Name: DNA Metilasyonu: bisülfit modifikasyonu ve Analiz (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 34 s
Description: Öğrenin, bisülfit dönüşümü ve PCR ile CPG dinükleotitlerinde DNA metilasyon analizi yapmayı. Bu yöntem, tek nükleotid çözünürlüğünde epigenetik araştırmalar için kanser gibi hastalıklarda gen düzenlemesini incelemeye olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bisülfit dönüşüm protokolü Genomik DNA 2 mikrogram dönüşüm için standart bir protokol aşağıda açıklanmıştır. Genomik DNA (100 pg-200 mg) daha küçük veya büyük miktarda, aynı zamanda başarılı bir şekilde tedavi bisülfit olabilir. Bu tepkime koşulları hemen hemen her hedef DNA dizisi 3 tam dönüşüm (% 99,5-99,7) sonuçlanır. 1. DNA hazırlığı 37 ° C Not 1 saat için 18 ul toplam hacim bisülfit DNA Lizis Buffer (2 mg t RNA 280 ng / ul Proteinaz K,% 1 SDS) ile genomik DNA kuluçka örnekleri hazırlayın: Bunu başarmak için önemlidir. özellikle hala DNA ile ilişkili protein olabilir klinik örneklerden izole edilen DNA ile maksimal bisülfit dönüşüm . 2. DNA denatürasyonu <ol><li> Son c taze hazırlanmış 3M NaOH 2 ul ekleyerek 20 ul bir ses doğasını 2 mg DNA0.3M, oncentration. </li><li> 37 ° örnekleri inkübe ° C su banyosunda 15 dakika süreyle bir ısı bloğu içinde 2 dakika süreyle 90 ° C'de inkübasyon izledi. Hemen 5 dakika boyunca buz üzerinde tüplerin yerleştirin. </li><li> 4 ° C, 10 s 10.000 g sağlamak için DNA tüpün dibinde tüplerin santrifüjleyin. </li></ol> 3. Bisülfit Deaminasyon Sülfonasyon &amp; Hidrolitik Deaminasyon <ol><li> 10 mM Quinol ve doymuş sodyum metabisülfit pH 5.0 (464 ul 10 M NaOH ile 7.6 g Na 2 S 2 O 5, 15 ml su ile yapılmış) taze çözümler hazırlayın. Doymuş sodyum bisülfit çözüm asgari karıştırma ve havalandırma ile, yavaşça tersine reaktif / H 2 O karışımı ile elde edilir. Gerekirse, metabisülfit Not tam olarak kapatılması için 10 M NaOH ile pH ayarı: doymuş bir çözüm olduğu için, küçük topaklar hala çözünmeden kalır . </li><li> 208 ekle2.31M bisulphite/0.5mM Quinol, pH 5.0 nihai konsantrasyonu 240 ul nihai hacmi doymuş metabisülfit ve denatüre DNA (20 ul) 10mM Quinol 12 ul ul. Damlacıkları tüpün alt kısmında sağlamak için 10 sn için tüm reaktifler ve santrifüj yavaşça karıştırın. </li><li> 200 ul madeni yağ numuneleri Overlay. Numuneler 55 ° C su banyosu, 4-16 saat inkübe edin. Bisülfit tedavi süresini dönüştürülecek DNA miktarı ve kalitesi bağlıdır. Kalitesiz ya da bozulmuş DNA DNA, 4 saat inkübasyon süresi sınırı Not: inkübasyondan önce folyo tüpler mümkün şal değildir eğer öyleyse, bu bisülfit dönüşüm oksidasyon önlemek için karanlık yer aldığı önemlidir. . </li><li> Uygun inkübasyon süresi sonunda, tüm sıvı tüpün dibinde olduğundan emin olmak için bir mikrosantrifüj kısaca tüpler döndürmek. </li><li> Bisülfit tedavi DNA Kurtardikkatle herhangi bir mineral yağ almadan, tüpün dibinden DNA çözüm pipetleme yağ tabakasının altında. </li></ol> Tuzsuzlaştırma <ol start="5"><li> Tuzsuzlaştırma sütun geçerek, 50 mili-Q suyu (MQH 2 O) ul salınımlı herhangi bir ücretsiz bisülfit iyonlarının çıkarın . Genomik DNA'nın miktarı ve kalitesi üzerinde ve nasıl hazırlanır bağlı olarak, farklı tuzsuzlaştırma sütun kullanılabilir. Biz rutin olarak bu sütunların SDS dönüşüm için önce DNA hazırlanmasında kullanılan kaldırmak için uygun Promega Sihirbazı, sütunlar temizleyin kullanın. </li></ol> Alkali Desulphonation <ol start="6"><li> Bisülfit adduct desulphonation urasil halka çıkarılır. Desulphonate 0.3M bir son konsantrasyonu 5.5 ul taze hazırlanmış 3M NaOH ekleyerek, örnekleri daha sonra 37 ° C'de 15 dakika süreyle kuluçkaya yatmaktadır. </li><li> Kısaca Santrifüj ve t RNA (10 mg / ml) 1 ul ekleyin. </li> &lt;li&gt; amonyum asetat 33 ul (NH 4 O Ac), 3M nihai konsantrasyonu pH 7.0 ilavesi ile çözüm nötralize. <li> Buz gibi% 100 etanol 330 ul ekleyerek Etanol çökelti DNA tersine çevirerek iyice karıştırın. -20μC gecede 1 saat bırakın. 