Name: Tek Oosit Bisülfit Mutagenez (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-27T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 18 s
Description: Öğrenin tek oosit bisülfit mutagenez yöntemiyle DNA metilasyon analizini. Bu protokol, erken embriyonik gelişimde epigenetik düzenlemeyi incelemek için tek hücre düzeyinde güvenilir veri sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Batı Ontario, Doğum ve Jinekoloji Anabilim Dalı Üniversitesi tarafından desteklenen ve Ministryof Araştırma ve Yenilikçilik, Erken Araştırmacı Ödülü bir hibe ER06-02-188. MMD Üreme, Erken Gelişim ve Sağlık (REDIH) Lisansüstü Bursu ile Etki bir CIHR Eğitim Programı tarafından desteklenmiştir.

1. GÜN Böyle GIBCO su gibi steril, distile su ile oosit toplama günü taze aşağıdaki çözümleri hazırlayın. DNA bulaşma olasılığını azaltmak için, çoğu zaman eldiven değiştirme ve filtre ipuçlarını kullanın. Zaman açık tüpler uzak açılı tutun ve kullanılmadığı zaman tüm tüpler recap. Biz çözümler n +1 olarak yapılır öneririz. % 3 LMP Agaroz 30 mg Düşük Erime Noktası (LMP) agaroz 1 ml GIBCO H 2 O @ 70 çözülür ° C Lizis Çözüm 8 ul lizis tamponu 1 ul proteinaz K 1 ul% 10 IGEPAL kullanıma hazır olana kadar buz üzerinde yer 02:01 Agaroz: Lysis Çözüm (bireysel oosit başına 10 ul, miktarı 3 oosit için) 20 ul% 3 LMP agaroz 10 ul Lizis Çözüm @ 70 karıştırın ° C SDS Lysis Tampon (bireysel oosit başına 501 ul) <table border="0"><tbody><tr><td> 1x TE pH 7.5 </td><td> 450 ul </td></tr><tr><td> % 10 SDS </td><td> 50 ul </td></tr><tr><td> Proteinaz K </td><td> 1 ul </td></tr><tr><td></td><td> 501 ul </td></tr></tbody></table> 1. Yumurta Toplama <ol><li> M2 medyada disseke fare siyon hatası yerleştirin ve kümülüs hücre kompleksi ayıklamak için ampullae gözyaşı. </li><li> 0.3 mg / M2 medya 30 ul açılan ml hyaluronidaz çözümü kullanarak kümülüs hücre kompleksinden oosit ayırın. Sadece uzun uzun pozlama onlara zarar verebileceği gibi, kümülüs hücreleri çıkarmak için alır gibi çözüm oosit tutun. Periyodik kümülüs hücreleri giderici M2 medya 30 ul açılan 3x oosit, yıkayın. </li><li> Asidik tyrode çözümü kullanarak zona pellucida çıkarın. Bir 30 transfer daha sonra ilk çözüm biri 30 ul açılan oosit yerleştirin veul damla gibi birlikte yürütülen herhangi bir medya asit sulandırmak ve etkinliğini azaltacaktır. Sadece sürece uzun pozlama onlara zarar verebilir, zona kaldırmak için alır gibi çözüm oosit tutun. Not: insan zona pellucida fare daha asidik Tyrode çözeltisi ile muamele daha dirençli olduğu gibi asidik çözeltisi ya da Tyrode pronaz artan bir konsantrasyon, insan numuneler için kullanılabilir. </li><li> Bir kez daha M2 medya 30 ul açılan oosit yıkayın. </li></ol> 2. Agaroz gömülmesi ve Lizis <ol><li> Agaroz gömme gerçekleştirmek için, bir 70 ° C heatblock üzerine lizis çözeltisi yerleştirin. Lizis çözüm: 2:1 agaroz üreten lizis çözümü için önceden ısıtılmış LMP agaroz ekleyin. </li><li> Minimal M2 medyada temiz bir cam slayt üzerine tek bir yumurta koyun. Bir pipet içine lizis solüsyonu ve (mikroskop altında) yavaşça damla ile karışmasına izin cam slayt üzerine (~ 1 ul veya daha az) küçük bir miktar sınırdışı: agaroz 10 ul sürebiliral ortam. Yavaşça pipet içine oosit pick up ve boncuk bir küre oluşturur böylece 300 ul mineral yağ ile bir Eppendorf tüp içine tüm 10 ul koydu. Not: Bu işlem agaroz gibi oldukça hızlı bir şekilde yapılmalıdır donacaktır sıcaklığı az 5 ° C ile 70 ° C&#39;nin altına düşerse </li><li> 10 dakika süreyle buz üzerinde inkübe tüpü. Lizis gerçekleştirmek için, 300 ul mineral yağ kaldırmak ve SDS lizis tampon 500 ul ekleyin. 50 ° C su banyosunda gece inkübe edin. Not: Lysis çözeltisi (Tablo 1), aynı zamanda, bu amaç için kullanılabilir. </li></ol> 2. GÜN Bisülfit mutagenez gününde taze aşağıdaki çözümleri hazırlayın. DNA bulaşma olasılığını azaltmak için, çoğu zaman eldiven değiştirme ve filtre ipuçlarını kullanın. Zaman açık tüpler uzak açılı tutun ve kullanılmadığı zaman tüm tüpler recap. Biz çözümler n +1 olarak yapılır öneririz. <table border="0"><tbody><tr><td> 3 M NaOH </td> &lt;20 ml otoklavlanmış GKD 2 O td&gt; 2.4 g NaOH </td></tr><tr><td> 0.1 M NaOH </td><td> 14.5 ml otoklavlanmış GKD 2 O 3M 0.5 ml </td></tr><tr><td> 0.3 M NaOH </td><td> 13.5 ml otoklavlanmış GKD 2 O 3M 1.5 ml </td></tr></tbody></table> 2.5 M Bisülfit Çözüm <ol class="lalpha"><li> 3.8 g sodyum bisülfit 5.5 ml damıtılmış GIBCO H2O 1 ml 3 M NaOH @ oda sıcaklığında çözülür </li><li> 110 mg Hidrokinon 1 ml damıtılmış GIBCO H2O @ 90 ° C (sadece sürece eritmek için alır gibi için, düzenli mix) çözülür </li></ol> Tamamen çözündüğünde çözeltisi (a) karışımı ve (b) * Işık * uzak tutun 3. Bisülfit Mutagenezi <ol><li> Tam 500 ul SDS lizis tamponu çıkarın ve 300 ul mineral yağ (~ 20 saat) ekleyin. Kalan herhangi bir lizis tamponu inci sulandırmak olure agaroz bu ısıtılır ve boncuk sonraki adımlarda eriterek daha duyarlı olacak zaman. Hemen bisülfit mutagenez ile devam edin, ya da 5 güne kadar -20 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Varsa, dondurucudan oosit kaldırmak ve (agaroz boncuk nispeten saydam sadece kadar) çözülme sağlar. 