Name: Için İpek Film Kültür Sistemi In vitro Analizi ve Tasarımı Biyomateryal (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-24T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 19 s
Description: Öğrenin ipek film in vitro kültür sistemi ile biyomalzeme tasarımı ve hücre davranışlarını analiz etme yöntemini. Bu teknik yüksek biyouyumlu silk film platformu sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

NIH K08EY015829, R21EY019561, R24EY015656, P41 EB002520 ve Körlük Kariyer Geliştirme Ödülü, ve Tri-Kurumsal Kök Hücre Girişimi Önlemek için R01 EY020856 Araştırma fon. HCLE hücre hattı Dr Ilene Gipson nezaket sağladı. Yazarlar, hücre kültürü, SEM görüntüleme, at Doku Mühendisliği Kaynak Merkezi (TERC) ile onun teknik yardım için özel ameliyatları için Hastanesi&#39;nde Anthony Labissiere ona teknik destek ve rehberlik için Weill Cornell Tıp Koleji&#39;nde Dr Aihong Liu teşekkür etmek istiyorum teknik malzeme geliştirme ile destek ve silikon üretim konusunda yardım almak için nano Bilim ve Teknoloji Tesisi Cornell Merkezi (CNF) için Tufts Üniversitesi.

1. Silikon Kauçuk Kalıp İmalatı <ol><li> Döküm için istenen bir topografik yüzey üretin veya satın alın. Bu yayın için bir standart 100 mm kazınmış silikon (Şekil 1) tarif edilecektir. </li><li> Polidimetilsiloksan (PDMS) Dolgu (bileşen A) ve satın alınan kit belirtildiği gibi bir oranı 01:09 (9 g Dolgu ve 1 g katalizörü) içinde katalizör (bileşen B) solüsyonu dışarı tartılır. </li><li> Kurutma işlemi başlatmak için iyice çözümler karıştırın. </li><li> Bir döküm çanak içinde yer silikon yüzey. </li><li> Silikon üzerine PDMS çözelti 4.5 g dışarı tartılır. </li><li> Yayılma PDMS çözüm gofret yüzeyinin 100 mm çaplı alanı kapsayacak. </li><li> Eşit PDMS çözüm yaymak için gofret eğin. </li><li> 100 mm çapındaki petri kapaklı gofret örtün. </li><li> Yer kür düz bir yüzey üzerinde gerçekleşmekte olduğu belli şekilde, 60 gece boyunca ° C fırın içine kurulum döküm. </li><li> Yeri% 70 etanol içine PDMS / silikon tedavikaldırılmadan önce banyo. </li><li> İlk kenarı (tüm çevresi) kaldırmak için jilet kullanarak gofret gelen PDMS kaldırarak başlayın. </li><li> Yavaşça silikon kauçuk döküm gözyaşı özen% 70 etanol banyosu içinde forseps kullanarak kapalı PDMS çekin. </li><li> 14 mm delik delme kullanarak bireysel PDMS kalıplar Punch. Bu çap 24-iyi plaka kurulum içine sığacak şekilde tasarlanmıştır. </li></ol> 2. İpek Çözüm Üretimi <ol><li> Bir cam beher 7 içinde bir raddeye distile su (dH 2 O) 2 L getirin. </li><li> Üçe Bombyx mori ipekböceği kozası 5 g kesin. </li><li> Aşırı böcek partikül kaplama iç koza yüzey tarafından belirtildiği gibi yoğun kirli koza atın. </li><li> Sodyum karbonat, 4.24 g ölçün. </li><li> Su üzerine kaynar önlemek için dH 2 O hacmi kaynatarak yavaş yavaş sodyum karbonat ekleyin ve devam etmeden önce tam çözünmesini sağlar. </li><li> Kaynar dH koza parçaları ekle <sub&gt; 2 40 dk., ve kaynama işlemi sırasında kozalar karıştırmak için bir Teflon kaplı karıştırma çubuğu kullanın Ç. </li><li> Kaynar sonra, dikkatlice fazla suyu çıkarmak için elle ipek özü dışarı lavabo ve halka içine dH 2 O süzün. </li><li> Ipek 20 dakika boyunca üç kez yıkayıp ayıklayın. bir laboratuar beherdeki dH 2 O 1 L her ve beher içinde hacim dolaşmaya Bir karıştırma çubuğu kullanın. </li><li> Kimyasal bir kaput içinde el ve yer ipek lif özü tarafından ipek özü çıkışı, halka yıkadıktan sonra bir 12 saat süreyle kurutulması için izin vermek. dönemi. </li><li> Ertesi gün, genelde ~ 3.5 g kurutulmuş ipek lifleri, ağırlığında: ___________-g </li><li> Ipek,% 20 w / v solüsyonu 9.3 M LiBr çözeltisi hazırlayın. Gerekli ağırlık ve hacimleri hesaplamak için aşağıdaki denklemleri yararlanın: <ol class="lalpha"><li> (Adım 10 İpek ekstresi ağırlığı) x (4) = toplam 9.3 M LiBr çözüm ___________-ml </li><li> [(807,705) x (parçası 11.a gelen LiBr hacmi)] / 1000 = LiBr ___________ g dH 2 O eklemek </li></ol> &lt;/ Li&gt; <li> Aşağıdaki dH 2 O hacmi bir bardak behere ölçülen LiBr ağırlık ekleyin: <ol class="lalpha"><li> (0.8) x (11.a adım hesaplanan hacim) = ___________ dH 2 mL O </li></ol></li><li> Dereceli silindir uygun büyüklükte içine bu sıvıyı dökün ve yarı Madde 11.A. hesaplanan son hacmi çözüm getirmek </li><li> Behere ipek özü yerleştirin ve ipek lifleri bir laboratuar spatula ile LiBr çözümü içinde batırılır emin ipek lifleri üzerinde LiBr çözüm dökün. </li><li> 60 içine yerleştirin çözünmüş ipek ° 4 saat süreyle C fırın: Başlama saati: ___________ Zaman End: ___________ </li><li> Uygun büyüklükte şırınga kullanarak ipek çözüm 12 ml kadar çizin. Şırınga sonunda bir 18G iğne yerleştirin ve sonra bir diyaliz kaset (3.500 MW coutoff, Slide-A-Lyzer, Thermo Scientific) içine enjekte çözüm. Kaset doldurduktan sonra, boşaltılmış şırınga ile kaset dışında kalan hava çizin. </li><li> Yeri fidH 2 O 1 L içinde lled diyaliz kaset </li><li> 1 saat, 4 saat, 8 saat ve daha sonra 6 değişikliklerin toplam 3x her 12 saat sonra dH 2 O hacmi değiştirin: <ol class="lalpha"><li> Başlangıç: ___________ </li><li> 1hr: ___________ </li><li> 4saat: ___________ </li><li> 8 saat: ___________ </li><li> 12 saat: ___________ </li><li> 12 saat: ___________ </li><li> 12 saat: ___________ </li><li> End: ___________ </li></ol></li><li> Diyaliz sonrası yavaş yavaş şırınga ile kasetlerden ipek çözüm toplamak. 