15 dakika 14.000 g Santrifüj 4 ° C Süpernatant ve hava tüm izlerini ~ 20 min çöktürülmüş DNA kuru çıkarın. </li><li> 0.1 TE (10mM Tris-HCL, 0.1mm EDTA, pH 8.0) veya H 2 O 50 ul / mg DNA pelet yeniden askıya Yaklaşık 2 saat oda sıcaklığında bekletin. DNA sağlamak Bazen vorteks tüpleri, ardından hızlı bir santrifüj, çözünmüş. </li><li> DNA miktar ve kalitesine bağlı olarak 1-10 yıl boyunca -20 ° C'de PCR veya mağaza için hemen kullanın. </li></ol> 4. PCR Amplifikasyon Primer Tasarım <ol><li> PCR bisülfit dönüşüm spesifik primerler Etkin tasarım crucial DNA'nın tamamen dönüştürülen bu verimli, tarafsız amplifikasyon sağlamak için oluşur. Aşağıdaki yönergeler, astar tasarım yardım için kullanılacak. </li></ol> Primer Tasarım Kuralları <img src="files/ftp_upload/3170/3170list1.jpg"> Thermocyling <ol start="2"><li> Orantılı metillenmiş ve unmethylated DNA PCR testi için, bir metil 50:50 / Unmethylated tam bisülfit dönüştürülür kontrol örneği kullanın ve optimize edilmiş PCR reaksiyon koşulları (Şekil 3) altında bisülfit dönüşüm spesifik primerler ile amplifiye. 50:50 metil: Unmethylated kontrolü, in vitro SssI metillenmiş DNA ve ya tüm genom (WGA) amplifiye DNA veya tam kan DNA kullanın. Bazı genlerin doğal kan metil ve bu nedenle bu gibi durumlarda sadece "Unmethylated" kontrol WGA DNA kullanmak en iyisi olacaktır ki farkında olun. </li><li> 100 &amp; m PCR reaksiyon karışımları hazırlayınu; l 2 ul dönüştürülür bisülfit genomik DNA, 200 mcM dNTP, 1 mcM primerler, 1.5 mM MgCl 2, 50 mM KCl, 10mM Tris-HCL, pH 8.3 ve 0.15 ul Taq polimeraz içeren alikotları. </li><li> 3 ° C üzerinden astar tahmin Tm 10 tüp, bir sıcaklık degrade PCR degrade çalıştırmak reaksiyon + / </li></ol><img alt="Tablo 1" src="/files/ftp_upload/3170/3170table1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tablo 1"><ol start="5"><li> Metillenmiş ve unmethylated amplikonlarının orantılı olarak amplifiye olduğunu test etmek için, Amplikon metillenmiş DNA sindirimi Taq 1 (TCGA) gibi bilgilendirici bir restriksiyon enzimi, sindirilmiş, ancak kısıtlama enzim sitesi unmethylated DNA sindirimi olmaz TTGA için bisülfit dönüşüm sonra değiştirdi. Sindirim ölçüde agaroz jel elektroforezi (Şekil 3A) tarafından görüntülenmiştir. Alternatif olarak, PCR reaksiyonu SYBRGreen (0.2 1:1000 dilüsyon ul) eklenir ve olabilirmetilasyon ölçüde bir real-time PCR PCR (Şekil 3B) ısı disosiasyon araziler yaparak değerlendirilebilir. </li><li> MgCl 2 konsantrasyonu ve thermocycling koşulları da dahil olmak üzere PCR Reaksiyon karışımı PCR verimliliğini artırmak veya metil ve unmethylated PCR parçaları orantılı PCR sağlamak için ayarlanması gerekebilir. </li><li> PCR koşulları optimize sonra, PCR bisülfit dönüştürülen numuneler üzerinde yapılacaktır Not: Bir kez Tm sıcaklık degrade PCR kullanılabilir gerekmez optimize edilmiştir . </li></ol> 5. Temsilcisi Sonuçlar: Bisülfit PCR optimizasyonu bir örnek Şekil 3'te gösterilmiştir. Optimal PCR amplifikasyon koşulları oran ve önyargısız, metil ve unmethylated amplikonlarının yükseltilmesi gerekir. Şekil 3A% 50 metil ve unmethylated DNA karışımı bir sıcaklık gradyanı PCR profili ile bir agaroz jel gösterir. The PCR amplikonlarının metillenmiş sindirimi bir kısıtlama enzim, Taq 1 (TCGA), (M) DNA ile tedavi edilmiştir ancak TTGA için bisülfit dönüşüm restriksiyon enzimi sitesi tarafından değiştirilmiş olarak (U) DNA unmethylated sindiremez. Kesilmiş ve kesilmemiş PCR ürünü eşit miktarda metil ve unmethylated DNA orantılı olarak yükseltilir bekleniyor. -Önyargı olmayan amplifikasyonu için optimal thermocyling koşulları 56.1 olduğunu, bu jel üzerinde görülebileceği ° C (T). Bisülfit DNA komple dönüşüm sitozin-sitesi hpa III (CCGG) gibi spesifik bir enzim ile sindirime de analiz edilebilir. Dönüştürme başarısız oldu hpa III sadece kısıtlama sitesi muhafaza edilecektir sindirir. Dönüştürme işlemi tamamlandığında ise kısıtlama site TCGG veya DNA metilasyon durumu bağlı TTGG dönüştürülmüş olacak. Komple bisülfit DNA dönüşüm Şekil 3A (H) görülebilir. Şekil 3B gerçek zamanlı bir ayrılma arsa gösterirfarklı moleküller ayrıştırmaları hangi