10 dakika buz üzerinde hangi inkübe takiben, 90 ° C ısıya blok üzerinde 2.5 dakika inkübe. Not: karıştırmak veya karıştırın, daha uzun süre 2.5 dakika uzatmak, ya da sıcaklık dalgalanma etmeyin. </li><li> Denatürasyon gerçekleştirmek için, mineral yağ çıkarmak ve her tüp, fiske 1 ml 0.1M NaOH ekleyin ve 5-6 kez ters çevirin. </li><li> Ters bir 37 ° C su banyosunda 15 dakika, her 3-4 dakika inkübe edin. Boncuk NaOH içinde yüzer olmalıdır. </li><li> Bisülfit tedavi gerçekleştirmek için hafifçe döndürün tüp, daha sonra NaOH kaldırmak ve 300 ul mineral yağ ve 500 ul bisülfit çözeltisi ekleyin. 50 ° C su banyosunda 3.5 saat boyunca tüp inkübe edin. * Işık * uzak tutun </strong&gt; Not: inkübasyon süresi ampirik ilgi gen için belirlenen gerekebilir. </li><li> Desulfonation gerçekleştirmek için, 3 dakika buz üzerinde inkübe, daha sonra, madeni yağ ve bisülfit çözüm kaldırmak hafifçe döndürün ve 1 ml 0.3 M NaOH ekleyin. Flick ve 5-6 kez ters çevirin. </li><li> Ters bir 37 ° C su banyosunda 15 dakika, her 3-4 dakika inkübe edin. Boncuk NaOH içinde yüzer olmalıdır. </li><li> Örnekleri yıkayın, önce yumuşak iplik tarafından, daha sonra NaOH kaldırmak ve 1 ml 1x TE pH 7.5 ekleyin. Oda sıcaklığında (bir çalkalayıcı) de 5-10 dakika boyunca sallayın. Tekrar yavaşça çevirin, daha sonra 1x TE kaldırın. Bu yıkama işlemi iki kez tekrarlayın. </li><li> 1 ml otoklav GKD 2 O. ekle Oda sıcaklığında (bir çalkalayıcı) de 5-10 dakika boyunca sallayın. Yavaşça Spin, daha sonra 2 H, O. kaldırmak Iki kez GKD 2 O yıkama tekrarlayın. </li><li> Üstte kalan sıvı kısmın pH kontrol edilir; bu pH 5,0 olmalıdır. Hala çok temel varsa, H 2 O ile tekrar yıkayın Sadece agaroz olması bırakarak, tüm süpernatantıreklam. </li></ol> 4. 1. ve 2. Yuvarlak PCR <ol><li> ** Yıkarken 1. tur PCR karışımı hazırlayın ** </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> Forward Outer 10 uM Astar </td><td> 0.5 ul </td></tr><tr><td> Dış 10 uM Astar Ters </td><td> 0.5 ul </td></tr><tr><td> 240 ng / ml tRNA </td><td> 1 ul </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 13 ul </td></tr></tbody></table> Misal-Hazır git Sıcak Başlangıç ​​PCR boncuk ekle Dikkatle PCR tüpü (~ 10 ul) içine katı agaroz boncuk kaydırın 70 ° C ve karıştırın Isı 25 ul mineral yağ ekleyin Toplam: 50 ul <ol start="2"><li> Yükseltmek Not: Fare Snrpn için minimize eder bir örneği, 94 de 2 dakika süreyle 94 denatürasyon olup az 30 saniye 40 döngü izledi ° C, ° C, 50 ° C&#39;de 1 dakika ile 168 dakikada ° C ve 68 azından bir nihai uzamaya 10 dakikalık bir adım ° C. 1. turda fare H19 için PCR ve Peg3 sıcaklık Tavlama 50 ° C&#39;dir </li><li> 2. turda PCR karışımı hazırlayın </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> İleri İç 10 uM Astar </td><td> 0.5 ul </td></tr><tr><td> İç 10 uM Astar Ters </td><td> 0.5 ul </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 19 ul </td></tr></tbody></table> Misal-Hazır git Sıcak Başlangıç ​​PCR boncuk ekle Bir şablon olarak 5 ul 1. Yuvarlak ürün ekleyin. ° C&#39;de 1 dakika agaroz yumuşatmak için 70 1. turda ürün ısıtın. Mineral yağ tabakası altında Pipeti emin olun. 25 ul mineral yağ ekleyin Toplam: 50 ul Not: Snrpn, H19 ve Peg3 için iç içe primer dizilerinden Pazar-Velker ark 10 bulunabilir,12. <ol start="4"><li> Yükseltmek Not: BİSİKLET koşulları fare Snrpn için 94 de 2 dakika süreyle 94 ° denatürasyon az 30 saniye 40 döngü izledi C, ° C, 50 ° C&#39;de 1 dakika ve 68 de 1 dakika ° C ve 10 dakikalık bir nihai uzamaya 68 de adım ° C&#39;de 10. Fare H19 ve Peg3 gerektiren bir 50 ° C 2. tur PCR sıcaklık tavlama. </li><li> Bir tanı testi olarak, ikinci turda örnekleri metilasyon veya suş spesifik bir restriksiyon enzimi ile kesilebilir. </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 2. Yuvarlak ürün </td><td> 4 ul </td></tr><tr><td> Kısıtlama Enzim </td><td> 1 ul </td></tr><tr><td> Tampon </td><td> 1 ul </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 4 ul </td></tr></tbody></table><ol start="6"><li> Bir 8% akrilamid jel üzerinde, sindirim ürünleri Electrophorese. Herhangi bir heterojen bantları, birden fazla seque temsilnce. </li></ol> 5.. TA Klonlama ve Colony PCR <ol><li> 2. yuvarlak ürün, 70 ilk ısı klonlamak için ° C 1 dakika Promega pGEM-T Vector Sistemi (Fisher Scientific Kedi # A1360) kullanarak vektör sonra içine ligate agaroz, yumuşatmak için. </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 2. Yuvarlak PCR </td><td> 1 ul </td></tr><tr><td> pGEMT-KOLAY vektör </td><td> 1 ul </td></tr><tr><td> Ligaz </td><td> 1 ul </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 2 ul </td></tr><tr><td> 2x Ligasyonu Tampon </td><td> 5 ul </td></tr></tbody></table> Gece @ 4 ° C PCR makinesi inkübe edin. <ol start="2"><li> 15 dakika buz üzerinde yetkili E.coli hücreleri (Zymo Research Corp Kedi # T3009) çözülmesini sağlayın. 8 ul E.coli ve 15 dakika buz üzerinde inkübe ligasyona 3 ul ligasyon reaksiyonu ekleyin. </li><li> 42 ° C su banyosunda 40 saniye için ısı çarpması,ve 2 dakika buz üzerinde inkübe. 