10.000 gr anma santrifüj tüplerine Yeri çözüm. </li><li> 20 dakika her biri için 4 ° C&#39;de 10,000 g&#39;de santrifüje çözeltisi iki kez. Yeni bir tüp içine her santrifüj yer süpernatant sonra. </li><li> 4 ° C&#39;de buzdolabında saklayın thr ipek çözüm. </li><li> Küçük tartmak çanak ve yerine 0.5 mL ipek solüsyonu 2 örneklerin içindeki yemekler tartmak 60 ° 12 saat veya ipek çözüm kuruyuncaya kadar C kuru fırın. </li><li> Bot geri kalan katı ipek filmi tartılırh örnekleri hacmi protein konsantrasyonu için ipek çözüm yüzde ağırlığı ölçmek için: <ol class="lalpha"><li> ___________ Mg kombine 2 ipek film numunelerinin Ağırlığı </li><li> (23.a arası ağırlık) x (100) = ___________% ipek </li></ol></li></ol> 3. İpek Film ve Kültür Sistem Kurulumu Hazırlama <ol><li> Toz kaldırmak için net bant ile temizleyerek PDMS döküm yüzeyleri hazırlayın. </li><li> Temiz PDMS% 70 EtOH suda bekletip yüzeyleri ve dH 2 O ile üç kez yıkayın </li><li> Tipik bir 24 de plaka kapağı tutucu plakası, üzerine Yeri 14 mm PDMS kalıplar. </li><li> 50 mikron kalınlığında film üretmek için, genellikle 1 ml şırınga ucu 2 olan bir sıvı yayma aracı kullanarak PDMS kalıplar üzerine% 8 ipek çözüm 70 μls yayıldı. </li><li> 90 dakika süreyle ya da filmler kadar 150 Pa bir hava akımı basınç çalışan temiz bir bankta ortaya kurumaya ipek filmler İzin kuru vardır. </li><li> Bir kere film kuru bir yerde PDMS m dahil olmak üzere film seti, tüm vardıryaş, suda çözünmeyen bir film üretmek üzere&gt; 4 saat için bir su-tavlama haznesine. Bu, tipik olarak 25 kPa vakum 15 az çekilmiş lavabo alt su ile boş bir kurutucuda bölmedir. </li><li> Ipek filmleri temiz bir tezgah üzerine su tavlama odası ve yerden çıkarın. </li><li> Sterilize etmek için en az 10 dakika kuyu içinde% 70, bir 35 mm petri içinde EtOH banyo ve yer kontrol yüzeylerde (yani cam veya plastik yüzeyler) ve paslanmaz çelik halkalar hazırlayın. </li><li> Forseps kullanarak PDMS kalıplar ipek filmleri çıkarın,% 70 EtOH içine daldırın, ve emin desenli tarafı yapma% 70 EtOH 1 mL ile doldurulmuş 24-iyi plakasına yerde örnek hücre yapışması için izin verecek şekilde karşı karşıya. </li><li> Üstüne gelen iyi yerde paslanmaz çelik halka ağırlıkları (11.65 mm iç çapı 15.45 mm dış çaplı ve 1.18 mm kalınlığında) içine her ipek filmi örnek yerleştirdikten sonra. </li><li> Halkalı örnekleri steril sağlamak için 10 dakika inkübe izin verin. </li><li> RemoEtOH ettik ve 1 mL PBS ile 3x her numune yıkayın. Her yıkamadan tam difüzyon sağlamak için 5 dakika bekletin. </li><li> Ipek film numunelerinin altında baloncuklar çoğunluğu kaldırmak için emin yaparken, aspire cam pipet kullanarak PBS çıkarın. </li><li> Ekimi için hücre hattı hazırlayın. Bir örnek olarak, 7-dakika için% 0.25 tripsin ve etilendiamintetraasetik asit (EDTA) çözeltisi ile insan korneal epitelyal-limbal (HCLE) hücre hattı trypsinize. Tripsin% 10 FBS ile Dulbecco&#39;nun değiştirilmiş Eagle ortamı (DMEM) geçişi ortam 01:01 hacmi ile deaktive eklendi. Tripsinize HCLE hücreler santrifüj, hücre pelletini için keratinosit-serum serbest medya 8 mL (K-SFM) ekleyip hafifçe HCLEs dağıtmak için ajitasyon ve hücre sayımı oluşturmak. </li><li> De tipik olarak 10.000 hücre / cm 2 yoğunluk başına HCLE süspansiyon Örnek 500 uL. </li><li> 37 kuvöz içinde yer kültürler ° C ve% 5 CO 2 ve istenen deney protokolünde çalıştırın. </li></ol> 4. Temsilcisi Sonuçlar &lt;p class = &quot;jove_content&quot;&gt; <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3646/3646fig1.jpg" /> Ipek film yapım ve kültür sistemi hazırlık özet gösteren Şekil 1. Akış şeması 10 adımlık süreç. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3646/3646fig2.jpg" /> Şekil 2. Standart fotolitografik ve kuru aşındırma teknikleri kullanan bir 90 mm ​​çapında silikon üzerine üretilen desenli hat yüzeylere (A) 21-boya dizi. (B) İpek filmler PDMS kalıp yüzeylerinde attıktan sonra orijinal paralel çizgi desenli özelliklerini korurlar. (C) şematik gösterilmesi özelliği boyutlu tasarım hücresel uyumu teşvik etmek için seçilmiştir. Muhafaza paralel dizilmiş desenli yüzey gösteren ipek film (D) Kesit. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3646/3646fig3.jpg" /> Şekil 3. (A) desenli yapışmış HCLE hücre hattı elektron mikroskop fotoğrafları Taramave (B) kültüründe günde 2 düz ipek filmler. HCLE kültürleri kültür günde 8 ile (C) desenli ve (D) düz yüzeyler üzerinde birleştiği yayılmaya devam etmektedir. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/3646/3646fig4.jpg" /> Şekil 4. (A, D, G) Desenli ve (AC) 1. gün, (DF) 4. günde karşılaştırmalı (B, E, H) düz ipek film kültürü HCLE hücreleri (C, F, I) cam kontrolü yüzeylerde, kültür ve (Gİ) 8. günde. (J) CyQuant nükleik asit içeriği ve (K) (3 - desenli ve düz yüzeyler ipek filmin her iki HCLE canlılığını gösteren (4,5-dimetiltiazol-2-il) -2,5-difeniltetrazolium bromid (MTT) metabolik aktivite tayini verileri zamanla cam kontrol yüzeyleri (ölçek bar = 100 mikron) göre. Video 1. Bir 18 saat boyunca desenli ipek filmi yüzey üzerinde göç HCLE hücrelerinin Zaman gecikmeli faz-kontrast görüntüleme. süre. Hücreler 10k/cm 2 yoğunlukta ekildi ve 2 saat boyunca kültüre edildi. görüntüleme önce. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3646/3646movie1.MOV" target="_blank">filmi görmek için buraya tıklayın</a> . Video 2. Bir 18 saat boyunca düz bir TCP kontrol yüzeyi üzerinde göç HCLE hücrelerinin Zaman gecikmeli faz-kontrast görüntüleme. süre. Hücreler 10k/cm 2 yoğunlukta ekildi ve 2 saat kültüre edildi. görüntüleme önce. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3646/3646movie2.MOV" target="_blank">filmi görmek için buraya tıklayın</a> .

