Name: Embriyolar yılında Programlı Hücre Ölümü Algılama LysoTracker kullanımı ve Embriyonik Kök Hücreler Farklılaşan (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 44 s
Description: Öğrenin, fare embriyolarında ve farklılaşan embriyonik kök hücrelerde LysoTracker boyası kullanarak programlı hücre ölümünü görselleştirme yöntemini. Bu teknik, gelişimsel biyoloji araştırmalarında hücre ölümü modellerini incelemek için değerlidir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz protokol düzenleme yardım Mariani laboratuar üyeleri ederim. Bu çalışma CIRM Doktoraüstü Eğitim Grant (JLF), bir CIRM KÖPRÜLER staj (TZTT), Robert E. ve Mayıs R. Wright Vakfı (FVM) ve Güney Kaliforniya Üniversitesi (FVM) tarafından finanse edildi.

1. Fare Embryolarının LysoTracker Boyama <ol><li> Erkek damızlık kafesi içine genç (5-6 haftalık) kadın koyarak fare embriyoları oluşturun. Bu çiftleşme gösteren bir vajinal fiş görünümü için aşağıdaki sabahları Monitör oluştu. Kadın hamile ise, o gün öğlen 0.5 DPC (gün sonrası çiftleşme) denir. Burada sunulan prosedür embriyolar 7-13 DPC için idealdir. </li><li> Ilgi embriyonik gününde, onaylı protokollere göre kadın ötenazi ve rahim kaldırmak. Hanks BSS (fenol kırmızısı olmadan) ile 10 santimetrelik bir petri tabağına desidua dan embriyolar çıkarın. Ekstra embriyonik membranlar çıkarın ve en az bir gereksiz doku ve kan kaldırmak Hanks BSS ile yıkayın yok. </li><li> LysoTracker Embriyo Boyama Çözüm (Hanks BSS 5 mM LysoTracker) hazırlayın. 1-2 litre için uygun bir hacmi 5 ml &#39;dir. Yavaşça eşit boya dağıtacak karıştırın. </li><li> LysoTracker Embriyo Boyama Solut embriyo ekle45 dakika için bir mikrofüj tüpü ya da 37 ° C &#39;de ve flakon inkübe iyon. </li><li> Hanks BSS çok yavaşça dört kez, 5 dakika, her yıkama yıkayın. </li><li> Gecede 4% Paraformaldehyde düzelt. </li><li> Düzeltmesini kaldırmak için, Hanks BSS, 10 dakika içinde bir kez yıkayın. </li><li> Arka plan boyama ortadan kaldırmak için bir metanol serisi (% 50,% 75,% 80,% 100, 5 dk her adımda) aracılığıyla kurutmak. Bu görüntüleme sırasında iyi sinyal-gürültü elde etmek için önemlidir. </li><li> Bu noktada ışıktan koruyarak, -20 ° C&#39;de metanol içinde süresiz embriyo örnekleri saklayabilirsiniz. </li></ol> Not: Bir doku örneği DNA genotipleme için herhangi bir aşamasında alınabilir, ancak, o kadar bu adımı tüm numunelerin toplu işlenmiş olabilir bu yüzden sadece depolama önce bir örnek almak için en uygun olabilir. Her embriyodan kuyruk, bacak veya kafa doku örneği toplayın ve ayrı tüpler içine tüm koymak. Doku örneği rehidrate ve genoty hazırlamakping. 2. ES Kültürleri Farklılaşan arasında LysoTracker Boyama <ol><li> 20 ul damla başına 500 hücre, bir başlangıç ​​yoğunluğunda Asılı damla yönteminde, 15 aracılığı ile embriyoid organları hazırlayın. </li><li> 3 gün sonra, 10 cm yapışmaz Petri kapları (bakteriyolojik çalışma için kullanılan bu yani) üzerine süspansiyon kültürü embriyoid organları aktarın. Medya her 2 günde değişen 5 gün, Kültür. </li><li> Günde 7 günü, jelatinize 8-iyi kamara slaytlara embriyoid organları aktarmak (odalarına Jelatin% 0.1 ekleyin, 5 dakika beklemek kaldırmak ve medya ekleyin). Kamara başına 1-2 embriyoid organları aktarın. </li><li> Her geçen gün medyanın değişen 10 gün, Kültür. Embriyoid vücut cam yüzeyine takılarak karıştırmayı vermeyecek şekilde odasına slayt köşesinde pipet yerleştirmek için dikkatli olun. Ayrıca taze medya da odanın köşesinde pipet yerleştirin ve ortamı yavaşça serbest eklerken. </li><li> Kült 10 gün sonraure, bir pozitif kontrol olarak apoptozu indüklemek için, 0.1 mM, 1.0 mM ve H2O 2 ile kuyu bazı tedavi etmek için 60 dakika (taze ortam karışımı H2O 2 ekleyin, daha sonra hücrelere ilave ediniz). D-PBS ve düzenli medya gecede kültürü ile iki kez durulayın. </li><li> Yavaşça mevcut medya aspire ve LysoTracker Hücre boyama çözeltisi (ortam içinde 500 nM LysoTracker (nihai konsantrasyon), bölme başına 300 ul) ilave edilir. </li><li> 15 dakika boyunca 37 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> D-PBS 2 kere, 5 dakika her biri ile iki kere yıkayın. </li><li> RT 15 dakika boyunca% 4 paraformaldehid Fix. </li><li> D-PBS, 5 dakika ile iki kere yıkayın. </li></ol> 3. LysoTracker Vitray Embriyolar veya ES Kültürleri görüntüleniyor <ol><li> D-PBS aspire tarafından mikroskopi için hücre örnekleri hazırlayın; slaydın dışına odasına kaldırarak; hava yaklaşık 5 dakika kurutma; sonra sulu bir montaj orta (DAPI veya benzeri Vectashield) ekleyerek. Kurutma dola sırasında folyo bariyer yerleştiring fluorofor ağartma azaltmak için. Vectashield veya benzer bir derin depresyon cam tabak veya küçük Petri kabındaki embriyolar monte edin. </li><li> Bir rodamin veya Texas Red filtresi ile donatılmış bir diseksiyon veya bileşik mikroskop ile Visualize (LysoTracker KIRMIZI DND-99, Uyarma / Emisyon: 577/590 