Name: Akış Sitometri tabanlı Arıtma S. cerevisiae Zigot (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 9 s
Description: Öğrenin, akış sitometri kullanarak S. cerevisiae zigotlarını nasıl arıtacağınızı. Bu yöntem, %90 saflıkta zigot popülasyonları elde ederek maya genetiği ve hücre biyolojisi çalışmalarını destekler.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz çizimler ile yardım için erken giriş ve Ilya Aylyarov için flow sitometri, Dr Purnima Jaiswal ve Dr Di Wu ile yardım Dr R. Michael Sramkoski ederim. NIH hibe R01GM089872 ve Sitometri &amp; Vaka Kapsamlı Kanser Merkezi (P30 CA43703) görüntülenmesi Mikroskopi Çekirdek Tesisi tarafından desteklenir.

1. Haploid Hücre Büyümesi <ol><li> S. büyütün standart koşullar altında 10 S288C plan (BY4741) den cerevisiae hücreleri. </li><li> İki göze floresan işaretleri 10 ya ifade etmek haploidlerin Transform. Seçim marker mCherry (A. Johnston pAJ1661, URA3/CEN,) ile kaynaşmış sitoplazma içerisinde ifade edilen çözünür GFP (BgII 11 ile doğrusallaştırılmış pEG220, URA3/YIp,) ve tek bir ribozomal protein, RPL25 vardır. Biz eşdeğer iki renkli arıtma protokolü haploit ebeveyn hücreler tarafından sentezlenir diğer parlak floresan proteinleri yararlanabilece bekliyoruz. Alternatif olarak, hücre duvarı floresan ile etiketlenmiş lektinler olabilir. </li><li> Günden önceki zigot arınma, her hücre tipi, 5 ml kültür aşılamak ve ° C 1.0 geçmeyen A600 ulaşmak için 23 gecede sallayarak onları büyümek. % 2 glukoz (CSM-glikoz) bir de dahil olmak üzere tam sentetik ortamda GFP transformantlar (ATY4442) büyümekurasil 10 eksik sentetik seçici ortamda nd RPL25-mCherry transformantlar (ATY4552). Oda sıcaklığında çalkalanarak her bir hücre tipinde paralel kültürleri koruyun. </li></ol> 2. Bir Çapraz İletken <ol><li> Taze ortamda 1,0 her numunenin optik yoğunluk (A600) ayarlayın. [1 Optik Yoğunluk Birim ~ 3 x 10 7 hücre / ml] </li><li> 10 sn için bir uzun vorteks sonra kısaca iki kültür, vorteks 3 kez, eşit hacimleri karıştırın. </li><li> CSM-glukoz tabak hazırlayın. Plakalar rutin büyüme için kullanılan ile aynıdır ve 45 dakika sonra dökme ve agar 10 katılaşma kurutuldu edilmiştir. </li><li> CSM-glikoz levhaların yüzeyine kenarından karışım 1 cm kadar yirmi 40 ml damlacıkları dağıtın. Damlacıkları birinci yüzeye tatbik edildiğinde süresi geçtikten ölçmek için zamanlayıcı başlar. Sıvı (yaklaşık 30 dakika) absorbe edildikten sonra, plakaları kaplamak ve roo az rahatsız bırakınm sıcaklığı. </li></ol> 3. Hasat Hazırlıklar <ol><li> Hasat örnekleri 23 1,75-2,5 saat sonra ° C art arda buz üzerinde plaka tutarak, 150 ml soğuk CSM-glikoz kullanılarak plaka bireysel kurutulmuş damlacıkları yıkama. Defalarca kurtarma maksimize etmek için aynı orta damlacık alanı 10-20 kez yıkayın. Buz üzerinde 15 ml Falcon tüpleri içinde toplayın. </li><li> Buz üzerinde bir Fisher FB120 sonikatör (120Volt 120Watt, Frekans 20KHz) ile% 60 genlikte örnekleri 10x sonikasyon kontrol edin. </li><li> Az veya hiç agrega kalması bir faz mikroskop doğrulayın. Hücrelerin% 15-50 oranında bu noktada zigot oluşmuş bekleniyor. </li><li> Diğer bir önlem (agrega yerleşmeye izin vermek için) ve 10 dakika süreyle buz üzerinde rahat bir dikey pozisyon içinde hücrelerin tüp bırakın. </li><li> Hacim üstteki% 90 kurtarın ve bir naylon örgü (BD Falcon Polipropilen boru süzgeç başlığı (Ref 352235) ile) aracılığıyla filtre. Tipik bir deneme, 10 7 hücreleribir levha geri kazanılır CSM-glikoz 4 mL seyreltik bu noktada edildi. </li></ol> 4. Akış Sitometri <ol><li> 100 mikron ucu ile Sony iCyt Yansıma Modeli Akış Sitometresi, (Highly Otomatik Paralel Sıralama) HAPS1 göre sırala hücreleri. GFP uyarım için, mavi argon-iyon, 488 nm&#39;de 250 milimetrelik lazer kullanmak. MCherry uyarma için, 561 nm&#39;de 100 milimetrelik lazer kullanır. Biz diğer makineleri ile deneyimi yok, ancak biz doğru lazerler ile donatılmış olduğunda Becton Dickinson FACSAria, Becton Dickson akını ya Beckman Coulter MoFlo XDP iyi olacağını bekliyoruz. </li><li> Baz canlı hücreler üzerinde kapısı için bir ileri vs geri scatter plot ilgili parametreleri sıralama. 615 bir emisyon arsa Kurmak + / - 30 nm bandpass (mCherry) karşı 525 + / - 25 nm bandpass (GFP) dört parçaya bölünür olayları bölmek için, &quot;Kırmızı + Yeşil&quot;, &quot;Kırmızı + Yeşil +&quot;, &quot;Kızıl- Yeşil &quot;ve&quot; Kırmızı-Yeşil + &quot;(Şekil S2). Standart bir f nonfluorescent hücreleri kullanınveya &quot;Kırmızı-Yeşil-&quot; kadranda belirlenmesi. </li><li> 21.5 psi arasında bir basınç kılıf, 43.400 damla / sn bir damlacık sıklığı ve 20.5 psi arasında bir basınç ile örnek kriteri hücreleri. </li><li> İlk sırala (&quot;Kurtarma Modu&quot;): CSM-glukoz soğuk 250 ml içeren soğutulmuş Eppendorf tüpleri içine numunelerini. Bir soğuk mikrofuge&#39;de üst hızı (Tomy MRX-150, 15.000 rpm) Sediment 10 sn ve akış çözümü (Flow sitometri kılıf çözümü (1 mM EDTA ile PBS) BioSure Katalog No 1027) aspire. 