Name: Memeli Hücreler, Hücre Döngüsü Pozisyon Analizi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 19 s
Description: Öğrenin, memeli hücrelerde BRDU ve propidyum iyodür boyama ile akış sitometrisi kullanarak hücre döngüsü fazlarını belirleme yöntemini. Bu protokol, hücre proliferasyonunun nicel analizini sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Kanada Sağlık Araştırmaları (CIHR) ve kendi laboratuvarında hücre döngüsü araştırma fonu için Kanada Kanser Derneği Enstitüleri teşekkür etmek istiyorum. MJC MD / Doktora burs CIHR bir alıcı. MJC ve MA CaRTT eğitim programının üyeleri.

1. Etiketleme ve hücre sabitleme <ol><li> Hücre Çoğalması Etiketleme Reaktif (BrdU) başına ml (1 1000 seyreltme) 1 saat hücre kültürü orta hasat öncesi 1 mcL ekleyin. Etiketleme dönemi yavaş büyüyen hücreler için uzatılmış gerekebilir. </li><li> Hasat hücrelere aspirat kültür ortamı ve fosfat ile iyice yıkayın tamponlu salin (PBS). Orta iyice izlerini silmek için tekrarlayın. </li><li> PBS 3mm EDTA içeren hızlı bir şekilde üçüncü kez kültürlerin yıkayın ve iyice aspire. </li><li> Her çanak 3mm EDTA içeren PBS küçük hacimli, 0.5 ml 6 cm çanak için idealdir. 22 ° C hücreleri ayırmak için yaklaşık 5 dakika inkübe edin. 15 ml konik boru transfer. </li><li> Santrifüj hücreleri, pelet için 5 dakika için 500 xg'de süpernatant kaldırmak ve iyice PBS 100 mcL tekrar süspansiyon haline getirin. </li><li> 5 ml,% 95 EtOH, damla damla ekleyerek karıştırın ise hücreleri saptamak. Bu aşamada, hücreler için en az 4 ° C'de saklanıray. </li></ol> 2. BrdU ve DNA denatüre ve boyama <ol><li> Pelet hücreler 5 dakika boyunca 500 xg'de hücreleri Santrifüj ve% 95 EtOH çıkarın. 1 ml 2N HCl ve% 0.5 Tx-100 vorteks ederken bir damla bilge moda ekleyerek yeniden süspanse edin. 30 dakika oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Bölüm 2.1 'de daha önce olduğu gibi santrifüj ve hücrelerin bu aşamada çok gevşek bir granüle beri dikkatle supernatant aspire. 0.1M NAB 4 O 7 (pH 8.5) 1 mL yavaşça tekrar süspansiyon ve en az 30 dakika oda sıcaklığında inkübe. </li><li> Yukarıda bölüm 2.1 ve 0.5 mL (PBS% 1 BSA ve% 0.2 Tween-20 içeren) fare anti-BrdU antikorlar ile antikor çözüm olarak tekrar süspansiyon Pelet hücreleri 50 1 sulandırılmış. 30 dakika oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Pelet hücreleri tekrar FITC için konjuge tavşan anti-fare sekonder antikor antikor çözüm içeren 50 ml içinde tekrar süspansiyon 25 1 sulandırılmış. 30 dakika boyunca inkübeMasaüstü ve ışıktan korumak. </li><li> Santrifüj hücreleri son kez tekrar süspansiyon propidium iyodür ve RNaz solüsyonu (% 1 BSA ile PI-RNAse çözümü, PBS, 10 mg / ml propidium iyodür, 0.25 mg / ml RNaz A) 0,5 mL ve 37 karanlıkta inkübe ° 30 dakika C Alternatif RNA gece 4 sindirilemez ° C karanlıkta. </li><li> Agrega kaldırmak ve akış sitometresinin örnek alımı için uygun bir tüp içinde tek hücre toplamak için çözüm bir hücre süzgecinden geçirin. Yine örnekleri gün ışığına doğrudan maruz korunmalıdır. </li></ol> 3. Flow sitometri analizi <ol><li> Hücreler propidium iyodür ve FITC için uygun algılama yeteneğine sahip çiftlerin (biri olarak akış hücresi geçmesi iki hücre) karşı ayrımcılık yapan, standart bir akış sitometresinde analiz edilmelidir. Tek hücreleri forward scatter ve yan dağılım pop dayalı etkinlikler için bu akış sitometri uygulaması gating ile tespit edilebilirulations ve propidium iyodür DNA boyama özelliklerini kullanarak. Giyilen erkek yeleği ayrımcı bir nokta komplo görünümünü akış sitometrelerinde propidium iyodür boyama özelliklerini dayanır arasında değişir, giyilen erkek yeleği discriminator analizi kurma hakkında bilgi için yerel flow sitometri tesisi bakın. Genel olarak, bir hücre eşzamansız hızla çoğalan nüfus, tek hücreler genellikle elektronların ikili ayrımcı arsa içinde en bol bulunan iki tepeler (2N ve 4N DNA) ve bir kapı çevrelerindeki çizilmelidir. Bu, aşağıdaki tüm sonraki analiz için kullanılan tek hücreli olayları seçin. </li><li> Ilk numune analiz edilecek boyama ve akış sitometresi set-up için pozitif bir kontrol olarak hizmet veren bir eşzamansız prolifere kültür olmalıdır. Tekli hücrelerin 2N ve 4N doruklarına X ekseni üzerinde 200 ve 400 (keyfi birimleri) merkezli olduğunu propidium iyodür boyama photomultiplier tüplerin hassasiyetini ayarlayın. Biz genellikle bol s lekeBu örnek kullanmadan akış sitometresinin tüm parametreleri uygun şekilde ayarlanmış olması sağlamak için bu hücrelerin upply. Bu pozitif kontrol yeni kullanıcılar akış sitometresinin operasyon daha aşina olmak için de yararlı olur. </li><li> G1 ve G2 / M popülasyonları arka plan üstünde olduğunu FITC tespiti için photomultiplier tüp hassasiyetini ayarlayın. BrdU pozitif hücrelerin yaklaşık 10 kat daha parlak ve Y ekseni logaritmik bir ölçek olarak gösterilmesi gereken yapılmalıdır. Bu olumlu boyanan hücreler açıkça ayırt BrdU boyama için bir negatif kontrol (non-spesifik IgG ile anti-BrdU antikorlar yukarıda 2.3 adımda değiştirerek) dahil etmek için bazen yararlı olabilir. </li><li> Alt G1 akış sitometresinin formu, bir at nalı şeklinde yay tarafından yakalanan tek olaylar S-faz kadar sol ve aşağı G2 / M için sağ alt propidium iyodür ve FITC arasındaki tazminat ayarlayın Derinlik dis daha fazla bilgi için aşağıdaki referans bakınızorada özel uygulamalar için 2 flow sitometri ve referanslar ilkeleri ve kullanım cussion. </li></ol> 4. Veri analizi <ol><li> 5 000 10 000 DNA içeriği istenen aralık tek bir hücre olayları hücre kültürü nüfus iyice örneklenmiş olduğunu güven için, her bir örnek için alınmalıdır. </li><li> Hücreleri G1, S veya G2 / M aşamalarında atanmış olması gerekir propidium iyodür ve BrdU içerik için ölçülmüştür. Yaklaşık 200 ve 400 (sırasıyla G1 ve G2 / M) merkezli iki BrdU negatif popülasyonları kapıları çizerek bunu yapın. S-faz (Şekil 1A) ölçen bir tek kapısı bu kutuları üzerinde her şey dahil edilmelidir. Her kapı hücrelerin yüzdesi G1, S ve G2 / M (Şekil 1B) hücrelerin göreli sayısını temsil eder. </li></ol> 5. Alternatif, hücrelerden oluşan bir karışık bir nüfus hücre döngüsü analizi için protokol <ol><li> Bu alternatif bir protokoldüren yararlı zaman hücre saf bir nüfusu belirlemek için ilaç tedavisi pratik ifade vektörlerin transfeksiyon rutin ilgi gen ürünü eksprese eden hücrelerin düşük bir yüzde ile sonuçlanır. Büyük bir nüfus ile kontamine olan ilgi hücreleri nispeten küçük bir oranı bu sonuçlar hücreleri untransduced. Bu durumda, gen ya da ilgi shRNA ifade CD19 4 veya GFP 3 demirlemiş bir zar gibi flow sitometri, veya yabancı bir hücre yüzey işaretleyici transfekte hücreler tespit için bir işaretleyici ifade eden bir plazmid ile birlikte eş-transfect plazmid CD20 5. </li><li> Bu protokolün amaçları için bir örnek olarak CD20 boyama Ancak, CD19 için boyama özünde aynıdır. CD20 ile transfeksiyon durumunda, BrdU etikete gerek yoktur, sadece 20 mcL FITC konjuge anti-CD20 antikorları i hücreler ekleyerek yukarıdaki adımları 1.2 1.5 açıklanan ve leke gibi hasat hücrelerice için 20 dakika karanlık. Adım 1.6 'da açıklandığı gibi hücreler Fix. Hücreler tekrar 4 en az bir ay boyunca saklanabilir ° C karanlıkta. GFP tespiti için, bu adımı ve düzeltmek antikor boyama atlarsanız açıklandığı gibi hücreleri saklamak. </li><li> 5 dakika boyunca 500 xg'de santrifüj pelet ve 5 ml PBS% 1 BSA içeren resuspending Re-hidrat hücreleri. </li><li> Propidium iyodür ve RNaz çözüm bölüm 2,5 yukarıda açıklandığı gibi 0,5 mL 5 dakika tekrar süspansiyon hücreleri için 500 xg'de Re-pelet hücreleri. </li><li> 3.1 ve 3.2 'de 2.6 ve analiz talimatları hücre hazırlama talimatları izlemeye devam edin. </li><li> Photomultiplier tüp lekesiz hücrelerin arka plan üstünde olduğunu FITC algılama hassasiyetini ayarlayın. İdeal olarak, CD20-FITC pozitif hücrelerin arka plan daha 100X daha yoğun lekeli 10X olacak ve bu komplo Y ekseni logaritmik ölçek olarak gösterilir (Şekil 2A) olmalıdır. Backg daha 10X parlak CD20 pozitif hücrelerinŞekil olarak yuvarlak (200 ve 400 yılları arasında propidium iyodür boyama) histogram propidium iyodür karşı hücre sayıları görüntülemek için seçilmiş olmalıdır. 