nm). Boyanma genellikle oldukça parlak yani uzun pozlama genellikle gerekli değildir. </li></ol> 4. Görüntüleme Teknikleri Kullanılarak Sonuçlar kantifikasyonu <ol><li> Manuel modda aynı pozlama koşulları altında örneklerin dijital fotoğraflar çekin. </li><li> Adobe Photoshop veya benzeri görüntüleme programı görüntüleri açın. LysoTracker boyanma miktarını belirlemek için, kırmızı kanal ve eşik kırmızı leke şimdi beyaz pikseller ile temsil olduğu gibi görüntü (siyah-beyaz görüntü dönüştürür) seçin. Beyaz pikseller seçin ve toplam sayıyı elde etmek için histogramı işlevini kullanın. </li><li> Saymak mavi kanal kullanınalanına çekirdeklerin sayısı. Bu görüntü açıklamalar ekleyerek sayısı kaydını tutmak için yararlı olabilir. </li><li> Değerleri kaydedin ve sonra hücre başına ortalama boyanma düzeyini hesaplamak. Eğer örnek isteyen tüm görüntüler için aynı eşik ayarı ile bu analizi tekrarlayın. </li></ol> 5. Temsilcisi Sonuçlar Bu tür Sonic hedgehog (Shh) gibi bir büyüme faktörü geni, 16,17 çıkartıldığı zaman değişebilir embriyonik gelişimi sırasında PCD normal bir model vardır. LysoTracker derece difüze olan küçük bir moleküldür boya olduğundan, bütün embriyo mezenşimi 12,13 içinde bile derin PCD alanları değerlendirmek için görüntülenebilmektedir Şekil 1 normal ve Şşş için LysoTracker boyanma paterni gösterir -. Azından mutant fare embriyolarına - / 10.5dpc. Özellikle bacak ve somite regio olarak, mutasyona uğramış embriyoların - / - Bu aşamada, PCD Shh büyük ölçüde artmıştırns. Embriyo kısımları genel dağılımını değerlendirmek için yüksek büyütme (1B) de tüm montaj içinde görüntülenebilir. Dissected bölümleri de titreşimli mikrotom (1C) veya daha ayrıntılı PCD bölgeleri ortaya çıkarmak için bir kriyostat (DF) ile kesitli olabilir. Transferaz terminali penetrasyonu daha az sorunlu olduğu TUNEL analizi en iyi ince kesitler üzerinde yapılır. LysoTracker boyama ve bir TUNEL yöntemi ile aynı doku (Şekil 1B-G) de yapılabilir. Bu sonuçlar gösteriyor ki LysoTracker ve TUNEL boyama, oldukça PCD örtüşme genel bölgeler arasında sıkı bir korelasyon 01:01 olmamasına rağmen. Daha yüksek bir büyütmede, bu punktumlarda görmek mümkün olduğunu TUNEL yöntemi ile pozitif leke ancak LysoTracker LysoTracker boya ile sadece leke boya ki, punktumlarda, ve punktumlarda boyama ile üst üste gelmiş. Bir EB bir jelatin kaplı yüzey üzerine ekildi olduğunda, ayırt edici hücreler migrat olacaktıre dışarıya. Kültür 10 gün sonra, hücreler nöronlar, kas hücreleri, ve kardiyomiyositlerde de dahil olmak üzere hücre tiplerinde ayrışmıştır olacaktır. Şekil 2&#39;de gösterildiği gibi kültürler bu hücre tiplerinin karışık popülasyonları içerir, ancak bir ilgi çekici bir belirli hücre tipi PCD incelemek için protokol adapte olabilir. Örneğin, EB nöronların 19 farklılaşmasını arttırmak için retinoik asit ile tedavi edilebilir, ve daha sonra LysoTracker tahlil farklı koşullar altında nöronal hücre ölümünü değerlendirmek için kullanılabilir. ES farklılaşmış hücrelerin normal kültür olarak, LysoTracker ve / veya TUNEL analizi (Şekil 2A) ile PCD tabi tutulurlar ve bu tespit edilebilir bir kaç hücre vardır. PCD oksidatif hasara neden olur ve apoptotik yolu 20,21 başlatır örneğin hidrojen peroksit gibi farklı sitotoksik ajanların bir dizi (H2O 2) ile indüklenebilir. H 2 O 2 A düşük doz hem artırırLysoTracker ve TUNEL boyama, hiçbir tedavi ile karşılaştırıldığında hücre büzüşmesi ve yaygın LysoTracker ve TUNEL pozitifliği yüksek doz sonuç ederken. Embriyo sonuçlarına benzer şekilde, punktumlarda görmek mümkün olduğunu TUNEL yöntemi ile pozitif leke değil LysoTracker LysoTracker boya ile sadece leke o boya, punktumlarda ve punktumlarda boyama örtüşen bununla. Apopotosis neden olan sitotoksik bir ajan uygulanması sonucu otofaji (Şekil 2B) indüklemek açlık serum koşullar ile karşılaştırılır. Serum açlık (1 saat) bir süre geçirmiş Hücreler LysoTracker ve TUNEL boyama yüksek korelasyon farklı bir model sergiler. LysoTracker boyama çok işlenmemiş kültürler karşılaştırıldığında artmış, ancak TUNEL pozitifliği normal seviyelerde olduğunu. Adobe Photoshop mevcut standart araçları kullanma, LysoTracker boyama basit bir eşikleme yöntemi ile ölçülebilirbu bir hücre popülasyonunun için ortalama leke seviyesini hesaplamak için izin verir. Şekil 3A-B, bir numune görüntü ölçümü sırasında görünümünü göstermektedir. Mavi kanal (panel 3A) kırmızı kanal ve DAPI lekeli çekirdeklerinde LysoTracker boyama ile temel görüntü ile başlayarak, bu görüntünün kırmızı kanal siyah-beyaz görüntü dönüştürmek ve beyaz pikseller vardı için eşiklenir edildi sonra seçilen ve (Şekil 3A &#39;) sayıldı. Bir eşik seviyesi LysoTracker boyanması temsil ettiği seçilmiştir. Görüntüleri kullanan herhangi bir nicel yöntem olduğu gibi, potansiyel olarak aşırı vurgu farklılıkları neden olabilir bu gibi resimleri ışığa maruz kalmaması için