500 ml soğuk CSM-glukoz süspanse edin. </li><li> İkinci sırala (&quot;Saflık Modu&quot;): &quot;saflık modu&quot; seçeneğini kullanarak, ilk sıralama için de sıralama yürütün. Tortu hücreler saflaştırılmış ve 500 ml 1.0 ml CSM-glikoz olarak pelet tekrar süspansiyon. Metabolik iyileşme sağlamak için 23 ° C&#39;de 24 oyuklu plakalar içinde 15 dakika süreyle çalkalanır. </li></ol> 5. DeltaVision Mikroskopi <ol><li> Aşağıdaki gibi agaroz pedleri hazırlayın: (ultra saf% 1.5 agaroz bir süspansiyon getirmekAgaroz, Invitrogen, sonra kaynatın CSM-glikoz Katalog # 15510-07), vorteks kısa ve yatay standart cam slaytların yüzeyine agaroz çözüm 0.3 ml örnek uygulamak ve ikinci bir slayt seferde onlara kapak (olmadan ) basınç uygulayarak. </li><li> 10 dakika süreyle soğutulduktan sonra, yavaşça, yatay kaydırarak üst slaytı kaldırmak pürüzsüz bir yüzey bırakmak bakımı ve Agaroz tabaka rahatsız değil. (Üst kayar kaldırıldı, hücreler ve örnek 1-2 dakika içinde uygulanabilir. Üst slaydı çıkarmadan, oda sıcaklığında bir nemli bir bölmede tutulur zaman, ped kullanım öncesi bir gün &#39;e kadar saklanabilir.) </li><li> Tortu örnekleri ve mevduat agaroz pedleri üzerinde pelet 1 ml hacimde (yüzeyine dokunmadan). Hemen bir kare No 1 lamel ile örnek kapsar. Tek taraflı bir jilet ile aşırı agaroz uzak kesin. Bir şırınga kalmaması vazelin ile hazırlıklarını mühürleyin. </li><li> Deltavision (Uygulamalı makines kullanarak Görüntü∞ / 0.17/FN26.5); binning olmadan 100x immersiyon yağı objektif (Olympus UPlanApo 100x/1.40 n). </li><li> SoftWoRx 5.0.0 programını kullanarak (z-yığınlar Deconvolve <a href="http://www.api.com/softworx.asp" target="_blank">http://www.api.com/softworx.asp</a> ) ve minimal işleme. Ardışık z-düzlemleri genellikle 0.2-0.4 mikron aralıklarla toplanmıştır. </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar Dönüştürülmüş haploid hücrelerde floresans şiddeti seviyesi: haploidlerin olarak floresans seviyesini Şekil S1 &#39;de gösterilmiştir. Çapraz, epifluorescent inceleme esasen tüm transformantlar GFP yeşil ve tüm mCherry transformantlar, genellikle sönük rağmen, kırmızı olduğunu göstermiştir önce. Çapraz için kullanılan tüm hücreler gerçekten floresan olduğunu sağlamak için, parlak florasan sinyali ile subpopülasyonu kullanılır. Verim: Aürkiye&#39;de ilk sıralama, Kırmızı + Yeşil + örnek (Şekil S2) genellikle 8-20 hücrelerin giriş sayısının% ve kalıcı hücre-hücre adezyonu nedeniyle belki haploid hücrelerin aşırı sayıda içerir. Yüksek zenginleştirme bir tek tür ile elde edilemediği için, kısmen saflaştırılmış örnek sonda yeniden sıralama ve ardından% 60 genlik az iki sonike olmalıdır. Hücreler Of ikinci sıralama tabi (ikinci sıralama sadece 15 dk. Gerektirir iken, 1-2 saat arasında genellikle son Kurtarma türlü), Kırmızı + Yeşil + örnekleri girişi hücrelerin 23-52% dahildir. Faz mikroskobik inceleme: Sınav faz kontrast mikroskobu ile nihai zigot hazırlık saflığı 21 preparatları (% 86% 91 arasında değişen) üzerinde yaklaşık% 90 ortalama gösterdi. Kirletici birbirleri ile iletişim içinde olan haploidlerin yeşil veya kırmızı haploidlerin veya çift ya da vardı. Şekil 3 sahip zigot yüzde tabulateshayır dostum, medial tomurcukları (Med), lateral tomurcukları (Lat) veya terminal tomurcukları (Dönem), aynı renk eşleştirilmiş haploidlerin numarası (&quot;2Same&quot;) veya farklı renk (&quot;2Hap&quot;), yanı sıra bireysel haploidlerin ( Hap). Hücreler 1.75 saat sonra hasat edildiğinde,% 50&#39;den fazla unbudded edildi ve diğer alt kategoriler (medial, lateral veya terminal tomurcukları) ile eşit temsil edilmiştir. 2.5 saat sonra her dört kategori (unbudded, medial, lateral veya terminal tomurcukları ile) zigot yaklaşık eşit sayıda vardı. Mikroskobik Gözlemler (Şekil 4): Zigotların yapı saflaştırılması sırasında değişmeden kalmasını görünür. Çapraz süresine göre, nüfusu, yukarıda açıklandığı gibi unbudded ve aşılı zigot farklı oranlarda vardı. Yeşil ve kırmızı haploidlerin hem floresan sinyal yoğunluğunda önemli farklılıklar göstermiştir beri Comparin tarafından gözlendiği gibi, diğerleri, ağırlıklı olarak yeşil iken, bazı zigot ağırlıklı olarak kırmızı idig Şekil 4 içinde birleştirilmiş görüntü için tek renkli görüntüler. GFP (MW 26kDa) çekirdeğine girer ve çekirdekleri erimiş olsanız çekirdeğinde bulunabilir unutmayın. Vakuoller siyah