<ol><li>Rockwood, D., Preda, R. C., Yucel, T., Wang, X., Lovett, M. L., Kaplan, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Materials+Fabrication+from+Bombyx+mori+Silk+Fibroin%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+protocols%22%5BJournal%5D)">Materials Fabrication from Bombyx mori Silk Fibroin.</a> Nature protocols. , Forthcoming (2011).</li>
<li>Lawrence, B., Omenetto, F., Chui, K., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Processing+methods+to+control+silk+fibroin+film+biomaterial+features%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+materials+science%22%5BJournal%5D)">Processing methods to control silk fibroin film biomaterial features.</a> Journal of materials science. 43, 6967-6985 (2008).</li>
<li>Altman, G., Diaz, F., Jakuba, C., Calabro, T., Horan, R., Chen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silk-based+biomaterials%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Silk-based biomaterials.</a> Biomaterials. 24, 401-416 (2003).</li>
<li>Hofmann, S., Wong, P. o, Foo, C., Rossetti, F., Textor, M., Vunjak-Novakovic, G., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silk+fibroin+as+an+organic+polymer+for+controlled+drug+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">Silk fibroin as an organic polymer for controlled drug delivery.</a> Journal of Controlled Release. 111, 219-227 (2006).</li>
<li>Demura, M., Asakura, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immobilization+of+glucose+oxidase+with+Bombyx+mori+silk+fibroin+by+only+stretching+treatment+and+its+application+to+glucose+sensor%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+bioengineering%22%5BJournal%5D)">Immobilization of glucose oxidase with Bombyx mori silk fibroin by only stretching treatment and its application to glucose sensor.</a> Biotechnology and bioengineering. 33, 598-603 (1989).</li>
<li>Cebe, P., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+of+enzymatic+degradation+of+beta-sheet+crystals%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Mechanism of enzymatic degradation of beta-sheet crystals.</a> Biomaterials. , (2010).</li>
<li>Lawrence, B., Cronin-Golomb, M., Georgakoudi, I., Kaplan, D., Omenetto, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioactive+silk+protein+biomaterial+systems+for+optical+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Bioactive silk protein biomaterial systems for optical devices.</a> Biomacromolecules. 9, 1214-1220 (2008).</li>
<li>Meinel, L., Hofmann, S., Karageorgiou, V., Kirker-Head, C., McCool, J., Gronowicz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+inflammatory+responses+to+silk+films+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The inflammatory responses to silk films in vitro and in vivo.</a> Biomaterials. 26, 147-155 (2005).</li>
<li>Vepari, C., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silk+as+a+biomaterial%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Polymer+Science%22%5BJournal%5D)">Silk as a biomaterial.</a> Progress in Polymer Science. 32, 8-9 (2007).</li>
<li>Li, M., Ogiso, M., Minoura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+degradation+behavior+of+porous+silk+fibroin+sheets%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Enzymatic degradation behavior of porous silk fibroin sheets.</a> Biomaterials. 24, 357-365 (2003).</li>
<li>Arai, T., Freddi, G., Innocenti, R., Tsukada, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biodegradation+of+Bombyx+mori+silk+fibroin+fibers+and+films%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Polymer+Science%22%5BJournal%5D)">Biodegradation of Bombyx mori silk fibroin fibers and films.</a> Journal of Applied Polymer Science. 91, 2383-2390 (2004).</li>
<li>Lawrence, B., Marchant, J., Pindrus, M., Omenetto, F., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silk+film+biomaterials+for+cornea+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Silk film biomaterials for cornea tissue engineering.</a> Biomaterials. 30, 1299-1308 (2009).</li>
<li>Ma, X., Cao, C., Zhu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biocompatibility+of+silk+fibroin+films+containing+sulfonated+silk+fibroin%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research+Part+B%3A+Applied+Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The biocompatibility of silk fibroin films containing sulfonated silk fibroin.</a> Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 78, 89-96 (2006).</li>
<li>Patel, A., Thakar, R., Chown, M., Ayala, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biophysical+mechanisms+of+single-cell+interactions+with+microtopographical+cues%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical%22%5BJournal%5D)">Biophysical mechanisms of single-cell interactions with microtopographical cues.</a> Biomedical. , (2010).</li>
<li>Jin, H., Park, J., Karageorgiou, V., Kim, U., Valluzzi, R., Cebe, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water-Stable+Silk+Films+with+Reduced+%CE%B2-Sheet+Content%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Functional+Materials%22%5BJournal%5D)">Water-Stable Silk Films with Reduced β-Sheet Content.</a> Advanced Functional Materials. 15, 1241-1247 (2005).</li>
<li>Lawrence, B., Wharram, S., Kluge, J., Leisk, G., Omenetto, F., Rosenblatt, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Hydration+on+Silk+Film+Material+Properties%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecular+Bioscience%22%5BJournal%5D)">Effect of Hydration on Silk Film Material Properties.</a> Macromolecular Bioscience. 10, 393-403 (2010).</li>
<li>Zhang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+silk+fibroin+as+a+support+for+enzyme+immobilization%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+Advances%22%5BJournal%5D)">Natural silk fibroin as a support for enzyme immobilization.</a> Biotechnology Advances. 16, 961-971 (1998).</li>
<li>Cebe, P., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+of+enzymatic+degradation+of+beta-sheet+crystals%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Mechanism of enzymatic degradation of beta-sheet crystals.</a> Biomaterials. , (2010).</li>
<li>Shaw, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fractionation+of+the+fibroin+of+Bombyx+mori+with+trypsin%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+Journal%22%5BJournal%5D)">Fractionation of the fibroin of Bombyx mori with trypsin.</a> Biochemical Journal. 93, 45(1964).</li>
<li>Rice, W., Firdous, S., Gupta, S., Hunter, M., Foo, C., Wang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+characterization+of+structure+and+morphology+of+silk+fibroin+biomaterials+using+non-linear+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Non-invasive characterization of structure and morphology of silk fibroin biomaterials using non-linear microscopy.</a> Biomaterials. 29, 2015-2024 (2008).</li>