önemlidir. Alanında çekirdeklerin sayısı sonra sadece mavi kanal (Şekil 3B) bakarak ve (Şekil 3B &#39;) sayma yaparken böyle bir fırça gibi bir çizim aracını kullanarak çekirdeklerin işaretleyerek sayılabilir. Bir sonra inci ifade edebilirhücre başına boyama ortalama seviyesi hesaplayarak boyanma e seviye (piksel / çekirdeklerin sayısı sayısı). Bir dilek yüksek yoluyla-put taraması için bu algoritmayı kullanmak için, en tarama paketleri belirli bir kanalın parlaklık ölçmek ve aynı zamanda en tipik uygulamalar için manuel yöntem hızlıdır ancak, bir alandaki çekirdekleri sayabilir ve olacağı bir nesne tanımlayıcı işlevi olabilir basit. Bir örnek vermek gerekirse, Şekil 2A-C örnek bir bölge ölçülmesi ve sonuçların teyit ettiği LysoTracker boyanma düzeyi yüksek (Şekil 3C) H 2 O 2 sonuç konsantrasyonu artmaktadır. Edildi <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig1.jpg" alt="Şekil 1"/> Şekil 1. / - - Embriyo normal ve Şşş yılında LysoTracker boyama. A, A &#39;Normal ve Sus -. / - LysoTracker Kırmızı ile boyanan 10.5 DPC, az fare embriyolarına Vectashield monte ve altında fotoğraflandıBir epiflourescence mikroskop diseksiyon. Konsollar ayakları yerini gösterecektir B, B &#39;normal ve Şşş ve yüzgeç -.. / - Embriyoların yüksek büyütmede görüntülenmiş. &#39;Arka Nekrotik Dilimi&#39; (yıldız ile işaretli) ve ekstremite tomurcuğu (bir ok ile işaretli) proksimal mezenşimi bir bölge de dahil olmak üzere hücre ölümü normal bir etki unutmayın. Şşş boş bacaklarda medial ve distal bölümünde kuvvetli boyanma gösteren Normal ve null hem ekstremite tomurcukları ön ayakları tomurcuk aracılığıyla. C, C &#39;. Medial bölümleri. Boş ekstremite tomurcuğu içinde normal ekstremite tomurcuğu ve dorsal ve ventral ve distal mezenşimi içinde güçlü boyama proksimal mezenşimi (ok) ve AER (ok başı) olarak boyanma varlığı unutmayın. DF. Aynı bölümde (12 mikron, dondurulmuş bölümü) LysoTracker ve TUNEL boyama (Roche 1684795) için görüntülendi. Bölüm Shh boş mesenc distal kısmına geçerhyme. AER ok ucu noktaları. Genel görünüm, her iki yöntem kullanılarak çok benzer ne kadar Bununla birlikte boyama tam olarak üst üste gelmez. G, G &#39;. AER ve mezenşim daha yüksek bir büyütmede, bir ya da LysoTracker TUNEL-pozitif olan punktumlarda varlığı hem de görebilir Sadece yanı punktumlarda sıra boyama örtüşen olduğunu. <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig2.jpg" alt="Şekil 2,"/> Şekil 2. Farklılaşmış ES hücreleri içinde LysoTracker boyama. Hücre ayırımı yapmak LIF yokluğunda oda 8-slaytlar üzerine ekildi. Otofaji yolun serum açlık 1 saat ile oluşturuldu ise LysoTracker ve TUNEL boyama karşılaştırmak nasıl göstermek için, apoptoz yolu, H 2 O 2 2 farklı dozda oluşturuldu. Bu görüntüler bir Zeiss YTM 5 Konfokal Mikroskop ile alınmıştır A-A&#39;&#39;:. LysoT tarafından belirtildiği gibi İşlenmemiş kültürlerin bazı normal apoptozisi göstermekRacker ve TUNEL boyama. Çoğunlukla iki teknikler örtüşmektedir (beyaz oklar) kullanarak desen, ancak, bir LysoTracker sadece pozitif (kırmızı oklar) bir kaç punktumlarda görebilirsiniz B-B&#39;&#39;, CC &quot;:. H 2 artan miktarlarda tedavisi O 2 apoptozisi uyarır . düşük dozda daha LysoTracker ve Nokodazol göre TUNEL pozitif punktumlarda gösterir. yüksek dozda daha LysoTracker ve TUNEL pozitif punktumlarda yol açmaktadır. Beyaz oklar çakışan boyama, sadece LysoTracker için olumlu olduğunu punktumlarda kırmızı oklar ise. Bu TUNEL boyama (yeşil oklar) için pozitif olan punktumlarda görmek mümkündür DD &quot;:. açlık serum lizozomlar ve autophagolysosomes malzemenin bir birikiminin teşvik edebilir ki, otofaji neden olabilir. Işlenmemiş kültürler karşılaştırıldığında görülebilir daha kaç LysoTracker punktumlarda unutmayın. TUNEL pozitif punktumlarda mevcut (çoğu LysoTracker leke örtüşening, beyaz oklar), ancak, sayı işlenmemiş şartlara göre büyük ölçüde artmış değildir. Buna ek olarak, açlık serum koşullar altında, LysoTracker yalnızca pozitif punktumlarda oldukça yaygındır (kırmızı oklar). <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig3.jpg" alt="Şekil 3"/> Şekil 3,. Adobe Photoshop kullanarak hücre popülasyonunda boyama düzeyini değerlendirmek için Sayısallaştırma yöntemi. A: Şekil 2A bir kısmı seçildi ve LysoTracker (kırmızı kanal) ve DAPI boyama (çekirdekler, mavi kanal) Bu panelde gösterilir A &#39;:. Şekil 3A kırmızı kanal siyah-ve dönüştürmek için eşiklenir edildi image-beyaz. Beyaz pikseller seçilir ve histogram fonksiyonu kullanılarak sayabiliriz B-B &#39;:. Kanal mavi çekirdekler gösterir ve onları sayma yaparken, görüntü gibi bir fırça gibi bir çizim işlevi ile açıklamalı olabilir C:. Bu expaneller 2A-C örnek bol miktar. Veri çekirdeği başına piksel olarak temsil edilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4254/4254fig3large.jpg" target="_blank">büyük bir rakam görmek için buraya tıklayın</a> .