floresan olmayan küreler olarak göze çarpıyor. Arıtma sonunda ürün geliştirme çeşitli aşamalarında farklı bir nüfus verir. Zigot Bir uğramadıklarına füzyon etiketli. Tip B zigotlar unbudded edilir. Tip C küçük bir tomurcuk var. Tür büyük bir tomurcuk D ve E Tipi zigot sitokinez geçmesi üzeresiniz. Önceki zigot çoğu hala bir floresan olmayan medial bölümü hattı (*) sergilemek ve vakuoler &quot;devralma yapısı&quot; (I) 12 sıklıkla tomurcuk içine zigottan uzatmak için görülebilir olduğunu da unutmayın. Bazı durumlarda, yeşil sinyal kırmızı sinyali çok daha büyük bir ölçüde ortak içine dağıttı. Bu (Tartakoff, hazırlık olarak) polysomes karakteristik özelliği transfer gecikme göstermektedir. <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; haploid hücre 5 ml logaritmik kültürlerin bir çift ile başlayarak, kemilüminesans algılama yöntemleri kullanarak, birçok immunoblots için yeterlidir yaklaşık 1-2 x 10 6 zigot, kurtarabilirsiniz. Biz bu hücre sayısı RNA yaklaşık 1.5 mg ayıklamak fenol-kloroform izolasyon protokolleri kullanarak. Saflaştırılmış zigot öncesinde daha fazla analiz için, soğutulmuş beri biz ° C büyüme ortamında 23 inkübasyon önerilir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/4197/4197fig1.jpg" /> Şekil 1. Zigot oluşumu Kronoloji. Haploidlerin ve diploid arasında bir ara ürün olarak zigotlar. Bu şema, klasik haploidlerin aktivasyonu (shmooing), bunların füzyon ve ilk tomurcuk oluşumunu göstermektedir. Tomurcuklar (T) ya da, (M) yanal orta (M) veya terminal olabilir. <imgalt = &quot;Şekil 1&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/4197/4197fig2.jpg&quot; /&gt; Şekil 2. Zigot arıtma protokolü şematik. Glikoz ile tam bir ortam içinde agar plakalarının yüzeyinde inkübasyondan sonra, hücre karışım yıkama ile geri kazanıldı ve sonra, &quot;saflık kipinde ikinci tür takip&quot; kurtarma modunda &quot;bir ilk tür tabi tutulmuştur. &quot; Sarı renk mCherry ve GFP sinyalleri hem zigot görünür olduğunu belirtir. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/4197/4197fig3.jpg" /> Şekil 3,. Kesirler saflaştırılmış. Çiftleşme karışımlarında zigot Çeşitleri 1.75 veya nispeten erken vs nispeten daha olgun zigot zenginleştirilmiş kesirler kurtarmak için 2,5 saat sonra hasat edilmiştir. Ayrı renk tarafından belirlenmiş sekiz bağımsız deneyler, her bir zaman noktası için yapılmıştır. Grafikler zigot göreli sayıları gösterir bu hatomurcuğu mekansal farklı desenler ettik. Inkübasyon kısa süre göz önüne alındığında (oda sıcaklığında en az 2,5 saat) gözlenen tüm tomurcuklar başlangıç ​​zigotik tomurcuklanan olaylardır. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/4197/4197fig4.jpg" /> Şekil 4. Zenginleştirilmiş kesirler DeltaVision incelenmesi. Tipik bir alan Deltavision mikroskobu ile incelenmiştir. Çizimler ya kırmızı ve yeşil ya da tek hem renkleri göstermektedir. Kırmızı polysomal etiketi (Rpl25p-mCherry) ve sitosolik GFP ile yeşil karşılık gelir. Boşlukları (v), tomurcukları (b), çekirdek (n), vaküoler &quot;miras yapı&quot;, (i) ve ebeveyn ayırmak için görünür bölme (*): zigotların yüksek zenginleştirme ve belirli bir hücre içi özellikleri not edin nispeten erken zigot etki alanları. Onların değişken genel renk erimiş haploidlerin göreli yoğunluğunu yansıtır. Iki parental etki muhafaza edildiği durumlardaayrı bir renk, belirteçleri (sitoplazmik GFP, mCherry etiketli polysomes) arasında dengelenme eksik oldu. Devam Time-lapse çalışmaları öncesinde polysomes çözünür GFP dağıtır. Göstermek <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4197/4197fig4large.jpg" target="_blank">büyük bir rakam görmek için buraya tıklayın</a> . Tamamlayıcı Efsaneleri <img alt="Şekil S1" src="/files/ftp_upload/4197/4197figS1.jpg" /> Şekil S1. Haploid hücrelerin floresans Uzak bıraktı:. MCherry etiketli polysomes ifade Hücreler yeşil bir sinyali tespit etmek için incelenmiştir. Dikdörtgen pencere negatif hücreleri önlemek için kurulmuştur. Orta Grafiği: sitozolik GFP ifade Hücreler, analiz pozitiflerin belirgin parlak büyük nüfus gösteren edildi. Uzak Sağ: mCherry etiketli polysomes ifade Hücreleri analiz edildi. Dikdörtgen (uzak solda aynıdır) parlak hücreleri içerir ve tüm verirnegatifler kaçınılmalıdır. Atama &quot;R2&quot; Belirtilen dikdörtgenin içindeki edilen hücrelerin yüzdesini gösterir. <img alt="S2 Şekil" src="/files/ftp_upload/4197/4197figS2.jpg" /> S2 Şekil. Birinci ve ikinci sıralamaya Hücre dağılımı. Bu iki-renkli araziler sağ üst kadranda (R5) Yeşil + Kırmızı + hücrelerinin oranını göstermektedir. Bu oran ikinci çeşit% 52 artar. Yatay eksen: yeşil sinyal. Dikey eksen: kırmızı sinyal.