1 saat (sallama) için 37 ° C&#39;de 60 ul SOC orta ve inkübe ekleyin. </li><li> 37 ° C&#39;da gece boyunca bir LB / Agar / IPTG / Xgal / Amp plakası ve inkübe plaka üzerinde, reaksiyon karışımına tüm yerleştirin. </li><li> Koloni PCR karışımı hazırlayın </li></ol><table border="0"><tbody><tr><td> 20 uM M13 İleri Astar </td><td> 0.7 ul </td></tr><tr><td> 20 uM M13 Ters Astar </td><td> 0.7 ul </td></tr><tr><td> 5X Yeşil Go Taq Tampon </td><td> 7.0 ul </td></tr><tr><td> 10 mM dNTP </td><td> 0.7 ul </td></tr><tr><td> Taq DNA polimeraz </td><td> 0.28 ul </td></tr><tr><td> H2O </td><td> 25.62 ul </td></tr><tr><td></td><td> 35 ul toplam </td></tr></tbody></table> Bir PCR tüpüne 35 ul Colony PCR master miks ekleyin. Bir pipet ve PCR reaksiyon içine girdap onunla plakadan beyaz bir bakteri kolonisi seçin. <ol start="6"><li> 94 de 10 dakika boyunca denatürasyon ile amplifiye ° 94, 45 saniye 30 döngü izledi C, 57 ° C&#39;de, 30 saniye ° C ve 72 de 1 dakika ° C ve 72 azından bir nihai uzamaya 10 dakikalık bir adım ° C. % 1.5 agaroz jel üzerinde 4 ul Electrophorese. Sıralama için PCR ürün ~ 30 ul gönder. Not: oosit için 5 koloni PCR ürünleri dizilerek. </li><li> Sıralama sonuçları elde edildikten sonra, metilasyonu okunabilir. Bir CG olarak kalmıştır herhangi bir orijinal CG metillenmiş ve şimdi bir TG herhangi bir orijinal CG unmethylated edildi. </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar Bizim çalışmalarımızda, tahlil bireysel oosit ve embriyoların (Şekil 1) metilasyon basılır. Bisülfit dönüştürülür primerler kullanılarak iç içe PCR ardından, bir agaroz jel (Şekil 2) bir doğru parçası boyutu görselleştirerek başarılı bir dönüşüm onaylamak mümkün. Bir birey oositBir ebeveyn aleli temsil eder, ve teorik olarak, bir baskılı metilasyon paterni vardır. Bu nedenle, ikinci tur PCR ürünleri kasıtsız kontaminasyon için test edilebilir. DNA metilasyon (örneğin HinfI ya DpnII gibi) karşı duyarlı bir kısıtlayıcı enzim, bir metil veya unmethylated alel (Şekil 3) içermesi durumunda değerlendirmek için ikinci turda PCR ürünü sindirimi için kullanılabilir. T dönüştürülür bir unmethylated C artık enzimi tarafından tanınan ve kesilmemiş bir durumdayken enzim tanıma dizisi içinde bir metil C parçalanabilen edilir. Bu kümülüs hücre kontaminasyonu (Şekil 3) göstergesi olarak metillenmiş ve unmethylated allelleri hem içeren herhangi bir MII oosit örnek, atılmalıdır. Ligasyonu ve dönüşüm sonrasında, başarılı bir koloni PCR doğru ürün boyutu numunelerde (Şekil 4) sıralama için gönderilir sağlamak için bir jelde görüntülenebilmekte. Son olarak, beş ayrı cl sekansıBir MII oosit den olanlar beş aynı metilasyonu ve aynı nonCpG dönüşüm oranları (Şekil 5a) üretmelidir. Birden fazla desen içeren herhangi bir örneği (Şekil 5B) atılmalıdır. Ovulasyon MII oosit iki kromozom kopya veya ekli bir kutup bedene sahip olduğundan, benzer iki dizi paternleri (Şekil 5c) elde etmek için bir olasılık vardır. Biz kümülüs hücre kontaminasyonu ekarte edilemez yana oldukça farklı metilasyonu sahip oositler gelen verileri atarak öneririz. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig1.jpg" /> Şekil 1. Tek Oosit Bisülfit Mutagenez tahlil şematik. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig2.jpg" /> Bir şarkı gelen Snrpn için 2. turda amplifikasyon Şekil 2&#39;de. Temsilcisi sonuçları% 1.5 agaroz jel le MII oosit. Lanes 1-4 dört tek MII oosit ve şeritli 5 negatif kontrol (oosit) &#39;dir. Snrpn Beklenen amplikon boyutu 420 bp olduğunu. L, merdiven. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig3.jpg" /> % 8&#39;lik bir akrilamid jel üzerinde tek bir MII oosit den Snrpn için 2. turda metilasyon spesifik sınırlama sindirim gelen Şekil 3. Temsilcisi sonuçları. HinfI tanı sınırlama sindirim (420bp, hat 1) kısıtlama sitesi yasaklayan bir T barındırıyor unmethylated DNA gösterir ya (kesim, 262, 103, ve 54 bp, şerit 2) tanıma site içinde bir C içerir metillenmiş DNA. Metillenmiş ve unmethylated hem restriksiyon enzimi siteleri (kesim ve kesilmemiş bantlar, şerit 3) gösteren Sindirim kümülüs hücre kontaminasyonu göstergesidir. L, merdiven. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/4046/4046fig4.jpg" /> Şekil 4. </strong&gt;% 1.5 agaroz jel üzerinde tek bir MII oosit den Snrpn için koloni PCR Temsilcisi sonuçlar. Beklenen amplikon boyutu pGEM-T Kolay vektör Snrpn ligasyonu takip eden ve ileri M13 kullanarak ve geri primerleri 656 bp olduğunu. Lane 1-8, klonlar 1-8 dan amplikonlar. Clone 5 yanlış bir amplikon boyutu vardır ve sıralama için gönderilen edilmemelidir. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/4046/4046fig5.jpg" /> Şekil 5. Temsilcisi tek MII oosit den Snrpn sonuçları sıralama. Snrpn oositlerinde metillenmiş edilir. Siyah daireler metillenmiş CpG&#39;ler göstermektedir. Beyaz çevreler unmethylated CpG&#39;ler göstermektedir. CpG sayısı ve yerleşimi bir B6 suşu dişi fare temsilcisidir. a) Tek bir MII oosit den Snrpn sonuçları sıralama bekleniyordu. DNA Yalnızca tek bir iplikçik beş klon yükseltmek gerekir. Tek bir metilasyon paterni ve özdeş olmayan CpG dönüşüm pıtırtı ile oositn (non-larını yüzde dönüşüm toplam olmayan CpG sitozinleri bir yüzdesi olarak timin dönüştürülür non-CpG sitozinleri sayısı olarak hesaplandı sağa gösterilir) analizleri dahil edilmesi gerekmektedir. kümülüs hücre kontaminasyonu ile tek MII oosit den Snrpn b) Sıralama sonuçları. Birden iplikçik amplifikasyon belirten metilasyon devletler ve dönüşüm kalıpları arasındaki farklılık dikkat edin. c) kromozom kopya veya polar body dahil ikisi de tek bir MII oosit den Snrpn sonuçları Sıralama.