<ol><li>Baehrecke, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+death+shapes+life+during+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">How death shapes life during development.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3, 779-787 (2002).</li>
<li>Meier, P., Finch, A., Evan, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apoptosis+in+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Apoptosis in development.</a> Nature. 407, 796-801 (2000).</li>
<li>Ikonomidou, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol-induced+apoptotic+neurodegeneration+and+fetal+alcohol+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Ethanol-induced apoptotic neurodegeneration and fetal alcohol syndrome.</a> Science. 287, 1056-1060 (2000).</li>
<li>Dunty, W. C., Chen, S. Y., Zucker, R. M., Dehart, D. B., Sulik, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+vulnerability+of+embryonic+cell+populations+to+ethanol-induced+apoptosis%3A+implications+for+alcohol-related+birth+defects+and+neurodevelopmental+disorder%5BTitle%5D)+AND+%22Alcohol+Clin.+Exp.+Res%22%5BJournal%5D)">Selective vulnerability of embryonic cell populations to ethanol-induced apoptosis: implications for alcohol-related birth defects and neurodevelopmental disorder.</a> Alcohol Clin. Exp. Res. 25, 1523-1535 (2001).</li>
<li>Price, O. T., Lau, C., Zucker, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+fluorescence+of+5-FU-treated+fetal+rat+limbs+using+confocal+laser+scanning+microscopy+and+Lysotracker%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Quantitative fluorescence of 5-FU-treated fetal rat limbs using confocal laser scanning microscopy and Lysotracker.</a> Cytometry A. 53, 9-21 (2003).</li>
<li>Jacobson, M. D., Weil, M., Raff, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmed+cell+death+in+animal+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Programmed cell death in animal development.</a> Cell. 88, 347-354 (1997).</li>
<li>Fuchs, Y., Steller, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmed+cell+death+in+animal+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Programmed cell death in animal development and disease.</a> Cell. 147, 742-758 (2011).</li>
<li>Qu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+gene-dependent+clearance+of+apoptotic+cells+during+embryonic+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Autophagy gene-dependent clearance of apoptotic cells during embryonic development.</a> Cell. 128, 931-946 (2007).</li>
<li>Grimsley, C., Ravichandran, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cues+for+apoptotic+cell+engulfment%3A+eat-me%2C+don%27t+eat-me+and+come-get-me+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cues for apoptotic cell engulfment: eat-me, don't eat-me and come-get-me signals.</a> Trends Cell Biol. 13, 648-656 (2003).</li>
<li>Lauber, K., Blumenthal, S. G., Waibel, M., Wesselborg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clearance+of+apoptotic+cells%3A+getting+rid+of+the+corpses%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Clearance of apoptotic cells: getting rid of the corpses.</a> Mol. Cell. 14, 277-287 (2004).</li>
<li>Haller, T., Dietl, P., Deetjen, P., Volkl, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+lysosomal+compartment+as+intracellular+calcium+store+in+MDCK+cells%3A+a+possible+involvement+in+InsP3-mediated+Ca2%2B+release%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">The lysosomal compartment as intracellular calcium store in MDCK cells: a possible involvement in InsP3-mediated Ca2+ release.</a> Cell Calcium. 19, 157-165 (1996).</li>
<li>Zucker, R. M., Hunter, S., Rogers, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confocal+laser+scanning+microscopy+of+apoptosis+in+organogenesis-stage+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Confocal laser scanning microscopy of apoptosis in organogenesis-stage mouse embryos.</a> Cytometry. 33, 348-354 (1998).</li>
<li>Zucker, R. M., Hunter, E. S. 3rd, Rogers, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apoptosis+and+morphology+in+mouse+embryos+by+confocal+laser+scanning+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Apoptosis and morphology in mouse embryos by confocal laser scanning microscopy.</a> Methods. 18, 473-480 (1999).</li>
<li>Gavrieli, Y., Sherman, Y., Ben-Sasson, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+programmed+cell+death+in+situ+via+specific+labeling+of+nuclear+DNA+fragmentation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation.</a> J. Cell Biol. 119, 493-501 (1992).</li>
<li>Foty, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Simple+Hanging+Drop+Cell+Culture+Protocol+for+Generation+of+3D+Spheroids%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids.</a> J. Vis. Exp. (51), e2720(2011).</li>
<li>Chiang, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manifestation+of+the+limb+prepattern%3A+limb+development+in+the+absence+of+sonic+hedgehog+function%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Manifestation of the limb prepattern: limb development in the absence of sonic hedgehog function.</a> Dev. Biol. 236, 421-435 (2001).</li>
<li>Ishibashi, M., McMahon, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+sonic+hedgehog-dependent+signaling+relay+regulates+growth+of+diencephalic+and+mesencephalic+primordia+in+the+early+mouse+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A sonic hedgehog-dependent signaling relay regulates growth of diencephalic and mesencephalic primordia in the early mouse embryo.</a> Development. 129, 4807-4819 (2002).</li>
<li>Schuldiner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+neuronal+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Induced neuronal differentiation of human embryonic stem cells.</a> Brain Res. 913, 201-205 (2001).</li>
<li>Bain, G., Kitchens, D., Yao, M., Huettner, J. E., Gottlieb, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cells+express+neuronal+properties+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cells express neuronal properties in vitro.</a> Dev. Biol. 168, 342-357 (1995).</li>
<li>Dumont, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogen+peroxide-induced+apoptosis+is+CD95-independent%2C+requires+the+release+of+mitochondria-derived+reactive+oxygen+species+and+the+activation+of+NF-kappaB%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Hydrogen peroxide-induced apoptosis is CD95-independent, requires the release of mitochondria-derived reactive oxygen species and the activation of NF-kappaB.</a> Oncogene. 18, 747-757 (1999).</li>
<li>Hampton, M. B., Orrenius, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+regulation+of+caspase+activity+by+hydrogen+peroxide%3A+implications+for+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Dual regulation of caspase activity by hydrogen peroxide: implications for apoptosis.</a> FEBS Lett. 414, 552-556 (1997).</li>
<li>Wood, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+cells+engulf+and+clear+apoptotic+footplate+cells+in+macrophageless+PU.1+null+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal cells engulf and clear apoptotic footplate cells in macrophageless PU.1 null mouse embryos.</a> Development. 127, 5245-5252 (2000).</li>
<li>Scott, R. C., Juhasz, G., Neufeld, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+induction+of+autophagy+by+Atg1+inhibits+cell+growth+and+induces+apoptotic+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Direct induction of autophagy by Atg1 inhibits cell growth and induces apoptotic cell death.</a> Curr. Biol. 17, 1-11 (2007).</li>
<li>Rodriguez-Enriquez, S., Kim, I., Currin, R. T., Lemasters, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracker+dyes+to+probe+mitochondrial+autophagy+%28mitophagy%29+in+rat+hepatocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">Tracker dyes to probe mitochondrial autophagy (mitophagy) in rat hepatocytes.</a> Autophagy. 2, 39-46 (2006).</li>
<li>Bampton, E. T., Goemans, C. G., Niranjan, D., Mizushima, N., Tolkovsky, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dynamics+of+autophagy+visualized+in+live+cells%3A+from+autophagosome+formation+to+fusion+with+endo%2Flysosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">The dynamics of autophagy visualized in live cells: from autophagosome formation to fusion with endo/lysosomes.</a> Autophagy. 1, 23-36 (2005).</li>
<li>Boya, P., Mellen, M. A., de la Rosa, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+autophagy+is+related+to+programmed+cell+death+during+the+development+of+the+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Soc.+Trans%22%5BJournal%5D)">How autophagy is related to programmed cell death during the development of the nervous system.</a> Biochem. Soc. Trans. 36, 813-817 (2008).</li>
<li>Galluzzi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+use+and+interpretation+of+assays+for+monitoring+cell+death+in+higher+eukaryotes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+Differ%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes.</a> Cell Death Differ. 16, 1093-1107 (2009).</li>
<li>Klionsky, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+use+and+interpretation+of+assays+for+monitoring+autophagy+in+higher+eukaryotes%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy in higher eukaryotes.</a> Autophagy. 4, 151-175 (2008).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Apoptoz Önemli diğerlerinden ayıran kaspaz aktivitesinin tespiti ile birlikte TUNEL yöntemi ile DNA hasar tespiti, (mAb veya ZVAD-FMK olarak bağlayıcı bir molekül ile algılanır), hücresel değişikliklerin gözlenmesi ve fosfatidilserin sunumu (PS dahil membran yüzeyinde) (Annexin V bağlama tarafından algılanır). Bu testlerin her biri ile bazı dezavantajları vardır. Örneğin, TUNEL yöntemi içinde kullanılan terminal transferaz birkaç hücre tabakası ötesine nüfuz etmez. Ayrıca Annexin V gibi membran hasarı (Annexin V hücre i...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td></td><td> Katalog numarası </td></tr><tr><td> LysoTracker Kırmızı DND-99 </td><td> Invitrogen </td><td> # L-7528 </td><td></td></tr><tr><td> Hanks BSS </td><td> Invitrogen </td><td> 14025-076 </td><td></td></tr><tr><td> Paraformaldehyde </td><td> EMD </td><td> EM-PX0055-3 </td><td></td></tr><tr><td> Vectashield </td><td> VEKTÖR </td><td> H-1200 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Cellgro </td><td> 10-013-CV </td><td></td></tr><tr><td> Non-esansiyel amino asitler </td><td> Cellgro </td><td> 25-025-CI </td><td></td></tr><tr><td> Sodyum piruvat </td><td> Cellgro </td><td> 25-000-CI </td><td></td></tr><tr><td> FBS </td><td> Hyclone </td><td> SH30071.02 </td><td></td></tr><tr><td> Kalem-Strep </td><td> Invitrogen </td><td> 15140-122 </td><td></td></tr><tr><td> b-merkaptoetanol, 50 mM </td><td> Invitrogen </td><td> 21985-023 </td><td></td></tr><tr><td> LABTEK-II Odası slaytlar (8-de) </td><td> Nalge Nunc Uluslararası </td><td> 154534 </td><td></td></tr><tr><td> % 0.1 jelatin </td><td> Millipore </td><td> ES-006-B </td><td></td></tr><tr><td> Dulbecco PBS (D-PBS) </td><td> Cellgro </td><td> 21-031-CV </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Çözüm Tarifler 4% Paraformaldehyde 100 ml için: <ol><li> 4 g paraformaldehit, 90 ml H2O, ve NaOH (2N NaOH, bir damla) karıştırılır. Eğer pH artırmak için bazı NaOH kadar paraformaldehid çözüm girmeyeceğim. </li><li> 60 karıştırın ve ısı ° C Tüm toz çözüm (~ 10-20 dakika) kadar. Isıtmayın. </li><li> 100 ml&#39;lik bir nihai hacim elde etmek için ~ 10 ml PBS 10x ekleyin. </li><li> Uygun (~ 10 mi veya ~ 40 mi) alikots içinde -20 ° C&#39;de saklayın. </li></ol> Uyarı: &#39;fırfır&#39; şeklinde (ufak topaklar sıkıştırılmış) içinde paraformaldehit daha az toz halinde olan ve bu nedenle de bir başlık dışında ölçülebilir. Ancak yine de bir koruyucu toz maskesi (N95 giymeliEn az) kullanım sırasında. EB Kültür Medya 500 ml EB Medya için: <table border="1"><tbody><tr><td> DMEM: </td><td> 404.5 ml&#39;lik </td></tr><tr><td> FBS: </td><td> 75.0 ml </td></tr><tr><td> L-Glutamine: </td><td> 5.0 mL </td></tr><tr><td> Penisilin / Streptomisin: </td><td> 5.0 mL </td></tr><tr><td> Non-esansiyel amino asitler: </td><td> 5.0 mL </td></tr><tr><td> Sodyum piruvat: </td><td> 5.0 mL </td></tr><tr><td> β-mercaptoethanol: </td><td> 500ul </td></tr></tbody></table></td></tr></tbody></table>