<ol><li>Herskowitz, I., Oshima, Y. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHerskowitz%2C+I+%22Control+of+cell+type+in+Saccharomyces+cerevisiae%3A+Mating+type+and+mating-type+interconversion%22">Control of cell type in Saccharomyces cerevisiae: Mating type and mating-type interconversion</a>. , Cold Spring Harbor Press. 181-210 (1981).</li>
<li>Muller, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parental+age+and+the+life-span+of+zygotes+of+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Antonie+Van+Leeuwenhoek%22%5BJournal%5D)">Parental age and the life-span of zygotes of Saccharomyces cerevisiae.</a> Antonie Van Leeuwenhoek. 51, 1-10 (1985).</li>
<li>Tartakoff, A. M., Jaiswal, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+fusion+and+genome+encounter+during+yeast+zygote+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Nuclear fusion and genome encounter during yeast zygote formation.</a> Mol. Biol. Cell. 20, 2932-2942 (2009).</li>
<li>Azpiroz, R., Butow, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterns+of+mitochondrial+sorting+in+yeast+zygotes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Patterns of mitochondrial sorting in yeast zygotes.</a> Mol. Biol. Cell. 4, 21-36 (1993).</li>
<li>Rose, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+fusion+in+the+yeast+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Cell+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Nuclear fusion in the yeast Saccharomyces cerevisiae.</a> Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 12, 663-695 (1996).</li>
<li>Dujon, B. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDujon%2C+B+%22Molecular+Biology+of+the+Yeast+Saccharomyces%3A+Life+Cycle+and+Inheritance%22">Molecular Biology of the Yeast Saccharomyces: Life Cycle and Inheritance</a>. Jones, E., Strathern, J., Broach, J. , Cold Spring Harbor Press. 505-635 (1981).</li>
<li>Sprague, G. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assay+of+yeast+mating+reaction%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Assay of yeast mating reaction.</a> Methods Enzymol. 194, 77-93 (1991).</li>
<li>Ydenberg, C. A., Rose, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yeast+mating%3A+a+model+system+for+studying+cell+and+nuclear+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Yeast mating: a model system for studying cell and nuclear fusion.</a> Methods Mol. Biol. 475, 3-20 (2008).</li>
<li>Sena, E. P., Radin, D. N., Fogel, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchronous+mating+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Synchronous mating in yeast.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 70, 1373-1377 (1973).</li>
<li>Amberg, D., Burke, D., Strathern, D. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAmberg%2C+D+%22Methods+in+Yeast+Genetics%3A+A+Cold+Spring+Harbor+Laboratory+Course+Manual%2C+2005+Edition%22">Methods in Yeast Genetics: A Cold Spring Harbor Laboratory Course Manual, 2005 Edition</a>. , Cold Spring Harbor Press. (2005).</li>
<li>Nolan, S., Cowan, A. E., Koppel, D. E., Jin, H., Grote, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FUS1+regulates+the+opening+and+expansion+of+fusion+pores+between+mating+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">FUS1 regulates the opening and expansion of fusion pores between mating yeast.</a> Mol. Biol. Cell. 17, 2439-2450 (2006).</li>
<li>Weisman, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organelles+on+the+move%3A+insights+from+yeast+vacuole+inheritance%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Organelles on the move: insights from yeast vacuole inheritance.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 7, 243-252 (2006).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Saflaştırılmış zigotların durumu zigotlar Alternatif olarak hücre döngüsü yeniden giriş, hücre duvarı yeniden şekillenme, filizlenen ve kalıtım özellikleri, vs uğrayan göre transkriptomiks, proteomikler ve lipidomics yanı sıra, mekanizmalarının incelenmesi içeren biyokimyasal çalışmalar kolaylaştırması, zigotlar başlangıç ​​elde edilebilir Bir veya iki ebeveyn karakteristik mutasyonlar taşıyan suşlar ile. Bundan başka, arıtılmış zigotlar, haploid veya diploid hücrelerde için olduğu gibi, orta% 15 gliserol içeren içinde ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif / Ekipman </td><td> Kaynak </td><td> Katalog Numarası </td></tr><tr><td> pEG220, URA3/YIp, kodlama sitoplazmik GFP 11) </td><td> E. Grote </td><td></td></tr><tr><td> pAJ1661, URA3/CEN, mCherry erimiş kodlama RPL25 </td><td> A. Johnston </td><td></td></tr><tr><td> Fisher FB120 sonikatör </td><td> Fisher Scientific </td><td></td></tr><tr><td> Süzgeçli kapaklı polipropilen tüp </td><td> BD Falcon </td><td> Ref 352235 </td></tr><tr><td> Soğutmalı mikrofuge&#39;de </td><td> Tomy </td><td> MRX-150 </td></tr><tr><td> Flow sitometri kılıf çözümü </td><td> Biosure </td><td> 1027 </td></tr><tr><td> iCyt Yansıma Modeli Akış Sitometresi </td><td> Sony </td><td></td></tr><tr><td> DeltaVision ters evrişim mikroskop </td><td> Uygulamalı Precision </td><td></td></tr><tr><td> Dik Epifloresans mikroskop </td><td> Leica </td><td></td></tr><tr><td> Ultrapure Agaroz </td><td> Invitrogen </td><td> 15510-07 </td></tr><tr><td> CSM glukoz formülasyon Notlar: agar plakaları için, sadece% 2 agar (Difco) içerir </td><td> 10 </td><td></td></tr></tbody></table>