2C. CD20 pozitif cut-off kolayca 10X planda olmalıdır (100X arka plan yukarıda yani 10X) parlak lekeli belirteçler ifade hücre hatları için. Ilgi genin de bu hücrelerin zayıf bir ifade, çünkü zayıf boyama hücrelerinin alınması, muhtemelen bu deneyler değişkenlik artar. Sadece zayıf lekeli CD20 pozitif (10X arka plan daha az yani), verim hücre hatları kesti belirlenmesi CD20 lekeli, untransfected hücreleri oluşan bir negatif kontrol kullanılarak yapılmalıdır. </li><li> En az 1000 CD20 pozitif olayların, her bir numune için alınmalıdır. 1000 olaylarının daha az olduğu deneyler yüksek değişkenlik üretecektir. ModFit LT (Verity Yazılımı), Çoklu Çevrim AV (Phoenix Akış Sistemleri) ve Akış Jo (Ağaç Star) gibi yazılım paketleri matematiksel tahminleriŞekil gibi histogramlar eğrinin şekline katkıda bulunan G1, S ve G2 / M popülasyonları. 2B ve C </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar: Biz üç örnek yaklaşımlar kullanılarak deneysel hücre döngüsü analizleri sunuyoruz. Ilk fare embriyonik fibroblastlar siklin bağımlı kinaz inhibitörü p27KIP1 retroviral bir ifade kullanır. Viral enfeksiyon için ilaç seçimi tam yirmi dört saat sonra, hücreler, bir saat için nabız BrdU ile etiketli. Bu deneyde inhibitörü ektopik ifade hücrelerin yayılması (Şekil 3A ve B) tutuklamak için kullanılır. Şekil. 3B küçük BrdU pozitif olayların p27 yanıt S-faz kapı açıktır. Aynı şekilde, Şekil diagramed olarak p27 ifade hücreler için S-faz hücre yüzdesi oldukça düşüktür. 3C. Bu tip analizler g çeşitli suşları türetilmiş hücre hücre döngüsü kontrol kusurları karakterize çok etkili olmuşturfarelerin 6, 7, 8 ene hedefli. İkinci deneyde, 24 saat boyunca büyüme faktörü beta (TGF-β1) dönüştürerek, araştırıcıların bulgularıyla meme epitel hücreleri (MCF10A) büyüme inhibitör sitokin ile tedavi edildi. Hücreler dört saat boyunca hemen önce hasat BrdU ile etiketlenmiş. Şekil. TGF-β1 sinyal S-faz hücreleri (4) BrdU etiketleme büyük ölçüde azalır, bizim boyamanın özgüllüğü de IgG negatif kontrol (Şekil 4C) ile doğrulanır. Hücre döngüsünün farklı aşamalarında Niceleme bu TGF-β1, öncelikle bu aşamada bir birikimine yol açan hücre siklusunun G1 fazında proliferasyonunu inhibe onaylar. En son örnek, pRB eksik Saos-2 hücrelerinin CMV CD20 ekspresyon vektörü ve CMV-RB veya kontrol olarak CMV-β-Gal ya transfekte. Transfeksiyon hücreleri izleyen üç gün, hasat, lekeli, ve fikse edildi. Bu hücre Flow sitometri analiziŞekil. 5. Bu negatif kontrol transfekte hücreler (Şekil 5A) 72 saat pRB ifade dağılımı (Şekil 5B) ile karşılaştırıldığında, hücre döngüsü dağılımı göstermektedir. Çoklu Döngü yazılım tarafından eğri uydurma sonra, hücre döngüsü evreleri oranının doğrudan bir karşılaştırma Şekil. 5C. Bu, hücrelerin G1 aşağıdaki pRB ifade S ve G2 / M evreleri hücrelerinin birikimi ve göreli tükenmesi ortaya koymaktadır. Biz G1 tutuklama mekanizmalarının yaygın olarak 9, 10, 11, 12, 13 prob Bu testte kullanılan varyasyon var. Bu örnekler, hücre döngüsü kontrolü, çeşitli uyaranlar veya hücre manipülasyonlar yanıt nasıl ölçülebilir göstermektedir. Bu yaklaşım, bu nedenle kültür tip deneylerde hücre döngüsü pozisyonu ölçümü gerektiren pek çok uygulama için adapte edilebilir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3491/3491fig1.jpg"> Şekil 1. Quantithücre döngüsü aşamalarında kombine propidium iyodür ve BrdU boyama (PI-BrdU) tarafından ation. (A) Bu panel, üç boyutlu propidium iyodür ve BrdU boyanan hücrelerin flow sitometri görüntüler. 2N ve 4N DNA içeriği ile hücreleri propidium iyodür boyanması yoğunluğu için 200 ve 400 X ekseni ölçekte işaretleri üzerinden merkezli olduğunu unutmayın. BrdU boyanma yoğunluğu Y ekseni bir logaritmik ölçekte ölçülür. , Hücrelerin, hücre döngüsü G1, S ve G2 / M aşamalarında ölçmek için kullanılabilecek kapılarının konumu unutmayın. (B) A G1, S ve G2 / M kapılarının her hücre oranı bu grafik üzerinde gösterilmiştir. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3491/3491fig2.jpg"> Şekil 2 propidium iyodür ve hücre yüzey belirteci CD20 kullanarak seçili hücrelerin hücre döngüsü evreleri kantitasyonu. (A) Bu panel propidium iyodür ve hücrelerden oluşan bir karışım için CD20 boyanma gösterir, bazıları ektopik CD20 ve pRB ifade. Not hücrelere2N ve 4N DNA (en bol bulunan nüfus) X ekseni üzerinde 200 ve 400 işaretleri üzerinden ortalanır. CD20 + kapısının konumu, arka planda en az 10 kat daha parlak bir lekeli hücreleri seçer. (B) propidium iyodür boyama karşı hücre sayıları bir grafik bir eşzamansız yaygınlaşması panel CD20 negatif hücreler için gösterilmiştir. (C) benzer bir grafik panelinden CD20 pozitif hücreler için gösterilen pRB ifade ile tutuklama öncelikle 2N DNA içeriği ile hücreleri içeren ve ikna edilmiştir. Bu tutuklandı alt nüfus bu boyama tekniği kullanarak bu kültürün diğer hücrelerden ayırt edilebilir olduğunu göstermektedir. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3491/3491fig3.jpg"> Şekil 3, p27KIP1 tarafından hücre proliferasyonu inhibisyonu . (A) PI-BrdU analizi, boş bir pBABE retroviral vecto transduced hücrelerin bir eşzamansız hızla çoğalan nüfus hücre döngüsü aşamaları ölçmek için kullanılanr. (B) hücrelerin benzer bir analizi pBABE-p27 ile transduced. S-faz ve G1 ve G2 / M kapıları olayların büyük yoğunluğu hücre olmadığına dikkat edin. (C) eşzamansız kontrolü ve p27 ifade hücreleri prolifere hücre döngüsü ilgili aşamalarında hücreler kantitasyonu. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/3491/3491fig4.jpg"> Şekil 4, TGF-β1 hücre proliferasyonu inhibisyonu eşzamansız MCF10A hücreleri prolifere olan (A) PI-BrdU analizi . 24 saat boyunca 100 pM TGF-β1 ile muamele edilen hücreler (B) Analiz. Öncelikle hücre siklusunun G1 fazında hücre birikimi unutmayın. (C) eşzamansız hızla çoğalan hücreleri non-spesifik IgG kontrolü ile anti-BrdU primer antikor yerine BrdU boyama onaylanması. (D) Grafik ilgili hücre döngüsü aşamalarının kantitatif A ve B. <img alt="Şekil 5" src="/files/ftp_upload/3491/3491fig5.jpg"> Şekil 5 pRB hücre proliferasyonu inhibisyonu. (A) CD20 propidium iyodür boyama ve ß-gal transfekte hücreler karşı Hücre sayıları gösterilmiştir. Transfekte alt nüfus için uygun olmayan bir kontrol olarak transfeksiyon kısmen untransfected nüfus (hücreler CD20) render, hücreleri senkronize olarak bu önemli bir kontrol. Transfekte hücreler diğer analog transfekte hücreleri ile karşılaştırıldığında gerekir. (B) Hücre sayımları karşı CD20 ve pRB propidium iyodür grafik hücreleri transfekte. 2N bir tepe neredeyse tek varlığı unutmayın. (C) Çoklu Döngü yazılım eğri uydurma yöntemleri kullanılarak A ve B hücre döngüsü faz oranlarda grafiksel gösterimi belirlenir.