<li>Chirila, T., Barnard, Z., Harkin, D., Schwab, I., Hirst, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bombyx+mori+silk+fibroin+membranes+as+potential+substrata+for+epithelial+constructs+used+in+the+management+of+ocular+surface+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+A%22%5BJournal%5D)">Bombyx mori silk fibroin membranes as potential substrata for epithelial constructs used in the management of ocular surface disorders.</a> Tissue Engineering Part A. 14, 1203-1211 (2008).</li>
<li>Hu, X., Shmelev, K., Sun, L., Gil, E. -S., Park, S. -H., Cebe, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+Silk+Material+Structure+by+Temperature-Controlled+Water+Vapor+Annealing%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Regulation of Silk Material Structure by Temperature-Controlled Water Vapor Annealing.</a> Biomacromolecules. 12, 1686-1696 (2011).</li>
<li>Omenetto, F., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+route+for+silk%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Photonics%22%5BJournal%5D)">A new route for silk.</a> Nature Photonics. 2, 641-643 (2008).</li>
<li>Bray, L. J., George, K. A., Ainscough, S. L., Hutmacher, D. W., Chirila, T. V., Harkin, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+corneal+epithelial+equivalents+constructed+on+Bombyx+mori+silk+fibroin+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Human corneal epithelial equivalents constructed on Bombyx mori silk fibroin membranes.</a> Biomaterials. 32, 5086-5091 (2011).</li>
<li>Wang, N., Tytell, J. D., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+at+a+distance%3A+mechanically+coupling+the+extracellular+matrix+with+the+nucleus%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction at a distance: mechanically coupling the extracellular matrix with the nucleus.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 75-82 (2009).</li>
<li>Jaalouk, D. E., Lammerding, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+gone+awry%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction gone awry.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 63-73 (2009).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Hücre kültürü için bir substrat olarak rejenere ipek filmlerin kullanılması, bu proteinin malzeme özelliklerinin kapsamlı karakterizasyonu nedeniyle son yirmi yılda popülerlik kazanmış ve biyomalzeme programı 3,8 anlayışı artmıştır. Burada anlatılan kültür sistemi desenli ipek filmin biyomateryal yüzeylerde 7 hücre yüzey etkileşimlerini değerlendirmek için in vitro test sisteminde yeni bir temsil eder. Sistem kolayca yüksek verimli veri toplama için kabul edilebilir zaman içinde hücresel etkileşimlerin derinlemesine analiz sağlar. Kovalent modifikasyon veya adsorpsiyon yoluyla çeşitli yüzey kimyası, yüzey kontrolü mikro / nano-yüzey topografisi 7: ipek filmler de dahil olmak üzere doğrudan hücre fonksiyonu 8,9,12 etkileyen değiştirilebilir ayarlanabilir biyomalzeme birtakım özelliklerini, sahip, çünkü bu büyük ölçüde etkin sağlam mech; biyolojik olarak aktif moleküllerin 13anical özellikleri 15,16; malzeme hidrofiliklik / hidrofobikliğinin 16 kontrolü; sürümü 4,8,17 için biyolojik bileşiklerin toplu yükleme ve ikincil yapı kontrolü ile kontrollü çözülme / enzimatik bozunma oranları (beta sayfalık içeriği) 11,18,19 . Ipek filmlerin asetat su buharı 7,15 varlığında vakum altında bir süre için film tavlama ile elde edilir. Bu yaklaşım, işlem ışığı 15 minimum kırınımı izin verirken suda çözünmezlik malzemenin teşvik, β-tabaka ikincil yapı oluşmasına izin verir. Filmlerin Bu şeffaflık mikroskop sistemleri 12,20 herhangi bir sayı kullanarak görüntüleme yöntemleri (örneğin geniş alan ve floresan) bir numarası altında istihdam edilebilir doğrudan canlı hücre görüntüleme sağlayan temel unsurdur. Canlı-hücre görüntüleme ek olarak, ipek filmler kolayca th çıkarılabilire kültür sistemi ilave tespit ve analiz için izin vermek. Böylece, bu sistem üzerinde gerçekleştirilebilir doğrudan deney değerlendirmelerinin çok çeşitli teknik alanda birçok 3,8,9,12,13,21 için hücre / doku kaynakları, çok çeşitli için de geçerlidir. Time-lapse görüntüleme sonuçlarını gerçek zamanlı kültür veri toplanabilir ve bir örnek yüzey topografisi hücre ilişkileri nasıl etkilediğini göstermek için kullanılmıştır olarak gösteriyoruz. Temsilcisi sonuçları ipek filmi biyomateryaller HCLE kültür büyümeyi desteklemek için kullanılabilir göstermek ve standart hücresel proliferasyonu ve metabolik testler (Şekil 4) bir dizi iyileştirilebilir vardır. Buna ek olarak, kültür sabitlenir ve elektron görüntüleme veya diğer protokolleri (Şekil 3) taranması için işlenir. İpek Film yüzeylerde yüksek sadakat, tutarlılık ile laboratuarda üretilen ve nispeten düşük maliyetli (Şekil 1). Vardır Bu farklı sa sağlarkültür sistemi kurulumu ve deneysel sonuçlar her iki çıkarak. Bu su-tavlama işlemi çözeltisi içinde 2,15,22 proteaz konsantrasyonu bekleyen degradasyon oranı tanımlanmış bulunmaktadır kültür içinde stabil bir ipek film malzeme üretir olduğu gösterilmiştir. Sonuç olarak, bu maddeler, uzun süreli Hücre kültürü için çok uzun süre için kullanılabilir, ya da fizyolojik yerde 8 bağlı olarak ay veya yıldır implante kalır. Ayrıca, son zamanlardaki araştırmalar protein yapısı ve su-tavlanmış ipek filmlerin iki yığın malzeme özellikleri çeşitli mekanik ve biofiziksel test yöntemleri 15,16 vasıtasıyla gösterildiği gibi tekrarlanabilir kültürü sonuçlar için izin parti için tutarlı olduğunu göstermektedir. 7,23,24 SEM, atomik kuvvet micrscopy (AFM) ve hücre kültürü çalışmaları {: 2008wr, Omenetto: 2008tc, Bray 2011kq Lawrence} gösterilen Buna ek olarak, malzemenin yüzey filmi gruplar arasında büyük vefa göstermiştir. Malzeme stabilSığ ve tutarlılık hücrenin çeşitli mechanotransduction yolları aracılığıyla kültür substrat algılayan ve sonuçta istenmeyen / istenen hücresel yanıt 25,26 üretecek nasıl önemli bir faktördür. Bu tür doku kültürü tedavi plastik veya cam gibi kültür yüzeyler için tarihsel standartlara, hücre eki için yeterli ortamlar sağlarlar. Bununla birlikte, bu malzemelerin in vivo olarak daha faydalı için iyileştirilebilir değildir. Bu bir ipek filmin biyomateryal in vitro özelleştirilmiş olabilir, ve bir kez deneysel beklentiler özelleştirilmiş filmin doğrudan vivo modelde bir tercüme edilebilir ulaşıldığını da tasavvur edilebilir. Vivo ve in vitro deneylerin arasında böyle eşleştirilmiş tasarım rutin in vitro kullanılan diğer zeminler üzerine böyle bir gömülebilir ipek biyomateryaller için büyük bir avantaj sunuyor.