<ol><li>Jaenisch, R., Bird, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetic+regulation+of+gene+expression%3A+how+the+genome+integrates+intrinsic+and+environmental+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals.</a> Nat. Genet. 33, 245-254 (2003).</li>
<li>Rodenhiser, D., Mann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+and+human+disease%3A+translating+basic+biology+into+clinical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22CMAJ%22%5BJournal%5D)">Epigenetics and human disease: translating basic biology into clinical applications.</a> CMAJ. 174, 341-348 (2006).</li>
<li>Frommer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genomic+sequencing+protocol+that+yields+a+positive+display+of+5-methylcytosine+residues+in+individual+DNA+strands%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A genomic sequencing protocol that yields a positive display of 5-methylcytosine residues in individual DNA strands.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 1827-1831 (1992).</li>
<li>Clark, S. J., Harrison, J., Paul, C. L., Frommer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+sensitivity+mapping+of+methylated+cytosines%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">High sensitivity mapping of methylated cytosines.</a> Nucleic Acids Res. 22, 2990-2997 (1994).</li>
<li>Feil, R., Charlton, J., Bird, A. P., Walter, J., Reik, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methylation+analysis+on+individual+chromosomes%3A+improved+protocol+for+bisulphite+genomic+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Methylation analysis on individual chromosomes: improved protocol for bisulphite genomic sequencing.</a> Nucleic Acids Res. 22, 695-696 (1994).</li>
<li>Raizis, A. M., Schmitt, F., Jost, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+bisulfite+method+of+5-methylcytosine+mapping+that+minimizes+template+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">A bisulfite method of 5-methylcytosine mapping that minimizes template degradation.</a> Anal. Biochem. 226, 161-166 (1995).</li>
<li>Patterson, K., Molloy, L., Qu, W., Clark, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+Methylation%3A+Bisulphite+Modification+and+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">DNA Methylation: Bisulphite Modification and Analysis.</a> J. Vis. Exp. (56), e3170(2011).</li>
<li>Olek, A., Oswald, J., Walter, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+and+improved+method+for+bisulphite+based+cytosine+methylation+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">A modified and improved method for bisulphite based cytosine methylation analysis.</a> Nucleic Acids Res. 24, 5064-5066 (1996).</li>
<li>Mann, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+loss+of+imprinting+in+the+placenta+following+preimplantation+development+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Selective loss of imprinting in the placenta following preimplantation development in culture.</a> Development. 131, 3727-3735 (2004).</li>
<li>Market-Velker, B. A., Zhang, L., Magri, L. S., Bonvissuto, A. C., Mann, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+effects+of+superovulation%3A+loss+of+maternal+and+paternal+imprinted+methylation+in+a+dose-dependent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">Dual effects of superovulation: loss of maternal and paternal imprinted methylation in a dose-dependent manner.</a> Hum. Mol. Genet. 19, 36-51 (2010).</li>
<li>Meng, L. H., Xiao, S. Q., Huang, X. F., Zhou, Y., Xu, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+study+on+bisulfite+sequencing+method+for+methylation+status+of+imprinted+genes+in+single+human+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Zhonghua+Yi+Xue+Yi+Chuan+Xue+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">A study on bisulfite sequencing method for methylation status of imprinted genes in single human oocytes.</a> Zhonghua Yi Xue Yi Chuan Xue Za Zhi. 25, 289-292 (2008).</li>
<li>Denomme, M. M., Zhang, L., Mann, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+imprinting+perturbations+do+not+originate+from+superovulation-induced+defects+in+DNA+methylation+acquisition%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil.+Steril%22%5BJournal%5D)">Embryonic imprinting perturbations do not originate from superovulation-induced defects in DNA methylation acquisition.</a> Fertil. Steril. 96, 734-738 (2011).</li>
<li>Tahiliani, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conversion+of+5-methylcytosine+to+5-hydroxymethylcytosine+in+mammalian+DNA+by+MLL+partner+TET1%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Conversion of 5-methylcytosine to 5-hydroxymethylcytosine in mammalian DNA by MLL partner TET1.</a> Science. 324, 930-935 (2009).</li>
<li>Hajj, N. E. l <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limiting+dilution+bisulfite+%28pyro%29sequencing+reveals+parent-specific+methylation+patterns+in+single+early+mouse+embryos+and+bovine+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Epigenetics%22%5BJournal%5D)">Limiting dilution bisulfite (pyro)sequencing reveals parent-specific methylation patterns in single early mouse embryos and bovine oocytes.</a> Epigenetics. 6, 1176-1188 (2011).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Bu tek yumurta tahlil kritik ve özel bakım gerektiren bir dizi ile birçok adımları içerir. İlk oosit yıkanmasıdır. Mümkün olduğunca çok kümülüs hücreleri olarak kaldırmak için hiyalüronidaz tedaviyi takiben düşer taze ortamda her oosit birden çok kez yıkamak için özellikle önemlidir. Ayrıca, zona pellucida kaldırılması için asidik tyrode çözümü için oosit aktarırken orta çevreleyen cumulus hücreleri temiz olduğundan emin olun. Oosit zona çıkarılmasını takiben çok yapışkan ve herhangi çevreleyen cumulus hücreleri kolayca...