<ol><li>Dolbeare, F., Gratzner, H., Pallavicini, M. G., Gray, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometric+measurement+of+total+DNA+content+and+incorporated+bromodeoxyuridine%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Flow cytometric measurement of total DNA content and incorporated bromodeoxyuridine.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 80, 5573-5573 (1983).</li>
<li>Givan, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometry%3A+an+introduction%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Flow cytometry: an introduction.</a> Methods. Mol. Biol. 699, 1-1 (2011).</li>
<li>Kalejta, R. F., Brideau, A. D., Banfield, B. W., Beavis, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+integral+membrane+green+fluorescent+protein+marker%2C+Us9-GFP%2C+is+quantitatively+retained+in+cells+during+propidium+iodide-based+cell+cycle+analysis+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Cell.+Res%22%5BJournal%5D)">An integral membrane green fluorescent protein marker, Us9-GFP, is quantitatively retained in cells during propidium iodide-based cell cycle analysis by flow cytometry.</a> J. Exp. Cell. Res. 248, 322-322 (1999).</li>
<li>Qin, X. -Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+transcription+factor+E2F-1+is+a+downstream+target+of+RB+action%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">The transcription factor E2F-1 is a downstream target of RB action.</a> Molecular and Cellular Biology. 15, 742-742 (1995).</li>
<li>van den Heuvel, S., Harlow, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+roles+for+cyclin-dependent+kinases+in+cell+cycle+control%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Distinct roles for cyclin-dependent kinases in cell cycle control.</a> Science. 262, 2050-2050 ( ).</li>
<li>Henley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+cancer+derived+mutation+in+the+retinoblastoma+gene+with+a+distinct+defect+for+LXCXE+dependent+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell.+Int%22%5BJournal%5D)">A cancer derived mutation in the retinoblastoma gene with a distinct defect for LXCXE dependent interactions.</a> Cancer Cell. Int. 10, 8-8 (2010).</li>
<li>Francis, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+functional+connection+between+pRB+and+transforming+growth+factor+beta+in+growth+inhibition+and+mammary+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">A functional connection between pRB and transforming growth factor beta in growth inhibition and mammary gland development.</a> Mol. Cell. Biol. 29, 4455-4455 (2009).</li>
<li>Isaac, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+retinoblastoma+protein+regulates+pericentric+heterochromatin%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">The retinoblastoma protein regulates pericentric heterochromatin.</a> Mol. Cell. Biol. 26, 3659-3659 (2006).</li>
<li>Julian, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+an+E2F1-specific+binding+domain+in+pRB+and+its+implications+for+apoptotic+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Characterization of an E2F1-specific binding domain in pRB and its implications for apoptotic regulation.</a> Oncogene. 27, 1572-1572 (2008).</li>
<li>Hirschi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+overlapping+kinase+and+phosphatase+docking+site+regulates+activity+of+the+retinoblastoma+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Struct.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">An overlapping kinase and phosphatase docking site regulates activity of the retinoblastoma protein.</a> Nat. Struct. Mol. Biol. 17, 1051-1051 (2010).</li>
<li>Dick, F. A., Dyson, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((pRB+contains+an+E2F1-specific+binding+domain+that+allows+E2F1-induced+apoptosis+to+be+regulated+separately+from+other+E2F+activities%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">pRB contains an E2F1-specific binding domain that allows E2F1-induced apoptosis to be regulated separately from other E2F activities.</a> Mol. Cell. 12, 639-639 (2003).</li>
<li>Dick, F. A., Sailhamer, E., Dyson, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutagenesis+of+the+pRB+pocket+reveals+that+cell+cycle+arrest+functions+are+separable+from+binding+to+viral+oncoproteins%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Mutagenesis of the pRB pocket reveals that cell cycle arrest functions are separable from binding to viral oncoproteins.</a> Mol. Cell. Biol. 20, 3715-3715 (2000).</li>
<li>Dick, F. A., Dyson, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three+regions+of+the+pRB+pocket+domain+affect+its+inactivation+by+human+papillomavirus+E7+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Three regions of the pRB pocket domain affect its inactivation by human papillomavirus E7 proteins.</a> J. Virol. 76, 6224-6224 (2002).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa etmek başka bir şey var.