<table border="1"><tbody><tr><td> Malzeme Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog Numarası </td></tr><tr><td> İpek kozaları </td><td> Tajima Shoji A.Ş., LTD. </td><td> NA </td></tr><tr><td> PDMS monomer ve çapraz-bağlayıcı </td><td> Momentive </td><td> RTV615A 01P </td></tr><tr><td> Sodyum Karbonat </td><td> Sigma </td><td> S2127 </td></tr><tr><td> Lityum Bromür </td><td> Sigma </td><td> 213225 </td></tr><tr><td> Slide-A-Lyzer </td><td> Thermo Scientific </td><td> 66110 </td></tr><tr><td> 1 ml Şırınga </td><td> Becton-Dickenson </td><td> 309602 </td></tr><tr><td> Paslanmaz çelik yıkama </td><td> Üstün Yıkama </td><td> 81610 </td></tr><tr><td> 24-kuyulu plakalı </td><td> VWR </td><td> 353047 </td></tr></tbody></table>

için İpek film kültür sistemi in vitro analizi ve tasarımı biyomateryal

Silk Film Culture System for in vitro Analysis and Biomaterial Design

İpek filmleri bir araştırma laboratuvarı ortamında 1,2 içinde yüksek sadakat ve ekonomik ile imal edilebilir protein bazlı biyomateryaller umut vericidir. Bunlar, yüksek kontrol edilebilen boyutsal ve materyal özelliklere sahip hücre adezyonu biyolojik uyumlu ve teşvik vardır, çünkü bu malzemelerin arzu edilir, topografik desen ile ya da kimyasal olarak yüzey değiştirerek modifiye edilebilir, ve ilaç verme, ilgili uygulama için biyolojik olarak etkin olan moleküller için bir depo olarak kullanılabilirler 3-8. Ayrıca, ipek filmler dakika içinde eritmek veya in vitro veya in vivo yıldır aşağılamak için tasarlanmış olabilir, özel tasarımı oldukça basit olup, doğada şeffaf ve görüntüleme uygulamaları 9 dolayısıyla çok uygun olmanın yararı ile üretmek vardır - 13. Burada sunulan kültür sistemi metodolojisi hücre ipek film yüzeyinin hızlı değerlendirmeler için ölçeklenebilir bir yaklaşımı temsiletkileşimleri. Özellikle ilgi hizalama 12,14 için hücre çoğalması ve hücrelerin yanıtları farklılıklar çalışma yüzeyine desenli ipek filmlerin kullanımıdır. Numaralı seribaşı kültürleri mikro-desenli ve düz ipek filmi yüzeylerde hem kültüre ve sonra time-lapse faz-kontrast görüntüleme, taramalı elektron mikroskobu ve metabolik aktivite ve nükleik asit içeriği biyokimyasal değerlendirmesi yoluyla değerlendirildi. Özet olarak, in vitro kültür sistemde ipek filmi daha sonra in vivo modeller optimize edilmiş ve daha sonra tercüme edilebilir bir biyomateryal substrat hücre-yüzey etkileşimleri, çalışmalarına uygun özelleştirilebilir bir deney düzeneği sunmaktadır. Burada sunulan kültür sistemi kullanılarak Gözlemler henüz temel hücre etkileşimleri, tıbbi cihaz tasarımı kadar uygulamaları yardımcı olmak için kullanılan ve böylece biyomedikal alanlarında geniş bir yelpazede alakalı edilir.