sıcaklık dayalı herhangi bir amplifikasyon önyargı var olup olmadığını belirlemek için bir araç olarak da kullanılabilir. Bu şekilde PCR 82.1μC az ayrıştırmaları tamamen metillenmiş ve unmethylated DNA amplifikasyon kontrol ile karşılaştırıldığında,% 50 metillenmiş ve unmethylated DNA karışımı oranında metil amplifiye (M) ve (U) unmethylated DNA olduğunu görülebileceği sırasıyla 78.9μC. Thermocyling ve reaksiyon koşullarının optimizasyonu sonra bisülfit tedavi örnekleri tek bir ya da yarı nested PCR reaksiyon ya iplikçik bisülfit özel ve spesifik primerler ile amplifiye edilebilir. Çıkan PCR parçaları agaroz jel elektroforezi ile görüntülenir (Şekil 4A) ya doğrudan ya da klonlama ve sıralama sıralı olabilir. Klonlama ve bireysel moleküllerinin metilasyon devlet sıralama heterojen görselleştirmek için bisülfit bir harita (Şekil 4B), cetvel sonrametilasyon. Yüksek verim kantitatif metilasyon analizi gibi Sequenom EpiTYPER yöntemi tarafından kullanılan teknoloji kullanılarak preformed olabilir. Bu yöntemi kullanarak, bisülfit dönüştürülür DNA bisülfit spesifik PCR primerleri ile amplifiye ve bir proprietry bölünme süreci izledi. Çıkan parçaları metil cytosines (Şekil 5A) varlığına bağlı özel spektrum MALDI-TOF kütle spektrometresi tarafından quantitated. Metilasyon oranları örnek bir özetini sonra bir özdeyişinin (Şekil 5B) veya metilasyon arsa (Şekil 5C) şeklinde çıkarım olabilir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3170/3170fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1. (Gri) gen bedenlerinizde CpG siteleri seyrek ve genellikle metil (kırmızı) ise normal hücre, organizatörü ile ilişkili CpG adalar ağırlıklı metil CpG şematik. Unmethylated. Sağdaki panel, moleküler yapısı genişletirbireysel bir CpG yerinde DNA ure ve sitozin 5 karbon CH3 molekülü ile metilasyon gösterir. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3170/3170fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2. Denatürasyon, bisülfit dönüşüm, PCR ve analizi; Kimyasal dönüşüm şematik analizi, DNA metilasyon gösterildiği gibi dört ana aşama içerir . Sağ panelde, sitozin molekülünün bisülfit dönüşüm sırasında meydana gelen değişiklikler tasvir edilmektedir. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3170/3170fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3. PCR A. Optimizasyonu % 50 metil ve unmethylated DNA karışımı bir sıcaklık gradyanı PCR profili agaroz jel elektroforez. Fragments sırasıyla metillenmiş DNA ve olmayan bisülfit dönüştürülür DNA sindirimi Taq1 (T) veya HpaIII (H) ya da sindirilmiş edilmiştir. B. Isı dissosiyasyon eğrisi analizi denklemleri gösterirmetillenmiş ve unmethylated DNA (kırmızı çizgi 50/50 mix) l oranı kontrolü tamamen metillenmiş amplifikasyon (pembe çizgi, M) ve ° C ve 78.9 ° C sırasıyla 82.1 ayrıştırmaları unmethylated DNA (yeşil hat, U). <img alt="Şekil 4a" src="/files/ftp_upload/3170/3170fig4a.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 4a"> <img alt="Şekil 4b" src="/files/ftp_upload/3170/3170fig4b.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 4b"> Şekil 4. Doğrudan sıralama örneği ve bisülfit haritası A. Sıra iz sarı vurgulanır CpG siteleri ile üç farklı hücre hatları. Hücre hattı X hücre hatları Y ve Z G / A sinyaller üst üste görüldüğü gibi metilasyon değişik derecelerde ise her üç CpG siteleri% 100 metilasyon gösterir. B., bireysel klonların doğrudan sıralama belirlenir, bireysel CpG siteleri metilasyon (kırmızı noktalar) yoğunluğu gösteren Temsilcisi bisülfit harita. <img alt="Şekil 5a" src="/files/ftp_upload/3170/3170fig5a.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 5a"> Şekil 5. Sequenom A. kullanarak yüksek verim DNA metilasyon analizi Sequenom epiTYPER teknolojisini kullanarak Spektrum görünümü. DNA parçalarının DNA metilasyon mevcut miktarına bağlı olarak, belirli spektrumları gösterir. B. DNA metilasyon yüzde CpG dört farklı hücre hatları için her yerinde özdeyişinin özeti. C. Metilasyon arsa özeti Sequenom özdeyişinin türetilmiştir.