Deneyimlerimize göre, bu tekniklerin başarısı birkaç önemli kontrol ve deneysel koşullara bağlıdır. Bir bu deneylerde kullanılmak üzere bir eşzamansız prolifere kontrol kuruyor. Bu kontrol üç önemli amaca hizmet eder. Öncelikle, tüm deneysel numuneler için kullanılan kültür koşullarında tedavi yokluğunda sürekli çoğalması desteklemek için yeterli olmasını sağlar. Bu örnek, aynı zamanda ne zaman mevcut BrdU veya CD20 pozitif hücreler tespit edilebilir sağlamak için boyama metodolojisi için bir pozitif kontrol amacıyla hizmet vermektedir. Son olarak, bu örnek akış sitometresinin kalibre etmek için kullanılır. Bu kontrol numune sırasıyla 200 ve 400 2N ve 4N hücreleri algılamak için propidium iyodür boyama yoğunluğunu ayarlamak için kullanılabilir. Ayrıca, negatif ve pozitif sinyaller Şekil 1A ve 2A gösterilen merkezli böylece BrdU veya CD20 algılama hassasiyeti ayarlanabilir. Tüm örnekler PI-R hücrelerin benzer bir konsantrasyon varSonraki numunelerinin çalışılabilmesi Nase çözüm sitometresinin için birkaç ayarlama, daha sonra ihtiyaç vardır. Bu Şekil nedenlerden dolayı önemlidir. Güçlü G1 birikimi aslında G2 / M gibi yanlış anlaşılabilir tek bir G1 tepe oluşturur 4B ve 5B Temsilcisi deneyler de diğer önemli nokta olun. Her şeyden önce, onlar BrdU alımı ve etiketleme hücre türleri arasındaki farklılık göstermektedir. Bu nedenle ampirik nabız ve boyama koşullarına yeterince S-faz hücreleri algılamak için gerekli uzunluğunu belirlemek için önemlidir. Genel olarak, bir saat içinde 24 saat veya daha az kültür çift hücre tipleri BrdU ile etiketlenmiş olabilir. Yavaş büyüyen hücre tipleri antikor boyama koşulları ve süresi daha uzun bakliyat ve değişiklikler gerekebilir. MCF10A hücreleri, dört kat daha uzun süre için antikorların iki kez standart bir konsantrasyon ile dört saat ve lekeli BrdU ile etiketlenmiş olarak, bu konuda mükemmel bir örnek vardır. AraştırmacılarBrdU, bu yanlışlıkla S-faz nüfus G2 / M hücreleri dahil yol açabilir hatta çok yavaş büyüyen hücreleri ile etiketleme 6 saat aşmayacak şekilde dikkatli olmalıdır. İkincisi, TGF-β1 ile ifade p27KIP1 etkilerini karşılaştıran, TGF-β1 sinyalizasyon G1 tutuklama indükler p27 G1 veya G2 / M evreleri ya da bir birikimi neden olabilir açıktır. 3 H-timidin birleşme ve sintilasyon sayma gibi yayılması tespit geleneksel yöntemlerle bu olanakları ayırt etmek mümkün değildir. Bizim alternatif protokol hücrelerden oluşan bir alt-nüfus, büyük bir untransfected nüfus tespiti göstermektedir. Transfekte hücreleri tespit etmek için en uygun muhabiri ampirik olarak belirlemek için önemlidir. Bizim tecrübelerimize göre, bazı hücre tiplerinin ifade hücre yüzeyinde ya kötü belirteçleri veya plazma zarı düzgün trafik transfekte hücrelerini tespit etmek için bir yetersizlik değil. Likewise, tüm hücrelerin membran bağlı GFP formu tahammül edemez. Transfeksiyon muhabir verimliliği yanı sıra ifade untransfected kontroller ile karşılaştırıldığında göreli yoğunluğunu değerlendirerek, en uygun muhabiri seçimi yapılmalıdır. İdeal olan, bu moleküller heterolog ifade iyi tolere edilir ve bu belirteçler, hücre döngüsü dağıtım üzerinde hiçbir etkisi çok az olduğunu düşündüren olacaktır. Flow sitometri yaklaşımlar bu tür bir sınırlama sadece birbirlerine kıyasla göreceli hücre döngüsü evreleri bollukları kurmak mümkün olmasıdır. Bu nedenle, sadece S-faz göre bu aşamadan geçerek ilerlemesini yavaşlatır Şekil 3&#39;te ifade p27 gerçekten G1 ve G2 / M, bir tutuklama neden olur veya belirsizdir. Bu olasılıklar hücrelerin mitoz gibi nocodazole inhibitörü ya da aphidicolin gibi G1 / S inhibitörü ile paralel bir örnek tedavisinde daha fazla araştırılmalı. Bu ilaçların bir domina meydana getirdiğindennt tutuklama veya M-faz sırasıyla S-faz erken, yavaş hızla çoğalan hücreleri ilaca bağlı tutuklama noktada birikebilir. Kontrol hücreleri, M-faz 13 birikir G1 pRB ifadesi nedeniyle tutuklandı hücreleri nocodazole tedaviye rağmen G1 kalacaktır için . Birlikte ele alındığında, bu deneysel yaklaşımlar, memeli hücre döngüsü araştırma soruların geniş bir yelpazede uygulanabilen esnek bir yöntem sunar. Onlar kolayca hücre döngüsünün ilerlemesi değişikliklerini saptamak ve kontrol grubu ile karşılaştırıldığında farklılıklar ölçmek.