akış sitometri tabanlı arıtma<em&gt; s. cerevisiae</em&gt; zigot

Flow Cytometry-based Purification of S. cerevisiae Zygotes

Zigot maya dahil birçok organizmanın yaşam döngüsü içinde haploid ve diploid devletler arasındaki temel ara ürünler, (Şekil 1) 1. S. vardır cerevisiae farklı çiftleşme tipi (mata, MATalpha) haploid hücre füzyon sonucu zigotlar ve birbirlerinin çarpıcı bir asimetrik mitotik bölünmeleri 2 bir sonucu olarak en çok 20 diploid soy oluşturmak uygun stabil diploid neden olmaktadır. Zigot oluşum olaylar kompleksi sekans tarafından yönetilir: Bu işlemde, çözünür çiftleşme faktör hücre-hücre füzyon hücre döngüsü ile sonuçlanan bir kesinti kolaylaştırmak reseptör-kaynaklı sinyalleme kaskadını tetikleme, aynı soydan gelen reseptörlere bağlanır. Zigot progenitör veya kök hücre fonksiyonu için bir model olarak kabul edilebilir. Çok zigot oluşumu hakkında öğrendim olmasına rağmen ve zigot genel anlaml hücre-moleküler soruları araştırmak için kullanılmış olmasına rağmenicance, hemen hemen tüm çalışmalarda zigot 3-8 haploid hücrelerin bir çoğunluk nüfusu ile karışmış olduğu çiftleşme karışımların kullanımı yaptık. Zigot oluşumunun biyokimyasında pek çok yönü ve zigot devam ömrü böylelikle araştırılmamış kalır. Maya zigot arıtma Raporları, çökelme özellikleri 9 dayanan protokolleri açıklar, ancak bu sedimantasyon tabanlı prosedürü elimizde yaklaşık% 90 saflıkta vermemiştir. Bundan başka, hücrelerin hipertonik sorbitol maruz kaldığı dezavantajı vardır. Bu nedenle çok yönlü bir arınma prosedürü geliştirdik. Bu amaç için, kırmızı veya yeşil floresan protein eksprese eden bir çift haploid hücrelerde zigot oluşumu, çeşitli zamanlarda toplanır ve sonuçta ortaya çıkan zigot bir akış sitometrisi tabanlı bir sıralama protokol kullanılarak saflaştırılmıştır izin vermek için birlikte inkübe edildi. Bu teknik, saflık ve olgunlaşma uygun bir görsel değerlendirme sağlar. Ortalama saflığıfraksiyonu yaklaşık% 90&#39;dır. Hasat zamanlama göre, vadesi değişen derecelerde zigot telafi edilebilir. Saflaştırılmış örnekleri ilk döl kurtarma ve bu progenitör hücre sistematik olarak incelenmesi için, &quot;-omic&quot; çalışmaları için çıkış uygun bir nokta sağlar.

Arasında zigot arındırmak için<em&gt; S. cerevisiae</em&gt; Karşısında çiftleşme tipi haploit hücreler flow sitometri tabanlı bir protokol kullanarak kırmızı veya yeşil floresan zigot oluşumunu sağlamak için işbirliği İnkübe proteinler, ve fraksiyone ifade geliştirilmişti. Yüksek oranda zenginleştirilmiş fraksiyonu ilk döl müteakip &quot;-omic&quot; çalışmaları, kurtarma ve zigot morphogenesis sistematik araştırma sağlar.