embriyolar yılında programlı hücre Ölümü algılama lysotracker kullanımı ve embriyonik kök hücreler farklılaşan

Use of LysoTracker to Detect Programmed Cell Death in Embryos and Differentiating Embryonic Stem Cells

Programlanmış hücre ölümü (PCD) normal doku homeostazı muhafaza etmek ve embriyolojik gelişimi sırasında doku ve organların 1,2,6,7 şekillendirmeye yetişkinlerde görülür. Gelişimi sırasında, toksik kimyasallar ve genetik değişiklikler PCD bir artışa neden olabilir veya gelişimsel anomalileri ve doğum kusurlarına 3-5 sonuçlanan PCD kalıplarını değiştirebilirsiniz. Bu defektlerin etyolojisi anlamak için, embriyo çalışmada embriyonik kök (ES) hücreler ayırt kullanabilirsiniz in vitro tayinlerde ile tamamlanabilir. Apoptoz kaspaz enzim kaskad etkinleştirmek için sinyal içsel ve dışsal hem de içerir PCD iyi çalışılmış şeklidir. Karakteristik hücre değişiklikleri zarı blebbing, nükleer daralma ve DNA fragmantasyonu içerir. PCD diğer formları kaspaz aktivasyonunun içermeyen ve uzun otofaji ve nihai sonucu olabilir. Ne olursa olsun PCD yolunun, ölen hücrelerin çıkarılması gerekir. Erişkinlerde, bağışıklık hücrelerinin perfembriyolarda, bağışıklık sistemi henüz oluşmamış, nerede kaldırma alternatif bir mekanizma ile oluşur ise, bu fonksiyonu yapýnýz. Bu mekanizma alarak komşu hücreleri (&quot;non-profesyonel fagositler&quot; denir) içeren bir fagositik rol onlar ölüyor hücre ve yutmak 8-10 yüzeyinde sinyal &#39;ye beni&#39; tanır. Yutulma sonra, kalıntı bozulması için lizozom getirilir. Böylece bağımsız PCD mekanizması, lizozomal aktivite artışı artan hücre ölümü ile ilişkili olabilir. PCD, kalın dokular ve çok katmanlı ayırt kültürlerde lizozomlar görselleştirmek için basit bir tahlil incelemek yararlı olabilir. LysoTracker bu tür boya lizozom 11-13 gibi asidik hücre içi bölmeler içinde tutulan bir yüksek derecede çözünür küçük bir moleküldür. Boya difüzyon ile ve dolaşım yoluyla alınır. Penetrasyon kalın dokular ve çok katmanlı kültürlerinde PCD bir engel, görselleştirme olmadığı 12,13 mümkündür </&gt; sup. Işlem, bir terminalin giriş / geçirgenlik transferaz gerektirir çünkü aksine, TUNEL (Terminal deoksinükleotidil transferaz dUTP çentik uç etiketleme) analizi, 14, küçük örnekler, histolojik bölümler ve tek tabakalı kültürler ile sınırlıdır. Yayılır ve çözücüler tarafından çözülür Anilin mavisi, aksine, LysoTracker Kırmızı DND-99 düzeltilebilir, parlak, ve kararlı. Boyama bütün montaj veya sulu veya çözücü bazlı montaj medya 12,13 kullanarak bölümünde standart floresan veya konfokal mikroskopi ile görüntülenebilmektedir. Burada normal ve sonik kirpi boş fare embriyolarının PCD bakmak için bu boya kullanılarak protokolleri tanımlar. Buna ek olarak, ES hücre kültürlerinde ayırt PSD analizi gösteren basit bir miktar yöntem sunuyoruz. Özet olarak, LysoTracker boyama PCD saptanmasında diğer yöntemler için büyük bir tamamlayıcı olabilir.