<table border="1"><tbody><tr><th> Reaktif / ekipman Adı </th><th> Şirket </th><th> Katalog numarası </th><th> Yorumlar (isteğe bağlı) </th></tr><tr><td> Hücre Çoğalması Etiketleme reaktif </td><td> GE Amersham </td><td> RPN201 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-BrdU Antikorlar </td><td> BD Biosciences </td><td> 347580 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Mouse FITC konjuge Antikorlar </td><td> Vektör Labs </td><td> FI-2000 </td><td></td></tr><tr><td> Hücre Gerinim Filtreler </td><td> BD Falcon </td><td> 352235 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-CD20 antikorlar </td><td> BD Biosciences </td><td> 347673 </td><td></td></tr><tr><td> Çok döngülü yazılım </td><td> Phoenix Akış Sistemleri </td><td> N / A </td><td></td></tr></tbody></table>

memeli hücreler, hücre döngüsü pozisyon analizi

Analysis of Cell Cycle Position in Mammalian Cells

Hücre proliferasyonu yönetmelik, çok hücreli organizmaların gelişimi sırasında doku morfolojilerinden merkezi. Ayrıca, hücre proliferasyonunu kontrol kaybı, kanser gibi hastalıkların patolojisi temelini oluşturmaktadır. Bunun gibi, hücre proliferasyonu araştırmak ve hücre döngüsünün her aşamasında hücrelerin oranını ölçmek için edebilmek için büyük bir ihtiyaç vardır. Bu daha büyük bir nüfus içindeki DNA kopyalayan hücreleri ayırt edilemez tanımlamak için de hayati önem taşımaktadır. Prolifere hücre karar G1 fazında DNA sentezi, hücre döngüsünün geri kalanında başlatılması ve ilerleyen hemen önce yapılmış olduğundan, bu aşamada DNA sentezi tespiti, hücre kültürü, büyüme yönetmelik durumu kesin bir kararlılık sağlar deneyler. Hücrelerin DNA içeriği kolayca propidium iyodür, floresan DNA intercalating boya ile boyanmış hücreler flow sitometri quantitated olabilir.Benzer şekilde, aktif DNA sentezi, hücrelerin hasat ve asitte çözünmeyen fraksiyonu içine dahil radyoaktivite ölçüm radyoaktif timidin varlığı hücreleri kültür quantitated olabilir. Biz hücre döngüsü analizi ile önemli bir uzmanlığa sahip ve farklı bir yaklaşım önermektedir. Biz bromodeoxyuridine / fluorodeoxyuridine (sadece BrdU olarak kısaltılır) bu timin analogları yakın zamanda sentezlenmiş DNA&#39;sına eklenmesi algılar boyama kullanarak hücre çoğalması araştırın. Etiketleme ve boyama, flow sitometri 1 propidium iyodür ve analizi ile toplam DNA boyama ile birlikte BrdU hücreleri, hücre döngüsünün çeşitli aşamalarında hücrelerin en doğru önlem sunuyor . Propidium iyodür toplam DNA içeriği ile BrdU antikor bazlı boyama yoluyla, aktif DNA sentezi algılama birleştirir çünkü bizim tercih edilen bir yöntemdir. Bu erken S fazı hücreleri G1 net bir ayrım ya da geç S, G2 / M faz sağlarAyrıca, bu yaklaşım, bu farklı hücre döngüsü aşamalarında progresyon yönetmelik, birçok farklı hücre uyaranlara ve farmakolojik ajanların etkilerini araştırmak amacıyla kullanılabilir. Bu yazıda kültür hücreleri yanı sıra, flow sitometri ile analiz, etiketleme ve boyama yöntemleri açıklanmaktadır. Ayrıca bu yöntem, büyüme, TGF-β1 gibi sitokinleri inhibe edici sinyaller ve siklin bağımlı kinaz inhibitörü olan p27KIP1 gibi proliferatif inhibitörlerinin etkilerini ölçmek için nasıl kullanılabileceği deneysel örnekler içerir. Biz aynı zamanda, daha büyük bir kültür içinde 5 hücrelerin bir alt nüfus hücre döngüsü pozisyon analizi için olanak tanıyan alternatif bir protokol içerir. Bu durumda, biz büyük ölçüde aynı kültürü untransfected hücreleri tarafından sayıca az bile retinoblastom geni ile transfekte hücrelerinde hücre döngüsü tutuklama tespit etmek için nasıl göstermektedir. Bu örnekler, DNA boyama birçok yol göstermek veflow sitometri kullanılan ve memeli hücre döngüsü kontrol temel soruları araştırmak için adapte edilebilir.