Akış Sitometri tabanlı Arıtma<em&gt; S. cerevisiae</em&gt; Zigot

Zigotlar, maya (Şekil 1) dahil birçok organizmanın yaşam döngüsünde haploid ve diploid durumlar arasındaki temel ara basamaklardır 1. S. cerevisiae ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, saflaştırılmış bir maya zigot popülasyonu oluşturmaktır. Bu, öncelikle zıt çiftleşme tipindeki haploid hücrelerde sitoplazmik GFP veya M cherry etiketli poly zonların eksprese edilmesiyle gerçekleştirilir; hücreler logaritmik faza kadar büyütülür, ardından zigot oluşumuna izin vermek için birleştirilir ve birlikte inkübe edilir.Çiftleşme karışımı daha sonra hasat edilir ve kırmızı-yeşil çift pozitif hücreleri izole etmek için geri kazanım modunda akış sitometrisi ile ayrıştırılır. Bu alt popülasyon hem zigot öncesi hem de zigotik yapıları içerir. Numuneyi daha da saflaştırmak için, kırmızı ve yeşil çift pozitif popülasyon ikinci bir akış ayrıştırma işlemine tabi tutulur.Saflık modu kullanılıyor. Bu prosedür, görsel inceleme ve hücrelerin floresan mikroskopi ile sayımı temel alındığında, ortalama %90 zigot saflığı sağlar. Bu tekniğin, çöktürme tabanlı saflaştırma gibi mevcut yöntemlere göre avantajları şunlardır.İlk olarak, bu teknik zigot saflığının ve olgunlaşmasının kolay bir görsel değerlendirmesini sağlar. İkinci olarak, bizim uygulamalarımızda zigotik fraksiyonun ortalama saflığı yaklaşık %90'dır ve bu oran mevcut yöntemlerden çok daha yüksektir. Saflaştırma yöntemimiz, ökaryotik hücrelerde haploidden diploide geçişle ilgili temel biyolojik soruların moleküler düzeyde yanıtlanmasına yardımcı olabilir; alt ve üst ökaryotlar arasında önemli bir korunum söz konusudur.Bu nedenle, maya zigotlarının incelenmesi, zigot biyolojisinin genel olarak anlaşılmasını sağlayacaktır. Tartışılabilir ki zigotlar, progenitör veya kök hücre fonksiyonları için de bir model olarak değerlendirilebilir Grow s cera, VCA, Matt A ve Matt alpha BY 47 41. Dondurulmuş maya stoklarını katı agar büyüme ortamına ekerek ve plakları, zigot saflaştırmasından önceki gün koloniler oluşana kadar oda sıcaklığında veya 30 °C'de inkübe ederek hücreleri elde edin. Çözünür GFP ve RPL 25 M.Cherry olarak transform edilmiş tabloidleri kültüre etmek için iki adet 50 mL konik tüp etiketleyin. Kültürlerden birine sitoplazmada çözünür GFP eksprese eden transform edilmiş tabloidleri, diğerine ise tek bir ribozomal protein eksprese eden transform edilmiş tabloidleri ekleyin.m cherry ile füzyonlanmış RPL 25. Kültürleri, A 600 değeri 1,0'ı geçmeyecek şekilde, 23 °C'de gece boyunca çalkalayarak büyütün. Bir çaprazlama gerçekleştirmek için, önce her örneğin optik yoğunluğunu taze besiyerinde, yaklaşık olarak mililitre başına 3 × 10⁷ hücreye denk gelen 1,0 değerine ayarlayarak başlayın.Ardından, iki kültürden eşit hacimlerde alınanı taze besiyerinde, 50 milliliter'lik konik bir tüp içerisinde karıştırın. Üç kez kısa süreli vorteksleyin, ardından 10 saniye boyunca vorteksleyin. Bir pipet ucunu oda yüzeyinin bir santimetre üzerine yerleştirin.Sıcaklık CSM glikoz plakası. 30 dakikadan geriye sayacak bir zamanlayıcı başlatın ve karışık kültürlerden 40 µL'lik damlacıkları derhal plakanın çevresi boyunca çevre hattına dağıtın. Plakaların kapakları açık bir şekilde tezgah üzerinde yaklaşık 30 dakika boyunca kurumasına izin verin.Sıvı emildikten sonra, plakların üzerini kapatın ve oda sıcaklığında 1,75 ila 2,5 saat boyunca rahatsız edilmeden bırakın. Polarize büyüme süreci, karakteristik schmo benzeri morfolojiyi oluşturur. Schmo fazı boyunca, iki haid hücresi hücre-hücre teması sağlanana kadar birbirlerine doğru büyümeye devam ederler.Ardışık hücre-hücre füzyonu, zigot oluşumuyla sonuçlanır. Yeni oluşan zigot daha sonra mitotik hücre döngüsüne tekrar girerek ilk diploid tomurcuğunu oluşturur. İnkübasyonun ardından, plakları buz üzerine yerleştirin ve tek tek kurutulmuş damlacık alanlarını 150 µL soğuk CSM glukoz ile 10 ila 20 kez yıkayarak örnekleri hasat edin.Yıkama solüsyonunu buz üzerinde 15 mililitrelik konik tüplere toplayın. Ardından, örnekleri buz üzerinde tutarak her bir tüpü %60 genlikte 10 kez prob sonikasyonuna tabi tutun. Sonikasyon sonrası, faz kontrast mikroskobunda çok az agregat kaldığını veya hiç kalmadığını doğrulayın; hücrelerin %15 ila %50'sinin zigot oluşturmuş olması beklenir. Bu noktada, kalan agregatların çökelmesini sağlamak amacıyla bir önlem olarak hücrelerin bulunduğu tüpü buz üzerinde, sarsmadan 10 dakika boyunca dikey konumda bırakın.Hacmin üstteki %90'lık kısmını geri kazanın ve süzgeç kapaklı naylon ağlı polipropilen bir tüptenle filtreleyin. Tipik bir deneyde, bir plaktan 10⁷ hücre ve 4 mL CSM geri kazanılır. Glikoz hücre ayıklama işlemi, 100 mikron uçlu bir HAPS 1 içeren Sony eyesight reflection model akış sitometresi kullanılarak gerçekleştirilir.GFP eksitasyonu için win list 3D yazılımındaki eksitasyon lazerlerini seçerek başlayın. M cherry eksitasyonu için 488 nanometredeki mavi Argonne iyon 500 milliwatt lazerini kullanın. HAPS kontrol yazılımındaki 561 nanometredeki 100 milliwatt lazeri kullanın.Kurtarma modunun seçili olduğundan, sıralama için kılıf basıncının 21,5 pounds per square inch, damlacık frekansının saniyede 43.400 damla ve örnek basıncının 20,5 pounds per square inch olarak ayarlandığından emin olun; canlı hücreleri kapılamak için sıralama parametrelerini ileri saçılma (forward scatter) ile geri saçılma (back scatter) grafiğine dayandırın. Burada kullanılan Sony eyesight cihazının yan saçılma (side scatter) grafiğini benzersiz bir şekilde geri saçılma olarak belirttiğini, ancak bu geri saçılmanın işlevsel olarak yan saçılmaya eşdeğer olduğunu unutmayın. Olayları dört kadrana ayırmak için M cherry'ye karşı GFP'den oluşan bir emisyon