Biz fare embriyolarının programlanmış hücre ölümü bölgeleri (PCD) ve LysoTracker adlı oldukça çözünür boya kullanarak embriyonik kök (ES) hücre kültürleri ayırt görselleştirmek için basit bir protokol mevcut.

Embriyolar yılında Programlı Hücre Ölümü Algılama LysoTracker kullanımı ve Embriyonik Kök Hücreler Farklılaşan

Programlanmış hücre ölümü (PCD), yetişkinlerde normal doku homeostazını sürdürmek ve embriyolojik gelişim sırasında dokuları şekillendirmek ve ... için meydana gelir.

Aşağıdaki prosedürün amacı, hücre ölümü modellerini tespit etmek için fare embriyoları ve farklılaşmış kök hücrelerden oluşan iki tip örneğin lizozomlarının lyo tracker boyası ile nasıl sürdürüleceğini göstermektir. Embriyo örneklerini hazırlamak için, embriyolar önce cerrahi olarak izole edilir ve farklılaşmış hücreleri hazırlamak üzere bir kaba yerleştirilir. Embriyo gövdelerini oluşturmak için embriyonik kök hücreler kullanılır.Bu embriyo gövdeleri süspansiyon içinde kültüre edilir ve ardından bir chamber slide üzerinde monokatman olarak büyütülür. Tüm embriyolar monokatman halindeyken LysoTracker Red ile inkübe edilebilir, ardından durulanabilir ve fikse edilebilir; daha sonra LysoTracker boyanma sonuçlarını incelemek ve nicelleştirmek için örneklerin fotoğrafları çekilebilir. Boyama, embriyolardaki ve kültüre edilmiş hücrelerdeki programlı hücre ölümünü analiz etmek için kullanılabilecek basit bir prosedürdür.Bu tekniğin tünel analizi gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, OT takip boyasının küçük bir molekül olması nedeniyle kalın dokuların hızlı ve kolay bir şekilde analiz edilebilmesidir. Bu yöntem, fare embriyolarındaki ve diferansiye kültürlerdeki programlı hücre ölümü paternleri hakkında içgörü sağlayabilmenin yanı sıra tavuk embriyoları ve diferansiyasyon halindeki yetişkin kök hücreler gibi diğer doku türlerine de uygulanabilir. Genç dişi fareleri bir erkek damızlıkla eşleştirin ve takip eden sabahlar, çiftleşmenin gerçekleştiğini gösteren vajinal tıkaç olup olmadığını kontrol edin.Vajinal tıkanın görüldüğü günün öğle vakti, etkili olarak 0,5 gün olarak kabul edilir. İlgilenilen embriyonik günde, koit sonrası dişiyi onaylanmış protokollere göre sakrifiye edin ve uterusu Hank's BSS içeren 10 santimetrelik bir Petri kabına alarak kanı durulama yoluyla temizleyin. Embriyoları birbirinden ayırın ve uterustan çıkarın.Ekstra embriyonik membranları uzaklaştırın ve yabancı dokuları ve kanı temizlemek için Hank's BSS ile en az bir kez durulama yapın. Temizleme işlemi sırasında diseke edilen embriyoları buz üzerinde tutun. Diğerlerini.Beş mililitre Liso tracker embriyo boyama çözeltisi hazırlayın. Bu miktar, bir veya iki embriyo toplama işlemi için yeterli bir hacimdir. Boyayı eşit şekilde dağıtmak için çözeltiyi nazikçe karıştırın, ardından embriyoları çözeltiye aktarın ve 37 °C'de 45 dakika boyunca inkübe edin.İnkübasyonun ardından embriyoları, her yıkama beş dakika sürecek şekilde, Hank's BSS ile dört kez nazikçe durulayın. Dokulara zarar vermemek için durulama işlemini nazikçe yapmak önemlidir. Hassas embriyoların konumuna dikkat ederek ve onları her zaman örten bir miktar sıvıyı geride bırakarak sıvıyı yavaşça uzaklaştırın.Ardından embriyoları, ertesi gün gece boyunca %4 paraformaldehit ile fikse edin. Fiksatörü uzaklaştırmak için embriyoları Hank's BSS ile 10 dakika boyunca bir kez durulayın. Şimdi, arka plan boyanmasını ortadan kaldırmak için dokuları bir metanol serisi aracılığıyla dehidrate edin.Bu adım, saklama öncesindeki görüntüleme sırasında sinyal-gürültü oranını iyileştirir. Gerekiyorsa, genetik analiz için her embriyodan bir doku örneği toplayın. Daha sonra, genotipleme öncesinde doku örneğini yeniden hidrate edin.Embriyoları, doku örneğiyle eşleşen etiketlerin bulunduğu ayrı tüplere ayırın. Artık izole edilen embriyolar, eksi 20 °C sıcaklıktaki metanol içerisinde süresiz olarak saklanabilir. Işıktan koruyunuz.Asılı damla yöntemiyle embriyo gövdelerini hazırlayarak başlayın. Üç gün sonra, damla başına 20 µL'de 500 hücre başlangıç yoğunluğuyla, embriyo gövdelerini 10 cm'lik yapışmaz Petri kaplarındaki süspansiyon kültürlerine aktarın. Beş gün boyunca kültüre edin ve beşinci günden sonra her iki günde bir medyayı değiştirin.Embriyo gövdelerini, her bir bölmeye bir veya iki embriyo gövdesi gelecek şekilde jelatinize edilmiş sekiz bölmeli lamlara aktarın. Embriyo gövdelerini 10 gün daha kültüre edin. 10 gün sonra gün aşırı ortamı değiştirerek, mevcut ortamı nazikçe aspire edin ve her bir bölmeye 300 µL Lyo tracker hücre boyama çözeltisi ekleyin.Pipet ucunu odacığın köşesine yerleştirerek medyumu manuel olarak çekmeye dikkat edin. Bu sayede, hala cam yüzeye tutunmakta olan gövdeleri yanlışlıkla kaldırmazsınız. Medyumu tekrar eklerken, pipet ucunu odacığın köşesine yerleştirin ve medyumu çok yavaş bir şekilde geri ekleyin.Odacıkları 37 °C'de 