İpek filmler biyomedikal uygulamalar bir dizi için kolayca özelleştirilebilir biyomalzemelerin yeni bir sınıfı vardır. Sunulan ipek film kültürü sisteminin çeşitli çok iyi adapte olduğu<em&gt; In vitro</em&gt; Analizleri. Bu sistem bir biyomateryal tasarım platformu sunan temsil<em&gt; In vitro</emDoğrudan çeviri önce&gt; optimizasyonu<em&gt; In vivo</em&gt; Modelleri.

Için İpek Film Kültür Sistemi In vitro Analizi ve Tasarımı Biyomateryal

İpek filmler, bir araştırma laboratuvarı ortamında ekonomik bir şekilde ve yüksek sadakatle üretilebilen, gelecek vadeden protein tabanlı biyomalzemelerdir...

Bu prosedürün genel amacı, in vitro bir ipek film kültür sistemi kurmaktır. Bu işlem, öncelikle istenen filmi oluşturmak için ipek çözeltisinin hazırlanmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım, ipek çözeltisinin silikon kauçuk kalıplama yüzeyine dökülmesi ve filmin kurumaya bırakılmasıdır.İpek film daha sonra hücre kültürü için işleme tabi tutulur. Ardından, steril teknik kullanılarak kültür sistemi kurulur. Son adım, ipek filmlerin istenen hücre tipi ile ekilmesidir.Nihayetinde, ipek film kültür yüzeyleri ya doğrudan görüntülenebilir ya da kültür içerisinde analiz edilebilir. Plakalar veya örnekler, gerektiğinde fiksasyon ve daha ileri işlemler için çıkarılabilir. Bu tekniğin standart doku kültürü plastiği üzerindeki kültür gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, ipek film biyomalzemelerin yüksek düzeyde biyouyumlu olması ve araştırmacılar tarafından sonraki in vivo ve in vitro uygulamalara kolaylıkla aktarılabilmesidir.Bu yöntem, yüzey topografyasının hücre yanıtını etkilemek için nasıl kullanılabileceği gibi hücre biyolojisi ve biyomalzemeler alanlarındaki temel soruları yanıtlamak için kullanılabilir. Bu yöntem kornea epitel yanıtına dair içgörü sağlayabilse de, başlangıçtaki in vitro deneylerin daha karmaşık in vivo sistemlere öncül yanıtlar sunabileceği diğer sistemlere de uygulanabilir. Silikon kauçuk kalıpların üretimine başlamak için, bu gösterim için döküm yapılacak istenen topografik yüzeyi temin edin.Standart 100 milimetrelik aşındırılmış bir silikon gofret kullanılır. Satın alınan bir kit aracılığıyla sağlanan PDMS kalıplama ve katalizör çözeltisi dokuz bir oranında kullanılır. Kürlenme işlemini başlatmak için çözeltileri iyice karıştırın.Silikon gofret yüzeyi bir döküm kabına yerleştirildikten sonra, silikon gofretin üzerine 4,5 gram PDMS çözeltisi tartarak ekleyin. PDMS çözeltisi gofret üzerine eşit şekilde yayıldıktan sonra, gofreti 100 milimetre çapında bir Petri kabı kapağıyla kapatın ve iki saat boyunca 10 milimetre cıva basıncına yerleştirin. PDMS çözeltisindeki hava kabarcıklarını gidermek için döküm düzeneğini 60 °C'lik bir fırında düz bir yüzeye yerleştirip gece boyunca bekletin; ertesi gün, kürlenmiş PDMS silikon gofreti %100 etanol banyosuna yerleştirin.PDMS'yi çıkarmadan önce, bir jilet ve pens yardımıyla çevre kenarını kaldırarak PDMS'yi wafer'dan ayırmaya başlayın. PDMS'yi %100 etanol banyosu içerisinde nazikçe çekerek çıkarın. Silikon kauçuk kalıbı yırtmamaya dikkat ederek, 14 milimetrelik bir delgeç ile bireysel PDMS kalıpları kesin. Bu çap, 24 kuyucuklu bir plakanın kuyucuklarına uygun olacak şekilde tasarlanmıştır.İpek çözeltisini hazırlamak için iki litre distile suyu kaynama noktasına getirin. Cam bir beherde, beş gram bombex Maori ipekböceği kozasını üçte bir oranında kesin; iç koza yüzeyini kaplayan aşırı böcek partikülleriyle belirtilen, yoğun şekilde kontamine olmuş kozaları atın. Taşmayı önlemek için, kaynayan su hacmine 4,24 gram sodyum karbonatı yavaşça ekleyin.Sodyum karbonat çözündükten sonra, koza parçalarını kaynayan suya ekleyin ve Teflon kaplı bir manyetik karıştırıcı ile 40 dakika boyunca karıştırın. Kaynatma işleminden sonra, distile suyu dikkatlice lavaboya süzün ve fazla suyu uzaklaştırmak için ipek ekstraktını elle sıkın. Ardından, ipek ekstraktını bir litre distile su içeren plastik bir behere yerleştirip 20 dakika karıştırarak yıkayın.Bu yıkama işlemini taze su ile iki kez tekrarlayın. Yıkanmış ipek özütünü elinizle sıkın ve kurumasını sağlamak için ipek lifi özütünü 12 saatlik bir süre boyunca kimyasal çeker ocak içine yerleştirin. Ertesi gün, genellikle yaklaşık 3,5 gram olan kurutulmuş ipek liflerini tartın.Ardından, yazılı protokole uygun olarak %20 ağırlık/hacim oranında bir ipek çözeltisi için 9,3 molar lityum bromür çözeltisi hazırlayın. İpek özütünün beherin içine yerleştirilmesinin ardından, lityum bromür çözeltisini ipek liflerinin üzerine dökün.İpek liflerinin çözeltinin içine tamamen daldırıldığından emin olun. Bir laboratuvar spatulası kullanarak, çözünmüş ipeği dört saat boyunca 60 °C'lik bir fırına yerleştirin. Dört saat sonra, uygun boyutta bir şırınga kullanarak 12 mL ipek çözeltisi çekin.18 gauge bir iğne yerleştirildikten sonra, şırınganın ucundan çözeltiyi bir diyaliz kasetine enjekte edin. Kaset doldurulduktan sonra, şırıngayı kullanarak kasetin içinde kalan havayı çekip çıkarın.Doldurulmuş diyaliz kasetini bir litre distile suyun içine yerleştirin. Suyu bir saat, dört saat, sekiz saat sonra ve ardından toplam altı değişim olacak şekilde her 12 saatte bir üç kez değiştirin. Diyalizden sonra.