grafiği oluşturun.Kırmızı pozitif yeşil negatif, kırmızı pozitif yeşil pozitif, kırmızı negatif yeşil negatif ve kırmızı negatif yeşil pozitif. Kırmızı negatif yeşil negatif kadranının belirlenmesi için standart olarak floresan yaymayan hücreleri kullanın. İlk ayıklama için.Kurtarma modunu seçin ve örnekleri, 250 mililitre soğuk CSM glikoz içeren soğutulmuş mikro santrifüj tüplerine toplayın. Toplama işleminin ardından, hücreleri soğutmalı bir mikro santrifüjde maksimum hızda 10 saniye boyunca çöktürün; santrifüj sonrası akış solüsyonunu aspire edin ve hücreleri 500 mikrolitre soğuk CSM glikoz içinde yeniden süspanse edin.Tek bir ayırma işlemiyle yüksek zenginleştirme sağlanamadığı için, kısmen saflaştırılmış örneğe %60 amplitude'da iki kez kısa süreli prob sonikasyonu uygulayın. Hücreleri bu kez canlı hücreler üzerinde saflık modu (purity mode) seçeneği kapısını kullanarak tekrar ayırın ve M cherry'ye karşı GFP sedimentinin emisyon grafiğini oluşturun, saflaştırılmış hücreleri ve peletleri 0,5 ila 1,0 mililitre CSM glukoz içinde yeniden süspande edin. Santrifüj sonrası, 24 kuyucuklu plakaların her bir kuyucuğuna 0,5 mililitre aktarın ve ardından hücreleri 15 dakika boyunca çalkalayın.Metabolik toparlanmaya izin vermek için 23 °C'de 24 kuyucuklu plakalarda bekletin. Agros pedlerini hazırlamak için, CSM glikoz içinde %1,5'luk agros süspansiyonunu 15 ml'lik konik bir tüpte kaynama noktasına getirin. Çözeltiyi kısa süre vorteksleyin ve ardından 0,3 ml'lik agro çözeltisi örneklerini en az iki ila üç standart cam lamın yüzeyine uygulayın; lamları derhal ikinci bir lamla kapatın.Baskı uygulamayın. Lamların 10 dakika boyunca soğumasını bekleyin. Eğer aros pedleri hemen kullanılmayacaksa, üst lamı kaldırmadan oda sıcaklığında nemlendirilmiş bir hazneye yerleştirin.Bunlar bir güne kadar saklanabilir. Ardından, üst lamı yatay olarak kaydırarak nazikçe çıkarın. Pürüzsüz bir yüzey bırakmaya ve aros tabakasını bozmamaya dikkat ederek, bir ila iki dakika içinde, yüzeye temas etmeden sedimente olmuş hücrelerden bir mikrolitre miktarındaki alikotları aros pedlerinin üzerine bırakın.Numuneyi hemen kare bir lamelle kapatın ve tek ağızlı bir jiletle fazlalıkları kesin. Lamelin kenarları boyunca vazelin sürmek için bir şırınga kullanın. Görüntüleri, binning yapmadan 100x yağ daldırma objektifli Delta Vision sistemi ile yakalayın. İdeal bir alan, tek bir hücre tabakasının göründüğü ve tekil hücreleri ayırt etmek için aralarında yeterli boşluk bulunan alandır. Görüntüleme işlemi tamamlandığında 0,2 ila 0,4 mikron aralıklarla görüntüleyin.SoftWorks 5.0 0.0 programı kullanılarak Devolve Zacks işlemi yapıldı ve 20 döngülük standart bir dekonvolüsyon ile minimum düzeyde işlendi. DeVol görüntülerindeki herhangi bir arka plan sinyalini en aza indirmek için kırmızı ve yeşil floresans şiddetleri ayarlandı; transforme edilmiş hücrelerde floresan proteinlerin ekspresyonunu değerlendirmek amacıyla, hücreler çaprazlama öncesinde ve sonrasında akış sitometrisi ile analiz edildi. Temel olarak, tüm M cherry transformantları kırmızı ve tüm GFP transformantları yeşil renkteydi.M cherry sinyalinin GFP sinyalinden daha az yoğun olmasına rağmen, hem sitometri hem de floresan mikroskobu ile tespit edildiğine dikkat edin. Hücreler ayrıştırıldı ve R iki kuadrantında görünen en parlak hücreler seçilerek, burada görüldüğü üzere GFP transformuyla 2,5 saat boyunca kültüre edildi. Çaprazlama sonrası kırmızı ve yeşil pozitif örnek, toplam popülasyonun %8,89'unu temsil etmiştir.İlk geri kazanım ayıklamasının ardından bu oran %52,4'e yükseltilmiş, ardından faz kontrast mikroskobu ile incelenen 21 benzer kırmızı pozitif yeşil pozitif hücre hazırlığının ikinci saflık ayıklamasıyla daha da zenginleştirilmiştir. Zigot sayısını değerlendirmek için ortalama saflık %90 olarak belirlenmiştir. İlk zigotik tomurcuk çıkış kinetiğinin yanı sıra medial, lateral ve terminal zigotik tomurcuk konumlarının olaylarını ve dağılımını belirlemek için kontaminanların ya yeşil veya kırmızı haploidler ya da temas halindeki haploid çiftleri olduğu görülmüştür. Haploidler 1,75 saat veya 2,5 saat boyunca çaprazlanmış, akış sitometrisi ile ayıklanmış ve ardından epi floresan mikroskobu ile incelenmiştir.Hücreler 1,75 saat sonra toplandığında, %50'den fazlası tomursuz ve medialdi. 2,5 saat sonra lateral veya terminal tomurcuklar eşit oranda temsil edildi. Bununla birlikte, tomursuz, medial, lateral veya terminal tomurcuklu dört kategorinin her birinde yaklaşık olarak eşit sayıda zigot vardı.Zigotların yapısının saflaştırma sırasında değişmeden kaldığı görülmektedir. GFP'nin çekirdeğe girdiği ve çekirdekler henüz kaynaşmamış olsa bile çekirdekte bulunabildiği unutulmamalıdır. ES'ler siyah, floresan yaymayan küreler olarak belirginleşir.Saflaştırmanın son ürünü, gelişimin çeşitli aşamalarında çeşitli bir popülasyon sağlar. A olarak etiketlenen zigotlar füzyona uğramamıştır. B tipi zigotlar tereyağlanmamıştır.C tipi küçük bir tomurcuğa, D tipi daha büyük bir tomurcuğa sahiptir ve E tipi zigotlar sitokinez geçirmek üzeredir; ayrıca önceki zigotların çoğunun hâlâ floresan yaymayan bir medial bölünme hattı sergilediği ve valar kalıtım yapısının genellikle zigottan tomurcuğa doğru uzandığı görülmektedir. Bu prosedürü uygularken, hem geri kazanım ayıklamasını hem de ardından gelen saflık ayıklamasını dahil etmek önemlidir. İkinci ayıklamanın, nihai ürün için zigotik saflığı artırmada kilit rol oynadığını tespit ettik.Bu videoyu izledikten sonra, akış sitometrisi ile saflaştırılmış zigotlar üretmeyi, saflığı mikroskobik yöntemlerle değerlendirmeyi ve florasan dekonvolüsyon mikroskopisi kullanarak zigotları nasıl monte edip fotoğraflayacağınızı iyi bir şekilde kavramış olmalısınız.