Özel reaktifler ve ekipman Tablo. <table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td colspan="4"> Yumurta Toplama </td></tr><tr><td> Hyaluronidase </td><td> Sigma </td><td> H4272 </td><td></td></tr><tr><td> Asidik Tyrode </td><td> Sigma </td><td> T1788 </td><td></td></tr><tr><td> Proteinaz K </td><td> Sigma </td><td> P5568 </td><td></td></tr><tr><td> % 10 IGEPAL </td><td> Bioshop </td><td> NON999.500 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Lizis Çözüm </td></tr><tr><td> Tris pH 7.5 </td><td> Bioshop </td><td> TRS001.5 </td><td></td></tr><tr><td> LiCl </td><td> Sigma </td><td> L9650 </td><td> &amp; Nbsp; </td></tr><tr><td> EDTA pH 8.0 </td><td> Sigma </td><td> E5134 </td><td></td></tr><tr><td> KAPAKLAR </td><td> Bioshop </td><td> LDS701.10 </td><td></td></tr><tr><td> DTT </td><td> Invitrogen </td><td> P2325 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> SDS Lizis Tampon </td></tr><tr><td> TE pH 7.5 </td><td> Bioshop (Tris) Sigma (EDTA) </td><td> TRS001.5 E5134 </td><td></td></tr><tr><td> % 10 SDS </td><td> Bioshop </td><td> SDS001.500 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Bisülfit Dönüşüm </td></tr><tr><td> Sodyum Hidroksit </td><td> Sigma </td><td> S8045 </td><td></td></tr><tr><td> Sodyum hidrojensülfit (sodyum bisülfit) </td><td> Sigma </td><td> 243973 </td><td>; </td></tr><tr><td> Hidrokinon </td><td> Sigma </td><td> H9003 </td><td></td></tr><tr><td> Düşük Erime Noktası (LMP) agaroz </td><td> Sigma </td><td> A9414 </td><td></td></tr><tr><td> Madeni Yağ </td><td> Sigma </td><td> M8410 </td><td></td></tr><tr><td> M2 Orta </td><td> Sigma </td><td> M7167 </td><td></td></tr><tr><td> GIBCO Damıtılmış su </td><td> Invitrogen </td><td> 15230-196 </td><td></td></tr><tr><td> Otoklavlı çift distile (dd) su </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> PCR </td></tr><tr><td> Misal Sıcak Başlangıç ​​Mix RTG </td><td> GE Healthcare </td><td> 28-9006-54 </td><td></td></tr><tr><td> 240 ng / ml maya tRNA </td><td> Invitrogen </td><td> 15401-011 </td><td></td></tr><tr><td> 5x Yeşil GoTaq Reaksiyon Tamponu </td><td> Profesyonelmega </td><td> M7911 </td><td></td></tr><tr><td> İç ve dış iç içe primerler </td><td> Sigma </td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Ligasyonu </td></tr><tr><td> Promega pGEM-T Kolay Vektör </td><td> Fisher Scientific </td><td> A1360 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> TA Klonlama </td></tr><tr><td> Yetkili E.coli hücreleri </td><td> Zymo Araştırma Corp </td><td> T3009 </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Ekipman </td></tr><tr><td> Mikroskop Kesme </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 70 ° C ile 90 ° C Isı Blokları </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 37 ° C ile 50 ° C Isıtıcıları (42 ° C dönüşümler için) </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rock&#39;çı </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> PCR makinesi </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