<ol><li>Frommer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genomic+sequencing+protocol+that+yields+a+positive+display+of+5-methylcytosine+residues+in+individual+DNA+strands%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">A genomic sequencing protocol that yields a positive display of 5-methylcytosine residues in individual DNA strands.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 89, 1827-1831 (1992).</li>
<li>Clark, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+sensitivity+mapping+of+methylated+cytosines%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic.+Acids.+Res%22%5BJournal%5D)">High sensitivity mapping of methylated cytosines.</a> Nucleic. Acids. Res. 22, 2990-2997 (1994).</li>
<li>Grunau, C., Clark, S. J., Rosenthal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bisulfite+genomic+sequencing%3A+systematic+investigation+of+critical+experimental+parameters%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic.+Acids.+Res%22%5BJournal%5D)">Bisulfite genomic sequencing: systematic investigation of critical experimental parameters.</a> Nucleic. Acids. Res. 29, E65-E65 (2001).</li>
<li>Clark, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+methylation%3A+bisulphite+modification+and+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">DNA methylation: bisulphite modification and analysis.</a> Nat. Protoc. 1, 2353-2364 (2006).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

DNA metilasyon analizi bisülfit dönüştürülen DNA genom dizileri tek nükleotid çözünürlükte DNA metilasyon belirlenmesi ve miktar kolaylaştıran bir köklü ve çok yönlü bir yöntemdir. Ancak, bisülfit dönüşüm ve sonraki analiz DNA tam her unmethylated sitozin urasil deaminated ve sadece metil cytosines un-reaktif kalan dönüştürülmüş olduğunu önermesine dayanır. Dönüştürülmemiş unmethylated cytosines dönüşüm eksik ise yanlış metil cytosines olarak yorumlanabilir bu yana, sorunların analizi ile ortaya çıkabilir. Bisülfit dönüşüm dönüşüm oranını en üst düzeye çıkarmak için çeşitli aşamalarında optimize edilebilir. DNA tam olarak dönüştürülebilir için sitozin kalıntılarının bisülfit iyonlarının maruz böylece ilk telli tek olmalıdır. Ilk adım, DNA denatürasyon, kritik ve DNA tam denatüre değilse eksik dönüşüm kaynağı olabilir. Sağlamak içinDNA tam denatüre olduğunu, ilgili tüm protein kaldırılması, uygun tuz konsantrasyonu, inkübasyon sıcaklığı ve saati de dahil olmak üzere reaksiyon parametreleri, tek sarmallı konformasyon DNA korumak için uygun olması önemlidir. Taze 3M NaOH kullanmak ve uygun inkübasyon süresi izin için önemlidir. DNA denatürasyon direnen ise, inkübasyon süresi 30 dakikaya kadar uzanan veya denatürasyon için önce DNA parçalanan protokol de dahil olmak üzere bazı değişiklikler DNA'nın denatürasyon kolaylaştırabilir. Buna ek olarak, tek sarmallı DNA (ssDNA) bisülfit dönüşüm reaksiyon sırasında çift sarmallı DNA (dsDNA) yeniden tavlama olabilir. Ya periyodik veya sürekli bisülfit reaksiyon sırasında daha yüksek bir sıcaklık (90-95 ° C) reaksiyonu Taşıma ssDNA bakım yardımcı olabilir. Ancak, DNA'nın bozulması, bu yüksek sıcaklıklarda büyük ölçüde hızlandırılmış olduğunu farkında olmak önemlidir. Çeşitli reaktifler th yeniden tavlama bozabilir eklenebilire DNA ipliklerini, üre gibi. DNA ve kalitesini konsantrasyonu da bisülfit reaksiyon verimliliğini ve nihai PCR verimi etkileyebilir. DNA'nın bozulması, bisülfit dönüşüm protokolü bir sınırlama yoktur. DNA'nın kimyasal arıtma çeşitli iplikçik ssDNA sonları ve bazı yüksek bisülfit konsantrasyonu, uzun kuluçka süreleri DNA düşüşü hızlandırabilir de dahil olmak üzere tam bisülfit dönüşüm için gerekli olan sert koşullar tanıtır. Açıklanan standart reaksiyon şartları altında, protokol değişiklikler tanıtıldı, DNA'nın bozulması, bozulmuş ya da FFPE örnekleri gibi kalitesiz DNA şablonları için, bu tür dönüşüm dirençli dizileri için, ancak DNA bozulması ortak bir sorun değildir önemli bir sınırlama olabilir. Formalin sabit, parafin (FFPE) ve bozulmuş DNA örnekleri, bu protokolü etkin kullanılarak dönüştürülür ve amplifiye bisülfit olabilirAncak DNA daha da bozulmuş olmadığından emin olun değişiklikler tavsiye edilir. T RNA gibi bir taşıyıcı RNA kullanılması tavsiye edilir. DNA konsantrasyonu düşük (&lt;200 ng) Ayrıca glikojen bir taşıyıcı olarak eklenebilir. FFPE dokulardan izole DNA zaten parçalanmış ve daha fazla parçalanma deaminasyon sırasında yer aldığından daha fazla bozulmasını en aza indirmek için, bakım alınmalıdır. Parçası DNA denatürasyon önce başka etmeyin ve bisülfit reaksiyon için 4 saat inkübasyon süresi sınırı. Tasarım parçalanmış DNA nedeniyle 300 bp daha büyük amplikonlarının. PCR, unmethylated cytosines bisülfit dönüşüm DNA örneğinin karmaşıklığı azaltır etkileyebilecek bir diğer faktördür. Bölüm 4.1, artan astar uzunluğu ve nested PCR ana hatlarıyla aşağıdaki astar tasarım protokolü özgüllük ve PCR verimi artırmak için yardımcı olabilir. Son olarak, DNA örneğinin beri bisulph sırasında değişmişite dönüşüm, amplifikasyon yanlılık bir sorun olabilir. Bkz. Şekil 3, metil ve unmethylated şablonları bu orantılı PCR protokolde belirtildiği gibi, bir kontrol 50/50 M / U DNA karışımı ile işaretli olduğundan emin olun. Ayrıca sadece dönüştürülen şablonları bu amplifikasyon sağlamak HpaIII kısıtlama enzim ve jel elektroforezi (Şekil 3) ile meydana geliyor. PCR koşulları, sıcaklık ve / veya magnezyum konsantrasyonu farklı veya uzatma süresi uzatma optimize edilmesi gerekebilir. Bazı şablonlar, özellikle problemli gibi görünen ve astar konumu ayarlanması gerekebilir veya primerler dejenere kullanılmak üzere gerekebilir. Yeni nesil sıralama teknikleri genomik sıralama bisülfit benzer bir çözünürlük elde etmek için hızla gelişmektedir ve üçüncü nesil tek molekül sıralama bisülfit sıralaması için gerek kalmadan hem de birincil DNA ve metilasyon analizi için izin potansiyeline sahiptir. Ancak, yaygın kullanılabilirliği ve specbu tekniklerin ificity uzakta bir süre kalır. Bisülfit genomik sıralama metilasyon analizi altın standarttır ve sağlam bir protokoldür. Bu yöntem, sık karşılaşılan sorunlar ve sınırlamalar çözüldü noktasına kadar ilerledi ve uygulamaları, yüksek verimlilik ve Clark ve ark tarafından tanımlanan tüm genom analizi, bireysel gen analizleri genişlettik. 2006 4. Sorun Giderme kılavuzlar ve ek öneriler Tablo 1'de özetlenmiştir. Başlangıçta standart bir protokol takip ve sadece eğer modifikasyon ve ne zaman bir problem ortaya tanıtmak için en uygun yaklaşım olduğu ileri sürülmektedir. <img src="/files/ftp_upload/3170/3170table2.jpg" alt="Tablo 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tablo 2"> Tablo 1 Sorun Giderme Rehberi