flow-cytometry-based-purification-of-s-cerevisiae-zygotes

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Floresan aktif hücre sıralama (FACS) ile rafine bir hücre disosiasyon protokolü birleştirir fare testis yüksek derecede saflaştırılmış yaşayabilir mayotik kesirler elde etmek için etkili bir yöntem açıklanmıştır. Bu yöntem, DNA içeriği ve ayrık mayotik kesirler nükleer yoğunluğu farklılıkları yararlanır.

Fare Mayotik Hücreler Sitometrisi Arıtma

Biz hücreleri ve embriyolar incelemek için bir cihaz ve yeni bir yöntem sunulmuştur. Tek hücreler tam microcavity dizileri sıralanır. Onların 3D hapsi fizyolojik koşullarda karşılaşılan 3D ortamlarda yolunda atılmış bir adımdır ve organel yönünü verir. Hücre şekli kontrol ederek, bu kurulum standart deneylerde bildirilen değişkenlik en aza indirir.

Tek Hücreleri ve 3D Sınırlaması Tek Embriyolar Sipariş: Yüksek İçerik Tarama için Yeni Bir Cihaz

Akış sitometrisi kullanarak fare spermatidleri için bir sıralama stratejisi açıklıyoruz. Spermatidler, yuvarlak (spermiyogenez aşamaları 1-9), erken uzayan (spermiogenez aşamaları 10-12), geç uzayan (spermiyogenez aşamaları 13-14) ve uzun spermatidler (spermiyogenez aşamaları 15-16) dahil olmak üzere oldukça saf dört popülasyona ayrılır. Seçim parametreleri olarak DNA boyama, boyut ve granülozite kullanılır.

Adım özgü Fare spermatidlerin Sıralama&#39;yı Akışı Sitometrinin tarafından

Bu protokol, zebra balığı embriyolarından tek hücreleri izole etmek, ilgilenilen hücreleri zenginleştirmek, mikroakışkan tabanlı tek hücreli multipleks sistemlerde zebra balığı hücrelerini yakalamak ve tek hücrelerden gen ekspresyonunu değerlendirmek için bir yöntemi tanımlar.

İzolasyon ve Zebra balığı Embriyolar gelen Tek Hücre Karakterizasyonu

Süzülen makrofajlar dolaşımdaki öncüllerden yetişkin dokulara sürekli olarak işlenirken, yerleşik makrofajlar, gelişme sırasında dokularını tohumlamakta ve burada progenitörlerden başka girdiler almadan korunmaktadırlar. Yerleşik makrofajların öncüleri yakın zamanda tanımlandı. Burada, yerleşik makrofaj öncüllerinin genetik kader haritalaması için yöntemleri sunuyoruz.

Akım Sitometresi ile Fare Embriyosunda Eritromiyeloid Progenitörlerin Ve Döllerinin Belirlenmesi

Bu çalışma, farklı memeli türlerinin testiküler dokusundan saflaştırılmış germ hücresi popülasyonlarının elde edilmesi için bir yöntemin standartlaştırılmasını açıklamaktadır. Mekanik testis ayrışmasını, Hoechst-33342 ve propidyum iyodür ile boyamayı ve FACS sınıflandırmasını birleştiren basit bir protokoldür ve erkek üreme biyolojisi karşılaştırmalı çalışmalarında geniş uygulamalar yapılmıştır.

Memeli Erkek Germ Hücrelerinin Çok Denekli Saflaştırılmasında Standart Bir Yaklaşım, Mekanik Doku Ayrılma ve Akış Sitometrisi ile

Bu makalede, her iki S. cerevisiae ve HEK293T hücrelerinde protein kendinden montajı ölçmek için fret tabanlı akış sitometri Protokolü açıklanır.

Algılama ve ölçme protein Self-montaj In vivo tarafından akış sitometri

Bu tahlil, embriyonik zebra balığı geliştirmede hematopoetik hücreleri miktarlandırmak için basit bir yöntemdir. Ayrışmış zebra balıklarından alınan kan hücreleri akış sitometrisi analizine tabi tutulur. Bu, mutant hayvanlarda ve genetik modifikasyondan sonra kan kusurlarının tespit edilmesine izin verir.

Gelişmekte Olan Zebra Balıklarında Değiştirilmiş Kan Oluşumunu Tespit Etmek ve Nicel hale Getirmek için Akış Sitometrisini Kullanma

Bu makalede, Saccharomyces cerevisiae'de aşırı ifade edilen Candida albicans ABC (ATP bağlayıcı kaset) protein Cdr1'in karakterizasyonu için küçük ölçekli bir plazma membran izolasyon protokolü sunulmaktadır. Cdr1 ile etiket arasında 16 kalıntılı bağlayıcı bulunan proteaz-bölünebilir C-terminal mGFPHis çift etiket, Cdr1'in saflaştırılmasını ve deterjan taramasını kolaylaştırmak için tasarlanmıştır.

Candida albicans Cdr1-mGFPHis Analizi için Küçük Ölçekli Plazma Membran Hazırlama

Burada, erken patlama oluşturan birim eritroid (BFU-e) ve koloni oluşturan birim eritroid (CFU-e) progenitörlerinin doğrudan taze fare kemik iliği ve dalağından prospektif izolasyonu için yeni bir akış sitometrik yöntemi tanımladık. Tek hücreli transkriptomik verilere dayanarak geliştirilen bu protokol, dokunun tüm eritroid progenitörlerini yüksek saflıkta izole eden ilk protokoldür.

Patlama Oluşturan Birim ve Koloni Oluşturan Birim Eritroid Progenitörlerinin Fare Dokusundan Akım Sitometrisi ile Tanımlanması ve İzolasyonu

Öğrenin, akış sitometri kullanarak S. cerevisiae zigotlarını nasıl arıtacağınızı. Bu yöntem, %90 saflıkta zigot popülasyonları elde ederek maya genetiği ve hücre biyolojisi çalışmalarını destekler.

Akış Sitometri tabanlı Arıtma

Daha fazla video keşfet