, Hücrelerden oluşan bir nüfus hücre döngüsü konumunun belirlenmesi, ya da sinyalleri çoğalması nasıl etkilediğini anlamak, bu protokolü kullanarak flow sitometri ile kolayca ölçülebilir. Biz hücreleri boyama ve hücre döngüsü konumlarını miktarının belirlenmesi için basit bir deneysel yaklaşım raporu.

Memeli Hücreler, Hücre Döngüsü Pozisyon Analizi

Hücre proliferasyonunun düzenlenmesi, çok hücreli organizmaların gelişimi sırasında doku morfogenezinin merkezinde yer alır. Ayrıca, ... kontrolünün kaybı...

Bu prosedürün amacı, hücre döngüsünün farklı evrelerindeki hücre oranını belirleyebilmektir. Bu işlem, önce yeni sentezlenen DNA'ya dahil edilmesi için canlı bir hücre kültürüne hücre proliferasyonu etiketleme reaktifi BRDU eklenmesiyle, ardından reaktifleri dahil etmiş hücrelerdeki BRDU'nun boyanmasıyla ve sonrasında DNA'nın propidyum iyodür ile boyanmasıyla gerçekleştirilir. Son adım, hücre döngüsünün farklı evrelerindeki hücre oranının akış sitometrisi ile değerlendirilmesidir.Nihayetinde, bir deney hücresi popülasyonunun hücre döngüsü dağılımı, BRDU ile işaretlenmiş hücrelerin akış sitometrik analizi aracılığıyla görselleştirilebilir. Bu tekniğin, tritiyumlu timidin inklüzyonu ve sintilasyon sayımı gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, BRD işaretlemesi ile her bir hücre döngüsü evresindeki hücre oranının belirlenebilmesidir. Bu konunun görsel olarak gösterilmesi kritiktir; zira beraberindeki farklı parametrelerin ayarlanmasına yönelik görüntüler olmadan, sitometrik analiz setini açıklamak zordur.Prosedürü, laboratuvarımdan iki lisansüstü öğrenci olan Matt Chii ve ben Miri göstereceğiz. Deneysel hücre kültürlerine 1/1000 dilüsyonunda BRDU ekleyin, hücreleri toplamak için bir saat inkübe edin, kültür ortamını aspire edin ve ardından ortamın tüm kalıntılarını temizlemek için hücreleri iki kez PBS ile iyice yıkayın. Bu kez 3 mM EDTA ile desteklenmiş PBS kullanarak kültürleri hızlıca bir kez daha durulayın ve ardından hücreleri ayırmak için PBS-EDTA çözeltisini tamamen aspire edin.Her bir altı santimetrelik kültür kabına yaklaşık 0.5 mililitre PBS-EDTA ekleyin ve kapları 22 °C'de yaklaşık beş dakika inkübe edin. Ardından, her plaktaki hücre kültürlerini ayrı 15 mililitrelik konik tüplere aktarın. Hücreleri oda sıcaklığında, 500 ×g hızda beş dakika boyunca santrifüjleyin, ardından süpernatantı uzaklaştırın ve hücreleri 100 µL PBS içerisinde yeniden süspande edin.Son olarak, vorteksleme eşliğinde beş mililitre %95 ethanol'ü damla damla ekleyerek hücreleri fikse edin ve hücreleri oda sıcaklığında beş dakika boyunca 500 ×g kuvvetinde santrifüjleyin. Ethanol'ü tekrar uzaklaştırın ve çözeltiyi vorteksleme eşliğinde damla damla ekleyerek peleti %0,5 Triton X 100 içeren bir mililitre 2N HCl içerisinde yeniden süspanse edin; ardından hücreleri oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edin. Hücreleri tekrar çöktürdükten sonra, hücrelerin bu adımda çok gevşek bir pelet oluşturduğuna özellikle dikkat ederek süpernatantı aspire edin.Ardından, pelletini nazikçe 1 mL 0,1 molar sodyum tetraborat içerisinde yeniden süspande edin ve hücreleri tekrar inkübe edin. Şimdi hücreleri bir kez daha pelletleyin ve bu kez onları, 1:50 oranında seyreltilmiş mouse anti-BRDU antikorları içeren 0,5 mL antikor çözeltisinde inkübe edin. Hücreleri tekrar pelletledikten sonra, bu pelleti 1:25 oranında seyreltilmiş rabbit anti-US ZI konjuge ikincil antikorlar içeren 50 µL antikor çözeltisinde yeniden süspande edin.Ardından hücreleri oda sıcaklığında 30 dakika boyunca karanlıkta inkübe edin. Hücreleri son kez santrifüjledikten sonra, 0,5 milliliters propidium iodide ve RNA çözeltisi içinde 37 degrees Celsius'de 30 dakika boyunca karanlıkta inkübe edin. Son olarak, agregatları uzaklaştırmak için sindirilmiş hücre çözeltisini bir hücre süzgecinden geçirin.Ardından, gösterilen örneğe benzer asenkron şekilde çoğalan hücre popülasyonları için tek hücreleri, akım sitometresinde örnek alımına uygun bir tüpe aktarın. Bu örnekte, sonraki tüm analizler için tek hücre olaylarını seçmek amacıyla, dublet ayırma grafiğindeki en bol bulunan iki pikin etrafına bir kapı (gate) yerleştirin. Daha sonra, boyama ve akım sitometre parametre kurulumu için pozitif kontrol görevi görmesi amacıyla asenkron şekilde çoğalan bir kültür örneğini analiz edin.Propidium iyodür boyaması için fotomultipli katodun hassasiyetini, tek hücrelerden gelen 2N ve 4N pikleri x ekseninde 200 ve 400 gelişigüzel birimlerine merkezlenecek şekilde ayarlayın. Ardından, FXI negatif hücrelerin arka plan seviyelerinin üzerinde olması için FXI tespit fotomultipli katodun hassasiyetini ayarlayın. BRDU pozitif hücreler yaklaşık 10 kat daha parlak olmalı ve x ekseni logaritmik ölçekte görüntülenmelidir.Akım sitometresi tarafından yakalanan tekil olaylar, sol alttaki G1 fazından S fazına ve ardından sağ alttaki G2 M fazına kadar uzanan at nalı şeklinde bir yay oluşturur. Bu temsilci şekilde görüldüğü gibi, istenen DNA içeriği aralığına ulaşmak için 5.000 ila 10.000 tekil hücre olayı toplayın. Propidyum iyodür ve BRDU içerikleri ölçüldükten sonra; G1 için 200 ve G2 M için 400 merkezli iki BRDU negatif popülasyonun etrafındaki kapılarla hücreleri G1, S veya G2 M fazlarına atayın. Bu iki kutunun üzerindeki tüm olayları S-fazını ölçmek için tek bir kapıya dahil edin; her bir kapıdaki