İpek çözeltisini şırınga ile kasetlerden yavaşça toplayın ve santrifüj tüplerine aktarın. Çözeltiyi 10,000 g'de ve dört °C'de 20 dakika boyunca santrifüjleyin. Santrifüj işleminin ardından süpernatantı yeni bir tüpe yerleştirin.Bu işlem ikinci kez tekrarlandıktan sonra, iki adet 0.5 milliliter ipek çözeltisi örneğini ayrı küçük peynir altı suyu kaplarına pipetleyin. Peynir altı suyu kaplarını, ipek çözeltisi kuruyana kadar veya 12 saat boyunca 60 degree Celsius sıcaklıktaki kuru fırında bekletin. Toplu ipek çözeltisi dört degrees Celsius sıcaklıkta saklanabilir.Çözeltinin ipek proteini konsantrasyon yoğunluğunu ölçmek için her iki örnekten kalan katı ipek filmleri tartın. Tozları temizlemek için şeffaf bant kullanarak PDMS döküm yüzeylerini hazırlayın. Ardından, PDMS altlıkları bir dakika boyunca %100 ethanol içinde bekleterek temizleyin.Ardından bunları çıkarın ve kurumaya bırakın. 50 µm kalınlığında bir film üretmek için PDMS kalıplarının üzerine 70 µL %8'lik ipek çözeltisi yayın. Bir mililitrelik şırınga ucu gibi bir sıvı yayma aracı kullanarak, ipek filmlerin laminer akışlı temiz bir kabinde, 150 Pa hava akış basıncı altında 90 dakika boyunca veya filmler kuruyana kadar açık şekilde kurumasını sağlayın.Filmler kuruduktan sonra, suda çözünmez bir film elde etmek için PDMS kalıplar da dahil olmak üzere tüm film setini dört saatten fazla süreyle bir su ve yoğurma kamerasına yerleştirin. Bu işlem genellikle, ipek filmlerin su ve yoğurma kamerasından çıkarılmasının ardından 25 kilopascal vakum uygulanan, havuzun altında su bulunan boş bir desikatör kamerasında gerçekleştirilir. 35 milimetrelik bir Petri kabında %70 etnol banyosu hazırlamak için laminer akışlı temiz bir tezgahta çalışın.Ardından, sterilizasyon sağlamak için kontrol substratlarını ve paslanmaz çelik halkaları en az 10 dakika boyunca kaba yerleştirin. Sonrasında, ipek filmleri pens yardımıyla PDMS kalıplardan çıkarın. Filmleri %70 etanol içine daldırın ve her bir filmi, içi bir mililitre %70 etanol ile önceden doldurulmuş 24 kuyucuklu plakanın tek bir kuyucuğuna yerleştirin.Hücre adezyonuna izin vermek için desenli tarafın yukarı baktığından emin olun. Bu adımda başarıyı sağlamak için, ipek filmlerin kuyucukların içine doğru ve steril bir şekilde yerleştirilmesi önemlidir. Paslanmaz çelik halkaları SILT filmlerinin üzerine yerleştirin ve 10 dakika inkübe edin. Metinde belirtilen örnek film yıkama işleminin ardından, hücre hattını orada tarif edildiği şekilde ekim için hazırlayın. Bu demonstrasyonda, son adım olarak insan kornea limbal epitel hücre hattı kullanılmıştır. Kuyucuk başına, genellikle santimetrekare başına 10.000 hücre yoğunluğu kullanarak 500 µL HCLE süspansiyonu ekleyin ve istenen deneysel protokole geçin. Burada, ikinci günde desenli ve düz ipek filmlere adere olmuş HCLE hücre hattının taramalı elektron mikrografları gösterilmektedir.HCLE kültürlerinde, hücreler sekizinci güne kadar desenli ve düz yüzeylerde konfluense ulaşana kadar çoğalmaya devam eder. Buradaki kültürde, desenli ve düz ipek film kültürlerindeki HCLE hücreleri; birinci, dördüncü ve sekizinci günlerde cam kontrol altlıkları ile karşılaştırılır. SQU nükleik asit içeriği ve MTT metabolik aktivite deneyi verileriyle yapılan kültür kantifikasyonu, zaman içinde cam kontrol yüzeyleriyle karşılaştırıldığında, hem desenli hem de düz ipek film altlıklarında HCLE canlılığını kanıtlamaktadır.Burada, desenli bir ipek film yüzeyi üzerinde göç eden HCLE hücrelerinin zaman ayarlı faz kontrast görüntülemesi gösterilmektedir. 18 saatlik bir süre boyunca, hücreler santimetrekareye 10.000 hücre yoğunluğunda yerleştirilmiş ve görüntüleme öncesinde iki saat boyunca kültüre edilmiştir; karşılaştırma amacıyla, aynı kültür koşulları altında 18 saatlik bir süre boyunca düz bir kontrol yüzeyi üzerinde göç eden HCLE hücrelerinin zaman ayarlı faz kontrast görüntülemesi gösterilmiştir. İpek çözeltisi ve silikon kalıp hazırlandıktan sonra, bu prosedür doğru şekilde uygulandığında teknik sekiz saat içinde tamamlanabilir.Bu çeşitli özel tasarım hizmetleri sonrası hücre yanıtını daha iyi anlamak için immünofloresan tarama, elektron mikroskobu ve western blot ile immünolojik analizler gibi moleküler biyoloji tekniklerinin yanı sıra hücre canlılığı, hücre proliferasyonu ve metabolik hız gibi kimyasal analizler de değerlendirilebilir. Bu videoyu izledikten sonra, ipek çözeltisinin nasıl hazırlanacağı, özelleştirilmiş desenlerin ve ipek filmlerin nasıl oluşturulacağı ve bu substratlar üzerinde herhangi bir hücre tipinin nasıl kültüre edileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