15 dakika inkübe edin. Ardından, her yıkama için beş dakika olacak şekilde DPBS ile iki kez durulayın. Şimdi hücreleri, oda sıcaklığında 15 dakika boyunca %4 paraldehit ile fikse edin.Ardından fiksatifi, beşer dakikalık iki durulama ile DPBS kullanarak uzaklaştırın. Embriyoları monte etmek için, onları derin çukurlu bir cam lama veya küçük bir Petri kabı içine yerleştirin. DPBS'yi aspire ederek hücre örneklerini mikroskopiye hazırlayın.Hazneyi lamdan çıkarın ve yaklaşık beş dakika boyunca havada kurumaya bırakın. Floroforu korumak için alüminyum folyo ile örtün. Ardından, DAPI içeren Vector Shield gibi sulu bir kapatma medyumu ekleyin ve üzerine bir kapatma lamı yerleştirin.Artık lam monte edildi ve görüntüleme için hazırdır. Numuneleri; rod, domine veya Texas red filtresi ile donatılmış bir stereo veya bileşik mikroskop ile görüntüleyin. Boyama genellikle oldukça parlaktır, bu nedenle manuel modda uzun pozlama sürelerine genellikle gerek duyulmaz.Tüm örneklerin dijital fotoğraflarını aynı pozlama koşulları altında çekin. Görüntüleri nicelleştirmek için bunları Adobe Photoshop veya benzer bir görüntüleme programında açın. Lyo tracker boyanma miktarını belirlemek için kırmızı kanalı seçin.Histogram fonksiyonu tarafından ortaya çıkarılan tüm görüntünün piksel sayısını not edin. Ardından, kırmızı boyamanın artık beyaz piksellerle temsil edileceği şekilde görüntüyü eşikleyin. Bu işlem görüntüyü siyah beyaza dönüştürür.Bir eşik değeri belirleyin ve bu değeri settteki tüm görüntüler için kullanın. Renk aralığı aracını kullanarak beyaz pikselleri seçin ve toplam beyaz piksel sayısını elde etmek için histogram fonksiyonunu kullanın. Alandaki çekirdek sayısını saymak için mavi kanalı kullanın.Görüntüye notlar ekleyerek sayımın kaydını tutmak, değerleri kaydetmek ve bunları hücre başına ortalama boyama düzeyini hesaplamak için kullanmak faydalı olabilir. Bu analizi, geri kalan tüm görüntüler için aynı eşik ayarıyla tekrarlayın. Örnekleme amacıyla, sonic hedgehog mutant embriyolarını boyamak için ly o tracker kullanılmıştır.ly O izleyici küçük ve oldukça difüze olabilen bir molekül olduğu için, kopülasyon sonrası 10,5. günde boyanan tüm embriyoların derin bölgelerinde programlı hücre ölümü veya PCD, özellikle ekstremite ve somit bölgelerinde sonic hedgehog null mutant embriyolarında büyük ölçüde artış göstermiştir. Genel örüntüyü değerlendirmek amacıyla ekstremite tomurcukları, bütün mountlar halinde daha yüksek büyütmede görüntülenmiştir. Diseke edilen kısımlar ayrıca titreşimli mikrotom ile kesitlenmiştir.Ok başı, kriyostat ile elde edilen kesitlerde sonic hedgehog null distal ucundaki artmış TUNEL boyanmasını göstermektedir; bu kesitlerde TUNEL boyanması OT Tracker ile birlikte kullanılmıştır. LysoTracker ve TUNEL boyanması arasında kesin bir birebir korelasyon olmasa da, PCD'nin genel bölgeleri yüksek büyütme altında önemli ölçüde örtüşmektedir. Sadece TUNEL testi ile pozitif boyanan hücrelerin, sadece LysoTracker ile boyanan hücrelerin ve örtüşen boyanmaya sahip hücrelerin görülebildiği anlaşılmaktadır. 10 günlük embriyo gövde kültürünün ardından hücreler; nöronlar, kas hücreleri ve kardiyomiyositler dahil olmak üzere çeşitli hücre tiplerine farklılaşmıştır.Diferansiye ES hücrelerinin normal kültüründe, lyo tracker ve tunnel analizleri ile tespit edildiği üzere, PCD geçiren birkaç hücre bulunmaktadır. Ardından, oksidatif stres kaynaklı hücre ölümünü indüklemek için hücreler hidrojen peroksit ile işleme tabi tutulmuştur. Düşük doz hidrojen peroksit, işlem uygulanmayan grupla karşılaştırıldığında hem lyo tracker hem de tunnel boyanmasını artırmıştır.Embriyodaki sonuçlara benzer şekilde, her iki boyama da ortak ve özgün hücreleri işaretlemiştir. Yüksek doz hidrojen peroksit, hücre büzülmesine ve daha yaygın OT izleyici ve tunnel pozitifliğine yol açmıştır. Karşılaştırma amacıyla, bir saatlik serum açlığının ardından otofajiyi indüklemek için serum açlığı uygulanmıştır.OT izleyici boyanması artmıştır. Ancak, TUNEL pozitifliği normal seviyelerde kalmıştır. Bu nedenle, reer kolay ve kullanışlı olsa da, örnekler nicelleştirildikten sonra boyanmanın apoptozu mu yoksa otofajiyi mi temsil ettiğini belirlemek için ek analizlerle takip yapmak önemlidir.Daha önce gösterilen basit Photoshop yöntemi kullanıldığında, sonuçlar hidrojen peroksit konsantrasyonunun artmasının daha yüksek düzeyde lys tracker boyanmasıyla sonuçlandığını doğrulamıştır. Bir kez uzmanlaşıldığında, bu boyama prosedürü doğru şekilde uygulandığı takdirde iki saatten kısa sürede tamamlanabilir. Bu prosedürün ardından, hücre ölümü tipini doğrulamak için NX in five veya lc three immünoboyama gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Şu an için Trecker green'in yalnızca canlı hücrelerde çalıştığını, bu nedenle fiksasyon gerektiren örnekler için en iyi seçeneğinizin Reca red olduğunu unutmayın.