hücrelerin yüzdesi, önceki saçılım grafiği şekli için burada bu sütun grafiğinde gösterildiği gibi G1, S ve G2 M fazlarındaki hücrelerin göreceli sayısını temsil edecektir.Bu örnekte ilgilenilen hücre belirteci olan CD 20 için boyama yaptıktan sonra, hücreleri 22 °C'de 10 dakika boyunca 500 ×g'de santrifüjleyin ve ardından çökeleği %1 BSA ile desteklenmiş 5 mL PBS içinde yeniden süspande edin. Hücreleri oda sıcaklığında beş dakika boyunca 500 ×g'de tekrar çöktürdükten sonra, hücreleri rehidrate etmek için 0,5 mL propidyum iyodür ve RNA çözeltisi kullanın. Ardından hücreleri boyayın ve sindirin; şimdi 2n ve 4n tek hücre piklerini kapılayın ve ardından boyanmamış hücreler arka plan seviyelerinin üzerinde olacak şekilde FXI deteksiyonu için fotomultiplier tüpün hassasiyetini ayarlayın.İdeal olarak, CD 20 FXI pozitif hücreler, arka plandan 10 ila 100 kat daha yoğun boyanmış olacaktır. Yine, x ekseni logaritmik ölçek olarak görüntülenmelidir. Son olarak, arka plan seviyelerinden 10 kat daha parlak olan ve propidyum iyodür boyanması 200 ile 400 arasında olan CD 20 pozitif hücreleri, buradaki örnek şekilde gösterildiği gibi propidyum iyodür ile hücre sayıları histogramında görüntülemek üzere seçin; bu şekildeki değişkenliği sınırlamak için her örnek için en az 1000 CD 20 pozitif olay toplayın.Propidyum iyodür ve BRDU ile boyanmış hücrelerin üç boyutlu akış sitometrik analizi gösterilmektedir. 2n ve 4n DNA içeriğine sahip hücrelerin, X ekseni ölçeğindeki 200 ve 400 işaretlerinin üzerinde merkezlendiğine dikkat ediniz. Propidyum iyodür boyama yoğunluğuna karşı, BRDU boyama yoğunluğu logaritmik bir ölçekte ölçülmüştür.Y ekseninde, hücre döngüsünün G1 ve G2 M fazlarındaki hücreleri nicelendirmek için kullanılan kapıların (gate) konumlarını not edin. Önceki şekildeki G1 ve G2 M kapılarındaki hücrelerin göreceli oranları burada gösterilmektedir. Burada propidyum iyodür ve CD 20 bulunmaktadır.Bazıları ektopik olarak CD 20 ve PRB eksprese eden hücre karışımının boyanması gösterilmiştir. İki n ve dört NDNA'ya sahip hücrelerin, en bol popülasyonların, x eksenindeki 200 ve 400 işaretlerinin üzerinde merkezlendiğine dikkat edin. Arka plandan en az 10 kat daha parlak boyanan CD 20 pozitif gait seçimli hücrelerin konumu.Bu histogram, önceki dağılım grafiğindeki CD 20 negatif hücrelerin propidyum iyodür boyanmasına karşı hücre sayılarını temsil etmektedir; bu hücreler histogramda asenkron olarak prolifere olmaktadır. Daha önceki CD 20 dağılım grafiğinden alınan, p rrb ekspresyonu ile durdurulmuş ve öncelikle iki N DNA içeriğine sahip hücreleri içeren CD 20 pozitif hücreler gösterilmektedir. Bu veriler, bu boyama tekniği kullanılarak kültürdeki diğer hücrelerden durdurulmuş bir alt popülasyonun ayırt edilebileceğini kanıtlamaktadır. Sonraki üç şekilde, fare embriyonik fibroblastlarında Siklin bağımlı kinaz inhibitörü P 27 KIP bir'in retroviral ekspresyonunun akış sitometrik analizinden elde edilen veriler sunulmuştur.Burada gösterildiği gibi, boş bir P babe retroviral vektörü ile transduce edilmiş asenkron olarak çoğalan bir hücre popülasyonundaki hücre döngüsü evrelerini ölçmek için Propidium iodide, BRDU analizi kullanılmıştır. P 27'ye yanıt olarak S-fazı kapısında az sayıda BRDU pozitif olay görülmüştür. Ayrıca G1 ve G2 M kapılarındaki olayların yoğunluğunun daha fazla olduğu kaydedilmiştir.Benzer şekilde, bu şekilde diyagramlaştırıldığı üzere, P 27 eksprese eden hücreler için S-fazındaki hücre yüzdesi oldukça düşüktür. Bu analiz türü, gen hedefli farelerin çeşitli suşlarından türetilen hücrelerdeki hücre döngüsü kontrol kusurlarının karakterize edilmesinde oldukça etkili olmuştur. Sonraki iki şekilde, şekillenmemiş meme epitel hücreleri büyüme inhibitör sitokin TGF beta one ile 24 saat boyunca işleme tabi tutulmuştur.Bu ilk şekilde gösterildiği üzere, S-fazı hücrelerindeki BRDU işaretlemesi TGF beta one sinyaliyle önemli ölçüde azalmıştır. Orta panelde görülebileceği gibi, hücrelerin öncelikle hücre döngüsünün G bir fazında biriktiğine dikkat ediniz. Hücre döngüsünün farklı fazlarının kantifikasyonu, TGF beta one'ın proliferasyonu öncelikle hücre döngüsünün G bir fazında inhibe ettiğini ve bu fazda birikime yol açtığını doğrulamaktadır.Bu son deneysel analiz serisinde, PRB eksik SAS two hücreleri, CMV CD 20 ekspresyon vektörü ile ve kontrol olarak ya CMV RB ya da CMV beta GAL ile transfekte edilmiştir. Bu ilk şekil, negatif kontrol transfekte hücrelerin hücre döngüsü dağılımını, 72 saatlik PRB ekspresyonu sonrası dağılımlarıyla karşılaştırmalı olarak göstermektedir. Bu son şeklin sağ panelinde neredeyse tamamen iki N pikinin bulunduğuna dikkat edin; çoklu döngü yazılımı ile yapılan eğri uydurma işlemi, hücrelerin PRB ekspresyonunu takiben öncelikle G1 fazında biriktiğini ortaya çıkarmıştır.S ve G2 M evrelerindeki popülasyonlar ise nispeten azalmıştı. Bu teknik ustalıkla uygulandığında, mph'deki fosforile histonlar gibi diğer hücre döngüsü belirteçlerini incelemek için uyarlanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, bir hücre popülasyonunun hücre döngüsü dağılımının nasıl belirleneceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.Hidroklorik asidin korozif ve propidyum iyodürün potansiyel bir karsinojen olduğunu unutmayın. Bunlar tehlikeli olabilir.Bu kimyasallar kullanılırken her zaman önlemler alınmalıdır.