<ol><li> Sodyum metabisülfit (Ajax Finechem) </li><li> Hidrokinon (Merck) </li><li> Sihirbazı DNA-clean-up sistemi (Promega) </li></ol>

dna metilasyonu: bisülfit modifikasyonu ve analiz

DNA Methylation: Bisulphite Modification and Analysis

Epigenetik DNA dizisi bağımsız olarak meydana gelen kalıtsal gen fonksiyonunda değişiklikler açıklanmaktadır. Epigenetik gen düzenlemenin moleküler temeli karmaşık, ama aslında yapılan değişiklikler DNA kendisi veya DNA iştirakçi proteinler içerir. Memeli genomların DNA baskın epigenetik modifikasyon sitozin nükleotidler metilasyon (5-MEC). DNA metilasyon nerede ve gen ifade edilmelidir gen ekspresyonu makine talimat sağlar. Memeliler DNA metilasyon için birincil hedef dizisi 5&#39;-CpG-3 &#39;dinükleotidleri (Şekil 1). CpG dinükleotidleri genom boyunca eşit dağıtılmış değil, ancak tekrarlayan genomik dizileri ve gen rehberleri (Şekil 1) ile ilgili CpG &quot;adalar&quot; bölgelerinde yoğunlaşmıştır. DNA metilasyon desen doku belirli bir farklılaşma sırasında modülasyonlu, erken gelişim kurulan ve kanser de dahil olmak üzere birçok hastalık durumlarında bozulması. Understand hassas insan hastalığı, yöntemleri, verimli ve tekrarlanabilir DNA metilasyon ve rolünü biyolojik rolü 5-MeCs bireysel saptamak ve ölçmek için gereklidir. Bu protokol, bisülfit dönüşüm için DNA metilasyon analizi için &quot;altın standart&quot; ve tek nükleotid çözünürlükte DNA metilasyon tanımlanması ve ölçülmesi kolaylaştırır. Sodyum bisülfit sitozin deaminasyon kimya, üç adım (Şekil 2) içerir. (1) sülfonasyon: urasil-bisülfit türevi (3) Alkali Desulphonation vermek için ortaya çıkan sitozin-bisülfit türev hidrolitik deaminasyon:: sitozin (2) Hidrolik Deaminasyon 5-6 çift bağ için bisülfit Ayrıca sülfonat Kaldırma alkali uygulaması ile grup, urasil vermek. Bisülfit tercihen, 5-MEC ise, tek sarmallı DNA urasil sitozin deaminates bisülfit-aracılı deaminasyon dirençli. PCR üzerine, urasil yükseltilir5-MEC artıkları cytosines olarak kalırken, metil CpG&#39;ler sıralama sırasında bir sitozin &quot;C&quot; karşı timin &quot;T&quot; kalıntı varlığı unmethylated CpG&#39;ler ayırt edilmesi için izin timin gibi. Bisülfit dönüşüm tarafından DNA modifikasyonu, DNA metilasyon analizi pek çok yöntem için istismar edilebilir köklü bir protokoldür. Bisülfit dönüşüm 5-MEC algılama ilk Frommer et al 1 ve Clark ve ark. 2, DNA metilasyon yeni veri çoğunluğu için genomik DNA hesap bisülfit dönüşüm etrafında dayalı yöntemler gösterildi. Özgüllük ve gerekli metilasyon çözünürlük derecesine bağlı olarak, yazılan PCR analizi için farklı yöntemler kullanılabilir. Klonlama ve DNA molekülü üzerinde metilasyon için tek nükleotid çözünürlük verebileceğiniz en hazır yöntem.

DNA metilasyon analizi için altın standart bisülfit dönüştürülen DNA genom dizileri. Bu yöntem, asidik koşullar altında deaminasyon bisülfit 5-methylcytosine (5-MEC) ile karşılaştırıldığında sitozin artan duyarlılık yararlanır. Unmethylated cytosines hedef genomik DNA PCR sonra metil cytosines ayırt edilebilir.

DNA Metilasyonu: bisülfit modifikasyonu ve Analiz

Epigenetik, DNA diziliminden bağımsız olarak meydana gelen, gen işlevindeki kalıtsal değişiklikleri tanımlar. Epigenetik genlerin moleküler temeli...

