JoVE Encyclopedia of Experiments
Sinirbilim
0 görüntüleme • 2:55 dk • July 8th, 2025
Uzun süreli inkübasyondan sonra oksijenli aCSF ile perfüze edilmiş bir fare beyin dilimini bir kayıt odasına sabitleyin.
Dilimdeki hücreler, hücre içi kalsiyum ölçümlerini kolaylaştıran bir kalsiyum indikatörü ile yüklenir.
Elektrolit çözeltisinde bir elektrot içeren bir kayıt pipeti alın.
Bir hedef nöron belirleyin. Kayıt pipetini hücre zarına pozitif basınçla yerleştirin ve bir çukur oluşturun.
Sıkı bir sızdırmazlık oluşturmak için negatif basınç uygulayın.
Ayrıca, negatif basınç darbeleri uygulayın, zarı yırtın ve tam hücre konfigürasyonu oluşturun.
Nöronun zarını depolarize eden yüksek potasyum konsantrasyonuna sahip perfuse aCSF.
Depolarizasyon, sodyum kanallarını açarak bir aksiyon potansiyelini tetikler, bu da voltaj kapılı kalsiyum kanallarını aktive eder ve kalsiyum akışına izin verir.
Kalsiyum iyonları göstergeye bağlanarak uygun aydınlatma altında görselleştirilebilen floresansı artırır.
Potasyum uygulamasını takiben kalsiyum akışının neden olduğu hücre içi floresanstaki artış, uzun süreli inkübasyondan sonra nöronal canlılığı gösterir.
Kayıt için, dokuyu mikroskop altında batık bir kayıt odasına yerleştirin ve dakikada 4 ila 5 mililitre akış hızında oksijenli aCSF ile perfüze edin. Özel yapım bir arp kullanarak dokuyu içeride tutun. Ardından, 5 ila 6 mega ohm'luk bir nihai direnç elde etmek için bir mikropipet çektirme kullanarak bazı kayıt pipetleri hazırlayın.
Pipeti 3 ila 4 mikrolitre iç solüsyonla doldurun ve ardından solüsyonu buzun üzerine yerleştirin. Ardından, IR-DIC altında bir CCD kamera kullanarak hücreleri görselleştirin. Bir mikromanipülatör kullanarak pipeti hücre zarının üzerine yerleştirin. Pipet tutucusundaki bir emme portu aracılığıyla pozitif basıncı koruyun. Pipet hücrenin üzerine geldiğinde, gigaohm'luk bir sızdırmazlık elde etmek için pipete hafif bir negatif basınç uygulayın.
Ardından, hücre zarını kısa bir negatif basınçla yırtın. Ardından, tam hücre akımı veya voltaj kelepçesi kaydını başlatın. Akış 4'ün tek bir uyarma dalga boyu için, uyarma ışığını 460 ila 490 nanometre bant geçiren bir filtreden ve yayılan ışığı 515 ila 550 nanometre bant geçiren filtreden filtreleyin.
Bu makale, tüm hücre yamalı kenetleme (whole-cell patch-clamp) teknikleri kullanılarak nöronlardaki hücre içi kalsiyum seviyelerinin kaydedilmesine yönelik bir yöntemi detaylandırmaktadır. İşlem; bir fare beyin kesitinin hazırlanmasını, kalsiyum indikatörü ile yüklenmesini ve hedef nöronlar üzerinde sıkı bir sızdırmazlık sağlamak için bir kayıt pipetinin kullanılmasını içerir.
Bu yöntem, uzun süreli kültür dönemlerinin ardından beyin dokusundaki nöronal canlılığın ve fonksiyonel yanıtın doğrudan değerlendirilmesine olanak tanır ki bu, sürekli doku sağlığı gerektiren preklinik modeller için kritik bir husustur. Elektrofizyolojik kayıt ile kalsiyum görüntülemeyi birleştiren bu yöntem, nöronal eksitabilite ve hücre içi sinyal iletimine ilişkin kantitatif, gerçek zamanlı veriler sağlar. Bu çift modlu yaklaşım, gözlemlenen farmakolojik etkilerin fizyolojik olarak yanıt veren nöronlarda meydana geldiğini doğrulayarak, nörobilim ilaç keşif sürecinde hedef validasyonunu ve mekanistik risk azaltmayı destekler.
Bu teknik, hedef hipotez testinin, bileşik taramasından önce nöronal sağlığın ve sinyal iletim yetkinliğinin doğrulanmasını gerektirdiği erken keşif iş akışlarına uygundur.
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
Son güncelleme: 29 Ağustos 2026