelik konik tüpün üzerine 70 mikrometrelik bir filtre süzgeci yerleştirin ve sindirilmiş akciğer karışımını süzgecin içine aktarın.

Filtrede kalan akciğer parçalarını parçalamak için 10 mililitrelik bir şırınga pistonunun kauçuk tarafını kullanın ve BSA tamponu ile yıkayın. Tek hücreli süspansiyonu 350 g'da 7 santigrat derecede 8 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı atın ve hücreleri 1 mililitre ACK lizis tamponunda yeniden süspanse edin. Süspansiyonu 1 mililitrelik bir pipet kullanarak karıştırın ve oda sıcaklığında 90 saniye inkübe edin.

Reaksiyon karışımına 10 mililitre soğuk BSA tamponu ekleyin ve 4 santigrat derecede 7 dakika boyunca 350 g'da santrifüjleyin. Süpernatanı atın. Peleti boyama tamponunda yeniden süspanse edin ve bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın. Yüzey boyama için hücreleri mililitre başına 5 milyon hücre konsantrasyonunda yeniden süspanse edin.

Oyuk başına 200 mikrolitrede 1 milyon hücreyi 96 oyuklu bir plakaya aktarın ve plakayı 4 santigrat derecede 7 dakika boyunca 350 g'da santrifüjleyin. Boyama tamponunda anti-16/32 antikoru seyrelterek bir akış sitometrisi blok çözeltisi hazırlayın.

Hücreleri 50 mikrolitre akış sitometrisi blok çözeltisinde yeniden süspanse edin. Süspansiyonu 4 santigrat derecede veya buz üzerinde 15 ila 20 dakika inkübe edin. Daha sonra plakaya 150 mikrolitre boyama tamponu ekleyin ve 350 g'da 4 santigrat derecede 5 dakika santrifüjleyin.

Yüzey antikorlarını boyama tamponunda seyrelterek yüzey antikor çözeltisi hazırlayın. Hücreleri 50 mikrolitre yüzey antikor çözeltisinde yeniden süspanse edin ve plakayı karanlıkta 4 santigrat derecede inkübe edin. Ardından, hücreleri boyama tamponu ile iki kez yıkayın.

Üç kısım fiksasyon ve geçirgenlik seyrelticisini ve bir kısım boyama tamponunu karıştırarak fiksasyon ve geçirgenleştirme tamponunu hazırlayın. Hücreleri, 96 oyuklu plakanın oyuğu başına önceden hazırlanmış tamponun 50 mikrolitresinde yeniden süspanse edin ve karanlıkta 4 santigrat derecede 20 ila 25 dakika inkübe edin.

Bir kez geçirgenlik tamponu hazırlamak için geçirgenlik tamponunu arıtılmış deiyonize su ile seyreltin ve hücreleri yıkamak için kullanın. 1 mililitre geçirgenlik tamponu ile seyrelterek hücre içi bir antikor çözeltisi hazırlayın. Hücreleri, 96 oyuklu plakanın oyuğu başına 50 mikrolitre seyreltilmiş hücre içi antikor çözeltisinde yeniden süspanse edin ve karanlıkta 4 santigrat derecede 40 dakika inkübe edin.

Hücreleri geçirgenlik tamponu ile, ardından boyama tamponu ile yıkayın. Son yıkamadan sonra, hücreleri 200 mikrolitre boyama tamponunda tekrar süspanse edin. Akış sitometresinde numune başına en az 1,5 milyon hücre elde edin.

09:48

Lamina Propria Mononükleer Hücrelerin Murine Kolondan Kollajenaz E Kullanarak İzolasyon

İlgili videolar

0 Görüntüler

08:21

Diseke İmplant Dokularının İmmün Fonksiyon Analizi için Yüksek Boyutluluk Akış Sitometrisi

İlgili videolar

0 Görüntüler

05:31

Anofel Sivrisineklerinde Spermatogenezi İncelemek için Tam Montajlı Floresan In Situ Hibridizasyon

İlgili videolar

0 Görüntüler

09:04

Fare Akciğer Dendritik Hücrelerinin İzolasyonu

İlgili videolar

0 Görüntüler

14:48

Fonksiyonel ve Moleküler Çalışmalar Birincil murin Tip II alveol epitel hücrelerinde akım sitometri İzolasyonu

İlgili videolar

0 Görüntüler

03:03

Bronkoalveoler Lavaj Sıvısındaki İmmün Hücrelerin Flow Sitometri ile Tanımlanması ve Sayımı

İlgili videolar

0 Görüntüler

07:03

İnflamatuvar Hücre İnfiltrasyonunu İncelemek İçin Murin Akciğerlerin Bronkoalveoler Lavajı

İlgili videolar

0 Görüntüler

10:39

Akciğer yolu bulabilen insan lenfosit içinde deneysel bir alerjik iltihap ışık sayfalık mikroskobu üzerinde dayalı, Vivo modeli görüntüleme gelişmiş

İlgili videolar

0 Görüntüler

09:00

Pulmoner Ortamda İmmün Hücrelerin ve Proinflamatuar Mediatörlerin Karakterizasyonu

İlgili videolar

0 Görüntüler

09:57

Murin Akciğerinin Doğuştan Gelen ve Adaptif İmmün Hücrelerinin Tanımlanması için Akım Sitometrik Analizi

İlgili videolar

0 Görüntüler

Son güncelleme: 22 Ağustos 2026