Bu prosedürün genel amacı, sülfit ile dönüştürülmüş DNA'nın genomik dizilemesi yoluyla CpG dinükleotidlerinin DNA metilasyon analizini gerçekleştirmektir. Bu, öncelikle çift zincirli DNA'nın denatüre edilmesiyle sağlanır, böylece bisülfit dönüşüm reaksiyonu gerçekleşebilir. İkinci adım, genomik DNA'daki tüm metillenmemiş sitozinlerin bisülfit deaminasyonu ile urasile dönüştürülmesidir.Bu reaksiyon üç aşamadan oluşur. Birincisi, beş altı çift bağın sülfit B eklenmesiyle sitozin kalıntısının sülfatlanmasıdır. İkinci olarak, sülfit türevi tarafından sitozinin hidrolitik deaminasyonu bir SSL sülfit türevi üretir ve üçüncü olarak, alkali işlemle sülfonat grubunun uzaklaştırılması bir SSL kalıntısı ile sonuçlanır.Ardından, hedef bölge bisülfit dönüşümüne özgü primerler ve PCR amplifikasyonu ile çoğaltılır. Son adım, DNA molekülü boyunca metilasyon için tek nükleotid çözünürlüğü sağlamak amacıyla PCR ürününün klonlanması ve dizilenmesidir. Sonuç olarak, asidik koşullar altında sitozinin beş metil sitozine kıyasla bisülfat deaminasyonuna karşı artan duyarlılığından yararlanılarak, genomik DNA'daki CpG dinükleotidlerinin DNA metilasyonu gösterilir.Bu tekniğin southern kan analizle gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, DNA metilasyonunun tek nükleotid çözünürlüğünde belirlenmesine olanak sağlamasıdır. Bu yöntem, kanser gibi insan hastalıklarında DNA metilasyonunun rolü gibi epigenetik alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. DNA örneklerini bisülfit dönüşümüne hazırlamak için, öncelikle 2 µg genomik DNA'yı bisülfit, DNA lizis tamponu ve toplam 18 µL hacim ile 37 °C'de bir saat boyunca inkübe edin.Ardından, son konsantrasyon 0.3 M olacak şekilde, taze hazırlanmış 3 M sodyum hidroksitin iki mikrolitresini ekleyerek genomik DNA'yı denatüre edin. Numuneleri bir su banyosunda 37 °C'de 15 dakika, ardından 90 °C'de iki dakika inkübe edin. Bir ısı bloğundan çıkardıktan sonra tüpleri hemen beş dakika boyunca buza yerleştirin ve DNA'nın tüpün dibinde olduğundan emin olmak için tüpleri 10.000 G'de 10 saniye santrifüjleyin; denatüre DNA numuneleri artık bir sonraki aşamada gösterilecek olan B hücresi deaminasyonuna hazırdır.Sülfasyon ve hidrolitik deaminasyon reaksiyonlarından önce, 10 millimolar quinol ve pH 5,0'da doymuş sodyum metabisülfit taze çözeltilerini hazırlayın. Sodyum metabisülfit doymuş bir çözelti olduğu için, küçük topaklar çözünmeden kalabilir. 20 microliters denatüre DNA'ya, nihai hacim 240 microliters olacak şekilde 208 microliters sodyum metabisülfit ve 12 microliters quinol ekleyin.Tüpleri vorteksleyin ve tüm damlacıkların tüpün dibine çöktüğünden emin olmak için 10 saniye boyunca santrifüjleyin. Örneklerin üzerine mineral yağı ekleyin. Dönüştürülecek DNA'nın miktarına ve kalitesine bağlı olarak, örnekleri bir su banyosunda 55 °C'de dört ila 16 saat boyunca inkübe edin.Oksidasyonu önlemek için bisülfit dönüşümünün karanlıkta gerçekleşmesi önemlidir. Uygun inkübasyon süresinin sonunda, tüm sıvının tüpün dibinde olduğundan emin olmak için tüpleri bir mikro santrifüjde kısa süreliğine döndürün. Ardından, mineral yağdan hiç almadan, DNA solüsyonunu tüpün dibinden dikkatlice pipetle çekin.Sıradaki adımlar için laboratuvarımız Promega Wizard DNA temizleme sistemini kullanmaktadır. DNA örneklerine bir mililitre reçine ekleyin, karıştırmak için tüpü ters çevirin ve ardından solüsyonu tuz giderme kolonuna bağlı bir şırıngaya pipetleyin. Son olarak, serbest bisülfit iyonlarını gidermek için bisülfit ile işlem görmüş DNA'yı tuz giderme kolonundan geçirin ve 50 µL Milli Q su ile elüe edin.Sıradaki adım, tuz giderme yoluyla urasil halkasındaki bisülfit grubunu uzaklaştırmaktır. Bunu gerçekleştirmek için, nihai konsantrasyon 0,3 molar olacak şekilde, her bir bisülfitle işlenmiş DNA örneğine 5,5 µL taze hazırlanmış üç molar sodyum hidroksit ekleyin. Ardından örnekleri 37 °C'de 15 dakika boyunca inkübe edin.Numuneleri kısa süreliğine santrifüjleyin ve ardından her numuneye bir mikrolitre TRNA ekleyin. Son konsantrasyonu üç molar olacak şekilde amonyum asetat ekleyerek çözeltiyi nötralize edin. Sonrasında, DNA'yı etanol ile çöktürün.330 µL buz gibi %100 etanol ekleyin ve ters çevirerek iyice karıştırın. Bir saat boyunca veya gece boyunca -20 °C'de bekletin, ardından 4 °C'de 14.000 ×g hızında 15 dakika boyunca santrifüjleyin. Daha sonra süpernatanın tüm kalıntılarını uzaklaştırın ve çöktürülmüş DNA'yı yaklaşık 20 dakika boyunca havada kurutun.Hava ile kuruttuktan sonra, pellet neredeyse görünmez hale gelir; DNA pelletini 50 µL 0.1 XTE veya su içerisinde yeniden süspande edin ve oda sıcaklığında yaklaşık iki saat bekletin. Bu süre zarfında, DNA'nın çözündüğünden emin olmak için tüpleri ara ara vorteksleyin ve ardından hızlıca santrifüjleyin. DNA çözündüğünde, miktarına ve kalitesine bağlı olarak -20 °C'de 1 ila 10 yıl boyunca saklanabilir veya hemen kullanılabilir. PCR amplifikasyonu için primer