use-lysotracker-to-detect-programmed-cell-death-embryos

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bu video floresan boya ile insan embriyonik kök hücreler ve mezenkimal kök hücreler etiketleme teknikleri gösterir. Bu teknik, in vivo olarak bir optik görüntüleme ile nakledilen kök hücrelerin izleme ve floresan mikroskobu ile histopatolojik korelasyon kullanılabilir.

Optik Görüntüleme ile non-invaziv Algılama için Floresan Boyalar Kök Hücreler Etiketleme

Giderek artan bir ilgi ile kök hücre tedavileri, moleküler görüntüleme teknikleri transplantasyonu sonrası izleme kök hücre davranışı için idealdir. Lusiferaz muhabiri genler hücre sağkalım, konumu ve in vivo çoğalması non-invaziv, tekrarlayan değerlendirme sağladı. Bu video izlemek için yaşayan bir fare hESC çoğalması gösterecektir.

In vitro ve in vivo Biyoparlaklık Reporter Gen Görüntüleme İnsan Embriyonik Kök Hücreleri

Safir femtosaniye lazer osilatör: Ti bir yöntem olup, bir iki-fotonlu emme ile bir kafes floresan proteini içeren tek bir hücre photoactivate için tarif edilmiştir. Kader haritası için fotoaktive hücre, immunohistokimya kullanılır. Bu teknik, her hücre tipi için de uygulanabilir.

Zebra balığı Tek Hücre Kader Haritalama

Biz, (E) 9.5 ve daha sonraki aşamalarında embriyonik gün fare embriyoları olan embriyonik veya pluripotent hücrelerinden elde edilen iç ve aşılanmış hücrelerden hücre kaderine ve fenotipi hem izlenmesi amacıyla, boyalar enjekte DNA vektörleri, virüs, ve hücreler, bir dizi yöntem tarif gelişme.

Embriyonik Fare Kalpler Gelişmekte Hücre Etiketleme ve Enjeksiyon

Bu protokol Fare preimplantasyon embriyolar soy özellikleri çalışma protein ekspresyonu in situ analiz kantitatif, tek hücreli gerçekleştirmek için bir yöntem sunmaktadır. blastosist toplanması için gerekli işlemler, proteinlerin immunofluorescent algılama tüm montaj, bir konfokal mikroskop ve nükleer segmentasyon ve görüntü analizi örneklerin görüntüleme açıklanmıştır.

Protein İfade Kantitatif Analiz Fare Preimplantasyon Embriyolar Lineage Şartname Eğitim için

Süzülen makrofajlar dolaşımdaki öncüllerden yetişkin dokulara sürekli olarak işlenirken, yerleşik makrofajlar, gelişme sırasında dokularını tohumlamakta ve burada progenitörlerden başka girdiler almadan korunmaktadırlar. Yerleşik makrofajların öncüleri yakın zamanda tanımlandı. Burada, yerleşik makrofaj öncüllerinin genetik kader haritalaması için yöntemleri sunuyoruz.

Akım Sitometresi ile Fare Embriyosunda Eritromiyeloid Progenitörlerin Ve Döllerinin Belirlenmesi

Işık levha bazlı floresan mikroskobu ile böcek embriyonlarından morfojenezini Görüntüleme tekniğin durumu haline gelmiştir. Bu protokol ana hatlarıyla ve Tribolium castaneum embriyolar için uygun üç montaj teknikleri karşılaştırır, canlı görüntüleme için uygun iki yeni ısmarlama transjenik çizgileri sunar, önemli bir kalite kontrol anlatılır ve mevcut deney sınırlamaları gösterir.

Işık Levha tabanlı Floresan Yaşayanlar Mikroskopi veya Sabit ve Lekeli<em&gt; Tribullum castaneum</em&gt; Embriyolar

Burada, omurgalı Xenopus laevis embriyosunda bilinen doku kaderlerine sahip hücre soylarının kütle spektrometrisine dayalı proteomik karakterizasyonu açıklanmaktadır.

Gelişmekte Olan (Kurbağa) Embriyoda Hücre-Soy Kılavuzlu Kütle Spektrometrisi Proteomikleri

Mevcut pluripotent kök hücre (PSC)-fonksiyonel hücre farklılaşma sistemleri şu anda ciddi hattan hatta ve partiden partiye değişkenlik sorunları tarafından engellenmektedir. Burada, kardiyak farklılaşmayı ana örnek olarak kullanarak, görüntü tabanlı makine öğrenimine dayalı PSC farklılaşma sürecini akıllıca izlemek ve modüle etmek için bir protokol sunuyoruz.

Pluripotent Kök Hücre Farklılaşmasını İzlemek için Canlı Hücre Görüntü Tabanlı Makine Öğrenimi Stratejisi

Bu protokol, lizozomal membran bütünlüğü ve asitleşmedeki değişiklikleri tespit eden floresan problar kullanarak, nekroptoz sırasında lizozomal membran geçirgenliğini izlemek için bir canlı hücre görüntüleme yöntemini açıklar.

Nekroptoz Sırasında Lizozomal Membran Geçirgenliğinin Canlı Hücre Görüntülemesi

Bu makale, IMR-90 insan fibroblastlarında yaşlanma sırasında lizozomal yeniden modelleşmeyi ölçmek için canlı hücreli bir LysoTracker protokolünü sunmaktadır.

İnsan Fibroblastlarında Hücresel Yaşlanmanın Nicel Değerlendirmesi İçin LysoTracker ile Lizozomal Profilleme

Öğrenin, fare embriyolarında ve farklılaşan embriyonik kök hücrelerde LysoTracker boyası kullanarak programlı hücre ölümünü görselleştirme yöntemini. Bu teknik, gelişimsel biyoloji araştırmalarında hücre ölümü modellerini incelemek için değerlidir.

Embriyolar yılında Programlı Hücre Ölümü Algılama LysoTracker kullanımı ve Embriyonik Kök Hücreler Farklılaşan

Daha fazla video keşfet