tek oosit bisülfit mutagenez

Single Oocyte Bisulfite Mutagenesis

Epigenetik tüm kalıtsal kapsar ve geri dönüşümlü değişiklikler dolayısıyla alter gen erişilebilirlik ve gen transkripsiyonu 1 düzenleyen birincil mekanizmaları olduğunu kromatine. DNA metilasyon baskıcı bir işareti olarak ağırlıklı olarak hareket eden bir epigenetik modifikasyon olduğunu. CpG dinucleotides in sitozinleri üzerine, bir metil grubu ile kovalent yanı boyunca, bu kromatin kondensasyon ve genler 2 susturulmasında süreçleri başlatmak için ek protein ve baskıcı histon modifikasyonları katabildikleri. Bu gelişimsel programlama, hücre farklılaşması, retroviral elemanlarının baskı, X kromozomu inaktivasyonu ve genomik imprinting kritik bir rol oynar gibi DNA metilasyon normal gelişimi için gereklidir. DNA metilasyon analizi için en etkili yöntemlerinden biri bisülfit mutagenez olduğunu. Sodyum bisülfit uracils içine sitozinleri deaminates bir DNA mutajen olup. PCR ve seque ardından<html> ncing, bu dönüşüm olaylar thymines olarak algılanır. Metillenmiş sitozinleri deaminasyon korumalıdır ve böylece kişi nükleotid 3. seviyede DNA metilasyon belirlenmesini sağlamaktadır sitozinleri olarak kalır. Bisülfit mutagenez testin geliştirilmesi başlangıçta daha duyarlı ve 7 tekrarlanabilir hangileri doğru 4-6 bildirdi olanlardan ilerlemiştir. Bir anahtar ilerleme böylece sert bisülfit tedavisi 8 DNA koruyan bir agaroz boncuk DNA az miktarda gömme edildi. Bu etkin metilasyon analizi oosit ve blastosist aşamasındaki embriyoların 9 havuzlarda yapılacak. Bugüne kadar en sofistike bisülfit mutagenez protokolü bireysel blastosist aşaması embriyo için 10 olduğunu. Blastokist ortalama 64 hücreleri (genomik DNA 120-720 pg içeren) üzerinde var Ancak, bu yöntem bireysel oosit veya klivaj aşamasındaki embryo metilasyon çalışmaları için etkili değildir. çadır &quot;&gt; oosit dahil 11 dakikalık DNA miktarda agaroz gömme gelen ipuçları alarak, burada oosit doğrudan bir agaroz ve lizis çözüm boncuk hemen aşağıdaki alımı ve oosit den zona pellucida çıkarılması gömülü sayede bir yöntem sunuyoruz. Bu bize sağlar iki tek yumurta bisülfit mutagenez başlıca zorlukları aşmak:. bozulması DNA bir dakika miktarda korunması ve çok sayıda protokol adımları boyunca sonraki veri kaybını tek oosit elde edilir gibi önemlisi, havuzlar içinde PCR yanlılık sorunu ortadan kalkar Dahası. , birden fazla metilasyon desen ile herhangi bir örnek analizi 12 dışında tutulabilir yana istenmeyen cumulus hücre kirlenme. Bu metod ile tespit edilebilir Bu protokol, tek hücre düzeyinde DNA metilasyon başarılı bir şekilde ve tekrarlanabilir analizler için geliştirilmiş bir yöntem sağlar ve ideal olarak uygundur bireysel oositlerin yanı sıra klivaj dönemi embriyodan için.