optimizasyonu, bu prosedürün en zor kısmıdır.Bu nedenle, primer tasarımının başarısını sağlamaya yardımcı olmak için aşağıdaki kılavuzlar sunulmuştur. Bu kılavuzları örneklendirmek için hedef sekans sülfit ile dönüştürülmüştür; böylece yazıldığında dönüştürülmüş sitozinler mavi T'ler, dönüştürülmemiş CpG bölgeleri ise kırmızı cg'ler olarak görünür. Özgüllüğü sağlamak için primerler 24 ila 30 baz çifti uzunluğunda olmalıdır. Primerlerin tahmini TM değerleri 50 °C'nin üzerinde ve birbirlerinden en fazla bir ila iki °C farklı olmalıdır.Dönüşüm spesifikliğini sağlamak için primerler yaklaşık %25 oranında C'den T'ye bazlar içermelidir. Amplifikasyonun sağlanması için üç primer ucundaki son baz C'den T'ye olmalıdır. Metillenmiş, metillenmemiş veya dönüştürülmemiş şablonlara karşı potansiyel yanlılığı önlemek için primer dizisinde dönüştürülmüş D-N-A-C-P-G dinükleotidlerinden kaçınılmalıdır. Ancak, bundan kaçınılamıyorsa, dönüştürülmüş DNA'nın tarafsız amplifikasyonunu sağlamaya yardımcı olmak için CPG bölgesindeki sitozin Y ile değiştirilmelidir.Son olarak, gerekliyse PCR reaksiyonunun özgüllüğünü veya hassasiyetini sağlamak için iç içe (nested) veya yarı iç içe (semi-nested) primer setleri tasarlayın. Optimizasyon için PCR amplifikasyon reaksiyon karışımlarını 25 microliter'lik alikotlar halinde hazırlayın. Metillenmiş veya metillenmemiş materyalin amplifikasyon yanlılığını test etmek için her reaksiyon; sülfit ile dönüştürülmüş genomik DNA, DPS primerleri, magnezyum klorür, potasyum klorür, tris hidroklorür pH 8.3 ve anac polimeraz içerir.Bisülfit dönüşümüyle orantılı PCR amplifikasyonunu test etmek için %50 metillenmiş ve %50 metillenmemiş, tamamen bisülfit dönüşümüne uğramış bir kontrol örneği kullanın. Spesifik primerler ve PCR reaksiyon karışımı ile sıcaklık gradyanlı bir termosiklet cihazında, sekiz ila on tüpe yayılmış şekilde primerin TM değerinin artı veya eksi 3 °C gradyanında reaksiyonu başlatın; tüpleri vorteksleyin ve termosiklete yerleştirmeden önce bir mikro santrifüjde kısa süreliğine döndürün. Bu şekil, %50 metillenmiş ve metillenmemiş DNA karışımından elde edilen sıcaklık gradyanlı PCR amplifikasyon profilini içeren bir agaroz jeli göstermektedir.PCR amplikonları ve T ile işaretlenmiş iki, beş ve sekizinci şeritler, yalnızca metillenmiş DNA'yı sindirecek bir restriksiyon enzimi ile işlenmiştir; optimal PCR amplifikasyon koşulları, metillenmiş ve metillenmemiş amplikonları orantılı ve yanlılık olmaksızın amplifiye etmeli ve burada görüldüğü gibi eşit miktarda kesilmiş ve kesilmemiş PCR ürünü ile sonuçlanmalıdır. Yanlılık içermeyen amplifikasyon için optimal termodöngü koşulları 55.6 °C'dir. Bisülfit DNA'nın tam dönüşümü, yalnızca dönüştürülmemiş DNA'yı sindirecek bir sitozin bölgeye özgü enzim ile üç, altı ve dokuzuncu şeritlerin sindirilmesi yoluyla analiz edilebilir.Tam bisülfit DNA dönüşümü, üç şeridin tamamında (üçüncü, altıncı ve dokuzuncu şeritler) kesilmiş DNA'nın bulunmamasıyla burada gösterilmiştir. Bu gerçek zamanlı ayrışma grafiği, sırasıyla 82,9 °C ve 86,9 °C'de ayrışan tamamen metillenmiş (pembe çizgi m) ve metillenmemiş (yeşil çizgi U) DNA'ların kontrol amplifikasyonuna kıyasla, eşit oranda metillenmiş ve metillenmemiş DNA'dan oluşan (kırmızı turuncu çizgi %50 %50 karışım) bir oran göstermektedir. Bu durum, farklı moleküllerin ayrışacağı sıcaklığa dayalı bir amplifikasyon yanlılığı olmadığını göstermektedir.Bisülfit ile işlenmiş örneklerin amplifikasyonundan elde edilen PCR fragmanları, agaroz jel elektroforezi ile görselleştirilebilir ve dizilenebilir. Burada, üç farklı hücre hattına ait, CpG bölgeleri sarı ile vurgulanmış bir dizileme izi doğrudan gösterilmektedir; hücre hattı X tüm üç CpG bölgesinde %100 metilasyon sergilerken, hücre hattı Y ve Z, burada gösterilen örtüşen G ve A sinyallerinden anlaşıldığı üzere farklı derecelerde metilasyon göstermektedir. Şekil 4A, üç farklı hücre hattına ait, CpG bölgeleri sarı ile vurgulanmış bir dizileme izidir.Tekil klonların doğrudan dizilenmesinin ardından, tekil moleküllerin metilasyon durumu bir bisülfit haritasında tablolaştırılabilir. Metilasyon heterojenliğini görselleştirmek için, tekil CpG bölgelerindeki metilasyon yoğunluğu kırmızı ile gösterilmiştir. Bu temsili bisülfit haritasında, bir örneğin yüksek verimli kantitatif metilasyon analizi sunulmaktadır.Sequenome epi typer teknolojisinin kullanımı, Şekil 5 A'da gösterildiği gibi, metillenmiş sitozinlerin varlığına bağlı olarak spesifik bir spektrum oluşturabilir. Örnekteki oranların özeti daha sonra bir epigrama (Şekil 5 B) dönüştürülebilir. Bu örnek, dört farklı hücre hattı için her bir CpG bölgesindeki DNA metilasyon yüzdesini göstermektedir. Son olarak, geliştirilen epigramdan bir metilasyon grafiği özeti (Şekil 5 C) elde edilebilir. Bu teknik, epigenetik alanındaki araştırmacıların DNA metilasyonunu ve bunun insan hastalıklarındaki rolünü keşfetmelerinin önünü açmıştır.