silk-film-culture-system-for-in-vitro-analysis-and-biomaterial-design

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Biz hücreleri ve embriyolar incelemek için bir cihaz ve yeni bir yöntem sunulmuştur. Tek hücreler tam microcavity dizileri sıralanır. Onların 3D hapsi fizyolojik koşullarda karşılaşılan 3D ortamlarda yolunda atılmış bir adımdır ve organel yönünü verir. Hücre şekli kontrol ederek, bu kurulum standart deneylerde bildirilen değişkenlik en aza indirir.

Tek Hücreleri ve 3D Sınırlaması Tek Embriyolar Sipariş: Yüksek İçerik Tarama için Yeni Bir Cihaz

Beynin karmaşık eylemlerine ilişkin içgörü, gelişmiş araştırma araçları gerektirir. Burada, beyin benzeri mimariye benzeyen yeni bir ipek kollajen bazlı 3D mühendislik nöral doku modelini gösteriyoruz. Model, nöronal ağ montajı, aksonal rehberlik, hücre-hücre etkileşimleri ve elektriksel aktiviteyi incelemek için kullanılabilir.

Polarize Sinir Doku Engineered 3D İpek-kolajen bazlı Modeli

Oksijen ve besin sağlamak için bir perfüzyon biyoreaktör sistemi kullanılarak kültürlenebilen 3D meme kanseri vekilleri oluşturmak için bir yöntem gösteriyoruz. Büyümeyi takiben, vekiller sabitlenir ve ilgilenilen parametrelerin değerlendirilmesi için parafine işlenir. Böyle bir parametrenin, hücre yoğunluğunun değerlendirilmesi açıklanmaktadır.

Hazırlama ve Analizler<em&gt; İn Vitro</em&gt; Üç Boyutlu Meme Kanseri Suretler

Bu makalede, bir Multiplexed yapay hücresel MicroEnvironment (MACME) dizi taklit eden vivo içinde hücresel microenvironments fiziksel ve kimyasal yüksek üretilen iş manipülasyonu ipuçları ve için hazırlamak için ayrıntılı metodolojisi insan pluripotent kök hücreler (hPSCs) için en iyi hücresel ortam tek hücreli profil oluşturma ile tanımlayın.

Çoğaltılmış yapay hücresel MicroEnvironment dizi imalatı

Polimer ince film Kompozit yapıların farklı Young'un dönmeler ya da kalınlıkları sahip üretim süreci için bir protokol sunulmuştur. Filmler için Gelişmiş hücre kültür çalışmaları veya deri yapıştırıcı olarak üretilmektedir.

İnce Film kompozit silikon elastomer hücre kültürü ve cilt uygulamaları için: üretim ve karakterizasyonu

Bu yazıda, organoidlerin yüksek çözünürlüklü mikroskopi kullanılarak kültürlenebildiği ve gözlemlenebildiğimm2 başına yüzlerce mikro konteynere sahip yeni bir kültür substratı türü için bir üretim protokolü sunulmaktadır. Hücre tohumlama ve immün boyama protokolleri de detaylandırılmıştır.

Organoidlerin kültürü ve 3D görüntülenmesi için yüksek verimli bir platform

Burada, kanser-bağışıklık döngüsünü oluşturan adımları izlemek ve karakterize etmek için basit, hızlı ve güvenilir bir multiparametrik akış sitometrisi ve çip üzerinde tümör destekli protokolü detaylandırıyoruz. Gerçekten de, kanser ve bağışıklık hücreleri arasındaki etkileşimlerin kapsamlı bir şekilde anlaşılması, tümörleri alt etmek ve klinik bakıma rehberlik etmek için kritik bilgiler sağlar.

Kanser-Bağışıklık Döngüsünü Çoğaltmak için İn Vitro Sistemlerde Ko-Kültür

Bu protokol, embriyo implantasyon sürecini etkileyen ilgili molekülleri değerlendirmek için in vitro model olarak basit ve verimli embriyo implantasyonu oluşturmak için metodolojileri açıklar.

İn Vitro Embriyo İmplantasyon Modelinin Kurulması

Plastik membranlı doku kültürü ekleri, hücre katmanları ve bariyer doku modelleri oluşturmak için geçirgen destekler olarak hücre kültürü laboratuvarlarında altın standarttır. Burada, plastik zarı, rekombinant işlevselleştirilmiş bir örümcek ipeği proteininden yapılmış biyolojik olarak daha ilgili bir zarla değiştirmek için basit bir yöntem sunuyoruz.

Özel Yapım Doku Kültürü Eklerinde Rekombinant İşlevselleştirilmiş Örümcek İpeğinden Yapılmış Nanofibriler Bazal Membran Taklidi

3D fibrin aljinat nüfuz ağ over folikül kapsülleme için yeni bir yöntem açıklanmıştır. Bu sistem, olgun oosit üretmek için olgunlaşmamış köklerinin gelişimini desteklemek için proteolitik degradasyon ile yapısal destek birleştirir. Bu yöntem, hücre-hücre genişleme sınırlayıcı olmadan kişileri korumak için kültürü hücre agrega uygulanan olabilir.

Proteolitik Degradable 3 Boyutlu Sistem Yumurtalık Folikül Encapsulation ve Kültür Bir Yöntem

Öğrenin ipek film in vitro kültür sistemi ile biyomalzeme tasarımı ve hücre davranışlarını analiz etme yöntemini. Bu teknik yüksek biyouyumlu silk film platformu sunar.

Için İpek Film Kültür Sistemi In vitro Analizi ve Tasarımı Biyomateryal

Daha fazla video keşfet