Bisülfit mutagenez DNA metilasyon analizi için altın standarttır. Bizim modifiye protokolü tek hücre düzeyinde DNA metilasyon analizini sağlar ve özellikle bireysel oositler için tasarlanmıştır. Ayrıca, bölünme aşamalı embriyo için de kullanılabilir.

Tek Oosit Bisülfit Mutagenez

Epigenetik, kromatin üzerinde meydana gelen, genlere erişilebilirliği değiştiren tüm kalıtsal ve geri döndürülebilir modifikasyonları kapsar ve dolayısıyla ... için temel mekanizmalardır.

Bu prosedürün genel amacı, tek bir oosit içindeki DNA metilasyonunu analiz etmektir. Bu işlem, öncelikle toplanan oositlerden kumulus hücrelerinin ve soap palita'nın uzaklaştırılmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım ise, eser miktardaki DNA'nın kaybını veya degradasyonunu önlemek için oositin ikiye bir oranında aros lizis çözeltisine gömülmesidir.Ardından bisülfit mutajenezi gerçekleştirilir ve bunu iç içe polimeraz zincir reaksiyonu yoluyla amplifikasyon izler. Son adım, PCR ürününün ligasyonu ve klonlanmasıdır. Daha sonra klonlar seçilir, PCR ile amplifiye edilir ve dizileme için gönderilir.Nihayetinde, bisülfit mutajenezi ve dizileme, tek bir oosit içerisindeki ilgi duyulan bir bölgedeki sitozin fosfat guanin veya CpG dinükleotidlerindeki DNA metilasyonunu göstermek için kullanılır. Bu tekniğin, çok sayıda hücrenin bisülfit mutajenezi gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, oositleri havuzlamadan, PCR yanlılığı ve kimyasal hücre kontaminasyonu olmadan tek bir oositten veri elde edilebilmesidir. Oosit toplama gününde, yazılı protokolde listelenen solüsyonları taze olarak hazırlayın; solüsyonları hazırlarken eldivenleri sık sık değiştirerek ve filtreli uçlar kullanarak DNA kontaminasyonu riskini azaltın, ayrıca tüpler açıkken ağızlarını dışa doğru eğik tutun ve kullanılmadıkları zamanlarda tüm tüplerin kapağını kapatın.Diseke edilmiş fare oviduktlarını M two medyumuna yerleştirerek ve cumulus hücre kompleksini çıkarmak için M makarasını çekerek OSI toplama işlemine başlayın. Ardından, 30 µL'lik M two medyumu damlası içerisinde 0,3 mg/mL hyaluronidase çözeltisi kullanarak oositleri cumulus hücre kompleksinden ayırın. Uzun süreli maruziyet oositlere zarar verebileceğinden, oositleri çözelti içerisinde yalnızca cumulus hücrelerini uzaklaştırmaya yetecek süre boyunca tutun.Oositleri bir damladan diğerine aktararak 30 µL'lik M two medyum damlalarında yıkayın. Toplam üç yıkama boyunca kümülüs hücrelerini periyodik olarak uzaklaştırın. Asidik tyro solüsyonu kullanarak LUCITA'nın Z'sini çıkarın.Öncelikle oositleri 30 µL'lik bir çözelti damlasına yerleştirin, ardından başka bir 30 µL'lik damlaya aktarın. Beraberinde taşınan herhangi bir besiyeri asidi seyreltecek ve etkinliğini azaltacaktır. Uzun süreli maruziyet hücrelere zarar verebileceğinden, sitleri çözelti içerisinde sadece zona pellucida'yı uzaklaştırmaya yetecek süre boyunca tutun.Zona kaldırıldıktan sonra, sitleri tekrar 30 µL M2 medyumu damlası içinde yıkayın; agaroz gömmeyi gerçekleştirmek için öncelikle lizis solüsyonunu 70 °C'lik bir ısıtıcı bloğa yerleştirin. Önceden ısıtılmış düşük erime noktalı (LMP) agarozu lizis solüsyonuna ekleyerek, ikiye bir oranında agaroz ve lizis solüsyonu karışımı elde edin. Ardından, tek bir oositi minimal M2 medyumu içinde temiz bir lam üzerine yerleştirin.Bir sonraki adım, tek hücreyi Agros ve lizis çözeltisine gömmektir. Agros, 65 °C'nin altındaki sıcaklıklarda sertleşeceğinden bu işlem hızlıca yapılmalıdır. Bir mikroskop altında, pipet ucuyla 10 µL Agros lizis çözeltisi alın.Agros lizis çözeltisinden yaklaşık bir mikrolitre veya daha azını lam üzerine nazikçe boşaltarak minimal besiyeri ile karışmasını sağlayın. Oositi pipet ucuyla nazikçe alın. Ardından, oluşan damlacığın küresel bir şekil alması için tüm 10 mikrolitreyi, 300 mikrolitre mineral yağı içeren bir eppendorf tüpüne aktarın.Lizis işlemini gerçekleştirmek için tüpü 10 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin. 300 µL mineral yağı uzaklaştırın ve 500 µL SDS lizis tamponu ekleyin. İkinci gün, örneği 50 °C'ye ayarlanmış bir benmari içinde gece boyunca inkübe edin.Bi sülfit mutajenez çözeltilerini yazılı protokolde açıklandığı şekilde taze olarak hazırlayın. Mutajeneze, 500 µL SDS lizis tamponunu tamamen uzaklaştırarak başlayın. Kalan herhangi bir lizis tamponunun, ısıtıldığında agros'u seyrelteceğini ve boncuğun sonraki adımlarda çözünmeye daha yatkın hale geleceğini unutmayın.Lizis tamponu tamamen uzaklaştırıldıktan sonra, 300 µL mineral yağ ekleyin. Örneği 90 °C sıcaklıktaki ısıtıcı blokta iki buçuk dakika inkübe edin. Karıştırmak, çalkalamak veya sıcaklığı dalgalandırmak için dikkatli olun.İki buçuk dakika sonra, örneği 10 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin. Denatürasyonu gerçekleştirmek için mineral yağı uzaklaştırın ve tüpe 1 mL 0.1 molar sodyum hidroksit ekleyip tüpü beş ila altı kez hafifçe vurarak alt üst edin.Numuneyi 15 dakika boyunca inkübe edin. 37 °C'ye ayarlanmış bir su banyosunda, her üç ila dört dakikada bir ters çevirerek işlem yapın; boncuk sodyum hidroksit içinde yüzmelidir. Boncuğun artık tüpün dibinde olmadığına dikkat edin.Sülfit işlemi gerçekleştirmek için, sodyum hidroksit uzaklaştırıldıktan sonra tüpü nazikçe santrifüjleyin. 300 µL mineral yağ ve 500 µL BIS sülfit çözeltisi ekleyin. Işığa maruz kalmamasına dikkat ederek tüpü 50 °C'lik bir su banyosunda üç buçuk saat inkübe edin.Şimdi destinasyon işlemini gerçekleştirin. Öncelikle, mineral yağı ve BIS sülfit çözeltisini uzaklaştırmadan önce örneği üç dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin. Hafif bir santrifüj sonrası, bir mililitre 0.3 molar sodyum hidroksit ekleyin ve tüpü beş ila altı kez hafifçe vurarak alt üst edin.Numuneyi 15 dakika boyunca inkübe edin. Her üç ila dört dakikada bir ters çevirerek 37 °C su banyosunda bekletin; PCR işlemine başlamadan önce boncukların sodyum hidroksit içerisinde yüzmesi gerekir. Numuneleri önce hafifçe santrifüj ederek yıkayın.Ardından sodyum hidroksidi uzaklaştırın ve bir mililitre 1x TE pH 7.5 ekleyin. Oda sıcaklığında beş ila 10 dakika boyunca çalkalayın. İkinci bir hafif santrifüj işleminin ardından, 1x TE'yi uzaklaştırın.Bu yıkama işlemini iki kez tekrarlayın. Ardından bir mililitre otoklavlanmış, çift distile su ekleyin. Oda sıcaklığında beş ila 10 dakika boyunca çalkalayın, üçüncü kez nazikçe santrifüjleyin ve suyu uzaklaştırın.Çift distile su ile yıkama işlemini iki kez tekrarlayın. Son olarak, sadece aros boncuğu kalacak şekilde tüm süpernatanı uzaklaştırın. Süpernatanın pH değerinin 5.0 olduğunu kontrol edin.Süpernatant hâlâ çok bazikse, boncukları çift distile su ile tekrar yıkayın. Bu sırada, yazılı protokolde açıklandığı gibi PCR tüpüne ilk tur PCR karışımını ekleyin. Katı agro hızını einor tüpünün dudağına doğru kaydırın.Ardından, agro speed'i dikkatlice PCR tüpüne aktarın, bir dakika boyunca 70 °C'de ısıtın ve karıştırın; ardından yazılı protokolde önerilen amplifikasyonu gerçekleştirin. İlk tur amplifikasyonun ardından, ilk tur ürününün 5 µL'sini kalıp olarak kullanarak ikinci tur PCR reaksiyonunu hazırlayın. Pipet ucunun mineral yağı tabakasının altında olduğundan emin olun.Tanı testi olarak, metinde belirtildiği şekilde ikinci amplifikasyon turunu gerçekleştirin. İkinci tur örnekleri, metilasyon veya suş spesifik bir restriksiyon enzimi ile kesilebilir ve sindirim ürünleri %8 akrilamid jelde elektroforezle analiz edilebilir. Ortaya çıkan heterojen bantlar birden fazla diziyi temsil eder; ikinci tur ürününü klonlamak için vektöre ligasyon yapın ve bu videoya eşlik eden makalede açıklandığı şekilde TA klonlama işlemini gerçekleştirin. TA klonlamayı takiben, tüm reaksiyon karışımını ampisilin, X-gal ve IPTG ile desteklenmiş bir LB agar plağına yayın ve plağı 37 °C'de gece boyunca inkübe edin.Ardından, yazılı protokolde belirtildiği şekilde koloni PCR master mix'ini PCR tüpüne ekleyin. Plakadan pipet ucuyla beyaz bir bakteri kolonisi alın ve bunu bir PCR tüpündeki 35 µL koloni PCR master mix'i içerisinde döndürerek karıştırın. Süspansiyonun amplifikasyonuna devam edin; PCR amplifikasyonunu takiben, PCR ürününün 4 µL'sini %1,5 AGROS jel üzerinde elektroforez ile analiz edin.Son olarak, her bir hücre başına beş koloni PCR'ı için yaklaşık 30 µL PCR ürününü sekanslamaya gönderin. Sekanslama sonuçları elde edildiğinde, metilasyon modelleri okunabilir; orijinal haliyle kalan her sitozin guanin metillenmiştir. Aksine, bisülfit ile dönüştürülmüş primerler kullanılarak yapılan nested PCR amplifikasyonu sonrası timin guaninine dönüşen her orijinal sitozin guanin metillenmemiştir.Bir agaroz jel üzerindeki bireysel metafazda doğru fragman boyutunun görselleştirilmesiyle başarılı bir dönüşümün doğrulanması mümkündür. İki oosit bir ebeveyn alelini temsil eder ve teorik olarak buna bağlı olarak tek bir baskılanmış (imprinted) metilasyon paternine sahiptir. İkinci tur PCR ürünleri, istenmeyen kontaminasyon açısından test edilebilir.DNA metilasyonuna duyarlı bir restriksiyon enzimi, ikinci tur PCR ürününü sindirmek ve metillenmiş veya metillenmemiş bir alel içerip içermediğini değerlendirmek için kullanılabilir. Burada, enzim tanıma dizisi içindeki metillenmiş bir sitozin kesilir. Timine dönüştürülmüş metillenmemiş bir sitozin artık enzim tarafından tanınmaz ve kesilmez; ancak hem metillenmiş hem de metillenmemiş aleller içeren herhangi bir metafaz iki oosit örneği, ligasyon ve transformasyon sonrası kumulus hücresi kontaminasyonunun veya polar cisim dahil edilmesinin göstergesi olduğundan atılmalıdır.Başarılı koloni PCR amplifikasyonu, doğru ürün boyutuna sahip örneklerin dizilemeye gönderildiğinden emin olmak için AROS jelinde görselleştirilebilir. Bu örnek için, ligasyon sonrası beklenen amplikon boyutu 56 baz çiftidir. Burada, klon beş yanlış bir amplikon boyutuna sahiptir ve dizilemeye gönderilmemelidir.Metafaz iki oositinden elde edilen beş ayrı klonun sekansı, beş özdeş metilasyon paterni ve özdeş non-CPG konversiyon oranları üretmelidir. Birden fazla patern içeren tüm örnekler elenmelidir. Ovüle olmuş metafaz iki oositleri iki kromozom kopyasına veya yapışık bir polar cisme sahip olduğundan, iki benzer sekans paterni elde edilme olasılığı vardır.Çok farklı metilasyon modellerine sahip olan tüm sitlerden gelen veriler atılmalıdır. Bu prosedür uygulanırken kumulus hücresi kontaminasyonu dışlanamadığından, öncelikle HI IDE işlemini takiben, mümkün olduğunca çok kumulus hücresini uzaklaştırmak için oositlerin taze ortamda defalarca yıkanması gerektiğini hatırlamak önemlidir. İkinci olarak, düşük erime noktalı agaroz 65 °C'nin altındaki sıcaklıklarda sertleşecektir, bu nedenle dikkatli ancak hızlı çalışın.Son olarak, sodyum bisülfat ve hidrokinon ışığa duyarlıdır, bu nedenle reaksiyon tüpleri ve çözeltiler folyo ile sarılmalıdır.