dna-methylation-bisulphite-modification-and-analysis

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Erken yaşam stresinin üzerine DNA metilasyon ve gen ekspresyon değişiklikleri incelemek için bir iş akışı gösterilir. Yeni doğmuş farelerin ve ayrık beyin dokularında izolasyonu anneden ayrılma başlayarak, eş zamanlı olarak izleyen bisülfit sıralama ve RT-PCR analizi için beyin dokusu yumruklar DNA ve RNA izole etmek için bir protokol temsil eder.

Beyin Küçük, Anatomik tanımlı alanları DNA metilasyon ve Gen İfade Optimize Analizi

Bu video, gastrointestinal kanser örneklerinden genomik DNA'nın bisülfit modifikasyonu prosedürünü göstermektedir. Teknik, genlerin metilasyon paternleri arasındaki ilişkiyi araştırmak ve karsinogeneze katkılarını belirlemek için faydalıdır.

Genomik DNA'nın Bisülfit Dönüşümü: Gastrointestinal Kanser Dokusundan Alınan Genomik DNA Örneklerinde DNA Metilasyonunu İncelemek İçin Bir Yöntem

Geliştirilmiş İndirgenmiş Temsil Bisülfit Dizileme, sitozin bisülfit dönüşümü ile birleştirilmiş restriksiyon enzim sindirimine dayalı DNA metilasyon analizi için dizileme kitaplıklarının hazırlanması için bir yöntemdir. Bu protokol 50 ng başlangıç materyali gerektirir ve GC açısından zengin genomik bölgelerde baz çifti çözünürlük verileri verir.

Baz Çifti Çözünürlük DNA metilasyon Değerlendirme Temsil bisülfit sıralamayı İndirimli pekiştirilmiş

Bisülfit amplikon dizilemesi (BSAS), hedeflenen genomik ilgi bölgelerinde sitozin metilasyonunu ölçmek için bir yöntemdir. Bu yöntem, baza özgü bir seviyede DNA metilasyonunun mutlak kantitasyonunu üretmek için yeni nesil dizilemeden önce hedef bölgelerin PCR amplifikasyonu ile eşleştirilmiş bisülfit dönüşümünü kullanır.

DNA Metilasyon Analizi nesil Dizilimine tarafından hedef

Burada bir protokol Metil-Bağlama DNA Yakalama sıralama (MBDCap seq veya MBD-seq) teknolojisi ve sonraki biyoinformatik analiz boru hattı kullanılarak büyük ölçekli klinik hasta tarama çalışmalarında genom DNA metilasyonu araştırmak için sunuyoruz.

Hasta Dokularda metil-bağlayıcı DNA yakalama Dizi

Bu çalışma, kronik lenfositik lösemi (KL) hastalarında farklı şekilde metilasyona uğramış CpG bakımından zengin bölgelerin tanımlanması için optimize edilmiş bir metil-CpG-bağlanma alanı (MBD) sıralama protokolünü ve bir hesaplama hattını açıklamaktadır.

Kronik Lenfositik Lösemi Hastalarında Metil-CpG-Bağlayıcı Alan Yakalamaya Dayalı Bir Yöntem Kullanarak Kapsamlı DNA Metilasyon Analizi

Yeni 5-metilsitozin (oksi-mCs), 5-arasında bakterilerde görülen (5hmC), 5-formylcytosine (5 fC) oksitlenmiş formları bulunan ve 5-carboxylcytosine (5caC) farklı DNA değişiklikleri benzersiz işlevsel roller ile temsil edebilir. Yarı nicel bir iş akışı görselleştirme oksi-mCs kayma dağıtım, sinyal şiddeti profil oluşturma ve colocalization için burada kullanılmıştır.

DNA değişiklikler için Immunostaining: Confocal görüntülerin sayısal analiz

Burada, mitokondriyal DNA (mtDNA) metilasyon doğru miktar bir iletişim kuralını mevcut. Bu protokol için bir enzimatik sindirim DNA BamHI tahmindi mtDNA metilasyon düzeyi mtDNA ikincil yapı tarafından neden önlemek için kullanılan bioinformatic analiz boru hattı ile birleştiğinde ile açıklanmaktadır.

Mitokondrial DNA metilasyonu doğru algılanması için metodoloji

Bu çalışma, mikroarray teknolojileri tarafından elde edilen DNA metilasyon verilerini yönetmek için iş akışını açıklamaktadır. Protokol, numune hazırlamadan veri analizine kadar olan adımları gösterir. Tüm prosedürler ayrıntılı olarak açıklanmıştır ve video önemli adımları göstermektedir.

DNA Metilasyonunun Biyoinformatik Analizine Örnek Hazırlama: Obezite ve İlgili Özellik Çalışmaları için Dernek Stratejisi

PDMS Cihaz İmalat ve Yüzey Modifikasyonu

Öğrenin, bisülfit dönüşümü ve PCR ile CPG dinükleotitlerinde DNA metilasyon analizi yapmayı. Bu yöntem, tek nükleotid çözünürlüğünde epigenetik araştırmalar için kanser gibi hastalıklarda gen düzenlemesini incelemeye olanak tanır.

DNA Metilasyonu: bisülfit modifikasyonu ve Analiz

Daha fazla video keşfet