analysis-of-cell-cycle-position-in-mammalian-cells

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Hücre döngüsü aşamaları ilerleme ve kinetikleri izleme ince değişiklikler Propidium iyodid ile BrdU ve toplam genomik DNA boyama yöntemi ile, nükleik asit metabolik etiketlenmesi bir kombinasyonu kullanılarak gerçekleştirilebilir. Bu yöntem, dolayısıyla da hücre siklus progresyonu etkileyen non-spesifik DNA hasarına, geliştirilmesinin önlenmesi, bisiklet hücrelerin kimyasal senkronizasyonu ihtiyacını ortadan kaldırır.

Metabolik Etiketleme ve Flow Sitometri ile Hücre Döngüsü İlerleme Kinetik Ölçüm

Geçiş anafaz-teşvik kompleksi (APC / C)-bağımlı ubikuitinasyon ve burada siklin B. sonraki yıkım, biz, darbe-kovalamaca etiketleme sonrasında, bir sistem kurulmuş tüm hücre popülasyonlarında siklin B proteoliz izleme sağlar ve tetiklenir anafaz için metafaz mitotik geçiş noktasından müdahale tespitini kolaylaştırır.

Tüm Cep Populasyonlarının Tek Hücre Düzeyinde Siklin B Proteoliz incelenmesi

miRNA veya mikroRNA, hücre döngüsü ilerlemesinin temel düzenleyicileridir. Bu video, miRNA'nın hücre döngüsü regülasyonu üzerindeki etkisini incelemek için miRNA ile transfekte edilen akciğer kanseri hücrelerinin akış sitometrisi tabanlı hücre döngüsü analizini açıklar. Hücre döngüsü ilerlemesini durdurarak proliferasyonun inhibisyonu, kanser tedavisi için umut verici bir yaklaşım olma potansiyeli göstermiştir.

Hücre Döngüsü Analizi: miRNA ile Transfekte Edilmiş Akciğer Kanseri Hücrelerinin Hücre Döngüsü Düzenlemesini İncelemek İçin Bir Yaklaşım

Bu protokol, zaman içinde belirli bir noktada S fazında olan hücrelerin zamansal izleme izin vermek için bromodeoksiüridin (BrdU) alımından kullanımını tarif eder. DNA boyalar ve antikor etiketleme eklenmesi daha sonraki zamanlarda S fazı hücrelerinin kaderi detaylı analizini kolaylaştırır.

Senkronizasyon Need for olmadan Akım Sitometri Kullanımı Hücre Döngüsü ilerleme zamansal İzleme

Hücre döngüsünün belirli evreleriyle ilgili olayları incelemek için bir bağlam sağlayan iki hücre senkronizasyon protokolünü bildiriyoruz. Bu yaklaşımın, pertürbüssüz bir hücre döngüsünde spesifik genlerin düzenlenişini analiz etmek için veya hücre döngüsünü etkileyen maddelere maruz kaldığında yararlı olduğunu göstermektedir.

Hücre Çevrimiyle Düzenlenen Gen İfadesini İki Tamamlayıcı Hücre Senkronizasyon Protokolü İle Çalışmak

Biz bir protokol yüksek çözünürlüklü confocal mikroskobu kullanılarak analiz tarafından takip HeLa hücreleri Çift Kişilik timidin eşitlenmesi için mevcut. Bu yöntem de interfaz işlevleri sahip çok fonksiyonlu proteinlerin Mitotik rolleri üzerinde çalışmalar etkinleştirme mitoz, zaman uyumlu olarak S faz geçin hücreleri çok sayıda elde anahtarıdır.

Mitotik hücre eşitleme ve yüksek çözünürlüklü Confocal mikroskobu mitoz sırasında çok fonksiyonlu hücre döngüsü proteinlerin rolü çalışmaya birleştirme

Bir görüntüleme tabanlı yöntemi anlatılan S fazlı tanımlamak ve timidin kullanarak C. elegans hermafrodit germline hücre döngüsü dinamiklerini analiz etmek için kullanılabilir analog EdU. Bu yöntem yok transgenes gerektirir ve immünfloresan boyama ile uyumludur.

C. elegans Germline timidin Analog EdU ile hücre döngüsü analizi

Bu protokol, deri keratinositlerin fare modellerinden izole edilmesi, metal etiketli antikorlarla lekelenme ve farklı hücre döngüsü aşamalarında ilgi proteinlerinin ifade desenini profil için kitle sitometri tarafından lekelenmiş hücreleri analiz etmek için nasıl açıklar.

Kütle sitometrisi ile hücresel protein Ifadesinin hücre döngüsü spesifik analizi için Mouse cilt keratinositlerin yalıtım ve boyama

Bu protokol, maya hücresi döngüsü durdurma ve isteğe bağlı salım için iki yöntemi detaylandırır ve hücre döngüsüne bağlı süreçleri incelemek için floresan mikroskobunun kullanımını detaylandırır.

Tomurcuklanan mayada hücre döngüsüne bağlı süreçlerin manipülasyonu ve analizi

Geniş Alan Mikroskop kullanarak Uzun vadeli Görüntüleme Memeli Hücreleri

Öğrenin, memeli hücrelerde BRDU ve propidyum iyodür boyama ile akış sitometrisi kullanarak hücre döngüsü fazlarını belirleme yöntemini. Bu protokol, hücre proliferasyonunun nicel analizini sağlar.

Memeli Hücreler, Hücre Döngüsü Pozisyon Analizi

Daha fazla video keşfet