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Oosit mayotik olgunlaşması sırasında kromozom segregasyon hataları nedeniyle anöploidi yatkındır. Anöploid yumurta, kısırlık, düşüklere veya gelişimsel bozukluklar, Down sendromu gibi neden olabilir. Burada, yumurta ve mayotik olgunlaşma incelemek ve Ploidi değerlendirmek için yöntemler seçim malzemeleri tanıtmak için yöntemler açıklanmaktadır.

Fare Oosit Mikroenjeksiyon, olgunlaşması ve ploidi Değerlendirmesi

Burada, fare oosit mayoz mili montaj ve organizasyon değerlendirmek için immünoflüoresans analizi ile takip özgü siRNA aracılı mRNA tükenmesi için bir protokol mevcut. Bu protokol, transkript in vitro tükenmesi ve farklı mili ve / veya oositlerde MTOC ilişkili faktörler fonksiyonel değerlendirmesi için uygundur.

SiRNA aracılı susturma Mouse Oositlerinin içinde mayoz Mili Değerlendirmesi

Genetik olarak kodlanmış histon miniSOG mavi ışığa bağımlı bir şekilde genom kalıtsal mutasyonlara neden olur. Bu mutajenez yöntemi, hızlı, basit toksik kimyasalların serbest ve ileri genetik tarama ve transgen entegrasyonu için çok uygundur.

Histon-miniSOG Kullanılan optogenetic rastgele mutagenez<em&gt; C. elegans</em

İnsan hastalığı ile ilişkili genetik varyantların ele haline başladığınızda, sistemler ile tanımlanan bu değişik biyolojik önemi hızla değerlendirileceği geliştirmeye giderek önem kazanmaktadır. Bu iletişim kuralı insan gen işlevi kadın mayoz sırasında ben fare yumurta kullanarak değerlendirilmesi yöntemlerini açıklar.

Mayoz sırasında insan gen işlevini değerlendirmek için fare yumurta kullanarak ben

Kromozom ayrışmasında hata, oositlerde yaygın bir özelliktir. Bu nedenle, iş mili montaj kontrol noktasının incelenmesi, sağlıklı yumurta üretmek için gereken mekanizmalar hakkında önemli ipuçları verir. Mevcut protokol, fare oositlerinde iş mili montaj kontrol noktası bütünlüğünü değerlendirmek için üç tamamlayıcı tahlil tanımlamaktadır.

Fare Oositlerinde İş Mili Montaj Kontrol Noktası Bütünlüğünün Değerlendirilmesi

Bu makalede, X kromozomal anomalileri olan kadınlardan aşılanmamış ve aşılanmış over korteks dokusundaki over hücrelerinin X kromozomal içeriğini belirlemek için floresan in situ hibridizasyona dayalı iki yöntem sunulmaktadır.

Floresan In Situ Hibridizasyon Kullanarak Yumurtalık Hücrelerinde X Kromozomal Anormalliklerinin Araştırılması

Bu protokolde, çevirici ribozom afinite saflaştırma (TRAP) yöntemi ve spesifik hücre tiplerinde etiketlenmiş çekirdeklerin izolasyonu (INTACT) yöntemi, bir Cyp17a1-Cre fare hattına geçilen NuTRAP fare modeli kullanılarak hücreye özgü yumurtalık transkriptomunun ve epigenomun eşleştirilmiş sorgulaması için optimize edilmiştir.

Fare yumurtalık epigenomu ve transkriptomunun hücreye özgü eşleştirilmiş sorgulaması

Oosit genom bütünlüğünün korunması, elde edilen embriyoda genetik sadakati sağlamak için gereklidir. Burada, memeli dişi üreme hücrelerinde DNA çift sarmallı kırılmaları tespit etmek için doğru bir protokol sunuyoruz.

Fare Oositlerinde DNA Çift Sarmallı Kırılmaların Tespiti

Bu makale, tek hücrelerin ve çekirdeklerin dizilimi için gastrulasyon yapan fare embriyolarının yüksek kaliteli tek hücreli ve çekirdek süspansiyonları için bir boru hattı oluşturur.

Mutant Bütün Fare Embriyolarının Tek Hücreli RNA Dizilimi: Epiblasttan Gastrulasyonun Sonuna Kadar

Sinapslardaki mayotik hatalar ve rekombinasyon, memeli oositlerinde yaygındır. Bu süreçlerde yer alan proteinlerin titiz analizi, oogenezin nasıl ve neden sıklıkla yanlış gittiğini anlamak için çok önemlidir. Burada sunulan teknikler, farelerde oosit kalitesini değerlendirmek için rekombinasyon ve sinapsların kapsamlı bir şekilde izlenmesine izin verir.

Sinapsis ve Rekombinasyonun Değerlendirilmesi için Fare Oositlerinden Mayotik Kromozom Yayılımlarının Hazırlanması

Öğrenin tek oosit bisülfit mutagenez yöntemiyle DNA metilasyon analizini. Bu protokol, erken embriyonik gelişimde epigenetik düzenlemeyi incelemek için tek hücre düzeyinde güvenilir veri sağlar.

Tek Oosit Bisülfit Mutagenez

Daha fazla video keşfet